However, initial studies indicate t

However, initial studies indicate that the uptake of Au is via a complex mechanism and not ion exchange, because ion exchange reactions are rapid and Au uptake and reduction reactions are time dependent [32]. In solution, the
tetrachlorate ion may easily be reduced to Au(I) and finally to Au(0)[33,34] by many processes, most likely hydrolysis or reduction involving the release of protons, organic acids or amino acids using nitrogen or sulphur donor ligands [1,34]. For enhanced uptake these hydrolysed ions bind with the functional groups present on the cell walls. Au(I) is most likely stabilised by CN- and S containing ligands, whereas N containing functional groups stabilise Au(III). In addition,
pH dependent and independent Au uptake has been observed,indicating the possibility of different mechanisms of reduction and uptake in different plant species. pH independent results indicate covalent bonding (expected considering Au is a soft acid), however pH dependent results are attributed to electrostatic interactions between positively charged amino groups present on the cell walls and negatively charged AuCl4 − species in the hydrolysed aqueous solution. It is worth mentioning here that the few FT-EXAFS studies reported in the literature indicate binding through N-containing ligands rather than S-containing ones, confirming that Au(III) accumulation involves multiple binding sites [35]. The other
question which arises is whether the reduction is extracellular or intracellular, i.e. in the aqueous growth media solution or within the cell membranes of the plant. The mechanism of uptake and reduction of Au is still unknown, in particular whether the metal is first reduced and then absorbed or the hydrolysed species is first adsorbed by the root surface and then reduced. Once the metal has passed the root membrane, metals move acropetally through the xylem, however the process of xylem loading also remains unclear.Some initial studies suggest the use of transport ATPases in xylem
loading, by creating negative electrochemical gradient in parenchymal cells [36]. ATPases are responsible for carrying numerous ions besides protons (K+, Na+, Ca2+, Cu2+) and might therefore also be responsible for Au transport. Various amino (histidine, cysteine,methionine) and organic acids (malic acids, citric, malonic acids) are also believed to aid in xylem loading [37,38]. Different metals have been found to be transported using different metal complex
reactions, e.g. Ni is transported mainly thorough histidine binding and Zn uptake is enhanced in the presence of malic acids [36,39].However, it is important to note that the chemical analysis of xylem fluids indicates the presence of different amino or organic acids for different metals and plant species. Once transported the metals has to be stored, where they are rendered non toxic and no longer interfere in normal plant metabolism. The two major heavy metal binding compounds in plants are phytochelatins (PCs) and metallothionins. The presence of a Cd–phytochelatin complex
in the vacuoles is one such example of metal tolerance [40]. At the tissue level, metals are stored in epidermal and subepidermal cells, e.g. Ni in Senecio coronatus, apoplasts and vacuoles are the cellular locations for the metal once sequestered [41,42]. Girling and Peterson [6], confirmed the presence of AuCN in the leaf vacuoles and insoluble AuCl in cell walls. Recently however, the presence of Au as discrete metallic particles in the shoots of Medicago sativa have been observed [43]. At the molecular level, a number of genes have been discovered for ion transport in plants, e.g. ZIP gene family (Zn uptake), Nramp proteins (Mn uptake) and ATPases [42]. However, genes responsible for noble metal transport across plant cell membranes have not been elucidated. Further research is needed at the physiological and biochemical level to thoroughly understand the underlying processes involved in Au uptake.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

อย่างไรก็ตาม เริ่มต้นการศึกษาบ่งชี้ว่า ดูดซับของ Au ผ่านกลไกที่ซับซ้อนและไม่แลกเปลี่ยนไอออน เนื่องจากปฏิกิริยาแลกเปลี่ยนไอออนอย่างรวดเร็ว และปฏิกิริยาการดูดซับและลด Au [32] ขึ้นอยู่กับเวลากัน ในการแก้ปัญหา การtetrachlorate ไอออนอาจได้ลดลงเป็น Au(I) และสุดท้าย เพื่อ Au(0) [33,34] ในกระบวนการ ไฮโตรไลซ์หรือลดมักเกี่ยวข้องกับรุ่นของโปรตอน กรดอินทรีย์ หรือกรดอะมิโนที่ใช้ซัลเฟอร์หรือไนโตรเจนบริจาค ligands [1,34] การดูดซับเพิ่ม ประจุเหล่านี้ hydrolysed ผูกกับกลุ่ม functional อยู่ในผนังเซลล์ Au(I) อยู่ที่เสถียรภาพทาง CN - S ประกอบด้วย ligands ในขณะที่ N ที่มี functional กลุ่มรับ Au(III) นอกจากนี้pH ขึ้น และอิสระ Au ดูดธาตุอาหารได้ถูกตรวจสอบ แสดงความเป็นไปได้ของกลไกต่าง ๆ ของการลดและดูดธาตุอาหารในพืชต่างชนิด pH ขึ้นอยู่กับผลลัพธ์บ่งชี้ยึด covalent (คาดว่าพิจารณา Au เป็นกรดอ่อน) อย่างไรก็ตาม ผลลัพธ์ขึ้นอยู่กับ pH มาจากสถิตการโต้ตอบระหว่างกลุ่มอะมิโนคิดค่าธรรมเนียมบวกอยู่ บนผนังเซลล์ และส่งเรียกเก็บ AuCl4 −ชนิดในละลาย hydrolysed มันเที่ยวกล่าวถึงที่นี่ว่า FT EXAFS ศึกษาบางรายงานในวรรณคดีระบุผูก ผ่าน ligands N ประกอบด้วย มากกว่า มี S คนยืนยันว่า Au(III) สะสมเกี่ยวข้องกับหลายไซต์รวม [35] อื่น ๆคำถามที่เกิดขึ้นคือว่าการลด extracellular หรือ intracellular เช่น ในโซลูชันสื่อเติบโตอควี หรือภาย ในเยื่อหุ้มเซลล์ของพืช กลไกในการดูดซับและลดของ Au ไม่ยังรู้จัก โดยเฉพาะอย่างยิ่งว่าโลหะครั้งแรกลดลง และดูดซึมแล้ว หรือพันธุ์ hydrolysed adsorbed ก่อน โดยพื้นผิวของราก และลดลงแล้ว เมื่อโลหะผ่านเยื่อราก โลหะเลื่อน acropetally xylem อย่างไรก็ตามกระบวนการของ xylem โหลดยังยังคงชัดเจน บางการศึกษาเริ่มต้นแนะนำการใช้การขนส่ง ATPases ใน xylemโหลด สร้างไล่ระดับไฟฟ้าลบในเซลล์ parenchymal [36] ATPases รับผิดชอบการดำเนินการกันมากมายนอกจากโปรตอน (K + Na + Ca2 + Cu2 +) และดังนั้นจึงยังอาจรับผิดชอบการขนส่งอู ต่าง ๆ อะมิโน (histidine, cysteine, methionine) และกรดอินทรีย์ (กรด malic แอซิด ซิทริก กรด malonic) ยังเชื่อว่าช่วยใน xylem โหลด [37,38] ตรวจพบโลหะอื่นที่ใช้ขนส่งโดยใช้โลหะอื่นที่ซับซ้อนปฏิกิริยา เช่น Ni เป็นผูก histidine อย่างละเอียดส่วนใหญ่ขนย้าย และเพิ่มการดูดซับของ Zn ในต่อหน้าของกรด malic [36,39] อย่างไรก็ตาม ได้โปรดทราบว่า การวิเคราะห์ทางเคมีของของเหลว xylem บ่งชี้สถานะของกรดอะมิโน หรืออินทรีย์แตกต่างกันสำหรับโลหะต่าง ๆ และพืชชนิด เมื่อขนส่งโลหะที่มีการจัดเก็บ ที่พวกเขาจะแสดงผลไม่เป็นพิษ และไม่แทรกแซงในเมแทบอลิซึมของพืชปกติ 2 โลหะหนักหลักผูกสารประกอบในพืช phytochelatins (พีซี) และ metallothionins ของคอมเพล็กซ์ซี – phytochelatinในการ vacuoles เป็นอย่างหนึ่งของการยอมรับโลหะ [40] ในระดับเนื้อเยื่อ โลหะจะถูกเก็บในเซลล์ epidermal และ subepidermal เช่น Ni Senecio coronatus, apoplasts และ vacuoles เป็นสถานที่เก็บโทรศัพท์มือถือสำหรับการโลหะเมื่อปล่อย [41,42] Girling และ Peterson [6], ได้รับการยืนยันสถานะของ AuCN vacuoles ใบไม้และ AuCl ละลายในผนังเซลล์ เมื่อเร็ว ๆ นี้ อย่างไรก็ตาม ก็ Au เป็นอนุภาคเดี่ยว ๆ โลหะในการถ่ายภาพของซา Medicago ได้ถูกตรวจสอบ [43] ในระดับโมเลกุล จำนวนยีนได้ถูกค้นพบสำหรับการขนส่งไอออนในพืช เช่นไปรษณีย์ยีน (ดูดซับ Zn), วิลเลียม Nramp (ดูดซับ Mn) และครอบครัว ATPases [42] อย่างไรก็ตาม ยีนโลหะการขนส่งผ่านเยื่อหุ้มเซลล์พืชมีไม่ถูก elucidated วิจัยเพิ่มเติมเป็นสิ่งจำเป็นในสรีรวิทยา และชีวเคมีต้องเข้าใจกระบวนการมาตรฐานที่เกี่ยวข้องในการดูดซับ Au

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

อย่างไรก็ตาม เริ่มต้นศึกษาบ่งชี้ว่า การดูดซึมของ AU ผ่านกลไกที่ซับซ้อนและไม่แลกเปลี่ยนไอออน เนื่องจากปฏิกิริยาการแลกเปลี่ยนไอออนได้อย่างรวดเร็ว และลดการดูดซึมและปฏิกิริยา หรือเวลา ) [ 32 ] ในสารละลาย ,
tetrachlorate ไอออนได้อย่างง่ายดายอาจจะลดลงไป AU ( ฉัน ) และในที่สุดเพื่อ AU ( 0 ) [ 33,34 ] โดยหลายกระบวนการมากที่สุดที่เกี่ยวข้องกับการย่อยหรือการลดรุ่นของโปรตอนกรดอินทรีย์กรดอะมิโนไนโตรเจน ซัลเฟอร์ หรือใช้ หรือผู้บริจาคลิแกนด์ [ 1,34 ] สำหรับการเพิ่มประจุผ่านเหล่านี้ผูกกับหมู่ฟังก์ชันที่อยู่บนผนังเซลล์ AU ( ผม ) น่าจะมีความเสถียรโดย CN - และ S ที่มีลิแกนด์ในขณะที่ N ที่มีหมู่ฟังก์ชัน stabilise AU ( 3 ) นอกจากนี้
อตัวแปรอิสระและหรือการได้รับสังเกตแสดงความเป็นไปได้ของการลดและการใช้กลไกต่าง ๆในพืชชนิดต่าง ๆ อ อิสระ พบการเกิดพันธะโคเวเลนต์ ( คาดพิจารณา AU เป็นกรดอ่อน )อย่างไรก็ตาม pH ขึ้นอยู่กับผลประกอบกับมีปฏิสัมพันธ์ไฟฟ้าสถิตระหว่างประจุไฟฟ้าบวกอะมิโนกลุ่มที่อยู่บนผนังเซลล์และลบประจุชนิด− aucl4 ในที่สารละลาย . เป็นมูลค่าการกล่าวขวัญที่นี่ที่ ft-exafs การศึกษาน้อยรายงานในวรรณคดี ระบุผ่าน n-containing ลิแกนด์ผูกพันมากกว่า s-containing ทั้งหลายยืนยันว่า AU ( iii ) การสะสม เกี่ยวข้องกับ หลายตำแหน่งในการจับ [ 35 ] อีกคำถามที่เกิด
ไม่ว่าจะเป็นภายนอกหรือภายในเซลล์ลดลง เช่นในน้ำสารละลายหรือการสื่อภายในเยื่อหุ้มเซลล์ของพืช กลไกของการลดลงของ AU ยังไม่ทราบโดยเฉพาะไม่ว่าจะเป็นโลหะเป็นครั้งแรกลดลงและดูดซึมหรือซอสปรุงรสชนิดแรกที่ถูกดูดซับโดยผิวราก แล้วลดลง เมื่อโลหะผ่านรากเยื่อแผ่น โลหะ ย้าย acropetally ผ่านไซเลม อย่างไรก็ตามกระบวนการของไซเลมโหลดก็ยังคงไม่ชัดเจน บางการศึกษาแนะนำการใช้ atpases การขนส่งในไซเลม
การโหลดโดยการสร้างการไล่ระดับสีในเซลล์ไฟฟ้าเคมีเชิงลบ parenchymal [ 36 ] atpases จะรับผิดชอบไอออนมากมายนอกจากโปรตอน ( K , Na , แคลเซียม , และดังนั้น CU2 ) จะเป็นผู้รับผิดชอบ หรือการขนส่ง กรดอะมิโนต่าง ๆ ( เมื่อกรดอะมิโนเมทไธโอนีน ( , ) และกรดอินทรีย์ malic กรดซิตริก , กรด malonic ) ยังเชื่อว่าจะช่วยในไซเลมโหลด [ 37,38 ]โลหะที่แตกต่างกันได้รับการค้นพบที่จะขนส่งใช้ปฏิกิริยาที่ซับซ้อน
โลหะต่าง ๆอย่างละเอียด ส่วนใหญ่ผมจะถูกส่งเมื่อรวมและการเพิ่มเติมในการปรากฏตัวของ malic กรด [ 36,39 ] . อย่างไรก็ตาม , มันเป็นสิ่งสำคัญที่จะทราบว่า การวิเคราะห์ทางเคมีของไซเลม ของเหลวที่บ่งชี้สถานะของกรดอะมิโนที่แตกต่างกันสำหรับโลหะที่แตกต่างกันหรืออินทรีย์ และชนิดของพืชเมื่อนำโลหะที่ได้จะถูกเก็บไว้ที่พวกเขาจะแสดงผลไม่เป็นพิษและไม่ก้าวก่ายในเมแทบอลิซึมของพืชปกติ สองหลักของโลหะหนักในพืชที่มีสารไฟโตคีเลทินผูกพัน ( ชิ้น ) และ metallothionins . การปรากฏตัวของแผ่นซีดี–สรีรวิทยา คุณภาพซับซ้อน
ในแวคิวโอลเป็นเช่นตัวอย่างหนึ่งของความอดทนโลหะ [ 40 ] ในระดับเนื้อเยื่อโลหะจะถูกเก็บไว้ในตรง subepidermal เซลล์ เช่นผมใน coronatus เซนีซิโอ , และ apoplasts แวคิวโอลเป็นสถานที่โทรศัพท์มือถือสำหรับโลหะเมื่อแยกตัวออกมา [ 41,42 ] เกอร์ลิง และ ปีเตอร์สัน [ 6 ] ยืนยันการแสดงตนของ aucn สลายลงในใบและ aucl ในผนังเซลล์ เมื่อเร็วๆ นี้ อย่างไรก็ตามการปรากฏตัวของ AU เป็นแบบโลหะอนุภาคในหน่อของ MEDICAGO , ได้รับการตรวจสอบ [ 43 ] ในระดับโมเลกุล , จํานวนของยีนที่ได้รับการค้นพบไอออนของการลำเลียงในพืช เช่น ซิป ครอบครัวยีน ( Zn การดูดซึมโปรตีน ( MN ) nramp การดูดซึม ) และ atpases [ 42 ] แต่ยีนที่รับผิดชอบในการขนส่งผ่านเยื่อหุ้มเซลล์โนเบิลโลหะโรงงานได้ทำการ .