1. Introduction
Plants are exposed to a variety of biotic or abiotic stresses, such as drought, salt loading and freezing stress that influence their development, growth and productivity. One of the major abiotic stresses that affect plant productivity is water stress, resulting from drought and salinity (Gueta-Dahan et al., 1997). Water stress is one of the major causes for crop loss worldwide, reducing average yields by 50% and over (Wang et al., 2003). Under such stress, water deficit in plant tissue develops, thus leading to a significant inhibition of photosynthesis. The ability to maintain the photosynthetic machinery functionality under water stress, therefore, is of major importance for drought tolerance. Plants react to water deficit with a rapid closure of stomata to avoid further water loss via transpiration (Cornic, 1994). Water stress adversely affects plant establishment and thereafter growth and development. Water stress reduces plant growth by affecting various physiological and biochemical processes, such as photosynthesis, respiration, translocation, ion uptake, carbohydrates, nutrient metabolism and growth promoters (Jaleel et al., 2008).
Water stress may affect the mineral-nutrient relations in plants. Generally, drought reduces both nutrient uptake by the roots and transport from the roots to the shoots, because of restricted transpiration rates and impaired active transport and membrane permeability (Alam, 1999).
The symbiosis of plant roots with AM fungi is known to be one of the most ancient and widespread plant strategies to enhance nutrient acquisition and to cope with environmental stress (Brachmann and Parniske, 2006). The intra-radical mycelium of these soil fungi proliferates in the root cortex of the host plant. Extra radical AM hyphae spread in the soil around the root and provide the surface area by which the AM fungus absorbs nutritional elements such as phosphorus (P), nitrogen (N), zinc (Zn) or copper (Cu) for transport and transfer to the host plant (Smith and Read, 2008).
AM fungus is the most common type of mycorrhizal association, occurring in 2/3 of land plants (Hodge, 2000). Mycorrhizal fungi have been reported in the roots of chickpea plants, improving the growth and yield of these plants, especially in phosphorus deficient soils (Zaidi et al., 2003). Many workers have reported the enhancement of phosphate uptake and growth of leguminous plants by vesicular arbuscular mycorhizal fungi (AMF) (Atimanav and Adholeya, 2002).
Therefore, the main aim of this study was to investigate the effects of different mycorrhizal species on grain yield, nutrient uptake and oil content of sunflower under water stress conditions.
2. Materials and methods
A field experiment was conducted at the research farm of the Zabol university in Iran (latitude of 30° 54 ‘N and longitude of 61° 41′ E with an elevation of 481 m) in the 2011. The field soil was sandy loam in texture, having pH, 7.6; EC, 1.4 ds.m−1; 0.04% N, 4.6 and 125 ppm of available P and K, respectively. Experiment laid out as split plot based on randomized complete block design with three replications. Three levels of water stress W1 = 90 (control), W2 = 70 and W3 = 50% of the field capacity (FC), determined at the 0–15 cm soil depth by TDR, as main plots and two different Arbuscular mycorrhizal fungi consisting of M1 = control (without any inoculation), M2 = Glumus mossea and M3 = Glumus etanicatum as sub plots. Seeds of sunflower (Alester cultivar) were washed with distilled water then inoculation was performed by a suspension of any bacteria (108 cfu ml-1) with perlit mixture. Mycorrhiza spores were added to each respective mycorrhizal treatment, non-mycorrhizal plants received mycorrhiza spore-free medium.
There were six rows in each plot. The width and length of each row were 0.3 and 2 m, respectively. Before sowing, the soil was fertilized with N, P and K at a rate of 100, 50 and 50 kg ha−1 as urea, single super phosphate and potassium sulfate, respectively. Half of the nitrogen was applied at sowing time and residue at the start of four leaves. Seeds were placed at 1–2 cm depth. At the harvesting stage, the two middle rows were used and seed yield, oil percentage and oil yield were assessed. Grain yield in each plot was measured with 10% humidity. To determine the oil content (% of d.m.) by a Soxhlet apparatus petroleum ether at 40–60 °C was used as a solvent. To estimate the potassium concentration in seeds, samples of seeds were dry ashed at 500 °C and then determined by Jenway PFP7 Flame photometer (Keison Products, UK).
For nitrogen content, samples were digested according to the method of Chapaman and Pratt (1961), and total nitrogen content was determined using the Kjeldhal method. Phosphorus was estimated by the method given by Chapaman and Pratt (1961). Vanadate solution was added to the molybdate solution and cooled to room temperature; 250 mL of concentrated HNO3 was then added and diluted to 1 L. Next, 0.5 g of plant material (seeds) was taken in 50 mL volumetric flasks and 10 mL of vandomolybdate reagent was added to each flask. The volume was achieved with deionized water. The solution was kept for 30 min, and then the absorbance was taken at 420 nm with a spectrophotometer. Appropriate standards were run simultaneously.
2.1. Statistical analyses
All data were analyzed with SAS Institute Inc. 6.12 software. All data were first analyzed by ANOVA to determine significant (P = 0.05) treatment effects. Significant differences between individual means were determined using the Duncan’s Multiple Range Test (DMRT) at 5% level of probability. Data points in the figures represent the means ± SE of three independent experiments at least three replications per treatment combination each.
3. Results and discussion
3.1. Grain yield
Statistical analysis of data (ANOVA) showed that the grain yield was significantly affected by water stress (Table 1). By increasing water stress from control (W1) to W3 treatment, grain yield was reduced. This reduction in the level of W3 was 15.05% (Table 2). Ashraf and Mehmood, (1990), reported that, even a short term water deficit stress can cause substantial losses in crop yield, which is in agreement with our results. Stone et al. (2001), indicated that water stress deficit causes considerable decrease in the yield and oil content of sunflower.
1. บทนำพืชมีสัมผัสกับหลากหลาย abiotic หรือ biotic เครียด ภัยแล้ง เกลือโหลด และแช่แข็งความเครียดที่ส่งผลต่อการพัฒนา เจริญเติบโต และผลผลิต เครียด abiotic สำคัญที่มีผลต่อผลผลิตพืชอย่างใดอย่างหนึ่งคือความเครียดน้ำ การเกิดจากภัยแล้งและเค็ม (Gueta Dahan et al., 1997) ความเครียดน้ำเป็นหนึ่งในสาเหตุหลักสำหรับการสูญเสียพืชผลทั่วโลก อัตราผลตอบแทนเฉลี่ยที่ลดลง 50% และมากกว่า (Wang et al., 2003) ภายใต้ความเครียดดังกล่าว ดุลน้ำในเนื้อเยื่อพืชพัฒนา จึง นำไปสู่การยับยั้งการสังเคราะห์ด้วยแสงความสำคัญ ความสามารถในการรักษาฟังก์ชันการทำงานของเครื่องจักร photosynthetic ภายใต้ความเครียดน้ำ ดังนั้น เป็นความสำคัญหลักสำหรับทนแล้ง พืชตอบสนองต่อการขาดดุลน้ำด้วยการปิดอย่างรวดเร็วของ stomata เพื่อหลีกเลี่ยงการสูญเสียน้ำผ่าน transpiration (Cornic, 1994) เพิ่มเติม น้ำความเครียดมีผลต่อกระทบก่อตั้งโรงงาน และหลังจากนั้นเจริญเติบโต และพัฒนา ความเครียดน้ำลดการเจริญเติบโตของพืช โดยมีผลต่อสรีรวิทยา และชีวเคมีกระบวนการต่าง ๆ การสังเคราะห์ด้วยแสง หายใจ การสับเปลี่ยน การดูดซับไอออน คาร์โบไฮเดรต เผาผลาญธาตุอาหาร และเจริญเติบโตก่อ (Jaleel et al., 2008)น้ำความเครียดอาจส่งผลกระทบต่อความสัมพันธ์ของแร่ธาตุอาหารในพืช ทั่วไป ภัยแล้งลดทั้งดูดซับธาตุอาหารจากรากและการขนส่งจากรากเพื่อถ่ายภาพ ราคา transpiration จำกัด และความใช้งานขนส่ง และเมมเบรน permeability (อลัม 1999)Symbiosis ของรากพืชด้วย AM เชื้อรามีชื่อเสียงเป็นหนึ่งในกลยุทธ์พืชของโบราณมากที่สุด และแพร่หลาย เพื่อเพิ่มธาตุอาหารมา และรับมือกับความเครียดด้านสิ่งแวดล้อม (Brachmann และ Parniske, 2006) Mycelium ภายในรุนแรงของเชื้อราดินเหล่านี้ proliferates ใน cortex รากของโฮสต์ เพิ่มรัศมีเป็น hyphae ที่แพร่กระจายในดินรอบ ๆ ราก และให้พื้นที่ผิว โดยที่เชื้อรา AM ดูดซับองค์ประกอบทางโภชนาการเช่นฟอสฟอรัส (P), ไนโตรเจน (N), สังกะสี (Zn) หรือทองแดง (Cu) สำหรับการขนส่งและโอนย้ายไปยังโรงงานโฮสต์ (สมิธและอ่าน 2008)เชื้อรา AM เป็นชนิดทั่วไปของสมาคม mycorrhizal เกิดขึ้นใน 2/3 ของแผ่นดิน (Hodge, 2000) เชื้อรา mycorrhizal ถูกรายงานในรากของพืชแกงถั่วเขียว การเจริญเติบโตและผลผลิตของพืชเหล่านี้ โดยเฉพาะอย่างยิ่งในดินเนื้อปูนขาดสารฟอสฟอรัส (Zaidi et al., 2003) หลายคนมีรายงานของการดูดซับฟอสเฟตและเจริญเติบโตของพืช leguminous โดยเชื้อรา mycorhizal vesicular arbuscular (AMF) (Atimanav และ Adholeya, 2002)ดังนั้น จุดมุ่งหมายหลักของการศึกษานี้คือการ ตรวจสอบผลต่าง mycorrhizal ชนิดเม็ด ดูดซับธาตุอาหาร และปริมาณน้ำมันของทานตะวันสภาวะความเครียดน้ำ2. วัสดุและวิธีการวิธีการทดลองฟิลด์ที่ฟาร์มวิจัยมหาวิทยาลัย Zabol ในอิหร่าน (ละติจูด 30° 54 เกร็ดเล็ก ๆ น้อย ๆ และลองจิจูด 41′ 61° E 481 เมตรระดับความสูง) ใน 2011 ดินฟิลด์ถูก loam ทรายในเนื้อ มีค่า pH, 7.6 EC, 1.4 ds.m−1 0.04% N, 4.6 และ 125 ppm ของ P และ K ตามลำดับ ทดลองวางออกเป็นแผนแบ่งตามการออกแบบบล็อก randomized สมบูรณ์กับระยะที่สาม สามระดับน้ำความเครียด W1 = 90 (ตัวควบคุม), W2 = 70 และ W3 = 50% ของฟิลด์กำลังการผลิต (FC), ตามที่ความลึก 0 – 15 เซนติเมตรดิน TDR ผืนหลักและสองอื่น Arbuscular mycorrhizal เชื้อราประกอบด้วย M1 =ควบคุม (โดยไม่ต้องใด ๆ inoculation), M2 = Glumus mossea และ M3 = Glumus etanicatum เป็นย่อยลงจุด เมล็ดทานตะวัน (Alester cultivar) ถูกล้าง ด้วยน้ำกลั่น แล้วทำ inoculation โดยระงับแบคทีเรียใด ๆ (108 cfu ml-1) ด้วยส่วนผสม perlit เพาะเฟิร์นไมคอไรซาถูกเพิ่มเข้าไปเกี่ยวข้อง mycorrhizal ทรีต ไมคอไรซาไม่ใช่ mycorrhizal พืชรับฟรีสปอร์ขนาดกลางยังมี 6 แถวในแต่ละแผน ความกว้างและความยาวของแต่ละแถวได้ 2 เมตร และ 0.3 ตามลำดับ ก่อน sowing ดินถูกปฏิสนธิ ด้วย N, P และ K ในอัตรา 100, 50 และ 50 กก. ha−1 urea เดี่ยวซุปเปอร์ฟอสเฟต และโพแทสเซียม ซัลเฟต ตามลำดับ ครึ่งหนึ่งของไนโตรเจนที่ใช้ที่ sowing เวลาและสารตกค้างที่จุดเริ่มต้นของใบ 4 เมล็ดถูกวางใน 1 – 2 ซม.ลึก ในขั้น harvesting ใช้สองแถวตรงกลาง และมีประเมินผลผลิตเมล็ด เปอร์เซ็นต์น้ำมัน และผลผลิตน้ำมัน มีวัดผลผลิตข้าวในแต่ละแผน มีความชื้น 10% การตรวจสอบน้ำมัน เนื้อหา (%ของ d.m.) อีเทอร์ปิโตรเลียมเครื่อง Soxhlet ที่ 40 – 60 ° C ถูกใช้เป็นตัวทำละลาย การประเมินความเข้มข้นของโพแทสเซียมในเมล็ดพืช ตัวอย่างของเมล็ดพืชได้แห้ง ashed ที่ 500 ° C และตาม Jenway เปลวไฟ PFP7 เครื่องวัดความสว่าง (ผลิตภัณฑ์ Keison, UK)สำหรับเนื้อหาของไนโตรเจน ตัวอย่างถูกต้องตามวิธีการของ Chapaman และคิด (1961), และไนโตรเจนรวมเนื้อหาถูกกำหนดโดยใช้วิธี Kjeldhal ฟอสฟอรัสถูกประเมิน โดยวิธีการ Chapaman และคิด (1961) โซลูชั่น vanadate ถูกเพิ่มลงในโซลูชัน molybdate และระบายความร้อนด้วยอุณหภูมิห้อง 250 mL ของ HNO3 เข้มข้นถูกเพิ่ม แล้วยกเว้นไป 1 l , 50 mL volumetric flasks ถ่าย 0.5 g วัสดุพืช (เมล็ด) และเพิ่ม 10 mL ของรีเอเจนต์ vandomolybdate จะหนาวแต่ละ เสียงสำเร็จ ด้วยน้ำ deionized โซลูชันถูกเก็บไว้ 30 นาที แล้ว absorbance ที่ถูกนำมาที่ 420 nm กับเป็นเครื่องทดสอบกรดด่าง มาตรฐานที่เหมาะสมถูกเรียกใช้พร้อมกัน2.1. สถิติวิเคราะห์ข้อมูลทั้งหมดถูกวิเคราะห์ ด้วยซอฟต์แวร์ 6.12 Inc. สถาบัน SAS ข้อมูลทั้งหมดได้ก่อนวิเคราะห์ โดยการวิเคราะห์ความแปรปรวนเพื่อกำหนดอย่างมีนัยสำคัญ (P = 0.05) ผลการรักษา แตกต่างกันระหว่างแต่ละวิธีมีกำหนดใช้ของดันแคนหลายช่วงทดสอบ (DMRT) ที่ระดับ 5% ของความน่าเป็น ข้อมูลจุดในแสดงถึงตัวเลข SE ±วิธีการทดลองอิสระสามระยะที่สามต่อแต่ละชุดรักษา3. ผลลัพธ์ และสนทนา3.1 ผลผลิตข้าววิเคราะห์ทางสถิติของข้อมูล (การวิเคราะห์ความแปรปรวน) พบว่า ผลผลิตข้าวได้รับผลมากจากความเครียดของน้ำ (ตารางที่ 1) ผลผลิตข้าวลดลง โดยเพิ่มน้ำความเครียดจากการควบคุม (W1) W3 รักษา นี้ลดระดับของ W3 ได้ 15.05% (ตารางที่ 2) Ashraf และของ Mehmood, (1990), รายงานว่า แม้จะเป็นระยะสั้นน้ำขาดดุลความเครียดอาจทำให้ขาดทุนพบพืชผลตอบแทน ซึ่งเป็นข้อตกลงกับผลของเรา หินและ al. (2001), ระบุที่ขาดดุลความเครียดน้ำทำให้ลดลงมากในเนื้อหาน้ำมันและผลผลิตของทานตะวัน
การแปล กรุณารอสักครู่..

1. Introduction
Plants are exposed to a variety of biotic or abiotic stresses, such as drought, salt loading and freezing stress that influence their development, growth and productivity. One of the major abiotic stresses that affect plant productivity is water stress, resulting from drought and salinity (Gueta-Dahan et al., 1997). Water stress is one of the major causes for crop loss worldwide, reducing average yields by 50% and over (Wang et al., 2003). Under such stress, water deficit in plant tissue develops, thus leading to a significant inhibition of photosynthesis. The ability to maintain the photosynthetic machinery functionality under water stress, therefore, is of major importance for drought tolerance. Plants react to water deficit with a rapid closure of stomata to avoid further water loss via transpiration (Cornic, 1994). Water stress adversely affects plant establishment and thereafter growth and development. Water stress reduces plant growth by affecting various physiological and biochemical processes, such as photosynthesis, respiration, translocation, ion uptake, carbohydrates, nutrient metabolism and growth promoters (Jaleel et al., 2008).
Water stress may affect the mineral-nutrient relations in plants. Generally, drought reduces both nutrient uptake by the roots and transport from the roots to the shoots, because of restricted transpiration rates and impaired active transport and membrane permeability (Alam, 1999).
The symbiosis of plant roots with AM fungi is known to be one of the most ancient and widespread plant strategies to enhance nutrient acquisition and to cope with environmental stress (Brachmann and Parniske, 2006). The intra-radical mycelium of these soil fungi proliferates in the root cortex of the host plant. Extra radical AM hyphae spread in the soil around the root and provide the surface area by which the AM fungus absorbs nutritional elements such as phosphorus (P), nitrogen (N), zinc (Zn) or copper (Cu) for transport and transfer to the host plant (Smith and Read, 2008).
AM fungus is the most common type of mycorrhizal association, occurring in 2/3 of land plants (Hodge, 2000). Mycorrhizal fungi have been reported in the roots of chickpea plants, improving the growth and yield of these plants, especially in phosphorus deficient soils (Zaidi et al., 2003). Many workers have reported the enhancement of phosphate uptake and growth of leguminous plants by vesicular arbuscular mycorhizal fungi (AMF) (Atimanav and Adholeya, 2002).
Therefore, the main aim of this study was to investigate the effects of different mycorrhizal species on grain yield, nutrient uptake and oil content of sunflower under water stress conditions.
2. Materials and methods
A field experiment was conducted at the research farm of the Zabol university in Iran (latitude of 30° 54 ‘N and longitude of 61° 41′ E with an elevation of 481 m) in the 2011. The field soil was sandy loam in texture, having pH, 7.6; EC, 1.4 ds.m−1; 0.04% N, 4.6 and 125 ppm of available P and K, respectively. Experiment laid out as split plot based on randomized complete block design with three replications. Three levels of water stress W1 = 90 (control), W2 = 70 and W3 = 50% of the field capacity (FC), determined at the 0–15 cm soil depth by TDR, as main plots and two different Arbuscular mycorrhizal fungi consisting of M1 = control (without any inoculation), M2 = Glumus mossea and M3 = Glumus etanicatum as sub plots. Seeds of sunflower (Alester cultivar) were washed with distilled water then inoculation was performed by a suspension of any bacteria (108 cfu ml-1) with perlit mixture. Mycorrhiza spores were added to each respective mycorrhizal treatment, non-mycorrhizal plants received mycorrhiza spore-free medium.
There were six rows in each plot. The width and length of each row were 0.3 and 2 m, respectively. Before sowing, the soil was fertilized with N, P and K at a rate of 100, 50 and 50 kg ha−1 as urea, single super phosphate and potassium sulfate, respectively. Half of the nitrogen was applied at sowing time and residue at the start of four leaves. Seeds were placed at 1–2 cm depth. At the harvesting stage, the two middle rows were used and seed yield, oil percentage and oil yield were assessed. Grain yield in each plot was measured with 10% humidity. To determine the oil content (% of d.m.) by a Soxhlet apparatus petroleum ether at 40–60 °C was used as a solvent. To estimate the potassium concentration in seeds, samples of seeds were dry ashed at 500 °C and then determined by Jenway PFP7 Flame photometer (Keison Products, UK).
For nitrogen content, samples were digested according to the method of Chapaman and Pratt (1961), and total nitrogen content was determined using the Kjeldhal method. Phosphorus was estimated by the method given by Chapaman and Pratt (1961). Vanadate solution was added to the molybdate solution and cooled to room temperature; 250 mL of concentrated HNO3 was then added and diluted to 1 L. Next, 0.5 g of plant material (seeds) was taken in 50 mL volumetric flasks and 10 mL of vandomolybdate reagent was added to each flask. The volume was achieved with deionized water. The solution was kept for 30 min, and then the absorbance was taken at 420 nm with a spectrophotometer. Appropriate standards were run simultaneously.
2.1. Statistical analyses
All data were analyzed with SAS Institute Inc. 6.12 software. All data were first analyzed by ANOVA to determine significant (P = 0.05) treatment effects. Significant differences between individual means were determined using the Duncan’s Multiple Range Test (DMRT) at 5% level of probability. Data points in the figures represent the means ± SE of three independent experiments at least three replications per treatment combination each.
3. Results and discussion
3.1. Grain yield
Statistical analysis of data (ANOVA) showed that the grain yield was significantly affected by water stress (Table 1). By increasing water stress from control (W1) to W3 treatment, grain yield was reduced. This reduction in the level of W3 was 15.05% (Table 2). Ashraf and Mehmood, (1990), reported that, even a short term water deficit stress can cause substantial losses in crop yield, which is in agreement with our results. Stone et al. (2001), indicated that water stress deficit causes considerable decrease in the yield and oil content of sunflower.
การแปล กรุณารอสักครู่..

1 . พืชแนะนำ
สัมผัสความหลากหลายของสิ่งมีชีวิตชีววิทยา หรือความเครียด เช่น ความแห้งแล้ง และเย็นยะเยือก ความเครียดเกลือโหลดที่มีอิทธิพลต่อพัฒนาการของการเจริญเติบโตและผลผลิต หนึ่งในสิ่งมีชีวิตที่มีผลต่อผลผลิตพืชหลักเน้นน้ำความเครียด เป็นผลจากความแห้งแล้งและดินเค็ม ( gueta ดาแฮน et al . , 1997 ) น้ำความเครียดเป็นหนึ่งในสาเหตุหลักของการสูญเสียพืชทั่วโลกการลดอัตราผลตอบแทนโดยเฉลี่ย 50% และมากกว่า ( Wang et al . , 2003 ) ภายใต้ความเครียด เช่น การขาดน้ำในเนื้อเยื่อพืช พัฒนา จึงนำไปสู่การยับยั้งการสังเคราะห์ด้วยแสง ความสามารถในการรักษาด้วยแสงเครื่องจักรการทํางานภายใต้น้ำความเครียดจึงเป็นเรื่องสำคัญที่สำคัญสำหรับความทนแล้งพืชตอบสนองการขาดน้ำด้วยการปิดของปากใบอย่างรวดเร็วเพื่อหลีกเลี่ยงการสูญเสียน้ำเพิ่มเติมผ่านการคายน้ำ ( cornic , 1994 ) น้ำพืชและหลังจากนั้นจัดตั้งความเครียดมีผลกระทบต่อการเจริญเติบโตและการพัฒนา น้ำความเครียดลดการเจริญเติบโตของพืช โดยส่งผลกระทบต่อกระบวนการทางสรีรวิทยาและชีวเคมีต่าง ๆเช่น การสังเคราะห์แสง การหายใจ การโยกย้าย ไอออนการดูดซึมคาร์โบไฮเดรตส่งเสริมการเผาผลาญสารอาหารและการเจริญเติบโต ( jaleel et al . , 2008 ) .
น้ำความเครียด อาจส่งผลกระทบต่อความสัมพันธ์ของแร่ธาตุในพืช โดยทั่วไปแล้ว แล้งลดทั้งธาตุอาหารจากรากและการขนส่งจากราก หน่อ เพราะ อัตราการคายน้ำและการขนส่ง จำกัด ที่มีการใช้งานและการซึมผ่านเมมเบรน ( Alam , 1999 ) .
การประสานของรากพืชกับเป็นเชื้อราเป็นที่รู้จักกันเป็นหนึ่งในที่เก่าแก่ที่สุดและกลยุทธ์เพื่อเพิ่มธาตุอาหารพืชและการรับมือกับความเครียดสิ่งแวดล้อมอย่างกว้างขวาง ( brachmann และ parniske , 2006 ) ภายในเส้นใยของเชื้อราในดิน รากเหล่านี้ proliferates ในรากสมองของโฮสต์พืชเสริมรากเป็นเส้นใยกระจายอยู่ในดินบริเวณรอบราก และให้พื้นที่ผิวที่ดูดซับองค์ประกอบทางโภชนาการเป็นรา เช่น ฟอสฟอรัส ( P ) ไนโตรเจน ( N ) , สังกะสี ( Zn ) หรือ ทองแดง ( Cu ) สำหรับการขนส่งและการถ่ายโอนไปยังโฮสต์ของพืช ( สมิ ธและอ่าน , 2551 ) .
คือ เชื้อรา เป็นชนิดที่พบมากที่สุดของสมาคมไมโคไรซา เกิดขึ้นใน 2 / 3 ของพืชที่ดิน ( ฮอดจ์ , 2000 )ไมโคไรซาราได้รับการรายงานในรากของพืชถั่วเขียว เพิ่มการเจริญเติบโตและผลผลิตของพืชเหล่านี้ โดยเฉพาะฟอสฟอรัสในดิน ( กว่า et al . , 2003 ) คนงานหลายคนได้รายงานการเพิ่มประสิทธิภาพของการดูดซึมฟอสเฟตและการเจริญเติบโตของพืชทั้งโดยี่ซึ่งเป็นตุ่มพองน้ำมายโคไรซัลรา ( AMF ) ( atimanav และ adholeya , 2002 ) .
เพราะฉะนั้นวัตถุประสงค์หลักของการศึกษานี้ก็เพื่อศึกษาผลกระทบของชนิดไมโคไรซาที่แตกต่างกันในผลผลิต และปริมาณของธาตุอาหาร น้ำมันดอกทานตะวัน ภายใต้สภาวะเครียดน้ำ
2 วัสดุและวิธีการ : ทำการทดลองในการวิจัยฟาร์มของมหาวิทยาลัยในอิหร่าน ซาโบล ( ละติจูด 30 องศา 54 ' N และลองจิจูด 61 ° 41 ได้รับ E กับระดับความสูง 481 เมตร ) ใน 2011สนามเป็นดินร่วนปนทราย อยู่ในเนื้อ มี pH 7.6 ; EC 1.4 DS m − 1 ; 0.04 % N , 4.6 และ 125 ppm ของ P และ K ตามลำดับ ทดลองวางเป็นแผนแยกตาม randomized complete block design มี 3 ซ้ำ สามระดับของน้ำความเครียด W1 = 90 ( ควบคุม ) = 70 และ W2 W3 = 50% ของความจุสนาม ( ชลบุรี เอฟซี ) , ที่กำหนด 0 – 15 ซม. โดย TDR ดินลึก ,เป็นโครงเรื่องหลักและที่แตกต่างกันสองน้ำเชื้อราไมโคไรซา ประกอบด้วย การควบคุม M1 = ( ไม่มีการฉีดวัคซีน ) , M2 และ M3 = = glumus mossea glumus etanicatum เป็นซับพล็อต . เมล็ดทานตะวัน ( alester พันธุ์ ) ล้างด้วยน้ำกลั่น แล้วการกระทำโดยระงับแบคทีเรีย ( 108 CFU แน่นอน ) ที่มีส่วนผสมของ perlit .ไมคอร์ไรซาสปอร์ถูกเพิ่มไปยังแต่ละไมโคไรซา รักษานนท์ ไมโคไรซาพืชได้รับ ไมคอร์ไรซาสปอร์กลางฟรี
มี 6 แถวในแต่ละแปลง ความกว้างและความยาวของแต่ละแถวเป็น 0.3 และ 2 เมตร ตามลำดับ ก่อนปลูก , ดินผสมกับ N P และ K ในอัตรา 100 , 50 และ 50 กก ฮา − 1 เป็นยูเรีย โสด ซูเปอร์ฟอสเฟต และโพแทสเซียมซัลเฟต ตามลำดับครึ่งหนึ่งของไนโตรเจนที่ใช้ในการเพาะเมล็ดและกากที่เริ่มต้นจากสี่ใบ เมล็ดอยู่ที่ 1 – 2 เซนติเมตร ความลึก ในขั้นตอนของการเก็บเกี่ยว สองกลางแถวใช้และผลผลิตเมล็ด เปอร์เซ็นต์น้ำมันน้ำมันและผลผลิต ได้แก่ การประเมิน ผลผลิตในแต่ละแปลงเป็นวัดที่มีความชื้น 10% เพื่อตรวจสอบปริมาณน้ำมัน ( % ของ d.m.1 ) โดยอุปกรณ์ปิโตรเลียมอีเทอร์ที่ 40 – 60 ° C ที่ใช้เป็นตัวทำละลาย ประมาณการโพแทสเซียมในเมล็ด จำนวนเมล็ดแห้ง 500 ° C และ Ashed ที่กำหนดแล้ว โดย jenway pfp7 Flame Photometer ( ผลิตภัณฑ์ keison UK ) .
ปริมาณกลุ่มตัวอย่างย่อยตามวิธีการและ chapaman แพรตต์ ( 1961 )และปริมาณไนโตรเจนทั้งหมดก็ตัดสินใจใช้วิธี kjeldhal . ฟอสฟอรัสเป็นประมาณโดยวิธีการให้โดยและ chapaman แพรตต์ ( 1961 ) การทำงาน โซลูชั่นถูกเพิ่มเข้าไปโมลิบเดต โซลูชัน และเย็นที่อุณหภูมิห้อง ; กรดดินประสิวเข้มข้น 250 มิลลิลิตร จากนั้นเพิ่มและเจือจาง 1 ลิตรต่อไป 05 กรัมของวัสดุพืช ( เมล็ด ) อยู่ในขวด 50 มล. ปริมาตร 10 มิลลิลิตรและ vandomolybdate รีเอเจนต์ที่ถูกเพิ่มเข้าไปในแต่ละขวด ปริมาณที่เป็นแผ่นคล้ายเนื้อเยื่อประสานกับน้ำ โซลูชั่นที่ถูกเก็บไว้เป็นเวลา 30 นาที จากนั้น นถ่ายที่ 420 นาโนเมตร ด้วยวัสดุ มาตรฐานที่เหมาะสมมีวิ่งพร้อมกัน
2.1 . สถิติที่ใช้ในการวิเคราะห์ข้อมูลที่ได้นำมาวิเคราะห์ด้วย
สถาบัน SAS อิงค์6.12 ซอฟต์แวร์ ข้อมูลทั้งหมดเป็นครั้งแรก โดยใช้การวิเคราะห์ความแปรปรวน ( ANOVA ) เพื่อศึกษาทางสถิติ ( P = 0.05 ) ผลการทดลอง ความแตกต่างของค่าเฉลี่ยของแต่ละบุคคลมีการพิจารณาการทดสอบหลายช่วง ดันแคน ( วัตถุดิบในผลิตภัณฑ์อาหารว่าง ) ที่ 5 ระดับของความน่าจะเป็น ข้อมูล คะแนนในตัวเลขที่แสดงวิธีการ± SE สามอิสระอย่างน้อย 3 ซ้ำการทดลองต่อการรวมกันในแต่ละ .
3ผลและการอภิปราย
3.1 . ผลผลิต
การวิเคราะห์ข้อมูลทางสถิติ ( ANOVA ) พบว่าผลผลิตอย่างมีนัยสำคัญผลกระทบจากน้ำความเครียด ( ตารางที่ 1 ) โดยการเพิ่มน้ำความเครียดจากการควบคุม ( W1 ) W3 รักษา ผลผลิตลดลง การลดระดับของ W3 คือเกษตรกร % ( ตารางที่ 2 ) Ashraf และ เมห์มูด ( 1990 ) , รายงานว่าแม้การขาดน้ำในระยะสั้น ความเครียดสามารถก่อให้เกิดความสูญเสียอย่างมากในผลผลิตพืช ซึ่งสอดคล้องกับผลของเรา หิน et al . ( 2544 ) พบว่าดุลความเครียดน้ำสาเหตุลดลงมากในผลผลิตและปริมาณน้ำมันของทานตะวัน
การแปล กรุณารอสักครู่..
