Yeast immobilization and fermentati

Yeast immobilization and fermentation conditions
S. cerevisiae (strain DTN), was grown in 250 ml Erlenmeyer
flasks containing 100 ml sterilized medium (glucose 20 g/l, pepton
10 g/l, yeast extract 10 g/l; pH 4.5). It was cultured for 24 h at 30 C
in a rotary incubator (120 rpm). Yeast cells were separated by centrifugation
at 3000 rpm for 10 min, and resuspended in sterilized
0.9% NaCl.
To immobilize cells, the flask containing 500 ml of synthetic
culture medium and 5 g carrier was inoculated by transferring an
amount of 50 ml of yeast suspension (containing 1.5 g of yeast
dry matter), and was incubated at 30 C for 24 h on a rotary shaker
(120 rpm). After the immobilization of the cells, the medium was
decanted using sterilized gauze and the biocatalyst was washed
with 500 ml of fermentation substrate (molasses and thick juice).
The prepared biocatalyst was used for the batch fermentation of
500 ml of the same fermentation substrate in 1 l Erlenmeyer flask.
Fermentation media were inoculated with equal biomass concentration
of 1.09 ± 0.05 g/l, for free and immobilized cells, respectively.
Anaerobic batch fermentations (pH 5.5; 30 C; without
shaking) using free (FC) and immobilized yeast cells (IC) onto
maize stem ground tissue were carried out in duplicate. Fermentation
kinetics was monitored by measuring the weight of produced
CO2 and residual sugars concentration of the fermenting liquids at
appropriate time intervals. CO2 weight loss during fermentation
was measured by an accurate balance (0.01 g). Medium sampling
during the batch fermentation was carried out by taking aliquots
(10 ml), for cell, sugar, pH, conductivity and total dissolved solids
(TDS) concentration analyses.
2

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

เงื่อนไขที่ตรึงโปและหมักยีสต์S. cerevisiae (ต้องใช้ DTN), ถูกปลูกใน Erlenmeyer 250 mlน้ำที่ประกอบด้วยขนาดกลาง 100 มล sterilized (กลูโคส 20 g/l, pepton10 g/l, 10 g/l สารสกัดจากยีสต์ pH 4.5) จะมีอ่างสำหรับ 24 ชมที่ 30 Cในแบบโรตารี่บ่มเพาะวิสาหกิจ (120 รอบต่อนาที) มีแยกเซลล์ยีสต์ ด้วย centrifugationที่ 3000 รอบต่อนาทีใน 10 นาที และ resuspended ใน sterilized0.9% NaClการ immobilize เซลล์ หนาวประกอบด้วยขนาด 500 มล.ของหนังสังเคราะห์ผู้ขนส่งวัฒนธรรมสื่อและ 5 กรัมถูก inoculated โดยถ่ายโอนเป็นจำนวน 50 ml ของยีสต์ระงับ (1.5 g ยีสต์ประกอบด้วยแห้งเรื่อง), และมี incubated ที่ 30 C ใน 24 h ในเชคเกอร์โรตารี่(120 รอบต่อนาที) หลังจากตรึงโปของเซลล์ เป็นสื่อใช้ decanted sterilized ผ้าพันแผล และ biocatalyst ถูกล้างด้วยขนาดของพื้นผิวหมัก (กากน้ำตาลและน้ำหนา) 500 มล.ใช้ biocatalyst เตรียมไว้สำหรับหมักชุดขนาดของพื้นผิวหมักเดียวใน Erlenmeyer หนาว 1 l 500 มล.หมักสื่อถูก inoculated กับความเข้มข้นเท่ากับชีวมวลของ 1.09 ± 0.05 g/l สำหรับเอนไซม์ และเซลล์ ตามลำดับไม่ใช้ชุดหมักแหนม (ค่า pH 5.5; 30 C ไม่มีสั่น) ใช้ฟรี (FC) และเอนไซม์ยีสต์เซลล์ (IC) ลงบนเนื้อเยื่อต้นกำเนิดข้าวโพดดินได้ดำเนินการออกสำเนา หมักจลนพลศาสตร์ถูกตรวจสอบ โดยการวัดน้ำหนักของผลิตCO2 และส่วนที่เหลือจากน้ำตาลเข้มข้นของของเหลว fermenting ที่ช่วงเวลาที่เหมาะสม CO2 สูญเสียน้ำหนักในระหว่างการหมักถูกวัด โดยดุลถูกต้อง (0.01 g) สุ่มตัวอย่างขนาดกลางระหว่างชุดการ หมักถูกดำเนินการ โดยการ aliquots(10 มล.), เซลล์ น้ำตาล ค่า pH นำ และรวมส่วนยุบของแข็ง(TDS) เข้มข้นวิเคราะห์2

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ตรึงยีสต์และเงื่อนไขการหมัก
เอส cerevisiae (สายพันธุ์ DTN) ถูกปลูกใน 250 มลรูปกรวย
ขวดที่มีขนาด 100 ml ฆ่าเชื้อกลาง (กลูโคส 20 กรัม / ลิตรโตน
10 g / l, สารสกัดจากยีสต์ 10 กรัม / l; ค่า pH 4.5) มันเป็นที่เพาะเลี้ยงเป็นเวลา 24 ชั่วโมงวันที่ 30 C
ในศูนย์บ่มเพาะหมุน (120 รอบต่อนาที) เซลล์ยีสต์ถูกแยกออกโดยการหมุนเหวี่ยง
ที่ 3000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 10 นาทีและ resuspended ในการฆ่าเชื้อ
0.9% NaCl.
เพื่อลื่อเซลล์ที่มีขวด 500 มลสังเคราะห์
สื่อวัฒนธรรมและการให้บริการ 5 กรัมได้รับเชื้อโดยการโอน
เงินจำนวน 50 มิลลิลิตรระงับยีสต์ (ที่มี 1.5 กรัมยีสต์
แห้ง) และได้รับการบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมงในการปั่นหมุน
(120 รอบต่อนาที) หลังจากการตรึงของเซลล์ขนาดกลางที่ถูก
ถ่ายโดยใช้ผ้ากอซฆ่าเชื้อและสารเร่งถูกล้าง
ด้วย 500 มลของพื้นผิวการหมัก (กากน้ำตาลและน้ำผลไม้หนา).
สารเร่งเตรียมถูกนำมาใช้สำหรับการหมักชุดของ
500 มลของพื้นผิวหมักเดียวกันใน . 1 ลิตรขวดรูปกรวย
สื่อหมักถูกเชื้อที่มีความเข้มข้นชีวมวลเท่ากับ
1.09 ± 0.05 กรัม / ลิตรสำหรับเซลล์ฟรีและตรึงตามลำดับ.
Anaerobic หมักชุด (pH 5.5; 30 C; โดยไม่
สั่น) ใช้ฟรี (FC) และยีสต์ตรึง เซลล์ (IC) ไปยัง
เนื้อเยื่อพื้นดินลำต้นข้าวโพดได้ดำเนินการในที่ซ้ำกัน หมัก
จลนศาสตร์ได้รับการตรวจสอบโดยการวัดน้ำหนักของผลิต
CO2 และน้ำตาลที่เหลือความเข้มข้นของของเหลวที่หมักใน
ช่วงเวลาที่เหมาะสม CO2 การสูญเสียน้ำหนักระหว่างการหมัก
โดยวัดจากยอดเงินที่ถูกต้อง (0.01 กรัม) สุ่มตัวอย่างปานกลาง
ระหว่างการหมักชุดได้รับการดำเนินการโดยการ aliquots
(10 มล.) สำหรับเซลล์, น้ำตาล, กรดด่างและการนำสารที่ละลายทั้งหมด
(TDS) ความเข้มข้นวิเคราะห์.
2

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การผลิตยีสต์หมักและเงื่อนไข
S . cerevisiae ( ระหว่างประเทศสายพันธุ์ ) , โตหมักในฟลาสก์ขนาด 250 มิลลิลิตร ขวดบรรจุ 100 ml
ฆ่าเชื้อขนาดกลาง ( กลูโคส 20 กรัมต่อลิตร pepton
10 g / l , สารสกัดจากยีสต์ 10 กรัม / ลิตร พีเอช 4.5 ) มันเลี้ยงเป็นเวลา 24 ชั่วโมง ที่อุณหภูมิ 30 C
ในตู้หมุน ( 120 รอบต่อนาที ) เซลล์ยีสต์ที่แยกได้จากการปั่นเหวี่ยง
3000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 10 นาที และ resuspended ใน 0.9% NaCl ฆ่าเชื้อ
.
การหยุดเซลล์ ขวดบรรจุ 500 มิลลิลิตรอาหารเลี้ยงเชื้อสังเคราะห์
ผู้ให้บริการและ 5 กรัม เป็นเชื้อโดยการส่ง
ปริมาณ 50 มิลลิลิตร เซลล์ยีสต์ที่มี 1.5 กรัมยีสต์
แห้ง ) , และบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 24 ชั่วโมงบน
เครื่องปั่น Rotary ( 120 รอบต่อนาที ) หลังจากการตรึงเซลล์สื่อคือ
รินใช้ฆ่าเชื้อผ้าพันแผลและตัวเร่งปฏิกิริยาชีวภาพล้าง
กับ 500 ml ( หมัก ( กากน้ำตาลและน้ำหนา ) .
เตรียมตัวเร่งปฏิกิริยาชีวภาพที่ใช้สำหรับการหมักแบบของ
500 มิลลิลิตร ( หมักในขวดเดียวกัน เออร์เลนเมเยอร์ 1 l .
สื่อการหมักปลูกเชื้อด้วยเท่ากับความเข้มข้นของชีวมวล
1.09 ± 0.05 กรัมต่อลิตร ฟรีและตรึงเซลล์ ตามลำดับ
fermentations ชุดแอโรบิค ( pH 5.5 ; 30 C โดยไม่
;สั่น ) ใช้ฟรี ( FC ) และการตรึงเซลล์ยีสต์ ( IC ) บน
ข้าวโพดก้านเนื้อเยื่อพื้นถูกหามออกในที่ซ้ำกัน จลนพลศาสตร์การหมัก
ถูกตรวจสอบโดยการวัดน้ำหนักผลิต
CO2 และตกค้างน้ำตาลความเข้มข้นของหมักของเหลว
ช่วงเวลาที่เหมาะสม คาร์บอนไดออกไซด์ การสูญเสียน้ำหนัก ระหว่างการหมัก
วัดจากยอดเงินที่ถูกต้อง ( 0.01 กรัม ) ตัวอย่าง
ขนาดกลางในระหว่างการหมักแบบกระทำโดยถ่ายเฉยๆ
( 10 ml ) , เซลล์ , น้ำตาล , pH , ค่าการนำไฟฟ้าและปริมาณของแข็งละลายน้ำ ( TDS )

2 การวิเคราะห์ความเข้มข้นของ