- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
3. Results and discussion3.1. Brown
3. Results and discussion
3.1. Browning scores of fresh-cut wax apple treated with
pineapple extracts
The effects of pineapple peel, pulp and core extract dips at
concentrations of 1:1, 1:2, 1:3, 1:4, 1:5 and the control (distilled
water dip) on browning inhibition of fresh-cut rose apple stored
at 19 ± 3 ◦C for 20 h was investigated. The lowest browning score
was found in the fruit treated with pineapple extracts at the concentration
of 1:1. The pineapple core extract was more effective to
prevent browning of the fruit than the pulp and peel extracts and
the lowest browning score (1.6 ± 0.4) was found in the fruit treated
with pineapple core extract at the concentration of 1:1 whilst the
browning scores of other treatments were in the range of 3–5.
Moline et al. (1999) and Chaisakdanugull et al. (2007) suggested
that organic acids in pineapple fruit play a key role on browning
inhibition. However, in this study, the titratable acidity (TA)
of pineapple core extract (0.18% TA, pH 5.8) was lower that that
of the peel (0.53% TA, pH 3.9) and pulp (0.41% TA, pH 4.3) extract
but the core extract retarded browning of the fruit rather than the
peel and pulp extracts. This shows that organic acids might not
play such an important role in browning inhibition. Wen (2001)
reported that enzymatic browning activity was mainly inhibited
by protease in fresh pineapple juice. As the best result in browning
inhibition was in the fruit treated with the pineapple core extract
at the concentration of 1:1, the extract was selected for study in the
next experiment.
3.2. Effects of konjac glucomannan coating incorporated with
pineapple fruit extract
3.2.1. Weight loss
Fig. 1 shows the increase in weight loss of fresh-cut fruit
throughout storage at 4 ± 2 ◦C for 6 days. The weight loss of freshcut
fruit coated with KG and KG + PE was significantly lower than
that of the control and PE dip (P ≤ 0.05) where no difference was
found. This shows that the pineapple extract dip had no effect
on the change in weight loss, whilst konjac glucomannan coating
effectively delayed weight loss. Similarly, Hongkulsup et al. (2007)
reported that konjac glucomannan coating retarded weight loss of
intact rose apple fruit during storage due to the low water vapour
permeable property of the coating agent.
3.2.2. Flesh color
As shown in Fig. 2A, no surface browning occurred in the freshcut
fruit at day 0 and the browning then continuously increased
over storage at 4 ± 2 ◦C for 6 days. The results show that konjac
glucomannan coating could not inhibit browning of fresh-cut
rose apple whilst the pineapple extract could retard the browning
of the fruit. The effect of pineapple core extraction on browning
3.1. Browning scores of fresh-cut wax apple treated with
pineapple extracts
The effects of pineapple peel, pulp and core extract dips at
concentrations of 1:1, 1:2, 1:3, 1:4, 1:5 and the control (distilled
water dip) on browning inhibition of fresh-cut rose apple stored
at 19 ± 3 ◦C for 20 h was investigated. The lowest browning score
was found in the fruit treated with pineapple extracts at the concentration
of 1:1. The pineapple core extract was more effective to
prevent browning of the fruit than the pulp and peel extracts and
the lowest browning score (1.6 ± 0.4) was found in the fruit treated
with pineapple core extract at the concentration of 1:1 whilst the
browning scores of other treatments were in the range of 3–5.
Moline et al. (1999) and Chaisakdanugull et al. (2007) suggested
that organic acids in pineapple fruit play a key role on browning
inhibition. However, in this study, the titratable acidity (TA)
of pineapple core extract (0.18% TA, pH 5.8) was lower that that
of the peel (0.53% TA, pH 3.9) and pulp (0.41% TA, pH 4.3) extract
but the core extract retarded browning of the fruit rather than the
peel and pulp extracts. This shows that organic acids might not
play such an important role in browning inhibition. Wen (2001)
reported that enzymatic browning activity was mainly inhibited
by protease in fresh pineapple juice. As the best result in browning
inhibition was in the fruit treated with the pineapple core extract
at the concentration of 1:1, the extract was selected for study in the
next experiment.
3.2. Effects of konjac glucomannan coating incorporated with
pineapple fruit extract
3.2.1. Weight loss
Fig. 1 shows the increase in weight loss of fresh-cut fruit
throughout storage at 4 ± 2 ◦C for 6 days. The weight loss of freshcut
fruit coated with KG and KG + PE was significantly lower than
that of the control and PE dip (P ≤ 0.05) where no difference was
found. This shows that the pineapple extract dip had no effect
on the change in weight loss, whilst konjac glucomannan coating
effectively delayed weight loss. Similarly, Hongkulsup et al. (2007)
reported that konjac glucomannan coating retarded weight loss of
intact rose apple fruit during storage due to the low water vapour
permeable property of the coating agent.
3.2.2. Flesh color
As shown in Fig. 2A, no surface browning occurred in the freshcut
fruit at day 0 and the browning then continuously increased
over storage at 4 ± 2 ◦C for 6 days. The results show that konjac
glucomannan coating could not inhibit browning of fresh-cut
rose apple whilst the pineapple extract could retard the browning
of the fruit. The effect of pineapple core extraction on browning
0/5000
3. Results and discussion3.1. Browning scores of fresh-cut wax apple treated withpineapple extractsThe effects of pineapple peel, pulp and core extract dips atconcentrations of 1:1, 1:2, 1:3, 1:4, 1:5 and the control (distilledwater dip) on browning inhibition of fresh-cut rose apple storedat 19 ± 3 ◦C for 20 h was investigated. The lowest browning scorewas found in the fruit treated with pineapple extracts at the concentrationof 1:1. The pineapple core extract was more effective toprevent browning of the fruit than the pulp and peel extracts andthe lowest browning score (1.6 ± 0.4) was found in the fruit treatedwith pineapple core extract at the concentration of 1:1 whilst thebrowning scores of other treatments were in the range of 3–5.Moline et al. (1999) and Chaisakdanugull et al. (2007) suggestedthat organic acids in pineapple fruit play a key role on browninginhibition. However, in this study, the titratable acidity (TA)of pineapple core extract (0.18% TA, pH 5.8) was lower that thatof the peel (0.53% TA, pH 3.9) and pulp (0.41% TA, pH 4.3) extractbut the core extract retarded browning of the fruit rather than thepeel and pulp extracts. This shows that organic acids might notplay such an important role in browning inhibition. Wen (2001)reported that enzymatic browning activity was mainly inhibitedby protease in fresh pineapple juice. As the best result in browninginhibition was in the fruit treated with the pineapple core extractที่ความเข้มข้น 1:1 เลือกการดึงข้อมูลสำหรับศึกษาในการการทดลองต่อไป3.2. ผลของการเคลือบ glucomannan konjac รวมอยู่ด้วยสารสกัดจากผลไม้สับปะรด3.2.1 การลดน้ำหนักFig. 1 แสดงเพิ่มน้ำหนักของผลไม้ตัดสดตลอดทั้งการจัดเก็บที่ 4 ± 2 ◦C 6 วัน น้ำหนักของ freshcutผลไม้เคลือบ KG และ KG + PE ต่ำกว่าที่ควบคุมและชุบ PE (P ≤ 0.05) ที่แตกต่างไม่ได้พบ ฟิลด์นี้แสดงว่า จุ่มสารสกัดจากสับปะรดมีราคาไม่มีผลการเปลี่ยนแปลงในน้ำหนัก ขณะเคลือบ glucomannan konjacล่าช้าสูญเสียน้ำหนักได้อย่างมีประสิทธิภาพ ร้อยเอ็ด Hongkulsup al. (2007) ในทำนองเดียวกันรายงานว่า glucomannan konjac เคลือบ retarded น้ำหนักของผลไม้ชมพู่เหมือนเดิมระหว่างการเก็บรักษาเนื่องจากไอน้ำต่ำคุณสมบัติ permeable เคลือบตัวแทน3.2.2. เนื้อสีตามที่แสดงใน Fig. 2A, browning ผิวไม่เกิดขึ้นในการ freshcutผลไม้ในวันที่ 0 และ browning แล้วอย่างต่อเนื่องเพิ่มขึ้นไปเก็บที่ 4 ± 2 ◦C 6 วัน Konjac ที่แสดงผลเคลือบ glucomannan ไม่สามารถยับยั้ง browning ตัดสดชมพู่ในขณะที่สารสกัดจากสับปะรดสามารถถ่วง browningของผลไม้ ผลของสับปะรดสกัดหลักบน browning
การแปล กรุณารอสักครู่..
3. Results and discussion
3.1. Browning scores of fresh-cut wax apple treated with
pineapple extracts
The effects of pineapple peel, pulp and core extract dips at
concentrations of 1:1, 1:2, 1:3, 1:4, 1:5 and the control (distilled
water dip) on browning inhibition of fresh-cut rose apple stored
at 19 ± 3 ◦C for 20 h was investigated. The lowest browning score
was found in the fruit treated with pineapple extracts at the concentration
of 1:1. The pineapple core extract was more effective to
prevent browning of the fruit than the pulp and peel extracts and
the lowest browning score (1.6 ± 0.4) was found in the fruit treated
with pineapple core extract at the concentration of 1:1 whilst the
browning scores of other treatments were in the range of 3–5.
Moline et al. (1999) and Chaisakdanugull et al. (2007) suggested
that organic acids in pineapple fruit play a key role on browning
inhibition. However, in this study, the titratable acidity (TA)
of pineapple core extract (0.18% TA, pH 5.8) was lower that that
of the peel (0.53% TA, pH 3.9) and pulp (0.41% TA, pH 4.3) extract
but the core extract retarded browning of the fruit rather than the
peel and pulp extracts. This shows that organic acids might not
play such an important role in browning inhibition. Wen (2001)
reported that enzymatic browning activity was mainly inhibited
by protease in fresh pineapple juice. As the best result in browning
inhibition was in the fruit treated with the pineapple core extract
at the concentration of 1:1, the extract was selected for study in the
next experiment.
3.2. Effects of konjac glucomannan coating incorporated with
pineapple fruit extract
3.2.1. Weight loss
Fig. 1 shows the increase in weight loss of fresh-cut fruit
throughout storage at 4 ± 2 ◦C for 6 days. The weight loss of freshcut
fruit coated with KG and KG + PE was significantly lower than
that of the control and PE dip (P ≤ 0.05) where no difference was
found. This shows that the pineapple extract dip had no effect
on the change in weight loss, whilst konjac glucomannan coating
effectively delayed weight loss. Similarly, Hongkulsup et al. (2007)
reported that konjac glucomannan coating retarded weight loss of
intact rose apple fruit during storage due to the low water vapour
permeable property of the coating agent.
3.2.2. Flesh color
As shown in Fig. 2A, no surface browning occurred in the freshcut
fruit at day 0 and the browning then continuously increased
over storage at 4 ± 2 ◦C for 6 days. The results show that konjac
glucomannan coating could not inhibit browning of fresh-cut
rose apple whilst the pineapple extract could retard the browning
of the fruit. The effect of pineapple core extraction on browning
3.1. Browning scores of fresh-cut wax apple treated with
pineapple extracts
The effects of pineapple peel, pulp and core extract dips at
concentrations of 1:1, 1:2, 1:3, 1:4, 1:5 and the control (distilled
water dip) on browning inhibition of fresh-cut rose apple stored
at 19 ± 3 ◦C for 20 h was investigated. The lowest browning score
was found in the fruit treated with pineapple extracts at the concentration
of 1:1. The pineapple core extract was more effective to
prevent browning of the fruit than the pulp and peel extracts and
the lowest browning score (1.6 ± 0.4) was found in the fruit treated
with pineapple core extract at the concentration of 1:1 whilst the
browning scores of other treatments were in the range of 3–5.
Moline et al. (1999) and Chaisakdanugull et al. (2007) suggested
that organic acids in pineapple fruit play a key role on browning
inhibition. However, in this study, the titratable acidity (TA)
of pineapple core extract (0.18% TA, pH 5.8) was lower that that
of the peel (0.53% TA, pH 3.9) and pulp (0.41% TA, pH 4.3) extract
but the core extract retarded browning of the fruit rather than the
peel and pulp extracts. This shows that organic acids might not
play such an important role in browning inhibition. Wen (2001)
reported that enzymatic browning activity was mainly inhibited
by protease in fresh pineapple juice. As the best result in browning
inhibition was in the fruit treated with the pineapple core extract
at the concentration of 1:1, the extract was selected for study in the
next experiment.
3.2. Effects of konjac glucomannan coating incorporated with
pineapple fruit extract
3.2.1. Weight loss
Fig. 1 shows the increase in weight loss of fresh-cut fruit
throughout storage at 4 ± 2 ◦C for 6 days. The weight loss of freshcut
fruit coated with KG and KG + PE was significantly lower than
that of the control and PE dip (P ≤ 0.05) where no difference was
found. This shows that the pineapple extract dip had no effect
on the change in weight loss, whilst konjac glucomannan coating
effectively delayed weight loss. Similarly, Hongkulsup et al. (2007)
reported that konjac glucomannan coating retarded weight loss of
intact rose apple fruit during storage due to the low water vapour
permeable property of the coating agent.
3.2.2. Flesh color
As shown in Fig. 2A, no surface browning occurred in the freshcut
fruit at day 0 and the browning then continuously increased
over storage at 4 ± 2 ◦C for 6 days. The results show that konjac
glucomannan coating could not inhibit browning of fresh-cut
rose apple whilst the pineapple extract could retard the browning
of the fruit. The effect of pineapple core extraction on browning
การแปล กรุณารอสักครู่..
3 . ผลและการอภิปราย
3.1 . การเกิดสีน้ำตาลของคะแนนสดตัดขี้ผึ้งแอปเปิ้ลที่ได้รับการรักษาด้วยสารสกัดจากสับปะรด
ผลเปลือกสับปะรด เยื่อกระดาษและแกนสารสกัดที่ความเข้มข้นของ dips
1 : 1 , 1 : 2 , 1 : 3 , 1 : 4 , 1 : 5 และการควบคุม ( กลั่น
น้ำแช่ ) ต่อการยับยั้งการเกิดสีน้ำตาลของตัดดอกกุหลาบสดแอปเปิ้ลเก็บไว้
ที่ 19 ± 3 ◦ C 20 H ถูกตรวจสอบ ค่าคะแนน
สีน้ำตาลพบได้ในผลไม้ที่ได้รับการรักษาด้วยสารสกัดจากสับปะรดที่ความเข้มข้น
1 : 1 . สารสกัดจากสับปะรดแกนมีประสิทธิภาพ
ป้องกันสีน้ำตาลของผลไม้มากกว่า สารสกัดจากเปลือกและค่าคะแนน
สีน้ำตาล ( 1.6 ± 0.4 ) ที่พบในผลไม้รักษา
ด้วยสารสกัดจากแกนสับปะรดที่ความเข้มข้น 1 : 1 ในขณะที่
บราวนิ่งคะแนนของการรักษาอื่น ๆ จะอยู่ในช่วง 3 - 5
โมลีน et al . ( 1999 ) และ chaisakdanugull et al . ( 2007 ) แนะนำ
ที่กรดอินทรีย์ในผลไม้สับปะรดมีบทบาทสำคัญในการยับยั้งการเกิดสีน้ำตาล
. อย่างไรก็ตาม ในการศึกษานี้ ปริมาณกรด ( TA )
สารสกัดจากแกนสับปะรด ( 0.18 % TA pH 5.8 ) ต่ำกว่าที่
ของเปลือก ( 0.53 % TA , pH 3.9 ) และเยื่อกระดาษ ( 0.41 % TA , pH 4.3 ) สกัด
แต่หลักสกัดปัญญาอ่อนบราวนิ่งของผลไม้มากกว่า
สารสกัดจากเปลือก . นี่แสดงว่ากรดอินทรีย์อาจไม่
เล่นตำแหน่งที่สำคัญในการยับยั้งการเกิดสีน้ำตาล . เหวิน ( 2001 )
รายงานว่าสีน้ำตาลกิจกรรมเป็นส่วนใหญ่ยับยั้ง
โดยโปรในน้ำสับปะรดสด ผลที่ดีที่สุดในการยับยั้งในผลไม้บราวนิ่ง
ปฏิบัติ ด้วยสารสกัดจากแกนสับปะรด
ที่เข้มข้น 1 : 1 , สารสกัดที่ถูกเลือกสำหรับการศึกษา
การทดลองต่อไป .
2 . ผลของการเคลือบบุก Glucomannan รวมกับสารสกัดจากผลไม้สับปะรด
ดำเนินงาน . การสูญเสียน้ำหนัก
รูปที่ 1 แสดงให้เห็นเพิ่มขึ้นในการลดน้ำหนักของ
ผลไม้ตัดสดตลอดเก็บที่ 4 ± 2 ◦องศาเซลเซียสเป็นเวลา 6 วัน การสูญเสียน้ำหนักของ freshcut
ผลไม้เคลือบด้วยกกกก PE ลดลง
ของการควบคุมและ PE จุ่ม ( P ≤ 0.05 ) ซึ่งไม่แตกต่าง
พบนี้แสดงให้เห็นว่าสารสกัดสับปะรดจิ้ม ไม่มีผลเปลี่ยนแปลง
ในการสูญเสียน้ำหนัก ขณะบุก Glucomannan เคลือบล่าช้า
มีประสิทธิภาพการสูญเสียน้ำหนัก ในทํานองเดียวกัน hongkulsup et al . ( 2007 )
รายงานว่าบุก Glucomannan เคลือบปัญญาอ่อนการสูญเสียน้ำหนักในระหว่างการเก็บผลไม้แอปเปิ้ล
ยังคงเพิ่มขึ้นเนื่องจากการต่ำไอ
น้ำคุณสมบัติของตัวแทน permeable เคลือบ .
3.2.2 . เนื้อสี
ดังแสดงในรูปที่2A , ผิวสีน้ำตาลที่เกิดขึ้นใน freshcut
ผลไม้วันที่ 0 และสีน้ำตาลก็เพิ่มขึ้นอย่างต่อเนื่อง
ไปเก็บที่ 4 ± 2 ◦องศาเซลเซียสเป็นเวลา 6 วัน ผลที่ได้แสดงให้เห็นว่าบุก Glucomannan เคลือบไม่สามารถยับยั้งการเกิดสีน้ำตาล
ตัดสดของชมพู่ ในขณะที่สารสกัดจากสับปะรดสามารถชะลอสีน้ำตาล
ของผลไม้ ผลของการสกัดแกนสับปะรดบนสีน้ำตาล
3.1 . การเกิดสีน้ำตาลของคะแนนสดตัดขี้ผึ้งแอปเปิ้ลที่ได้รับการรักษาด้วยสารสกัดจากสับปะรด
ผลเปลือกสับปะรด เยื่อกระดาษและแกนสารสกัดที่ความเข้มข้นของ dips
1 : 1 , 1 : 2 , 1 : 3 , 1 : 4 , 1 : 5 และการควบคุม ( กลั่น
น้ำแช่ ) ต่อการยับยั้งการเกิดสีน้ำตาลของตัดดอกกุหลาบสดแอปเปิ้ลเก็บไว้
ที่ 19 ± 3 ◦ C 20 H ถูกตรวจสอบ ค่าคะแนน
สีน้ำตาลพบได้ในผลไม้ที่ได้รับการรักษาด้วยสารสกัดจากสับปะรดที่ความเข้มข้น
1 : 1 . สารสกัดจากสับปะรดแกนมีประสิทธิภาพ
ป้องกันสีน้ำตาลของผลไม้มากกว่า สารสกัดจากเปลือกและค่าคะแนน
สีน้ำตาล ( 1.6 ± 0.4 ) ที่พบในผลไม้รักษา
ด้วยสารสกัดจากแกนสับปะรดที่ความเข้มข้น 1 : 1 ในขณะที่
บราวนิ่งคะแนนของการรักษาอื่น ๆ จะอยู่ในช่วง 3 - 5
โมลีน et al . ( 1999 ) และ chaisakdanugull et al . ( 2007 ) แนะนำ
ที่กรดอินทรีย์ในผลไม้สับปะรดมีบทบาทสำคัญในการยับยั้งการเกิดสีน้ำตาล
. อย่างไรก็ตาม ในการศึกษานี้ ปริมาณกรด ( TA )
สารสกัดจากแกนสับปะรด ( 0.18 % TA pH 5.8 ) ต่ำกว่าที่
ของเปลือก ( 0.53 % TA , pH 3.9 ) และเยื่อกระดาษ ( 0.41 % TA , pH 4.3 ) สกัด
แต่หลักสกัดปัญญาอ่อนบราวนิ่งของผลไม้มากกว่า
สารสกัดจากเปลือก . นี่แสดงว่ากรดอินทรีย์อาจไม่
เล่นตำแหน่งที่สำคัญในการยับยั้งการเกิดสีน้ำตาล . เหวิน ( 2001 )
รายงานว่าสีน้ำตาลกิจกรรมเป็นส่วนใหญ่ยับยั้ง
โดยโปรในน้ำสับปะรดสด ผลที่ดีที่สุดในการยับยั้งในผลไม้บราวนิ่ง
ปฏิบัติ ด้วยสารสกัดจากแกนสับปะรด
ที่เข้มข้น 1 : 1 , สารสกัดที่ถูกเลือกสำหรับการศึกษา
การทดลองต่อไป .
2 . ผลของการเคลือบบุก Glucomannan รวมกับสารสกัดจากผลไม้สับปะรด
ดำเนินงาน . การสูญเสียน้ำหนัก
รูปที่ 1 แสดงให้เห็นเพิ่มขึ้นในการลดน้ำหนักของ
ผลไม้ตัดสดตลอดเก็บที่ 4 ± 2 ◦องศาเซลเซียสเป็นเวลา 6 วัน การสูญเสียน้ำหนักของ freshcut
ผลไม้เคลือบด้วยกกกก PE ลดลง
ของการควบคุมและ PE จุ่ม ( P ≤ 0.05 ) ซึ่งไม่แตกต่าง
พบนี้แสดงให้เห็นว่าสารสกัดสับปะรดจิ้ม ไม่มีผลเปลี่ยนแปลง
ในการสูญเสียน้ำหนัก ขณะบุก Glucomannan เคลือบล่าช้า
มีประสิทธิภาพการสูญเสียน้ำหนัก ในทํานองเดียวกัน hongkulsup et al . ( 2007 )
รายงานว่าบุก Glucomannan เคลือบปัญญาอ่อนการสูญเสียน้ำหนักในระหว่างการเก็บผลไม้แอปเปิ้ล
ยังคงเพิ่มขึ้นเนื่องจากการต่ำไอ
น้ำคุณสมบัติของตัวแทน permeable เคลือบ .
3.2.2 . เนื้อสี
ดังแสดงในรูปที่2A , ผิวสีน้ำตาลที่เกิดขึ้นใน freshcut
ผลไม้วันที่ 0 และสีน้ำตาลก็เพิ่มขึ้นอย่างต่อเนื่อง
ไปเก็บที่ 4 ± 2 ◦องศาเซลเซียสเป็นเวลา 6 วัน ผลที่ได้แสดงให้เห็นว่าบุก Glucomannan เคลือบไม่สามารถยับยั้งการเกิดสีน้ำตาล
ตัดสดของชมพู่ ในขณะที่สารสกัดจากสับปะรดสามารถชะลอสีน้ำตาล
ของผลไม้ ผลของการสกัดแกนสับปะรดบนสีน้ำตาล
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- คุณจะไปฉลองคริสมาสต์ที่ไหน
- There are different extraction procedure
- And you can suck ma chick
- คุณอยู่ประเทศอะไร
- พ่อของฉันกำลังเป่าลูกโป่ง
- ออกกำลังกาย
- To take the mother to do
- ประจุไฟฟ้าไม่เคลื่อนที่
- you may also be the world to one person
- I want to put my tong in you
- ฉันพยายามจะจับมือเธอเอาไว้
- In small welding business of which he is
- Salmon FilletThe Norwegian pride..A beau
- ฉันต้อฉันต้องการจะซื้อทีวี
- Im get sleepy. I think i go bed nowI dre
- พัสดุ
- ถ้าคุณโดนผึ้งต่อยคุณตาย
- Ya betul 2
- And you can suck ma chick
- I hope u understand my point of view
- ฉันตื่นเต้นเมื่อฉันได้รับรางวัล
- this file does not have a program associ
- 「ヒャッハー！ ですぅ！」 左手側にライセン大峡谷と右手側の雄大な草原に挟まれな
- เปล่า ผมแวะเอาของขวัญมาให้คุณNaked, I vi
