- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
MATERIALS AND METHODSAll procedures
MATERIALS AND METHODS
All procedures were approved by the Administration Offi ce of Laboratory Animals, Northeast Institute of
Geography and Agroecology, Chinese Academy of Sciences (Jilin, China).Birds, Diets, and Management The research was conducted at the Ecological Research Station for Grassland Farming, Chinese Academy of Sciences (Jilin, China; 44°31′ N, 123°33′ E, and altitude 145 m) and lasted 42 d. The daily mean air temperature during the experiment was 25°C.One hundred twenty Dongbei White male geese (a local breed; BW = 878 ± 13 g; 28 d old) were randomly
and equally divided into 2 treatments with 6 pens of 10 geese per treatment. The 2 treatments consisted of birds fed ad libitum a corn-based feed. One-half of the birds had no access to pasture (control) while the other half had access to an alfalfa based pasture (pasture).Before the start of the experiment, from d 0 to 28, geese were raised in battery brooders in a temperature controlled room under standard brooding practices. At d 28, geese were moved to the pastured pens, and they were maintained for an additional 42 d until slaughtered at d 70. The portable pen (4 by 3 by 0.5 m,
providing 1.2 m2 per bird) allowed birds to directly contact the alfalfa-based pasture, promoting pasture intake. Water and feed were available ad libitum throughout the experiment and were provided in 2 automatic drinking nipples and an individual hanging tube feeder, respectively. Approximately one-third of the top area of the pen was covered with transparent whitewashed plastic to protect against harsh climatic conditions. To promote pasture intake, the portable
pens of the pasture treatment were moved daily so that geese could eat pasture every day. Pens of the control
treatment were located in a fi xed position without plant cover. Pasture intake was estimated based on the evaluation of the levels of biomass present in the pasture before and after grazing (Ponte et al., 2008). Chemical Analysis of Feeds
The feed was formulated according to Wang et al. (2010; Table 1). At d 21 of the experiment (half way through the experiment), samples of pasture were collected from 1-m2 paddocks by cutting the grass at 3 cm above the ground for chemical analysis (Table 2). The DM was determined by oven drying at 105°C overnight (Method 930.15; AOAC Int., 1995). The CP was determined by a Kjeldahl N analysis (Method 954.01; AOAC Int., 1995). Crude fi ber was determined according to Van Soest et al. (1991). Crude fat (CF) was extracted by diethyl ether using a Soxhlet apparatus (Method. 945.16; AOAC Int., 1995). Methionine and Lys were determined by acid hydrolysis (Method 982.30; AOAC Int., 1995). Calcium was determined (Method 968.08), and P was measured by converting phosphates into phosphorus molybdenum blue pigment and measured at 700 nm (Method 986.24; AOAC Int., 1995). Salt was
determined by AOAC International method (973.09; AOAC Int., 1995). Saponin content was measured by HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content, expressed as tannic acid equivalents, was measured based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al., 1993). The total polysaccharides were measured by the vitriol-anthracene ketone method, with glucose without H2O as the standard control (Liu et al., 1994). Growth Performance and Sample Collection The geese and corn-based feed were weighed weekly to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5 geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition. HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content,
expressed as tannic acid equivalents, was measured
based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al.,
1993). The total polysaccharides were measured by the
vitriol-anthracene ketone method, with glucose without
H2O as the standard control (Liu et al., 1994).
Growth Performance and Sample Collection
The geese and corn-based feed were weighed weekly
to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5
geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid
arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition.HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content,
expressed as tannic acid equivalents, was measured
based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al.,
1993). The total polysaccharides were measured by the
vitriol-anthracene ketone method, with glucose without
H2O as the standard control (Liu et al., 1994).
Growth Performance and Sample Collection
The geese and corn-based feed were weighed weekly
to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5
geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid
arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition.Meat Chemical Composition. The muscle sample
was analyzed for DM (Method 930.15), CP (Method
954.01), and CF (Method 945.16) according to the
AOAC International (1995). The DM was determined as
BW loss after the oven drying of 50-g sample overnight.
The CP and CF were determined as described before. All
the values are expressed on a wet weight basis.
pH Measurement. Meat pH of the breast muscle
was measured at 24 h postmortem (pH at 24 h
postmortem [pH24]) at 20°C and recorded (Crison
MicropH 2001; Crison Instruments, Barcelona,
Spain) using a combined electrode (Double Pore
Slim; Hamilton Company, Bonaduz, Switzerland)
penetrating to 3 mm (Ouhayoun and Dalle Zotte, 1996).
Color Measurements. After 1 h of blooming,
meat color was measured on a freshly cut surface of
the breast muscle at room temperature (20°C) using
a chromameter (Minolta CR-300; Minolta, Tokyo,
Japan) with D65 illuminant and an 8-mm aperture
in the measuring head. Color measurements were
reported in terms of lightness (L*), redness (a*), and
yellowness (b*) in the Commission Internationale de
Léclairage L* a* b* (CIELAB) color space model
(CIE, 1976).
Cooking Loss. A meat sample from each goose
was weighed, vacuum packed in a plastic bag, and
then cooked for 1 h in a water bath maintained at
80°C (Ramírez et al., 2004). Meat samples were then
removed from the water bath and cooled in running
water. The meat was then taken from the bag, blotted
dried, and weighed. Cooking loss was calculated as
the difference in weight between the precooked and
blotted dried postcooked weights and was expressed as
a percentage of the precooked weight.
Shear Force. The frozen meat samples were
thawed overnight (approximately 16 h) in a cooler at
4°C. At least 3 slices (1 by 1 by 3 cm) from each sample
were cut parallel to the longitudinal orientation of the
muscle fi ber. The slices were sheared perpendicular
to the muscle fi ber orientation (Instron 5543; Instron
Corporation, Norwood, MA) with a Warner-Bratzler
shear device (Zwick Roell Group, Ulm, Baden
Wuerttemberg, Germany) and crosshead
All procedures were approved by the Administration Offi ce of Laboratory Animals, Northeast Institute of
Geography and Agroecology, Chinese Academy of Sciences (Jilin, China).Birds, Diets, and Management The research was conducted at the Ecological Research Station for Grassland Farming, Chinese Academy of Sciences (Jilin, China; 44°31′ N, 123°33′ E, and altitude 145 m) and lasted 42 d. The daily mean air temperature during the experiment was 25°C.One hundred twenty Dongbei White male geese (a local breed; BW = 878 ± 13 g; 28 d old) were randomly
and equally divided into 2 treatments with 6 pens of 10 geese per treatment. The 2 treatments consisted of birds fed ad libitum a corn-based feed. One-half of the birds had no access to pasture (control) while the other half had access to an alfalfa based pasture (pasture).Before the start of the experiment, from d 0 to 28, geese were raised in battery brooders in a temperature controlled room under standard brooding practices. At d 28, geese were moved to the pastured pens, and they were maintained for an additional 42 d until slaughtered at d 70. The portable pen (4 by 3 by 0.5 m,
providing 1.2 m2 per bird) allowed birds to directly contact the alfalfa-based pasture, promoting pasture intake. Water and feed were available ad libitum throughout the experiment and were provided in 2 automatic drinking nipples and an individual hanging tube feeder, respectively. Approximately one-third of the top area of the pen was covered with transparent whitewashed plastic to protect against harsh climatic conditions. To promote pasture intake, the portable
pens of the pasture treatment were moved daily so that geese could eat pasture every day. Pens of the control
treatment were located in a fi xed position without plant cover. Pasture intake was estimated based on the evaluation of the levels of biomass present in the pasture before and after grazing (Ponte et al., 2008). Chemical Analysis of Feeds
The feed was formulated according to Wang et al. (2010; Table 1). At d 21 of the experiment (half way through the experiment), samples of pasture were collected from 1-m2 paddocks by cutting the grass at 3 cm above the ground for chemical analysis (Table 2). The DM was determined by oven drying at 105°C overnight (Method 930.15; AOAC Int., 1995). The CP was determined by a Kjeldahl N analysis (Method 954.01; AOAC Int., 1995). Crude fi ber was determined according to Van Soest et al. (1991). Crude fat (CF) was extracted by diethyl ether using a Soxhlet apparatus (Method. 945.16; AOAC Int., 1995). Methionine and Lys were determined by acid hydrolysis (Method 982.30; AOAC Int., 1995). Calcium was determined (Method 968.08), and P was measured by converting phosphates into phosphorus molybdenum blue pigment and measured at 700 nm (Method 986.24; AOAC Int., 1995). Salt was
determined by AOAC International method (973.09; AOAC Int., 1995). Saponin content was measured by HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content, expressed as tannic acid equivalents, was measured based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al., 1993). The total polysaccharides were measured by the vitriol-anthracene ketone method, with glucose without H2O as the standard control (Liu et al., 1994). Growth Performance and Sample Collection The geese and corn-based feed were weighed weekly to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5 geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition. HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content,
expressed as tannic acid equivalents, was measured
based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al.,
1993). The total polysaccharides were measured by the
vitriol-anthracene ketone method, with glucose without
H2O as the standard control (Liu et al., 1994).
Growth Performance and Sample Collection
The geese and corn-based feed were weighed weekly
to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5
geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid
arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition.HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content,
expressed as tannic acid equivalents, was measured
based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al.,
1993). The total polysaccharides were measured by the
vitriol-anthracene ketone method, with glucose without
H2O as the standard control (Liu et al., 1994).
Growth Performance and Sample Collection
The geese and corn-based feed were weighed weekly
to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5
geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid
arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition.Meat Chemical Composition. The muscle sample
was analyzed for DM (Method 930.15), CP (Method
954.01), and CF (Method 945.16) according to the
AOAC International (1995). The DM was determined as
BW loss after the oven drying of 50-g sample overnight.
The CP and CF were determined as described before. All
the values are expressed on a wet weight basis.
pH Measurement. Meat pH of the breast muscle
was measured at 24 h postmortem (pH at 24 h
postmortem [pH24]) at 20°C and recorded (Crison
MicropH 2001; Crison Instruments, Barcelona,
Spain) using a combined electrode (Double Pore
Slim; Hamilton Company, Bonaduz, Switzerland)
penetrating to 3 mm (Ouhayoun and Dalle Zotte, 1996).
Color Measurements. After 1 h of blooming,
meat color was measured on a freshly cut surface of
the breast muscle at room temperature (20°C) using
a chromameter (Minolta CR-300; Minolta, Tokyo,
Japan) with D65 illuminant and an 8-mm aperture
in the measuring head. Color measurements were
reported in terms of lightness (L*), redness (a*), and
yellowness (b*) in the Commission Internationale de
Léclairage L* a* b* (CIELAB) color space model
(CIE, 1976).
Cooking Loss. A meat sample from each goose
was weighed, vacuum packed in a plastic bag, and
then cooked for 1 h in a water bath maintained at
80°C (Ramírez et al., 2004). Meat samples were then
removed from the water bath and cooled in running
water. The meat was then taken from the bag, blotted
dried, and weighed. Cooking loss was calculated as
the difference in weight between the precooked and
blotted dried postcooked weights and was expressed as
a percentage of the precooked weight.
Shear Force. The frozen meat samples were
thawed overnight (approximately 16 h) in a cooler at
4°C. At least 3 slices (1 by 1 by 3 cm) from each sample
were cut parallel to the longitudinal orientation of the
muscle fi ber. The slices were sheared perpendicular
to the muscle fi ber orientation (Instron 5543; Instron
Corporation, Norwood, MA) with a Warner-Bratzler
shear device (Zwick Roell Group, Ulm, Baden
Wuerttemberg, Germany) and crosshead
0/5000
วัสดุและวิธีการขั้นตอนทั้งหมดได้รับการอนุมัติ โดย ce รวมบริหารสถาบันห้องปฏิบัติการสัตว์ ตะวันออกเฉียงเหนือของภูมิศาสตร์และ Agroecology จีนออสการ์ของวิทยาศาสตร์ (จี้ จีน)นก อาหาร และการจัดการงานวิจัยได้ดำเนินการที่สถานีวิจัยนิเวศวิทยาสำหรับกราสแลนด์เกษตร สถาบันวิทยาศาสตร์จีน (หลิน จีน 44 ° 31′ N, 123 ° 33′ E และสูง 145 เมตร) และกินเวลา 42 d อุณหภูมิอากาศเฉลี่ยรายวันในระหว่างการทดลอง 25 องศาเซลเซียสหนึ่งร้อยยี่สิบ Dongbei สีขาวชายห่าน (เป็นสายพันธุ์ท้องถิ่น BW = 878 ± 13 g 28 เก่า d) ได้โดยการสุ่มและเท่าเทียมกันแบ่งนวด 2 ปากกา 6 ของห่าน 10 ต่อการรักษา รักษาที่ 2 ประกอบด้วยนกที่เลี้ยงอาหาร ad libitum ข้าวโพดโดยใช้ ครึ่งหนึ่งของนกมีไม่ถึงทุ่งหญ้า (ควบคุม) ในขณะที่อีกครึ่งหนึ่งมีถึง alfalfa การใช้พาสเจอร์ (พาสเจอร์)ก่อนเริ่มทดลอง จาก d 0 ถึง 28 ห่านถูกยกในแบตเตอรี่ brooders ในห้องควบคุมอุณหภูมิใต้ brooding ปฏิบัติมาตรฐาน ที่ d 28 ห่านถูกย้ายปากกา pastured และพวกเขาได้รับการรักษา d 42 เพิ่มเติมจนกว่ามีชัยที่ d 70 ปากกาแบบพกพา (4 โดย 3 โดย 0.5 mให้ m2 1.2 นก) ได้นกติดต่อโดยตรงที่ใช้ alfalfa พาสเจอร์ ส่งเสริมบริโภคพาสเจอร์ น้ำและอาหารมี ad libitum ทดลอง และเข้าหาหัวนมดื่มอัตโนมัติ 2 และการละ hanging หลอดป้อน ตามลำดับ ประมาณหนึ่งในสามของพื้นที่ด้านบนของปากกาถูกปกคลุม ด้วยพลาสติกใส whitewashed เพื่อป้องกันเงื่อนไข climatic รุนแรง เพื่อส่งเสริมการบริโภคพาสเจอร์ การพกพาปากการักษาพาสเจอร์ถูกย้ายทุกวันเพื่อให้ห่านได้กินพาสเจอร์ทุกวัน ปากกาของตัวควบคุมรักษาได้อยู่ในตำแหน่ง xed ไร้สายไม่มีพืชปก พาสเจอร์บริโภคถูกประเมินตามการประเมินของระดับของชีวมวลที่อยู่ในพาสเจอร์ที่ก่อน และ หลัง grazing (ทปงต์ et al., 2008) วิเคราะห์ทางเคมีของตัวดึงข้อมูลอาหารมีสูตรตามวัง et al. (2010 ตาราง 1) ที่ d 21 ทดลอง (ครึ่งทางผ่านทดลอง), ตัวอย่างพาสเจอร์จัดเก็บจาก paddocks 1 m2 โดยตัดให้หญ้าที่ 3 ซม.เหนือพื้นดินสำหรับการวิเคราะห์ทางเคมี (ตารางที่ 2) DM ถูกกำหนด โดยเตาอบแห้งที่ 105° C ค้างคืน (วิธี 930.15 AOAC ของดอกเบี้ย 1995) กำหนดจุด โดยการวิเคราะห์ Kjeldahl N (วิธี 954.01 AOAC ของดอกเบี้ย 1995) Ber สายน้ำมันที่ถูกกำหนดตาม Van Soest และ al. (1991) ไขมันดิบ (CF) ถูกสกัด ด้วยอีเทอร์ diethyl ใช้เครื่อง Soxhlet (วิธีการ 945.16 AOAC ของดอกเบี้ย 1995) Methionine และ Lys ถูกกำหนด โดยกรดไฮโตรไลซ์ (วิธี 982.30 AOAC ของดอกเบี้ย 1995) แคลเซียมถูกกำหนด (วิธีการ 968.08), และ P ถูกวัด โดยการแปลงฟอสเฟตเป็นรงควัตถุสีน้ำเงินโมลิบดีนัมฟอสฟอรัส และวัดอยู่ที่ 700 nm (วิธี 986.24 AOAC ของดอกเบี้ย 1995) เกลือถูกตามวิธี AOAC International (973.09 AOAC ของดอกเบี้ย 1995) เนื้อหา saponin ถูกวัด โดย HPLC (Nowacka และ Wieslaw, 1994) แทนนินเนื้อหา แสดงเป็นเทียบเท่ากรด tannic ถูกวัดตามวิธี Folin-Ciocalteu (Makkar et al., 1993) Polysaccharides รวมถูกวัด โดยแอนทราซีน vitriol จุดวิธี มีกลูโคสโดย H2O เป็นตัวควบคุมมาตรฐาน (หลิว et al., 1994) ประสิทธิภาพการเจริญเติบโตและเก็บตัวอย่างที่ห่านและอาหารที่ใช้ข้าวโพดได้ชั่งน้ำหนักทุกสัปดาห์ เพื่อกำหนด BW และอาหารบริโภค และคำนวณการADG, ADFI และ G:F. ที่สุดทดลอง ห่าน 5 จากปากกาแต่ละถูกสุ่มเลือกจาก 12 hรวดเร็ว น้ำหนักแต่ละ ฆ่า ด้วยการตัดหลอดเลือดแดง carotid และจากนั้น ทันทีคราวที่แล้ว หัวและเท้าออก และความหนาของที่ใต้เป็นวัดไขมันของ coccygeal vertebraด้วย vernier เป็นปั้ม (แน่นอนถึง 0.01 มม. 797B-6/150Starrett เครื่องมือ Co., Ltd ซูโจว จีน Adamski, 2004)ซาก eviscerated และชั่งน้ำหนักเพื่อตรวจสอบเปอร์เซ็นต์แป้ง ไขมันหน้าท้อง และกล้ามเนื้อต้นขาและเต้านมได้ถูกเอาออก และชั่งน้ำหนักมีคำนวณเปอร์เซ็นต์ซาก eviscerated เป็นการอัตราส่วนระหว่างซาก eviscerated และ fi nal BW หลังการถือศีลอด เปอร์เซ็นต์ของเต้านมกล้ามเนื้อ กล้ามเนื้อต้นขาและมีคำนวณเป็นเปอร์เซ็นต์ของไขมันหน้าท้องeviscerated น้ำหนักซากหลังจาก 24 ชมของทาง 4° C กล้ามเนื้อเต้านมจากซ้ายด้านถูกแบ่งออกเป็น 2 ส่วน ที่fore ส่วนใช้วัดขาดทุนทำอาหาร สี และpH และส่วนหลังเป็นสุญญากาศบรรจุ และแช่แข็งที่– 20° C จนถึงกำหนดขององค์ประกอบทางเคมีแรงเฉือนแรง thiobarbituric สารปฏิกิริยากรด(TBARS), และองค์ประกอบกรดไขมัน HPLC (Nowacka และ Wieslaw, 1994) แทนนินเนื้อหาแสดงเป็นเทียบเท่ากรด tannic ถูกวัดตามวิธี Folin-Ciocalteu (Makkar et al.,1993) . polysaccharides รวมถูกวัดโดยการแอนทราซีน vitriol จุดวิธี มีกลูโคสโดยH2O เป็นตัวควบคุมมาตรฐาน (หลิว et al., 1994)ประสิทธิภาพการเจริญเติบโตและเก็บตัวอย่างห่านและอาหารที่ใช้ข้าวโพดได้ชั่งน้ำหนักทุกสัปดาห์เพื่อกำหนด BW และอาหารบริโภค และคำนวณการADG, ADFI และ G:F. ที่สุดทดลอง 5สุ่มเลือกห่านจากปากกาแต่ละหลัง 12 hรวดเร็ว น้ำหนักแต่ละ ฆ่า โดยตัด carotidหลอดเลือดแดง และจากนั้น ทันทีคราวที่แล้ว หัวและเท้าออก และความหนาของที่ใต้เป็นวัดไขมันของ coccygeal vertebraด้วย vernier เป็นปั้ม (แน่นอนถึง 0.01 มม. 797B-6/150Starrett เครื่องมือ Co., Ltd ซูโจว จีน Adamski, 2004)ซาก eviscerated และชั่งน้ำหนักเพื่อตรวจสอบเปอร์เซ็นต์แป้ง ไขมันหน้าท้อง และกล้ามเนื้อต้นขาและเต้านมได้ถูกเอาออก และชั่งน้ำหนักมีคำนวณเปอร์เซ็นต์ซาก eviscerated เป็นการอัตราส่วนระหว่างซาก eviscerated และ fi nal BW หลังการถือศีลอด เปอร์เซ็นต์ของเต้านมกล้ามเนื้อ กล้ามเนื้อต้นขาและมีคำนวณเป็นเปอร์เซ็นต์ของไขมันหน้าท้องeviscerated น้ำหนักซากหลังจาก 24 ชมของทาง 4° C กล้ามเนื้อเต้านมจากซ้ายด้านถูกแบ่งออกเป็น 2 ส่วน ที่fore ส่วนใช้วัดขาดทุนทำอาหาร สี และpH และส่วนหลังเป็นสุญญากาศบรรจุ และแช่แข็งที่– 20° C จนถึงกำหนดขององค์ประกอบทางเคมีแรงเฉือนแรง thiobarbituric สารปฏิกิริยากรด(TBARS), และองค์ประกอบกรดไขมันHPLC (Nowacka และ Wieslaw, 1994) แทนนินเนื้อหาแสดงเป็นเทียบเท่ากรด tannic ถูกวัดตามวิธี Folin-Ciocalteu (Makkar et al.,1993) . polysaccharides รวมถูกวัดโดยการแอนทราซีน vitriol จุดวิธี มีกลูโคสโดยH2O เป็นตัวควบคุมมาตรฐาน (หลิว et al., 1994)ประสิทธิภาพการเจริญเติบโตและเก็บตัวอย่างห่านและอาหารที่ใช้ข้าวโพดได้ชั่งน้ำหนักทุกสัปดาห์เพื่อกำหนด BW และอาหารบริโภค และคำนวณการADG, ADFI และ G:F. ที่สุดทดลอง 5สุ่มเลือกห่านจากปากกาแต่ละหลัง 12 hรวดเร็ว น้ำหนักแต่ละ ฆ่า โดยตัด carotidหลอดเลือดแดง และจากนั้น ทันทีคราวที่แล้ว หัวและเท้าออก และความหนาของที่ใต้เป็นวัดไขมันของ coccygeal vertebraด้วย vernier เป็นปั้ม (แน่นอนถึง 0.01 มม. 797B-6/150Starrett เครื่องมือ Co., Ltd ซูโจว จีน Adamski, 2004)ซาก eviscerated และชั่งน้ำหนักเพื่อตรวจสอบเปอร์เซ็นต์แป้ง ไขมันหน้าท้อง และกล้ามเนื้อต้นขาและเต้านมได้ถูกเอาออก และชั่งน้ำหนักมีคำนวณเปอร์เซ็นต์ซาก eviscerated เป็นการอัตราส่วนระหว่างซาก eviscerated และ fi nal BW หลังการถือศีลอด เปอร์เซ็นต์ของเต้านมกล้ามเนื้อ กล้ามเนื้อต้นขาและมีคำนวณเป็นเปอร์เซ็นต์ของไขมันหน้าท้องeviscerated น้ำหนักซากหลังจาก 24 ชมของทาง 4° C กล้ามเนื้อเต้านมจากซ้ายด้านถูกแบ่งออกเป็น 2 ส่วน ที่fore ส่วนใช้วัดขาดทุนทำอาหาร สี และpH และส่วนหลังเป็นสุญญากาศบรรจุ และแช่แข็งที่– 20° C จนถึงกำหนดขององค์ประกอบทางเคมีแรงเฉือนแรง thiobarbituric สารปฏิกิริยากรด(TBARS), และองค์ประกอบกรดไขมันองค์ประกอบทางเคมีเนื้อ ตัวอย่างของกล้ามเนื้อมีวิเคราะห์สำหรับ DM (วิธี 930.15), CP (วิธี954.01), และ CF (วิธี 945.16) ตามนานาชาติ AOAC (1995) DM ถูกกำหนดขาดทุน BW หลังเตาอบให้แห้ง 50 กรัมอย่างค้างคืนCP และ CF ถูกกำหนดตามที่อธิบายไว้ก่อน ทั้งหมดค่าที่แสดงตามน้ำหนักเปียกค่า pH วัด PH เนื้อกล้ามเนื้อเต้านมมีวัดที่ 24 h postmortem (ค่า pH ที่ 24 ชม[pH24] postmortem) ที่ 20 ° C และบันทึก (CrisonMicropH 2001 เครื่องมือ Crison บาร์เซโลน่าสเปนใช้อิเล็กโทรดแบบรวม (คู่รูขุมขนบาง บริษัทฮามิลตัน Bonaduz สวิตเซอร์แลนด์)เจาะ 3 มม. (Ouhayoun และ Dalle Zotte, 1996)สีวัด หลังจาก 1 ชั่วโมงของ bloomingเนื้อสีที่วัดบนพื้นผิวการตัดสดกล้ามเนื้อเต้านมที่อุณหภูมิห้อง (20° C) โดยใช้chromameter (Minolta CR-300 Minolta โตเกียวญี่ปุ่น) กับหลอดไฟ D65 และมีรูรับแสง 8 มม.ในหัววัด วัดสีได้รายงานในรูปแบบของความสว่าง (L *), แดง (เป็น *), และyellowness (b *) ในเด Internationale ค่าคอมมิชชันL Léclairage * เป็น * บี * (CIELAB) สีพื้นที่จำลอง(CIE, 1976)อาหารสูญหาย ตัวอย่างเนื้อห่านแต่ละชั่งน้ำหนัก เครื่องดูดฝุ่นที่บรรจุในถุงพลาสติก และสุกแล้ว สำหรับ h 1 ในห้องน้ำที่คงที่80° C (Ramírez et al., 2004) เนื้อตัวอย่างได้แล้วเอาออกจากห้องน้ำ และระบายความร้อนด้วยในการทำงานน้ำ เนื้อนั้นได้มาจากถุง blottedแห้ง และชั่งน้ำหนัก อาหารขาดทุนคำนวณเป็นความแตกต่างของน้ำหนักระหว่างที่ precooked และblotted postcooked น้ำหนักแห้ง และถูกแสดงเป็นเปอร์เซ็นต์ของน้ำหนัก precookedแรงเฉือนแรง ตัวอย่างน้ำแข็งเนื้อดีthawed แอร์พอร์ตโอเวอร์ไนท์ (ประมาณ 16 h) ในเย็นที่4 องศาเซลเซียส น้อย 3 ชิ้น (1 โดย 1 โดยซม 3) จากตัวอย่างแต่ละถูกตัดขนานไปแนวระยะยาวของการกล้ามเนื้อไร้ ber ชิ้นที่ตัดเส้นตั้งฉากการปฐมนิเทศ ber ไร้กล้ามเนื้อ (Instron 5543 Instronบริษัท Norwood, MA) กับวอร์เนอร์-Bratzlerแรงเฉือนอุปกรณ์ (กลุ่ม Zwick Roell, Ulm มุนWuerttemberg เยอรมนี) และ crosshead
การแปล กรุณารอสักครู่..
MATERIALS AND METHODS
All procedures were approved by the Administration Offi ce of Laboratory Animals, Northeast Institute of
Geography and Agroecology, Chinese Academy of Sciences (Jilin, China).Birds, Diets, and Management The research was conducted at the Ecological Research Station for Grassland Farming, Chinese Academy of Sciences (Jilin, China; 44°31′ N, 123°33′ E, and altitude 145 m) and lasted 42 d. The daily mean air temperature during the experiment was 25°C.One hundred twenty Dongbei White male geese (a local breed; BW = 878 ± 13 g; 28 d old) were randomly
and equally divided into 2 treatments with 6 pens of 10 geese per treatment. The 2 treatments consisted of birds fed ad libitum a corn-based feed. One-half of the birds had no access to pasture (control) while the other half had access to an alfalfa based pasture (pasture).Before the start of the experiment, from d 0 to 28, geese were raised in battery brooders in a temperature controlled room under standard brooding practices. At d 28, geese were moved to the pastured pens, and they were maintained for an additional 42 d until slaughtered at d 70. The portable pen (4 by 3 by 0.5 m,
providing 1.2 m2 per bird) allowed birds to directly contact the alfalfa-based pasture, promoting pasture intake. Water and feed were available ad libitum throughout the experiment and were provided in 2 automatic drinking nipples and an individual hanging tube feeder, respectively. Approximately one-third of the top area of the pen was covered with transparent whitewashed plastic to protect against harsh climatic conditions. To promote pasture intake, the portable
pens of the pasture treatment were moved daily so that geese could eat pasture every day. Pens of the control
treatment were located in a fi xed position without plant cover. Pasture intake was estimated based on the evaluation of the levels of biomass present in the pasture before and after grazing (Ponte et al., 2008). Chemical Analysis of Feeds
The feed was formulated according to Wang et al. (2010; Table 1). At d 21 of the experiment (half way through the experiment), samples of pasture were collected from 1-m2 paddocks by cutting the grass at 3 cm above the ground for chemical analysis (Table 2). The DM was determined by oven drying at 105°C overnight (Method 930.15; AOAC Int., 1995). The CP was determined by a Kjeldahl N analysis (Method 954.01; AOAC Int., 1995). Crude fi ber was determined according to Van Soest et al. (1991). Crude fat (CF) was extracted by diethyl ether using a Soxhlet apparatus (Method. 945.16; AOAC Int., 1995). Methionine and Lys were determined by acid hydrolysis (Method 982.30; AOAC Int., 1995). Calcium was determined (Method 968.08), and P was measured by converting phosphates into phosphorus molybdenum blue pigment and measured at 700 nm (Method 986.24; AOAC Int., 1995). Salt was
determined by AOAC International method (973.09; AOAC Int., 1995). Saponin content was measured by HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content, expressed as tannic acid equivalents, was measured based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al., 1993). The total polysaccharides were measured by the vitriol-anthracene ketone method, with glucose without H2O as the standard control (Liu et al., 1994). Growth Performance and Sample Collection The geese and corn-based feed were weighed weekly to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5 geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition. HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content,
expressed as tannic acid equivalents, was measured
based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al.,
1993). The total polysaccharides were measured by the
vitriol-anthracene ketone method, with glucose without
H2O as the standard control (Liu et al., 1994).
Growth Performance and Sample Collection
The geese and corn-based feed were weighed weekly
to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5
geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid
arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition.HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content,
expressed as tannic acid equivalents, was measured
based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al.,
1993). The total polysaccharides were measured by the
vitriol-anthracene ketone method, with glucose without
H2O as the standard control (Liu et al., 1994).
Growth Performance and Sample Collection
The geese and corn-based feed were weighed weekly
to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5
geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid
arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition.Meat Chemical Composition. The muscle sample
was analyzed for DM (Method 930.15), CP (Method
954.01), and CF (Method 945.16) according to the
AOAC International (1995). The DM was determined as
BW loss after the oven drying of 50-g sample overnight.
The CP and CF were determined as described before. All
the values are expressed on a wet weight basis.
pH Measurement. Meat pH of the breast muscle
was measured at 24 h postmortem (pH at 24 h
postmortem [pH24]) at 20°C and recorded (Crison
MicropH 2001; Crison Instruments, Barcelona,
Spain) using a combined electrode (Double Pore
Slim; Hamilton Company, Bonaduz, Switzerland)
penetrating to 3 mm (Ouhayoun and Dalle Zotte, 1996).
Color Measurements. After 1 h of blooming,
meat color was measured on a freshly cut surface of
the breast muscle at room temperature (20°C) using
a chromameter (Minolta CR-300; Minolta, Tokyo,
Japan) with D65 illuminant and an 8-mm aperture
in the measuring head. Color measurements were
reported in terms of lightness (L*), redness (a*), and
yellowness (b*) in the Commission Internationale de
Léclairage L* a* b* (CIELAB) color space model
(CIE, 1976).
Cooking Loss. A meat sample from each goose
was weighed, vacuum packed in a plastic bag, and
then cooked for 1 h in a water bath maintained at
80°C (Ramírez et al., 2004). Meat samples were then
removed from the water bath and cooled in running
water. The meat was then taken from the bag, blotted
dried, and weighed. Cooking loss was calculated as
the difference in weight between the precooked and
blotted dried postcooked weights and was expressed as
a percentage of the precooked weight.
Shear Force. The frozen meat samples were
thawed overnight (approximately 16 h) in a cooler at
4°C. At least 3 slices (1 by 1 by 3 cm) from each sample
were cut parallel to the longitudinal orientation of the
muscle fi ber. The slices were sheared perpendicular
to the muscle fi ber orientation (Instron 5543; Instron
Corporation, Norwood, MA) with a Warner-Bratzler
shear device (Zwick Roell Group, Ulm, Baden
Wuerttemberg, Germany) and crosshead
All procedures were approved by the Administration Offi ce of Laboratory Animals, Northeast Institute of
Geography and Agroecology, Chinese Academy of Sciences (Jilin, China).Birds, Diets, and Management The research was conducted at the Ecological Research Station for Grassland Farming, Chinese Academy of Sciences (Jilin, China; 44°31′ N, 123°33′ E, and altitude 145 m) and lasted 42 d. The daily mean air temperature during the experiment was 25°C.One hundred twenty Dongbei White male geese (a local breed; BW = 878 ± 13 g; 28 d old) were randomly
and equally divided into 2 treatments with 6 pens of 10 geese per treatment. The 2 treatments consisted of birds fed ad libitum a corn-based feed. One-half of the birds had no access to pasture (control) while the other half had access to an alfalfa based pasture (pasture).Before the start of the experiment, from d 0 to 28, geese were raised in battery brooders in a temperature controlled room under standard brooding practices. At d 28, geese were moved to the pastured pens, and they were maintained for an additional 42 d until slaughtered at d 70. The portable pen (4 by 3 by 0.5 m,
providing 1.2 m2 per bird) allowed birds to directly contact the alfalfa-based pasture, promoting pasture intake. Water and feed were available ad libitum throughout the experiment and were provided in 2 automatic drinking nipples and an individual hanging tube feeder, respectively. Approximately one-third of the top area of the pen was covered with transparent whitewashed plastic to protect against harsh climatic conditions. To promote pasture intake, the portable
pens of the pasture treatment were moved daily so that geese could eat pasture every day. Pens of the control
treatment were located in a fi xed position without plant cover. Pasture intake was estimated based on the evaluation of the levels of biomass present in the pasture before and after grazing (Ponte et al., 2008). Chemical Analysis of Feeds
The feed was formulated according to Wang et al. (2010; Table 1). At d 21 of the experiment (half way through the experiment), samples of pasture were collected from 1-m2 paddocks by cutting the grass at 3 cm above the ground for chemical analysis (Table 2). The DM was determined by oven drying at 105°C overnight (Method 930.15; AOAC Int., 1995). The CP was determined by a Kjeldahl N analysis (Method 954.01; AOAC Int., 1995). Crude fi ber was determined according to Van Soest et al. (1991). Crude fat (CF) was extracted by diethyl ether using a Soxhlet apparatus (Method. 945.16; AOAC Int., 1995). Methionine and Lys were determined by acid hydrolysis (Method 982.30; AOAC Int., 1995). Calcium was determined (Method 968.08), and P was measured by converting phosphates into phosphorus molybdenum blue pigment and measured at 700 nm (Method 986.24; AOAC Int., 1995). Salt was
determined by AOAC International method (973.09; AOAC Int., 1995). Saponin content was measured by HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content, expressed as tannic acid equivalents, was measured based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al., 1993). The total polysaccharides were measured by the vitriol-anthracene ketone method, with glucose without H2O as the standard control (Liu et al., 1994). Growth Performance and Sample Collection The geese and corn-based feed were weighed weekly to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5 geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition. HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content,
expressed as tannic acid equivalents, was measured
based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al.,
1993). The total polysaccharides were measured by the
vitriol-anthracene ketone method, with glucose without
H2O as the standard control (Liu et al., 1994).
Growth Performance and Sample Collection
The geese and corn-based feed were weighed weekly
to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5
geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid
arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition.HPLC (Nowacka and Wieslaw, 1994). Tannin content,
expressed as tannic acid equivalents, was measured
based on the Folin-Ciocalteu method (Makkar et al.,
1993). The total polysaccharides were measured by the
vitriol-anthracene ketone method, with glucose without
H2O as the standard control (Liu et al., 1994).
Growth Performance and Sample Collection
The geese and corn-based feed were weighed weekly
to determine BW and feed intake and to calculate the
ADG, ADFI, and G:F. At the end of the experiment, 5
geese from each pen were randomly selected after a 12 h
fast, weighed individually, killed by cutting the carotid
arteries, and then immediately bled. The heads and feet
were removed, and the thickness of the subcutaneous
fat was measured at the front of the coccygeal vertebra
with a vernier caliper (exact to 0.01 mm; 797B-6/150;
Starrett Tools Co., Ltd, Suzhou, China; Adamski, 2004).
Carcasses were eviscerated and weighed to determine
the dressing percentage. The abdominal fat and
breast and thigh muscles were removed and weighed.
Eviscerated carcass percentage was calculated as the
ratio between the eviscerated carcass and fi nal BW after
fasting. The percentages of breast muscle, thigh muscle,
and abdominal fat were calculated as a percentage of
eviscerated carcass weight.
After 24 h of chilling at 4°C, the breast muscle
taken from the left side was divided into 2 parts. The
fore part was used to measure cooking loss, color, and
pH, and the hind part was vacuum packed and frozen at
–20°C until the determination of chemical composition,
shear force, thiobarbituric acid reacting substances
(TBARS), and fatty acid composition.Meat Chemical Composition. The muscle sample
was analyzed for DM (Method 930.15), CP (Method
954.01), and CF (Method 945.16) according to the
AOAC International (1995). The DM was determined as
BW loss after the oven drying of 50-g sample overnight.
The CP and CF were determined as described before. All
the values are expressed on a wet weight basis.
pH Measurement. Meat pH of the breast muscle
was measured at 24 h postmortem (pH at 24 h
postmortem [pH24]) at 20°C and recorded (Crison
MicropH 2001; Crison Instruments, Barcelona,
Spain) using a combined electrode (Double Pore
Slim; Hamilton Company, Bonaduz, Switzerland)
penetrating to 3 mm (Ouhayoun and Dalle Zotte, 1996).
Color Measurements. After 1 h of blooming,
meat color was measured on a freshly cut surface of
the breast muscle at room temperature (20°C) using
a chromameter (Minolta CR-300; Minolta, Tokyo,
Japan) with D65 illuminant and an 8-mm aperture
in the measuring head. Color measurements were
reported in terms of lightness (L*), redness (a*), and
yellowness (b*) in the Commission Internationale de
Léclairage L* a* b* (CIELAB) color space model
(CIE, 1976).
Cooking Loss. A meat sample from each goose
was weighed, vacuum packed in a plastic bag, and
then cooked for 1 h in a water bath maintained at
80°C (Ramírez et al., 2004). Meat samples were then
removed from the water bath and cooled in running
water. The meat was then taken from the bag, blotted
dried, and weighed. Cooking loss was calculated as
the difference in weight between the precooked and
blotted dried postcooked weights and was expressed as
a percentage of the precooked weight.
Shear Force. The frozen meat samples were
thawed overnight (approximately 16 h) in a cooler at
4°C. At least 3 slices (1 by 1 by 3 cm) from each sample
were cut parallel to the longitudinal orientation of the
muscle fi ber. The slices were sheared perpendicular
to the muscle fi ber orientation (Instron 5543; Instron
Corporation, Norwood, MA) with a Warner-Bratzler
shear device (Zwick Roell Group, Ulm, Baden
Wuerttemberg, Germany) and crosshead
การแปล กรุณารอสักครู่..
วัสดุและวิธีการ
ขั้นตอนทั้งหมดได้รับการอนุมัติโดยการบริหาร CE Offi ของสัตว์ทดลอง สถาบันภาคตะวันออกเฉียงเหนือ
ภูมิศาสตร์และ agroecology , จีน Academy of Sciences ( Jilin , จีน ) นก , อาหาร , และการจัดการวิจัยที่สถานีวิจัยระบบนิเวศทุ่งหญ้าฟาร์ม , จีน Academy of Sciences ( Jilin , จีน ; 44 31 ° N ’ 123 ° 33 นั้นอีและ ความสูง 145 เมตร ) และนาน 42 วัน ทุกวัน หมายถึงอุณหภูมิอากาศในการทดลอง 25 ° c.one ร้อยยี่สิบตงเป่ยผิวขาวห่าน ( ท้องถิ่นพันธุ์ น้ำหนักตัว = 878 ± 13 g ; 28 D เก่า ) และสุ่ม
แบ่งออกเป็น 2 การรักษาด้วย 6 ปากกา 10 ห่าน ต่อ การรักษา 2 การรักษาประกอบด้วยนกเลี้ยงอย่างเต็มที่เป็นข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ตามครึ่งหนึ่งของนกไม่เข้าทุ่ง ( ควบคุม ) ในขณะที่อีกครึ่งหนึ่งมีการเข้าถึงจากทุ่งหญ้าหญ้า ( หญ้า ) ก่อนที่จะเริ่มต้นของการทดลอง จาก D 0 28 , ห่านถูกสร้างขึ้นในแบตเตอรี่ได้ ในห้องควบคุมอุณหภูมิภายใต้มาตรฐานกก ) ที่ D 28 , ห่านถูกย้ายไปยังทุ่งหญ้าสำหรับปากกาและพวกเขาถูกเก็บรักษาไว้สำหรับเพิ่มเติม 42 D จนฆ่าที่ D 70 ปากกาแบบพกพา ( 4 - โดย - 3 - โดย - 0.5 M ,
ให้ 1.2 m2 ต่อนก ) อนุญาตให้นกที่จะติดต่อโดยตรงจากทุ่งหญ้าหญ้าทุ่งหญ้า การส่งเสริมการบริโภค น้ำและอาหารที่มีอยู่อย่างเต็มที่ตลอดการทดลอง และมี 2 นมดื่มอัตโนมัติและบุคคลแขวน Feeder tube ตามลำดับประมาณหนึ่งในสามของพื้นที่ด้านบนของปากกาถูกปกคลุมด้วยพลาสติกใสสีขาวเพื่อป้องกันสภาพอากาศที่รุนแรง เพื่อส่งเสริมการบริโภคอาหาร ปากกาพกพา
ของการรักษาทุ่งหญ้ามาทุกวันเพื่อให้ห่านกินหญ้าทุกวัน ปากกาในการรักษาควบคุม
ตั้งอยู่ในตำแหน่ง xed Fi โดยไม่ครอบคลุมพืชอาหารบริโภคประมาณบนพื้นฐานของการประเมินระดับของชีวมวลที่มีอยู่ในฟาร์ม ก่อนและหลังการแทะเล็ม ( Ponte et al . , 2008 ) การวิเคราะห์ทางเคมีของอาหาร อาหารเป็นสูตร
ตาม Wang et al . ( 2553 ; ตารางที่ 1 ) ที่ D 21 ของการทดลอง ( ครึ่งทางผ่านการทดลอง )ตัวอย่างที่เก็บจากฟาร์ม 1-m2 รีโดยการตัดหญ้าที่ 3 ซม. เหนือพื้นดินสำหรับการวิเคราะห์ทางเคมี ( ตารางที่ 2 ) DM ถูกกำหนดโดยตู้อบลมร้อนที่ 105 ° C ( แบบไม่ค้างคืน 930.15 ; int , 1995 ) จึงถูกกำหนดโดยการวิเคราะห์ 0 N ( วิธี 954.01 ; ไม่ Int . , 1995 ) Crude Fi ber ตั้งใจตาม Van Soest et al . ( 1991 )ไขมันดิบ ( CF ) ถูกสกัดด้วยไดเอทิลอีเธอร์ใช้ 1 เครื่อง ( วิธี 945.16 ; ไม่ Int . , 1995 ) เมทไธโอนีนและไลซีนเป็นกรด ( วิธี 982.30 ; ไม่ Int . , 1995 ) แคลเซียม ตั้งใจ ( วิธี 968.08 ) และ P เป็นวัดโดยการแปลงฟอสเฟตเป็นฟอสฟอรัสโมลิบดีนัมสีและวัดที่ 700 nm ( วิธี 986.24 ; ไม่ Int . , 1995 ) เกลือ
โดยกำหนดวิธีนานาชาติ ( 973.09 ; โปรตีนโปรตีน Int . , 1995 ) ซาโปนิน เนื้อหาถูกวัดโดยวิธี HPLC ( nowacka และ wieslaw , 1994 ) แทนนินเนื้อหา แสดงเป็นกรดแทนนิกซึ่งเป็นวัดโดยวิธี folin ciocalteu ( makkar et al . , 1993 ) polysaccharides ทั้งหมดวัดจากคำพูดที่รุนแรงควบคุมคีโตนวิธีกลูโคสโดย H2O เช่นการควบคุมมาตรฐาน ( Liu et al . , 1994 ) การเจริญเติบโตและการเก็บตัวอย่าง geese และข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ โดยมีน้ำหนักทุกสัปดาห์เพื่อตรวจสอบน้ำหนักตัว และปริมาณอาหาร และคำนวณอัตราการเจริญเติบโต adfi
, และ G : F . เมื่อสิ้นสุดการทดลอง 5 ห่านจากแต่ละคอกสุ่มหลังจาก 12 H
อย่างรวดเร็ว , ชั่งน้ำหนักบุคคล ถูกฆ่าตายโดยการตัดหลอดเลือดแดงคาโรติด ,แล้วทันที เลือดออก หัวและเท้า
ถูกเอาออก และความหนาของไขมันใต้ผิวหนัง
เป็นวัดที่ด้านหน้าของกระดูกสันหลังด้วยเวอร์เนียคาลิเปอร์ coccygeal
( แน่นอน 0.01 มิลลิเมตร ; 797b-6 / 150 ;
สแตร์ริตเครื่องมือ Co . , Ltd ซูโจว , ประเทศจีน อดัมสกี้ , 2004 ) .
ซากถูกชำแหละ และชั่งน้ำหนักเพื่อตรวจสอบ
น้ำสลัดร้อยละ ไขมันหน้าท้องและ
หน้าอกและต้นขา กล้ามเนื้อถูกถอดออกและชั่งน้ำหนัก ชำแหละซากถูกคำนวณเป็นค่า
อัตราส่วนระหว่างชำแหละซากและ Fi Nal BW หลัง
อดอาหาร ร้อยละของกล้ามเนื้อหน้าอก กล้ามเนื้อต้นขา และ หน้าท้องไขมัน
คำนวณเป็นร้อยละของน้ำหนักซากชำแหละ
.
หลังจาก 24 ชั่วโมงของหนาวที่ 4 ° C , เต้านมกล้ามเนื้อ
ถ่ายจากด้านซ้าย ถูกแบ่งออกเป็น 2 ส่วนส่วน
ก่อนจะทำการวัดการสูญเสียอาหารสีและ
ความเป็นกรดด่าง ส่วนด้านหลังเป็นแบบสุญญากาศและแช่แข็งที่ - 20 ° C
จนถึงการหาองค์ประกอบทางเคมี แรงเฉือนเท่ากับ
, กรดปฏิกิริยาสาร
( ปกติ ) และองค์ประกอบกรดไขมัน . HPLC ( nowacka และ wieslaw , 1994 ) แทนนินเนื้อหา
แสดงเป็นกรดแทนนิก ส่วนวัด
,ตาม folin ciocalteu วิธี ( makkar et al . ,
1993 ) polysaccharides ทั้งหมดวัดจาก
กรดกำมะถันแอนทราซีนคีโตนวิธีกลูโคสโดยไม่
H2O เช่นการควบคุมมาตรฐาน ( Liu et al . , 1994 ) .
การเจริญเติบโตและการเก็บตัวอย่าง geese และข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ตามจำนวนน้ำหนักรายสัปดาห์
เพื่อตรวจสอบน้ำหนักตัว และปริมาณอาหาร และคำนวณอัตราการเจริญเติบโตและ adfi
, , G : Fเมื่อสิ้นสุดการทดลอง 5
ห่านจากแต่ละคอกสุ่มหลังจาก 12 H
อย่างรวดเร็ว , ชั่งน้ำหนักบุคคล ถูกฆ่าตายโดยการตัดหลอดเลือดแดง carotid
, แล้วทันที เลือดออก หัวและเท้า
ถูกเอาออก และความหนาของไขมันใต้ผิวหนัง
เป็นวัดที่ด้านหน้าของกระดูกสันหลังด้วยเวอร์เนียคาลิเปอร์ coccygeal
( แน่นอน 0.01 มม. ; 797b-6 / 150 ;
สแตร์ริตเครื่องมือ Co . , Ltd ซูโจว ,ประเทศจีน อดัมสกี้ , 2004 ) .
ซากถูกชำแหละ และชั่งน้ำหนักเพื่อตรวจสอบ
น้ำสลัดร้อยละ หน้าท้องและต้นขา กล้ามเนื้อและไขมัน
เต้านมออกและชั่งน้ำหนัก ชำแหละซากถูกคำนวณเป็นค่า
อัตราส่วนระหว่างชำแหละซากและ Fi Nal BW หลัง
อดอาหาร ร้อยละของกล้ามเนื้อหน้าอก กล้ามเนื้อต้นขา และไขมันหน้าท้องได้
เป็นเปอร์เซ็นต์ของชำแหละ น้ำหนักซาก
หลังจาก 24 ชั่วโมงของหนาวที่ 4 ° C , เต้านมกล้ามเนื้อ
ถ่ายจากด้านซ้าย ถูกแบ่งออกเป็น 2 ส่วน ส่วน
ก่อนจะทำการวัดการสูญเสียอาหารสีและ
ความเป็นกรดด่าง ส่วนด้านหลังเป็นแบบสุญญากาศและแช่แข็งที่ - 20 ° C
จนถึงการหาองค์ประกอบทางเคมี แรงเฉือนเท่ากับ
, กรดปฏิกิริยาสาร
( ปกติ ) และองค์ประกอบกรดไขมัน .HPLC ( nowacka และ wieslaw , 1994 ) แทนนินเนื้อหา
แสดงเป็นกรดแทนนิกซึ่งเป็นวัด
ตาม folin ciocalteu วิธี ( makkar et al . ,
1993 ) polysaccharides ทั้งหมดวัดจาก
กรดกำมะถันแอนทราซีนคีโตนวิธีกลูโคสโดยไม่
H2O เช่นการควบคุมมาตรฐาน ( Liu et al . , 1994 ) .
การเจริญเติบโตและการเก็บตัวอย่างห่านและข้าวโพดอาหารสัตว์ตามจำนวนน้ำหนักรายสัปดาห์
กำหนด BW และปริมาณอาหาร และคำนวณอัตราการเจริญเติบโต adfi
, และ G : F . เมื่อสิ้นสุดการทดลอง 5
ห่านจากแต่ละคอกสุ่มหลังจาก 12 H
อย่างรวดเร็ว , ชั่งน้ำหนักบุคคล ถูกฆ่าตายโดยการตัดหลอดเลือดแดง carotid
, และ แล้วทันที เลือดออก หัวและเท้า
ถูกเอาออก และ ความหนาของไขมันใต้ผิวหนัง
ไขมันเป็นวัดที่ด้านหน้าของกระดูกสันหลังด้วยเวอร์เนียคาลิเปอร์ coccygeal
( แน่นอน 0.01 มิลลิเมตร ; 797b-6 / 150 ;
สแตร์ริตเครื่องมือ Co . , Ltd ซูโจว , ประเทศจีน อดัมสกี้ , 2004 ) .
ซากถูกชำแหละ และชั่งน้ำหนักเพื่อตรวจสอบ
น้ำสลัดร้อยละ หน้าท้องและต้นขา กล้ามเนื้อและไขมัน
เต้านมออกและชั่งน้ำหนัก ชำแหละซากถูกคำนวณเป็นค่า
อัตราส่วนระหว่างชำแหละซากและ Fi Nal BW หลัง
อดอาหาร ร้อยละของกล้ามเนื้อหน้าอก กล้ามเนื้อต้นขา และ หน้าท้องไขมัน
คำนวณเป็นร้อยละของน้ำหนักซากชำแหละ
.
หลังจาก 24 ชั่วโมงของหนาวที่ 4 ° C , เต้านมกล้ามเนื้อ
ถ่ายจากด้านซ้าย ถูกแบ่งออกเป็น 2 ส่วน ส่วน
ก่อนจะทำการวัดการสูญเสียอาหารสีและ
พีเอชส่วนด้านหลังเป็นแบบสุญญากาศและแช่แข็งที่ - 20 ° C
จนถึงการหาองค์ประกอบทางเคมี แรงเฉือนเท่ากับ
, กรดปฏิกิริยาสาร
( ปกติ ) และองค์ประกอบกรดไขมัน องค์ประกอบทางเคมีในเนื้อ กล้ามเนื้อตัวอย่าง
ใช้ DM ( วิธี 930.15 ) , CP ( วิธี
954.01 ) , และ CF ( วิธี 945.16 ) ตาม
องศา เซลเซียส อินเตอร์เนชั่นแนล ( 1995 ) DM เป็น
ถูกกำหนดการสูญเสียน้ำหนักตัวหลังอบแห้งตัวอย่างของ 50-g ค้างคืน
CP และ CF ตัดสินใจตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ ทั้งหมด
ค่าที่แสดงบนพื้นฐานน้ำหนักเปียก
เครื่องวัด . อ เนื้อของเต้านมกล้ามเนื้อ
เป็นวัดที่เสียชีวิต 24 H ( pH 24 H
การชันสูตรศพ [ ph24 ] ) ที่ 20 ° C และบันทึก ( crison
microph 2001 crison เครื่องมือ , บาร์เซโลนา , สเปน :
) การใช้รวม ( คู่รูขุมขน
บาง ;บริษัท แฮมิลตัน bonaduz , สวิตเซอร์แลนด์ )
เจาะ 3 มม. ( ouhayoun และ dalle zotte , 1996 ) .
การวัดสี หลังจาก 1 ชั่วโมงของบาน
เนื้อสีถูกวัดบนพื้นผิวที่ตัดสดของ
กล้ามเนื้อหน้าอกที่อุณหภูมิ 20 ° C ) ใช้เป็น chromameter ( Minolta cr-300
; Minolta , โตเกียว , ญี่ปุ่น ) ด้วยการส่องสว่าง D65 และ 8-mm รู
ในวัดหัว การวัดสีเท่ากับ
ได้รายงานในแง่ของความสว่าง ( L * ) , สีแดง ( a * ) และค่าสีเหลือง ( b *
) ในคณะกรรมการความเป็นสากล de
L é clairage L * a * b * ( แบบแข็ง )
( พื้นที่สี CIE 1976 ) .
การสูญเสียอาหาร ตัวอย่างเนื้อจากแต่ละห่าน
คือชั่งน้ำหนัก สูญญากาศบรรจุในถุงพลาสติกและ
สุกแล้วเป็นเวลา 1 ชั่วโมง ในน้ำอาบไว้ที่ 80 ° C (
Ram í rez et al . , 2004 ) ตัวอย่างเนื้อแล้ว
เอาออกจากน้ำร้อนและเย็นในการวิ่ง
น้ำ เนื้อแล้วถ่ายจากกระเป๋าเปื้อน
แห้งและชั่งน้ำหนัก การ สูญเสียคือคำนวณเป็น
ความแตกต่างในน้ำหนักระหว่างน้ำหนักแห้งที่ผ่านและ
เปื้อน postcooked และถูกแสดงเป็นเปอร์เซ็นต์ของน้ำหนักผ่าน
.
แรงเฉือน . เนื้อหมูแช่แข็งจำนวน
ละลายข้ามคืน ( ประมาณ 16 ชั่วโมง ) ในเย็นที่
4 ° Cอย่างน้อย 3 ชิ้น ( 1 1 3 ซม. ) จากแต่ละตัวอย่าง
ถูกตัดขนานกับแนวตามยาวของ
กล้ามเนื้อ Fi ผ ชิ้นถูกตัดตั้งฉากกับกล้ามเนื้อ Fi ber
ปฐมนิเทศ ( Instron 1 ; ผล
Corporation , Norwood , MA ) กับ วอร์เนอร์ bratzler
ตัดอุปกรณ์ ( สวิก roell กลุ่ม Ulm Baden ,
วัวร์เทมแบร์ก ประเทศเยอรมนี ) และมะ
ขั้นตอนทั้งหมดได้รับการอนุมัติโดยการบริหาร CE Offi ของสัตว์ทดลอง สถาบันภาคตะวันออกเฉียงเหนือ
ภูมิศาสตร์และ agroecology , จีน Academy of Sciences ( Jilin , จีน ) นก , อาหาร , และการจัดการวิจัยที่สถานีวิจัยระบบนิเวศทุ่งหญ้าฟาร์ม , จีน Academy of Sciences ( Jilin , จีน ; 44 31 ° N ’ 123 ° 33 นั้นอีและ ความสูง 145 เมตร ) และนาน 42 วัน ทุกวัน หมายถึงอุณหภูมิอากาศในการทดลอง 25 ° c.one ร้อยยี่สิบตงเป่ยผิวขาวห่าน ( ท้องถิ่นพันธุ์ น้ำหนักตัว = 878 ± 13 g ; 28 D เก่า ) และสุ่ม
แบ่งออกเป็น 2 การรักษาด้วย 6 ปากกา 10 ห่าน ต่อ การรักษา 2 การรักษาประกอบด้วยนกเลี้ยงอย่างเต็มที่เป็นข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ตามครึ่งหนึ่งของนกไม่เข้าทุ่ง ( ควบคุม ) ในขณะที่อีกครึ่งหนึ่งมีการเข้าถึงจากทุ่งหญ้าหญ้า ( หญ้า ) ก่อนที่จะเริ่มต้นของการทดลอง จาก D 0 28 , ห่านถูกสร้างขึ้นในแบตเตอรี่ได้ ในห้องควบคุมอุณหภูมิภายใต้มาตรฐานกก ) ที่ D 28 , ห่านถูกย้ายไปยังทุ่งหญ้าสำหรับปากกาและพวกเขาถูกเก็บรักษาไว้สำหรับเพิ่มเติม 42 D จนฆ่าที่ D 70 ปากกาแบบพกพา ( 4 - โดย - 3 - โดย - 0.5 M ,
ให้ 1.2 m2 ต่อนก ) อนุญาตให้นกที่จะติดต่อโดยตรงจากทุ่งหญ้าหญ้าทุ่งหญ้า การส่งเสริมการบริโภค น้ำและอาหารที่มีอยู่อย่างเต็มที่ตลอดการทดลอง และมี 2 นมดื่มอัตโนมัติและบุคคลแขวน Feeder tube ตามลำดับประมาณหนึ่งในสามของพื้นที่ด้านบนของปากกาถูกปกคลุมด้วยพลาสติกใสสีขาวเพื่อป้องกันสภาพอากาศที่รุนแรง เพื่อส่งเสริมการบริโภคอาหาร ปากกาพกพา
ของการรักษาทุ่งหญ้ามาทุกวันเพื่อให้ห่านกินหญ้าทุกวัน ปากกาในการรักษาควบคุม
ตั้งอยู่ในตำแหน่ง xed Fi โดยไม่ครอบคลุมพืชอาหารบริโภคประมาณบนพื้นฐานของการประเมินระดับของชีวมวลที่มีอยู่ในฟาร์ม ก่อนและหลังการแทะเล็ม ( Ponte et al . , 2008 ) การวิเคราะห์ทางเคมีของอาหาร อาหารเป็นสูตร
ตาม Wang et al . ( 2553 ; ตารางที่ 1 ) ที่ D 21 ของการทดลอง ( ครึ่งทางผ่านการทดลอง )ตัวอย่างที่เก็บจากฟาร์ม 1-m2 รีโดยการตัดหญ้าที่ 3 ซม. เหนือพื้นดินสำหรับการวิเคราะห์ทางเคมี ( ตารางที่ 2 ) DM ถูกกำหนดโดยตู้อบลมร้อนที่ 105 ° C ( แบบไม่ค้างคืน 930.15 ; int , 1995 ) จึงถูกกำหนดโดยการวิเคราะห์ 0 N ( วิธี 954.01 ; ไม่ Int . , 1995 ) Crude Fi ber ตั้งใจตาม Van Soest et al . ( 1991 )ไขมันดิบ ( CF ) ถูกสกัดด้วยไดเอทิลอีเธอร์ใช้ 1 เครื่อง ( วิธี 945.16 ; ไม่ Int . , 1995 ) เมทไธโอนีนและไลซีนเป็นกรด ( วิธี 982.30 ; ไม่ Int . , 1995 ) แคลเซียม ตั้งใจ ( วิธี 968.08 ) และ P เป็นวัดโดยการแปลงฟอสเฟตเป็นฟอสฟอรัสโมลิบดีนัมสีและวัดที่ 700 nm ( วิธี 986.24 ; ไม่ Int . , 1995 ) เกลือ
โดยกำหนดวิธีนานาชาติ ( 973.09 ; โปรตีนโปรตีน Int . , 1995 ) ซาโปนิน เนื้อหาถูกวัดโดยวิธี HPLC ( nowacka และ wieslaw , 1994 ) แทนนินเนื้อหา แสดงเป็นกรดแทนนิกซึ่งเป็นวัดโดยวิธี folin ciocalteu ( makkar et al . , 1993 ) polysaccharides ทั้งหมดวัดจากคำพูดที่รุนแรงควบคุมคีโตนวิธีกลูโคสโดย H2O เช่นการควบคุมมาตรฐาน ( Liu et al . , 1994 ) การเจริญเติบโตและการเก็บตัวอย่าง geese และข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ โดยมีน้ำหนักทุกสัปดาห์เพื่อตรวจสอบน้ำหนักตัว และปริมาณอาหาร และคำนวณอัตราการเจริญเติบโต adfi
, และ G : F . เมื่อสิ้นสุดการทดลอง 5 ห่านจากแต่ละคอกสุ่มหลังจาก 12 H
อย่างรวดเร็ว , ชั่งน้ำหนักบุคคล ถูกฆ่าตายโดยการตัดหลอดเลือดแดงคาโรติด ,แล้วทันที เลือดออก หัวและเท้า
ถูกเอาออก และความหนาของไขมันใต้ผิวหนัง
เป็นวัดที่ด้านหน้าของกระดูกสันหลังด้วยเวอร์เนียคาลิเปอร์ coccygeal
( แน่นอน 0.01 มิลลิเมตร ; 797b-6 / 150 ;
สแตร์ริตเครื่องมือ Co . , Ltd ซูโจว , ประเทศจีน อดัมสกี้ , 2004 ) .
ซากถูกชำแหละ และชั่งน้ำหนักเพื่อตรวจสอบ
น้ำสลัดร้อยละ ไขมันหน้าท้องและ
หน้าอกและต้นขา กล้ามเนื้อถูกถอดออกและชั่งน้ำหนัก ชำแหละซากถูกคำนวณเป็นค่า
อัตราส่วนระหว่างชำแหละซากและ Fi Nal BW หลัง
อดอาหาร ร้อยละของกล้ามเนื้อหน้าอก กล้ามเนื้อต้นขา และ หน้าท้องไขมัน
คำนวณเป็นร้อยละของน้ำหนักซากชำแหละ
.
หลังจาก 24 ชั่วโมงของหนาวที่ 4 ° C , เต้านมกล้ามเนื้อ
ถ่ายจากด้านซ้าย ถูกแบ่งออกเป็น 2 ส่วนส่วน
ก่อนจะทำการวัดการสูญเสียอาหารสีและ
ความเป็นกรดด่าง ส่วนด้านหลังเป็นแบบสุญญากาศและแช่แข็งที่ - 20 ° C
จนถึงการหาองค์ประกอบทางเคมี แรงเฉือนเท่ากับ
, กรดปฏิกิริยาสาร
( ปกติ ) และองค์ประกอบกรดไขมัน . HPLC ( nowacka และ wieslaw , 1994 ) แทนนินเนื้อหา
แสดงเป็นกรดแทนนิก ส่วนวัด
,ตาม folin ciocalteu วิธี ( makkar et al . ,
1993 ) polysaccharides ทั้งหมดวัดจาก
กรดกำมะถันแอนทราซีนคีโตนวิธีกลูโคสโดยไม่
H2O เช่นการควบคุมมาตรฐาน ( Liu et al . , 1994 ) .
การเจริญเติบโตและการเก็บตัวอย่าง geese และข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ตามจำนวนน้ำหนักรายสัปดาห์
เพื่อตรวจสอบน้ำหนักตัว และปริมาณอาหาร และคำนวณอัตราการเจริญเติบโตและ adfi
, , G : Fเมื่อสิ้นสุดการทดลอง 5
ห่านจากแต่ละคอกสุ่มหลังจาก 12 H
อย่างรวดเร็ว , ชั่งน้ำหนักบุคคล ถูกฆ่าตายโดยการตัดหลอดเลือดแดง carotid
, แล้วทันที เลือดออก หัวและเท้า
ถูกเอาออก และความหนาของไขมันใต้ผิวหนัง
เป็นวัดที่ด้านหน้าของกระดูกสันหลังด้วยเวอร์เนียคาลิเปอร์ coccygeal
( แน่นอน 0.01 มม. ; 797b-6 / 150 ;
สแตร์ริตเครื่องมือ Co . , Ltd ซูโจว ,ประเทศจีน อดัมสกี้ , 2004 ) .
ซากถูกชำแหละ และชั่งน้ำหนักเพื่อตรวจสอบ
น้ำสลัดร้อยละ หน้าท้องและต้นขา กล้ามเนื้อและไขมัน
เต้านมออกและชั่งน้ำหนัก ชำแหละซากถูกคำนวณเป็นค่า
อัตราส่วนระหว่างชำแหละซากและ Fi Nal BW หลัง
อดอาหาร ร้อยละของกล้ามเนื้อหน้าอก กล้ามเนื้อต้นขา และไขมันหน้าท้องได้
เป็นเปอร์เซ็นต์ของชำแหละ น้ำหนักซาก
หลังจาก 24 ชั่วโมงของหนาวที่ 4 ° C , เต้านมกล้ามเนื้อ
ถ่ายจากด้านซ้าย ถูกแบ่งออกเป็น 2 ส่วน ส่วน
ก่อนจะทำการวัดการสูญเสียอาหารสีและ
ความเป็นกรดด่าง ส่วนด้านหลังเป็นแบบสุญญากาศและแช่แข็งที่ - 20 ° C
จนถึงการหาองค์ประกอบทางเคมี แรงเฉือนเท่ากับ
, กรดปฏิกิริยาสาร
( ปกติ ) และองค์ประกอบกรดไขมัน .HPLC ( nowacka และ wieslaw , 1994 ) แทนนินเนื้อหา
แสดงเป็นกรดแทนนิกซึ่งเป็นวัด
ตาม folin ciocalteu วิธี ( makkar et al . ,
1993 ) polysaccharides ทั้งหมดวัดจาก
กรดกำมะถันแอนทราซีนคีโตนวิธีกลูโคสโดยไม่
H2O เช่นการควบคุมมาตรฐาน ( Liu et al . , 1994 ) .
การเจริญเติบโตและการเก็บตัวอย่างห่านและข้าวโพดอาหารสัตว์ตามจำนวนน้ำหนักรายสัปดาห์
กำหนด BW และปริมาณอาหาร และคำนวณอัตราการเจริญเติบโต adfi
, และ G : F . เมื่อสิ้นสุดการทดลอง 5
ห่านจากแต่ละคอกสุ่มหลังจาก 12 H
อย่างรวดเร็ว , ชั่งน้ำหนักบุคคล ถูกฆ่าตายโดยการตัดหลอดเลือดแดง carotid
, และ แล้วทันที เลือดออก หัวและเท้า
ถูกเอาออก และ ความหนาของไขมันใต้ผิวหนัง
ไขมันเป็นวัดที่ด้านหน้าของกระดูกสันหลังด้วยเวอร์เนียคาลิเปอร์ coccygeal
( แน่นอน 0.01 มิลลิเมตร ; 797b-6 / 150 ;
สแตร์ริตเครื่องมือ Co . , Ltd ซูโจว , ประเทศจีน อดัมสกี้ , 2004 ) .
ซากถูกชำแหละ และชั่งน้ำหนักเพื่อตรวจสอบ
น้ำสลัดร้อยละ หน้าท้องและต้นขา กล้ามเนื้อและไขมัน
เต้านมออกและชั่งน้ำหนัก ชำแหละซากถูกคำนวณเป็นค่า
อัตราส่วนระหว่างชำแหละซากและ Fi Nal BW หลัง
อดอาหาร ร้อยละของกล้ามเนื้อหน้าอก กล้ามเนื้อต้นขา และ หน้าท้องไขมัน
คำนวณเป็นร้อยละของน้ำหนักซากชำแหละ
.
หลังจาก 24 ชั่วโมงของหนาวที่ 4 ° C , เต้านมกล้ามเนื้อ
ถ่ายจากด้านซ้าย ถูกแบ่งออกเป็น 2 ส่วน ส่วน
ก่อนจะทำการวัดการสูญเสียอาหารสีและ
พีเอชส่วนด้านหลังเป็นแบบสุญญากาศและแช่แข็งที่ - 20 ° C
จนถึงการหาองค์ประกอบทางเคมี แรงเฉือนเท่ากับ
, กรดปฏิกิริยาสาร
( ปกติ ) และองค์ประกอบกรดไขมัน องค์ประกอบทางเคมีในเนื้อ กล้ามเนื้อตัวอย่าง
ใช้ DM ( วิธี 930.15 ) , CP ( วิธี
954.01 ) , และ CF ( วิธี 945.16 ) ตาม
องศา เซลเซียส อินเตอร์เนชั่นแนล ( 1995 ) DM เป็น
ถูกกำหนดการสูญเสียน้ำหนักตัวหลังอบแห้งตัวอย่างของ 50-g ค้างคืน
CP และ CF ตัดสินใจตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ ทั้งหมด
ค่าที่แสดงบนพื้นฐานน้ำหนักเปียก
เครื่องวัด . อ เนื้อของเต้านมกล้ามเนื้อ
เป็นวัดที่เสียชีวิต 24 H ( pH 24 H
การชันสูตรศพ [ ph24 ] ) ที่ 20 ° C และบันทึก ( crison
microph 2001 crison เครื่องมือ , บาร์เซโลนา , สเปน :
) การใช้รวม ( คู่รูขุมขน
บาง ;บริษัท แฮมิลตัน bonaduz , สวิตเซอร์แลนด์ )
เจาะ 3 มม. ( ouhayoun และ dalle zotte , 1996 ) .
การวัดสี หลังจาก 1 ชั่วโมงของบาน
เนื้อสีถูกวัดบนพื้นผิวที่ตัดสดของ
กล้ามเนื้อหน้าอกที่อุณหภูมิ 20 ° C ) ใช้เป็น chromameter ( Minolta cr-300
; Minolta , โตเกียว , ญี่ปุ่น ) ด้วยการส่องสว่าง D65 และ 8-mm รู
ในวัดหัว การวัดสีเท่ากับ
ได้รายงานในแง่ของความสว่าง ( L * ) , สีแดง ( a * ) และค่าสีเหลือง ( b *
) ในคณะกรรมการความเป็นสากล de
L é clairage L * a * b * ( แบบแข็ง )
( พื้นที่สี CIE 1976 ) .
การสูญเสียอาหาร ตัวอย่างเนื้อจากแต่ละห่าน
คือชั่งน้ำหนัก สูญญากาศบรรจุในถุงพลาสติกและ
สุกแล้วเป็นเวลา 1 ชั่วโมง ในน้ำอาบไว้ที่ 80 ° C (
Ram í rez et al . , 2004 ) ตัวอย่างเนื้อแล้ว
เอาออกจากน้ำร้อนและเย็นในการวิ่ง
น้ำ เนื้อแล้วถ่ายจากกระเป๋าเปื้อน
แห้งและชั่งน้ำหนัก การ สูญเสียคือคำนวณเป็น
ความแตกต่างในน้ำหนักระหว่างน้ำหนักแห้งที่ผ่านและ
เปื้อน postcooked และถูกแสดงเป็นเปอร์เซ็นต์ของน้ำหนักผ่าน
.
แรงเฉือน . เนื้อหมูแช่แข็งจำนวน
ละลายข้ามคืน ( ประมาณ 16 ชั่วโมง ) ในเย็นที่
4 ° Cอย่างน้อย 3 ชิ้น ( 1 1 3 ซม. ) จากแต่ละตัวอย่าง
ถูกตัดขนานกับแนวตามยาวของ
กล้ามเนื้อ Fi ผ ชิ้นถูกตัดตั้งฉากกับกล้ามเนื้อ Fi ber
ปฐมนิเทศ ( Instron 1 ; ผล
Corporation , Norwood , MA ) กับ วอร์เนอร์ bratzler
ตัดอุปกรณ์ ( สวิก roell กลุ่ม Ulm Baden ,
วัวร์เทมแบร์ก ประเทศเยอรมนี ) และมะ
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- 10 min of talk I Follow-up
- ตกใจ
- Determination of the metal contents of s
- คุณสูงเท่าไหร่
- Giving credits to original authors for i
- i knew i knew love make me foolbut i jus
- สถานที่แรกเราจะพาไปวัดใหญ่สุวรรณาราม ทำบ
- ใช่ คุณไม่เคยไป คุณถึงเขียนบทความออกมาไม
- Wise you will eat me
- WHAT DOES BI DO?BI assists in strategic
- ตกลงฉันอยู่ในฐานะอะไรของเธอ
- Presens
- แล้วเธอไปที่ร้านยังไง
- this Xmas want to something for them.
- ฉันฟังเพลงแล้วรู้สึกผ่อนคลาย
- Il sert à porte
- พิมพ์
- เขาแขวนเสื้อไว้ที่ราว
- โปรดอย่าลืม ID Line
- ฉันพึ่งคุยกับคุณ
- พักผ่อนให้เพียงพอ
- การพูดจาหยาบคาย
- เมื่อวานแปรงฟัน
- Sry
