The aetiology of MSGS has not been

The aetiology of MSGS has not been fully elucidated, although multiple
infectious agents have been observed in several organs by histopathology,
transmission electron microscopy (TEM), and
polymerase chain reaction (PCR) methods (Chayaburakul et al.,
2004; Anantasomboon et al., 2006). Most significantly, multiple
spheroids were observed in the lymphoid organs and shown to
contain several viruses of known and unknown types (Anantasomboon
et al., 2006; Sritunyalucksana et al., 2006).
Hepatopancreatic
cells of affected shrimp sometimes also showed the presence of
inclusions of monodon baculovirus (MBV), hepatopancreatic parvovirus
(HPV) or a currently unidentified microsporidian.

Microsporidia are obligate intracellular parasites known to infect
a wide range of eukaryotic hosts. Development of the parasite generally
occurs within the cytoplasm of the host-cell via nuclear proliferation,
and spore formation (sporogony), though certain genera are
known to undergo similar development within the host nucleoplasm
(Lom and Dyková, 2002; Stentiford and Bateman, 2007; Stentiford
et al., 2007).
Several genera of microsporidia have been
reported to infect crustacean hosts. These include Agmasoma, Ameson,
Nosema, Pleistophora, Tuzetia, Thelohania, Flabelliforma Glugoides, Vavraia, Ordospora, Nadelspora and Enterospora (Landgdon,
1991; Larsson et al., 1996, 1997, 1998; Lightner, 1996; Canning
et al., 2002; Refardt et al., 2002; Moodie et al., 2003; Amogan et al.,
2006; Stentiford and Bateman, 2007). Various crustacean organs
and tissues have been reported to be infected (Sprague et al.,
1992; Anderson et al., 1989; Landgdon, 1991; Larsson et al., 1996,
1997, 1998; Lom et al., 2001). For example, Pasharawipas and Flegel
(1994) reported infections of Agmasoma penaei in the muscles and
connective tissue of Penaeus merguensis and P. monodon. Later, Canning
et al. (2002) reported an infection by Tuzetia weidneri in the
muscles of Penaeus setiferus and Penaeus aztecus. Pathogenesis involved
progression of multifocal lesions to whole muscle blocks
and abdominal segments of the shrimp, leading to a condition
termed ‘cotton tail’ disease. Lightner (1996) has also reported microsporidian
infections in muscle tissue of penaeid shrimp.Few microsporidians have been shown to infect only the tubule
epithelial cells of the crustacean hepatopancreas (Anderson et al.,
1989; Hudson et al., 2001;Wangand Chen, 2007; Stentiford and Bateman,
2007; Stentiford et al., 2007). The publications by Stentiford
et al. describe such infections of two European crab species by a
microsporidians placed in a new genus of microsporidia (Enterospora)
within the family Enterocytozoonidae because of the intranuclear
location of the plasmodia. Placement within the family
Enterocytozoonidae was based upon the formation of precursors
to the spore extrusion apparatus (e.g. polar filament, anchoring disk)
and other organelles within the parasite plasmodia (i.e. prior to isolation
of sporoblasts). This discovery opened the possibility of other
representatives of the Enterocytozoonidae within crustaceans.The relatively frequent occurrence of a new cytoplamic microsporidian
that infected only hepatopancreatic tubule epithelial
cells of MSGS-affected P. monodon (Chayaburakul et al., 2004) provided
an opportunity to study its development and taxonomy. This
study focused mostly on histopathological and ultrastructural features
of the parasite, but also included analysis of a portion of its
SSU rRNA gene and comparison the sequence to those of other
microsporidians in public databases.Hepatopancreatic samples prepared by the smear method and
viewed by light microscopy (LM) showed the presence of microsporidian
spores (Fig. 1A) only in the cytoplasm of hepatopancreatic
tubule epithelial cells. Using fresh spore preparations
Fig. 1. Photomicrographs of Enterocytozoon hepatopenaei tubule epithelial cells of the hepatopancreas of Penaeus monodon. (A) H&E-stained smear of hepatopancreatic tissue
showing numerous microsporidian spores (arrows)
(B) Fresh preparation of microsporidian spores from a Percoll gradient.
(C and D) Hepatopancreatic tissue sections
showing acidophilic, granular inclusions in the cytoplasm of tubule epithelial cells (arrows).
(E) Semi-thin section of hepatopancreatic tissue showing early and late
plasmodia (inset a) and mature spores (inset b) in the cytoplasm of tubule epithelial cells. Some spores show unstained spots that represent their concave surfaces at one end
(inset b). A, haematoxylin stain; C, Trichrome stain; D, H&E stain; E, Toluidine blue stain. ePm, early plasmodium; lPm, late plasmodium.
Fig. 2. Trasmission electron micrographs (TEM) of early stages of E. hepatopenaei development in hepatopancreatic tubule epithelial cells of P. monodon. (A) Early
plasmodium stage with two nuclei. (B) Early plasmodium stage with multiple nuclei. (C) A group of plasmodia surrounded by a vacuole within the cytoplasm of the host-cell
and showing nuclear division (inset, arrowhead). Mv, microvilli; V, vacuole.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

สาเหตุของ MSGS ไม่ได้รับการอธิบายอย่างเต็มที่แม้ว่าหลาย
ติดเชื้อได้รับการปฏิบัติในอวัยวะหลายจุลพยาธิวิทยา,
การส่งผ่านกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน (TEM) และ
วิธี Polymerase chain reaction (PCR) วิธีการ (Chayaburakul, et al.
2004; Anantasomboon และคณะ 2006) ส่วนใหญ่อย่างมีนัยสำคัญหลาย
spheroids ถูกตั้งข้อสังเกตในอวัยวะน้ำเหลืองและแสดงให้เห็นว่า
มีไวรัสหลายชนิดที่รู้จักและไม่รู้จัก (Anantasomboon
et al, 2006;.. Sritunyalucksana et al, 2006).
Hepatopancreatic
เซลล์ของกุ้งได้รับผลกระทบบางครั้งยังแสดงให้เห็นการปรากฏตัวของ
การรวม ของกุ้งกุลาดำไวรัส (MBV) Hepatopancreatic parvovirus
(HPV) หรือ. ไมโครไม่ปรากฏชื่อในปัจจุบันMicrosporidia ปรสิตเซลล์ภาระที่รู้จักกันที่จะติดเชื้อที่หลากหลายของเจ้าภาพยูคาริโอ การพัฒนาของปรสิตโดยทั่วไปเกิดขึ้นภายใน cytoplasm ของโฮสต์เซลล์ผ่านการแพร่กระจายนิวเคลียร์และสร้างสปอร์ (sporogony) แต่บางจำพวกที่รู้จักกันที่จะได้รับการพัฒนาที่คล้ายกันภายในโฮสต์ nucleoplasm (ลมและ Dykova 2002; Stentiford และเบท 2007 ; Stentiford . et al. 2007) จำพวกหลาย Microsporidia ได้รับรายงานการติดเชื้อเจ้าภาพกุ้ง เหล่านี้รวมถึง Agmasoma, Ameson, nosema, Pleistophora, Tuzetia, สปอริเดีย, Flabelliforma Glugoides, Vavraia, Ordospora, Nadelspora และ Enterospora (Landgdon, 1991; ลาร์สสัน, et al, 1996, 1997, 1998;. Lightner, 1996; กระป๋องet al., 2002 ; Refardt et al, 2002;. Moodie et al, 2003;. Amogan, et al. 2006; Stentiford และเบท 2007) อวัยวะกุ้งต่างๆและเนื้อเยื่อที่ได้รับรายงานว่าจะติดเชื้อ (ปราก, et al. 1992; เดอร์สัน, et al, 1989;. Landgdon 1991; ลาร์สสัน, et al, 1996. 1997, 1998;. สีลม, et al, 2001) ตัวอย่างเช่น Pasharawipas และ Flegel (1994) รายงานการติดเชื้อของ Agmasoma penaei ในกล้ามเนื้อและเนื้อเยื่อเกี่ยวพันของ merguensis กุ้งและกุ้งกุลาดำ ต่อมาแคนนิ่งและคณะ (2002) รายงานการติดเชื้อโดย Tuzetia weidneri ในกล้ามเนื้อของกุ้งและกุ้ง setiferus aztecus กลไกการเกิดโรคที่เกี่ยวข้องกับการลุกลามของแผล multifocal บล็อกกล้ามเนื้อทั้งหมดและส่วนท้องของกุ้งที่นำไปสู่สภาพที่เรียกว่า 'ฝ้ายหาง' โรค Lightner (1996) นอกจากนี้ยังมีรายงานไมโครการติดเชื้อในเนื้อเยื่อของกล้ามเนื้อของกลุ่มพีเนียด microsporidians shrimp.Few ได้รับการแสดงที่จะติดเชื้อเพียงท่อเซลล์เยื่อบุผิวของกุ้งตับ (เดอร์สัน, et al. 1989;. ฮัดสัน, et al, 2001; Wangand เฉิน 2007; Stentiford และเบท, 2007. Stentiford et al, 2007) สิ่งพิมพ์โดย Stentiford และคณะ อธิบายการติดเชื้อดังกล่าวของทั้งสองสายพันธุ์ปูยุโรปโดยmicrosporidians วางไว้ในสกุลใหม่ของ Microsporidia (Enterospora) ภายในครอบครัว Enterocytozoonidae เพราะ intranuclear สถานที่ตั้งของ plasmodia ตำแหน่งภายในครอบครัวEnterocytozoonidae ขึ้นอยู่กับการก่อตัวของสารตั้งต้นที่จะอุปกรณ์การอัดรีดสปอร์ (เช่นใยขั้วโลกทอดสมอดิสก์) และ organelles อื่น ๆ ภายในปรสิต plasmodia (คือก่อนที่จะมีการแยกของ sporoblasts) การค้นพบนี้เปิดเป็นไปได้ของอื่น ๆ ที่ผู้แทนของ Enterocytozoonidae ภายใน crustaceans.The เกิดขึ้นค่อนข้างบ่อยของไมโคร cytoplamic ใหม่ที่ติดเชื้อท่อ Hepatopancreatic เพียงเยื่อบุผิวเซลล์ของ MSGS รับผลกระทบจากกุ้งกุลาดำ (Chayaburakul et al., 2004) ให้โอกาสในการศึกษา การพัฒนาและอนุกรมวิธาน นี้การศึกษาส่วนใหญ่เน้นคุณสมบัติทางจุลพยาธิวิทยาและจุลภาคของปรสิต แต่ยังรวมถึงการวิเคราะห์ส่วนของยีน rRNA ซุและการเปรียบเทียบลำดับกับผู้อื่นmicrosporidians ในตัวอย่าง databases.Hepatopancreatic ประชาชนเตรียมโดยวิธี smear และดูได้โดยกล้องจุลทรรศน์ (LM) แสดงให้เห็นว่าการปรากฏตัวของไมโครสปอร์ (รูป. 1A) เฉพาะใน cytoplasm ของ Hepatopancreatic เซลล์เยื่อบุผิวท่อ ใช้เตรียมสดสปอร์รูป 1. photomicrographs ของ Enterocytozoon hepatopenaei ท่อเซลล์เยื่อบุผิวของตับและตับอ่อนของกุ้งกุลาดำ (A) H & smear E เปื้อนของเนื้อเยื่อ Hepatopancreatic แสดงสปอร์ไมโครจำนวนมาก (ลูกศร) (B) การเตรียมสดของสปอร์ของไมโครจากการไล่ระดับสี Percoll. (C และ D) ส่วนเนื้อเยื่อ Hepatopancreatic แสดง acidophilic, รวมเม็ดในพลาสซึมของเซลล์เยื่อบุผิวท่อ (ลูกศร). (E) ส่วนกึ่งบาง ๆ ของเนื้อเยื่อ Hepatopancreatic แสดงต้นและปลายplasmodia (ภาพประกอบ) และสปอร์ผู้ใหญ่ (แทรกข) ในพลาสซึมของเซลล์เยื่อบุผิวท่อ สปอร์บางอย่างแสดงจุดที่ไม่มีรอยเปื้อนที่เป็นตัวแทนของพื้นผิวที่เว้าของพวกเขาที่ปลายด้านหนึ่ง(แทรกข) คราบ haematoxylin; C คราบ trichrome; D, H & E คราบ; E, toluidine คราบสีฟ้า EPM, Plasmodium ต้น; LPM สาย Plasmodium. รูป 2. กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน Trasmission (TEM) ของขั้นตอนแรกของการพัฒนา E. hepatopenaei ในท่อ Hepatopancreatic เซลล์เยื่อบุผิวของกุ้งกุลาดำ (A) ในช่วงต้นขั้นตอน Plasmodium มีสองนิวเคลียส (B) ในช่วงเริ่มต้น Plasmodium กับนิวเคลียสหลาย (C) กลุ่มของ plasmodia ล้อมรอบด้วย vacuole ภายในพลาสซึมของเซลล์โฮสต์และแสดงส่วนนิวเคลียร์ (ภาพประกอบ, หัวลูกศร) Mv, microvilli; V, vacuole

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การศึกษาที่เกี่ยวกับสาเหตุของการ msgs ได้ไม่เต็มที่มาก ถึงแม้ว่าหลาย
การติดเชื้อได้รับการตรวจสอบในหลายอวัยวะโดยกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนแบบส่องกราด เปลี่ยนแปลง
,
( TEM ) และวิธีพีซีอาร์ ( PCR ) วิธีการ ( chayaburakul et al . ,
2004 ; จินตนา บุนนาค et al . , 2006 ) มากที่สุดหลาย
diethyl พบในอวัยวะน้ำเหลืองและแสดง

มีหลายประเภทของไวรัสที่รู้จักและไม่รู้จัก ( จินตนา บุนนาค
et al . , 2006 ; sritunyalucksana et al . , 2006 ) hepatopancreatic

เซลล์กุ้งได้รับผลกระทบ บางครั้งยังพบการปรากฏตัวของ
รวมของ monodon baculovirus ( MBV ) hepatopancreatic parvovirus
( HPV ) หรือในปัจจุบันมีไมโครสปอริเดียน .

ไมโครสปอริเดียจะบังคับปรสิตที่รู้จักกันในเซลล์ติดเชื้อ
ช่วงกว้างของความแตกต่างระหว่างโฮสต์ การพัฒนาของปรสิตทั่วไป
เกิดขึ้นภายในไซโตพลาสซึมของเซลล์โฮสต์ผ่านทางนิวเคลียร์และการสร้างสปอร์ (
sporogony ) แม้ว่าบางจำพวกจะรู้จักกันผ่านการพัฒนาที่คล้ายกัน

( ลมภายในโฮสต์นิวคลีโอพลาสซึม และ dykov . kgm , 2002 ; stentiford และ เบทแมน , 2007 ; stentiford
et al . , 2007 )

ได้หลายสกุลไมโครสปอริเดียรายงานการติดเชื้อวาสุเทพโยธา เหล่านี้รวมถึง agmasoma ameson
, , nosema pleistophora tuzetia thelohania , , , , glugoides flabelliforma vavraia ordospora , , , และ nadelspora enterospora ( landgdon
, 1991 ; ลาร์สสัน et al . , 1996 , 1997 , 1998 ; ไลท์เนอร์ , 1996 ; กระป๋อง
et al . , 2002 ; refardt et al . , et al , 2002 ; มูดี้ . , 2003 ; amogan et al . ,
2006 ; และ stentiford เบทแมน , 2007 ) อวัยวะต่างๆ
ครัสเตเชียนและเนื้อเยื่อได้รับการรายงานที่จะติดเชื้อ ( Sprague
et al . , 1992 ; Anderson et al . , 1989 ; landgdon , 1991 ; ลาร์สสัน et al . , 1996 ,
1997 , 1998 ; ลม et al . , 2001 ) ตัวอย่าง และ ชัยณรงค์ วงศ์ธีรทรัพย์ pasharawipas
( 1994 ) รายงานการติดเชื้อของ agmasoma penaei ในกล้ามเนื้อและเนื้อเยื่อเกี่ยวพันของ
merguensis ต่อกุ้งกุลาดำ และ . ต่อมา กระป๋อง
et al . ( 2002 ) รายงานการติดเชื้อโดย tuzetia weidneri ใน
กล้ามเนื้อและบริเวณโดย setiferus aztecus . ซึ่งเกี่ยวข้องกับความก้าวหน้าของรอยโรคทั้งหมด

สำหรับกล้ามเนื้อหน้าท้องบล็อกและส่วนของกุ้ง ที่นำไปสู่เงื่อนไข
โรคที่เรียกว่าหางฝ้าย ' ดวงไฟ ( 1996 ) ได้รายงานยังไมโครสปอริเดียน
เชื้อในเนื้อเยื่อของกล้ามเนื้อกุ้งตาม ไม่กี่ microsporidians ได้รับการแสดงที่จะติดเชื้อเพียงท่อ
เซลล์บุผิวของครัสเตเชียตับ ( Anderson et al . ,
1989 ; ฮัดสัน et al . , 2001 ; wangand เฉิน , 2007 ; stentiford Bateman
และ , 2007 ; stentiford et al . , 2007 ) สิ่งพิมพ์โดย stentiford
et al . อธิบายเช่นเชื้อสองชนิดปูยุโรปด้วย
microsporidians อยู่ในจีนัสใหม่ของไมโครสปอริเดีย ( enterospora )
ภายใน enterocytozoonidae ครอบครัวเพราะอย่างไร
ที่ตั้งของพลาสโมเดีย . การจัดวางภายใน enterocytozoonidae ครอบครัว
นั้นขึ้นอยู่กับการก่อตัวของบรรพบุรุษ
กับสปอร์รูปเครื่องมือ ( เช่นขั้วโลกเส้นใยสูงยึดดิสก์ )
และออร์แกเนลล์อื่นภายในปรสิตพลาสโมเดีย ( เช่นก่อนแยก
ของ sporoblasts ) การค้นพบนี้เปิดเป็นไปได้ของ
อื่น ๆตัวแทนของ enterocytozoonidae ภายในกลุ่ม ที่เกิดขึ้นค่อนข้างบ่อยของใหม่ cytoplamic ไมโครสปอริเดียน
ที่ติดเชื้อเท่านั้น hepatopancreatic ส่วนเยื่อบุเซลล์ของ msgs
ต่อกุ้งกุลาดำ ( chayaburakul et al . , 2004 ) ให้
โอกาสในการศึกษาพัฒนาและอนุกรมวิธานของ การศึกษานี้มุ่งเน้นส่วนใหญ่ในการศึกษา

และคุณลักษณะของปรสิต แต่ยังรวมถึงการวิเคราะห์ส่วนของ rRNA ยีน
ซื่อและเปรียบเทียบลำดับของผู้ microsporidians อื่น
ในฐานข้อมูลสาธารณะ hepatopancreatic ตัวอย่างที่เตรียมโดยวิธีละเลง
ดูด้วยกล้องจุลทรรศน์แสง ( LM ) พบการปรากฏตัวของเชื้อไมโครสปอริเดียน
( รูปที่ 1A ) เฉพาะในไซโตปลาสซึมของ hepatopancreatic
ส่วนเยื่อบุเซลล์ใช้สดสปอร์การเตรียม
รูปที่ 1 photomicrographs ของ enterocytozoon hepatopenaei ส่วนเซลล์เยื่อของตับและตับอ่อนของกุ้งกุลาดํา ( a ) H & e-stained ละเลงของ hepatopancreatic เนื้อเยื่อ
แสดงสปอร์ไมโครสปอริเดียนมากมาย ( ลูกศร )
( b ) การเตรียมสดของไมโครสปอริเดียนสปอร์จาก percoll ลาด .
( C และ D ) hepatopancreatic ส่วนเนื้อเยื่อ
คือการแสดง ,เม็ดรวมใน cytoplasm ของเซลล์บุผิวท่อ ( ลูกศร )
( E ) กึ่งบางส่วนของ hepatopancreatic เนื้อเยื่อให้เร็วและช้า
พลาสโมเดีย ( ภาพประกอบ ) และผู้ใหญ่ ( ภาพประกอบ 2 ) สปอร์ใน cytoplasm ของเซลล์บุผิวท่อ . บางจุดที่เป็นตัวแทนของสปอร์แสดง unstained เว้าพื้นผิวที่ปลายด้านหนึ่ง
( ใส่ B ) , ฮีมาท๊อกซีลินคราบ ; C , เทคนิคคราบ ; D , H & E คราบ ; Eโทลูอิดีนสีฟ้าคราบ . EPM , ต้นพลาสโมเดียม ; แอลพีเอ็ม ปลายพลาสโมเดียม .
รูปที่ 2 micrographs trasmission อิเล็กตรอน ( TEM ) ช่วงแรกของการพัฒนา เช่น ในส่วนของ hepatopenaei hepatopancreatic เซลล์เยื่อกุ้งกุลาดำ . ( ก ) ขั้นตอนการก่อน
สองนิวเคลียส . ( ข ) ขั้นตอนการก่อนมีหลายนิวเคลียส .( ค ) กลุ่มพลาสโมเดียล้อมรอบด้วยเซลล์ภายในไซโตปลาสซึมของเซลล์โฮสต์
และแสดงการแบ่งนิวเคลียส ( สิ่งที่ใส่เข้าไปหัวลูกศร ) มิวสิควีดีโอ ไมโครวิลไล ; V , แวคิวโอล .