Department of Pharmacognosy, Facult

Department of Pharmacognosy, Faculty of Pharmacy, Mahidol
University, Bangkok, Thailand. Plant parts were selected
according to their use in traditional medicines. Plant material
was dried in a hot air oven at 45 °C and each sample was
powdered and extracted by maceration in ethanol. Extracts
were then filtered and the filtrates were evaporated at 50 °C.
2.2. Microorganisms and media
The test organisms used in this study were as follows:
S. aureus ATCC 25923 and clinical isolated MRSA. These
bacteria were obtained from Thailand National Institutes of
Health and Ramathibodi Hospital, Thailand. All media were
purchased from DIFCO (Detroit, MI).
2.3. Antibacterial susceptibility testing
2.3.1. Disc diffusion method
The stock solutions of each extract were prepared in
dimethylsulfoxide (DMSO). Bacteria were incubated in tryptic
soy broth (TSB) for 24 h at 37 °C in shaker and were adjusted
to yield approximately 108 CFU/ml. The inoculum was spread
on Mueller Hinton agar (MHA) and air-dried at room
temperature. A 6-mm sterile paper disc was impregnated
with test materials and the disc was placed on the agar. The
plates were left to dry, then were incubated at 37 °C for 24 h
under aerobic condition. All disc diffusion tests were
performed in triplicate and the antibacterial activity was
expressed as the mean of inhibition diameters (mm) produced
by the medicinal extracts.
2.3.2. Determination of minimum inhibitory and
bactericidal concentrations
The minimum inhibitory concentration (MIC) values for
the microorganisms were determined as sensitivity to the
extracts in microdilution assay. This experiment was performed
by the method of [5]. Briefly, the 96-well plates were
prepared by dispensing 190-μl broth and 10-μl inoculum into
each well. A 190-μl extract initially prepared at the concentration
of 5 mg/ml was added into the first well. Then, 200 μl
from their serial dilutions was transferred into eight consecutive
wells. The final volume in each well was 200 μl.
Microbial growth was determined by absorbance at 590 nm
using the microplate reader and determined the MBC from
the growth of bacteria in clear well on agar. The MIC was
defined as the lowest concentration of the compound to
inhibit the growth of microorganisms and the minimal
bactericidal concentration (MBC) was defined as the lowest
concentration of the compound to kill the microorganisms.
2.4. Phytochemical screening and bioautography
The crude extract was subjected to thin-layer chromatography
(TLC). Silica gel GF254 plates were developed with
CHCl3: EtOAc: MeOH (8:1:1). The componentswere separated
into a wide range of Rf values. Bioautographic assay allows the
detection of active components in a crude plant extract. This
study used the bioautographic technique to reveal the visually
observing clear zones of bacterial growth inhibition for
guiding the active compound of crude extracts. Bioautographywas
performed with a culture of bacteria, which showed a
good sensitivity to the extracts. Developed TLC plates were
carefully dried for complete removal of solvents, overlaid by
agar seeded, and left overnight at 37 °C. The plateswere run in
duplicate; one set was used as the reference chromatogram
and the other was used for bioautography. The areas of
inhibition, colored yellow, were compared with the Rf of the
related spots on the reference TLC plate.
2.5. Isolation and purification of α-mangostin
The G. mangostana crude extract was separated by gravity
column chromatography (Silica gel 60, Merck KGaA, Darmstadt,
Germany). Elution was started with 100% chloroform,
and changed then to mixture of hexane:chloroform, chloroform:
ethylacetate, ethylacetate:methanol and methanol. The
most active fraction was further purified by gravity column
chromatography on silica gel using hexane, diethylether, and
methanol under gradient condition. α-Mangostin was identified
by comparison with the published spectroscopic data [6].
3. Results and discussion
The antimicrobial activity of 17 medicinal plants against S.
aureus was investigated by disc diffusion method. The result
showed that Barleria lupulina, G. mangostana, Hibiscus
sabdariffa, Senna alata, Tagetes erecta, Psidium guajava extracts
could inhibit the growth of S. aureus standard strain. The
growth of MRSA was inhibited by G. mangostana, B. lupulina,
H. sabdariffa, P. guajava, Eupatorium odoratum, Lawsonia
inermis, S. alata and T. erecta. Among those, G. mangostana
could inhibit this microorganism with the highest inhibition
zone (Table 1). When the minimum inhibitory concentrations
of medicinal plants were determined by broth dilution
method, G. mangostana showed the strongest inhibitory effect
against both strains with the MIC value of 39 μg/ml.
E. odoratumwas ranked in the second for anti-Staphylococcus
activity (Table 2). The 16 clinical MRSA isolates were also
tested with G. mangostana extract. The data showed that most
clinical isolated strains were sensitive to G. mangostana at
Table 1
Antimicrobial sensitivity of medicinal plants determined by disc diffusion method
Medicinal plants Susceptibility ofmedicinal plants of bacteria (mm)
S. aureus S. epidermidis MRSA
Andrographis paniculata ND ND ND
Azadirachta indica ND ND ND
Barleria lupulina 11.50±0.50 ND 9.70±1.20
Carthamus tinctorius ND ND ND
Centella asiatica ND ND ND
Clinacanthus nutans ND ND ND
Cymbopogon citratus ND ND ND
Eupatorium odoratum ND ND 8.20±0.70
Garcinia mangostana 11.3±0.60 10.50±0.70 10.00±0.00
Hibiscus sabdariffa 8.50±0.50 19.70±0.60 9.50±1.80
Lawsonia inermis ND ND 7.90±1.30
Murdannia loriformis ND ND ND
Psidium guajava 7.30±0.80 ND 8.70±0.60
Senna alata 7.80±0.40 ND 7.70±0.60
Senna occidentalis ND ND ND
Senna siamea ND ND ND
Tagetes erecta 7.70±0.30 ND 7.00±0.20
The results were obtained from 3 separated experiments (±SD values).
ND: not detected.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ภาควิชาเภสัชเวท คณะเภสัชศาสตร์ มหิดลมหาวิทยาลัย กรุงเทพ ไทย เลือกชิ้นส่วนพืชตามการใช้ยาแบบดั้งเดิม วัสดุโรงงานไม่แห้งในอากาศร้อน เป็นเตาอบที่ 45 ° C แต่ละตัวอย่างผง และสกัด โดย maceration ในเอทานอล สารสกัดจากแล้วถูกกรอง และ filtrates ได้หายไปที่ 50 องศาเซลเซียส2.2. จุลินทรีย์และสื่อสิ่งมีชีวิตการทดสอบที่ใช้ในการศึกษานี้มีดังนี้:หมอเทศข้างลาย S. ATCC 25923 และทางคลินิกแยกต่างหาก MRSA เหล่านี้แบคทีเรียได้รับมาจากสถาบันชาติไทยของสุขภาพและโรงพยาบาลรามาธิบดี ไทย สื่อทั้งหมดได้ซื้อจาก DIFCO (ดีทรอยต์ MI)2.3 การทดสอบภูมิไวรับต้านเชื้อแบคทีเรีย2.3.1 การดิสก์วิธีการแพร่มีเตรียมแก้ไขปัญหาสต็อกของสารสกัดแต่ละในdimethylsulfoxide (DMSO) แบคทีเรียถูก incubated ใน trypticซุปเต้าหู้ (TSB) ใน 24 ชมที่ 37 ° C ในเชคเกอร์ และถูกปรับปรุงให้ผลผลิตประมาณ 108 CFU/ml Inoculum กระจายไปบน Mueller Hinton agar (MHA) และ air-dried ห้องอุณหภูมิ มม. 6 กระบอกกระดาษดิสก์ถูก impregnatedด้วยการทดสอบ วัสดุและดิสก์ถูกวางบน agar ที่แผ่นถูกปล่อยให้แห้ง แล้วก็ incubated ที่ 37 ° C ใน 24 ชมภายใต้สภาพแอโรบิก ทดสอบแพร่ดิสก์ทั้งหมดได้ดำเนินการใน triplicate และยาปฏิชีวนะที่มีกิจกรรมแสดงเป็นค่าเฉลี่ยของยับยั้งการสมมาตร (mm) ผลิตด้วยสารสกัดจากสมุนไพร2.3.2 การกำหนดขั้นต่ำที่ลิปกลอสไข และความเข้มข้น bactericidalค่าความเข้มข้นลิปกลอสไขต่ำสุด (MIC)จุลินทรีย์ถูกกำหนดความไวในการสารสกัดในทดสอบ microdilution ทำการทดลองนี้โดยวิธีการ [5] สั้น ๆ แผ่น 96-ดีได้โดยมหาศาลซุป 190 μl และ 10 μl inoculum ในแต่ละบ่อ 190-μl แยกเตรียมที่ความเข้มข้นเริ่มต้นของ 5 mg/ml ถูกเพิ่มเข้าไปในบ่อแรก แล้ว 200 μlจาก dilutions ประจำของพวกเขาถูกถ่ายโอนไปแปดอย่างบ่อ เล่มสุดท้ายในแต่ละบ่อมี 200 μlเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ถูกกำหนด โดย absorbance ที่ 590 nmใช้อ่าน microplate และกำหนดช่อง MBC จากการเจริญเติบโตของแบคทีเรียในบ่อล้างใน agar MIC ถูกกำหนดเป็นความเข้มข้นต่ำสุดของบริเวณการยับยั้งการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์และน้อยที่สุดความเข้มข้น bactericidal (ช่อง MBC) ถูกกำหนดเป็นสุดความเข้มข้นของสารประกอบเพื่อฆ่าจุลินทรีย์2.4 คัดกรองสารพฤกษเคมีและ bioautographyสารสกัดจากน้ำมันถูกยัดเยียดให้ chromatography ชั้นบาง(TLC) แผ่นเจล GF254 ได้รับการพัฒนาด้วยCHCl3: EtOAc: ทานอ (8:1:1) Componentswere แยกเป็นค่าช่วงกว้าง Rf Bioautographic วิเคราะห์ให้การการตรวจส่วนที่ใช้งานในการสกัดน้ำมันพืช นี้ศึกษาใช้เทคนิค bioautographic ให้เหมาะกับการมองเห็นสังเกตชัดเจนโซนของการยับยั้งการเจริญเติบโตของแบคทีเรียในแนะนำสารประกอบที่ใช้งานอยู่ของสารสกัดหยาบ Bioautographywasดำเนินการกับวัฒนธรรมของแบคทีเรีย ซึ่งแสดงให้เห็นการความไวที่ดีการสารสกัดจาก ได้พัฒนาแผ่น TLCแห้งอย่างระมัดระวังสำหรับลบหรือสารทำละลาย overlaid โดยสมบูรณ์agar seeded และทิ้งค้างคืนที่ 37 องศาเซลเซียส Plateswere ที่ทำงานซ้ำ ชุดหนึ่งใช้เป็น chromatogram อ้างอิงและอื่น ๆ ที่ใช้สำหรับ bioautography พื้นที่ของยับยั้ง สีเหลือง ถูกเปรียบเทียบกับ Rf ของจุดที่เกี่ยวข้องกับการอ้างอิงแผ่น TLC2.5 การแยกและทำให้บริสุทธิ์ของα-mangostinสารสกัดหยาบ mangostana กรัมถูกแยก โดยแรงโน้มถ่วงคอลัมน์ chromatography (ซิลิก้าเจล 60 ผล ดาร์ มสเยอรมนี) Elution เริ่มต้น ด้วยคลอโรฟอร์ม 100%และเปลี่ยนแล้วเป็นส่วนผสมของโพลี: คลอโรฟอร์ม คลอโรฟอร์ม:ethylacetate, ethylacetate:methanol และเมทานอล ที่เศษส่วนอยู่มากที่สุดที่บริสุทธิ์ตามแรงโน้มถ่วงคอลัมน์เพิ่มเติมchromatography บนเจลใช้เฮกเซน diethylether และเมทานอลภายใต้เงื่อนไขไล่ระดับ ระบุα Mangostinby comparison with เผยแพร่ด้านข้อมูล [6]3. ผลลัพธ์ และสนทนากิจกรรมการต้านจุลชีพของพืชยา 17 กับ s ได้หมอเทศข้างลายถูกตรวจสอบ โดยวิธีการแพร่ของดิสก์ ผลแสดงให้เห็นว่าเสลดพังพอน lupulina, mangostana กรัม กระเจี๊ยบเขียวมัลเบอร์รี่ เทศ ดาวเรือง Psidium guajava สารสกัดสามารถยับยั้งการเจริญเติบโตของ S. หมอเทศข้างลายต้องใช้มาตรฐาน ที่เจริญเติบโตของ MRSA ถูกห้าม โดย mangostana กรัม เกิด lupulinaH. เขียวมัลเบอร์รี่ P. guajava สมุนไพรบัว บก Lawsoniainermis, S. ชุมเห็ดเทศและต.เรือง หมู่เหล่า mangostana กรัมสามารถยับยั้งจุลินทรีย์นี้ มียับยั้งสูงสุดโซน (ตาราง 1) เมื่อความเข้มข้นที่ลิปกลอสไขต่ำสุดยาพืชถูกกำหนด โดยเจือจางซุปวิธี mangostana กรัมแสดงผลลิปกลอสไขแข็งแกร่งกับทั้งสองสายพันธุ์มีค่า MIC ของมล 39 μgการจัดอันดับในที่สองสำหรับต่อต้าน Staphylococcus odoratumwas E.กิจกรรม (ตารางที่ 2) 16 คลินิก MRSA ที่แยกได้แนะทดสอบกับสารสกัด mangostana กรัม ข้อมูลพบว่าส่วนใหญ่สายพันธุ์แยกทางคลินิกมีความไวต่อ mangostana กรัมที่ตารางที่ 1ความไวต้านจุลชีพของพืชยาที่กำหนด โดยวิธีการแพร่ของดิสก์พืชสมุนไพรพืช ofmedicinal ภูมิไวรับของเชื้อแบคทีเรีย (mm)S. หมอเทศข้างลาย S. epidermidis MRSAทะลาย ND ND NDสะเดา ND ND NDเสลดพังพอน lupulina 11.50±0.50 ND 9.70±1.20ดอกยา ND ND NDใบตัล ND ND NDClinacanthus nutans ND ND NDตะไคร้ citratus ND ND NDยาแคปซูลหญ้าดอกขาว ND ND 8.20±0.70เนีย mangostana 11.3±0.60 10.50±0.70 10.00±0.00กระเจี๊ยบเขียวมัลเบอร์รี่ 8.50±0.50 19.70±0.60 9.50±1.80Lawsonia inermis ND ND 7.90±1.30แคปซูล ND ND NDPsidium guajava 7.30±0.80 ND 8.70±0.607.70±0.60 7.80±0.40 ND ชุมเห็ดเทศแหล่แหล่ occidentalis ND ND NDแหล่ siamea ND ND NDดอกดาวเรือง 7.70±0.30 ND 7.00±0.20ผลได้รับจากการทดลองแยก 3 (ค่า ±SD)ND: ไม่พบ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ภาควิชาเภสัชเวทคณะเภสัชศาสตร์มหิดล
มหาวิทยาลัย, Bangkok, Thailand ส่วนต่างๆของพืชได้รับการคัดเลือก
ตามการใช้งานของพวกเขาในยาแผนโบราณ วัสดุพืช
แห้งในเตาอบลมร้อนที่อุณหภูมิ 45 องศาเซลเซียสและแต่ละตัวอย่างเป็น
ผงและสกัดด้วยเอทานอลในยุ่ย สารสกัด
ถูกกรองแล้วและ filtrates ถูกระเหยที่ 50 ° C.
2.2 จุลินทรีย์และสื่อ
มีชีวิตทดสอบที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้มีดังนี้
เอส aureus ATCC 25923 และ MRSA แยกทางคลินิก เหล่านี้
แบคทีเรียที่ได้รับจากประเทศไทยสถาบันแห่งชาติของ
สุขภาพและโรงพยาบาลรามาธิบดี, ประเทศไทย สื่อทั้งหมดถูก
ซื้อมาจาก DIFCO (Detroit, MI).
2.3 การทดสอบความไวต่อการต้านเชื้อแบคทีเรีย
2.3.1 วิธีการแพร่ Disc
โซลูชั่นหุ้นของสารสกัดแต่ละได้จัดทำขึ้น
dimethylsulfoxide (DMSO) แบคทีเรียที่ถูกบ่มใน tryptic
น้ำซุปถั่วเหลือง (TSB) เป็นเวลา 24 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 37 ° C ในเครื่องปั่นและมีการปรับ
ให้ผลผลิตประมาณ 108 CFU / ml หัวเชื้อกระจาย
ใน Mueller Hinton agar (หมา) และอากาศแห้ง ณ ห้อง
อุณหภูมิ 6 มมแผ่นกระดาษหมันถูกฉาบไว้
ด้วยวัสดุที่มีการทดสอบและแผ่นดิสก์ถูกวางลงบนอาหารเลี้ยงเชื้อ
แผ่นถูกทิ้งให้แห้งแล้วบ่มที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง
ภายใต้เงื่อนไขแอโรบิก ทั้งหมดการทดสอบการแพร่แผ่นถูก
ดำเนินการในเพิ่มขึ้นสามเท่าและฤทธิ์ต้านเชื้อแบคทีเรียที่ถูก
แสดงเป็นค่าเฉลี่ยของเส้นผ่าศูนย์กลางยับยั้ง (มม) ผลิต
จากสารสกัดสมุนไพร.
2.3.2 ความมุ่งมั่นของการยับยั้งและต่ำสุด
เข้มข้นของเชื้อแบคทีเรีย
ความเข้มข้นต่ำสุด (MIC) ค่าสำหรับ
จุลินทรีย์ที่ได้รับการพิจารณาเป็นความไวต่อ
สารสกัดในการทดสอบ microdilution การทดลองนี้ได้ดำเนินการ
โดยวิธีการของ [5] สั้น ๆ , แผ่น 96 หลุมที่ถูก
จัดทำขึ้นโดยจ่ายน้ำซุป 190 ไมโครลิตรและหัวเชื้อ 10 ไมโครลิตรลงใน
แต่ละดี สารสกัดจาก 190 ไมโครลิตรเริ่มจัดทำที่มีความเข้มข้น
5 mg / ml ถูกเพิ่มเข้าไปในครั้งแรกได้ดี จากนั้น 200 ไมโครลิตร
จากเจือจางอนุกรมของพวกเขาถูกย้ายออกเป็นแปดติดต่อกัน
บ่อ เล่มสุดท้ายในแต่ละดีเป็น 200 ไมโครลิตร.
การเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ถูกกำหนดโดยการดูดกลืนแสงที่ 590 นาโนเมตร
โดยใช้ผู้อ่าน microplate และกำหนดช่อง MBC จาก
การเจริญเติบโตของแบคทีเรียในดีที่ชัดเจนเกี่ยวกับวุ้น MIC ได้รับการ
กำหนดให้เป็นความเข้มข้นต่ำสุดของสารที่จะ
ยับยั้งการเจริญเติบโตของเชื้อจุลินทรีย์และน้อยที่สุด
ความเข้มข้นของเชื้อแบคทีเรีย (MBC) ถูกกำหนดเป็นต่ำสุด
เข้มข้นของสารฆ่าเชื้อจุลินทรีย์.
2.4 การตรวจคัดกรองพฤกษเคมีและ bioautography
สารสกัดหยาบที่ถูกยัดเยียดให้โคบางชั้น
(TLC) ซิลิก้าเจลแผ่น GF254 ได้รับการพัฒนาด้วย
CHCl3: EtOAc: เมธานอล (8: 1: 1) componentswere แยกออก
เป็นหลากหลายของค่า Rf ทดสอบ Bioautographic ช่วยให้
การตรวจสอบของส่วนประกอบที่ใช้งานอยู่ในสารสกัดจากพืชดิบ นี้
การศึกษาที่ใช้เทคนิค bioautographic เผยให้เห็นสายตา
สังเกตโซนที่ชัดเจนของการยับยั้งการเจริญเติบโตของแบคทีเรียสำหรับ
แนวทางสารประกอบที่ใช้งานของสารสกัดหยาบ Bioautographywas
ดำเนินการกับวัฒนธรรมของเชื้อแบคทีเรียซึ่งแสดงให้เห็น
ความไวที่ดีในการสกัด เพลต TLC พัฒนาได้รับการ
อบแห้งอย่างระมัดระวังสำหรับการกำจัดที่สมบูรณ์ของตัวทำละลายที่ซ้อนทับโดย
เมล็ดวุ้นและทิ้งค้างคืนที่ 37 องศาเซลเซียส plateswere ทำงานใน
ที่ซ้ำกัน; ชุดหนึ่งถูกใช้เป็น chromatogram อ้างอิง
และอื่น ๆ ที่ใช้สำหรับการ bioautography พื้นที่ของ
การยับยั้ง, สีเหลือง, ถูกเมื่อเทียบกับ Rf ของ
จุดที่เกี่ยวข้องกับแผ่น TLC อ้างอิง.
2.5 การแยกและการทำให้บริสุทธิ์ของα-เปลือกมังคุด
G. mangostana สารสกัดหยาบถูกแยกออกโดยแรงโน้มถ่วง
คอลัมน์ (ซิลิกาเจล 60, Merck KGaA, Darmstadt,
เยอรมนี) elution เริ่มต้นด้วยคลอโรฟอร์ม 100%
แล้วเปลี่ยนไปเป็นส่วนผสมของเฮกเซน: คลอโรฟอร์มคลอโรฟอร์ม:
Ethylacetate, Ethylacetate: เมทานอลและเมทานอล
ส่วนที่ใช้งานมากที่สุดคือให้บริสุทธิ์โดยแรงโน้มถ่วงคอลัมน์
โครมาบนซิลิกาเจลโดยใช้เฮกเซน diethylether และ
เมทานอลภายใต้เงื่อนไขการไล่ระดับสี α-แมงโกสตินถูกระบุ
โดยเปรียบเทียบกับข้อมูลสเปกโทรสโกตีพิมพ์ [6].
3 ผลและอภิปราย
ฤทธิ์ต้านจุลชีพของพืชสมุนไพร 17 กับเอ
เรียสได้รับการตรวจสอบโดยวิธีการแพร่กระจายแผ่นดิสก์ ผล
การศึกษาพบว่าเสลดพังพอน, G. mangostana, Hibiscus
sabdariffa มะขามแขกชุมเห็ดเทศ, ดาวเรือง, Psidium guajava สารสกัด
สามารถยับยั้งการเจริญเติบโตของเชื้อ S. aureus สายพันธุ์มาตรฐาน
การเจริญเติบโตของเชื้อ MRSA ถูกยับยั้งโดยจี mangostana บี lupulina,
เอช sabdariffa, P. guajava, Eupatorium odoratum, Lawsonia
inermis เอชุมเห็ดเทศและ T. erecta ในบรรดากรัม mangostana
สามารถยับยั้งจุลินทรีย์ที่นี้ด้วยการยับยั้งสูงสุด
โซน (ตารางที่ 1) เมื่อความเข้มข้นของการยับยั้งขั้นต่ำ
ของพืชสมุนไพรที่ถูกกำหนดโดยการเจือจางน้ำซุป
วิธี G. mangostana แสดงให้เห็นผลการยับยั้งที่แข็งแกร่ง
กับทั้งสองสายพันธุ์ที่มีค่า MIC ของ 39 ไมโครกรัม / มล.
อี odoratumwas การจัดอันดับในครั้งที่สองสำหรับการต่อต้านเชื้อ Staphylococcus
กิจกรรม (ตารางที่ 2) 16 สายพันธุ์เชื้อ MRSA คลินิกยังมี
การทดสอบกับสารสกัดจาก G. mangostana ข้อมูลที่แสดงให้เห็นว่าส่วนใหญ่
สายพันธุ์ที่แยกทางคลินิกมีความไวต่อ G. mangostana ที่
ตารางที่ 1
ความไวยาต้านจุลชีพของพืชสมุนไพรที่กำหนดโดยวิธีการแพร่กระจายแผ่น
พืชสมุนไพรพืช ofmedicinal ไวของเชื้อแบคทีเรีย (มม)
เอส เชื้อ S. aureus epidermidis MRSA
ฟ้าทะลายโจร ND ND ND
Azadirachta indica ND ND ND
เสลดพังพอน 11.50 ± 0.50 9.70 ± ND 1.20
Carthamus tinctorius ND ND ND
ใบบัวบก ND ND ND
ยาหม่องเสลดพังพอน ND ND ND
ตะไคร้ ND ND ND
Eupatorium odoratum ND ND 8.20 ± 0.70
Garcinia mangostana 11.3 ± 0.60 10.50 ± 0.70 10.00 ± 0.00
Hibiscus sabdariffa 8.50 ± 0.50 19.70 ± 0.60 9.50 ± 1.80
Lawsonia inermis ND ND 7.90 ± 1.30
Murdannia loriformis ND ND ND
ฝรั่ง 7.30 ± 0.80 8.70 ± ND 0.60
ชุมเห็ดเทศ 7.80 ± 0.40 ND 7.70 ± 0.60
ชุมเห็ดเล็ก ND ND ND
ขี้เหล็ก ND ND ND
ดาวเรือง 7.70 ± 0.30 7.00 ± ND 0.20
ผลที่ได้รับจากการทดลองแยก 3 (±ค่า SD).
ND: ตรวจไม่พบ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ภาควิชาเภสัชเวท คณะเภสัชศาสตร์ มหาวิทยาลัยมหิดล
มหาวิทยาลัย , กรุงเทพ , ประเทศไทย ส่วนของพืชที่
ตามการใช้ในยาแผนโบราณ .
วัสดุพืชแห้งในตู้อบลมร้อนที่ 45 ° C และแต่ละตัวอย่าง
ผงและสกัดด้วยระยะเวลาในเอทานอล สารสกัดจาก
แล้วกรองและระเหยสารละลายอยู่ที่ 50 องศา
2.2 . จุลินทรีย์และสื่อ
ทดสอบระบบที่ใช้ในการศึกษามีดังนี้
S . aureus ATCC 25923 และคลินิกแยก MRSA แบคทีเรียเหล่านี้ได้รับจากประเทศไทย

สถาบันสุขภาพและโรงพยาบาลรามาธิบดี , ไทย สื่อทั้งหมดเป็น
ซื้อจาก difco ( Detroit , MI ) .
2.3 ยับยั้งแบคทีเรียทดสอบความไว
2.3.1 . แผ่นกระจายหุ้นโซลูชั่นของแต่ละวิธี

เตรียมสารสกัดในไดเมทิลซัลฟอกไซด์ ( DMSO ) แบคทีเรียถูกบ่มในน้ำซุปถั่วเหลืองอาหาร
( TSB ) เป็นเวลา 24 ชั่วโมงที่ 37 °องศาเซลเซียสในเครื่องปั่นและปรับ
ผลผลิตประมาณ 108 CFU / ml ได้แพร่กระจายเชื้อในเด็ก
มุลเลอร์ ( MHA ) และอากาศแห้งที่อุณหภูมิห้อง

เป็นกระดาษแผ่น 6-mm หมันเป็น impregnated
กับวัสดุทดสอบและแผ่นดิสก์ที่ถูกวางไว้บนอาหารเลี้ยงเชื้อ
แผ่นถูกทิ้งให้แห้งแล้วบ่มที่ 37 ° C เป็นเวลา 24 ชั่วโมงที่
ภายใต้สภาวะแอโรบิก . การทดสอบทั้งหมดกระจายดิสก์ถูก
ดำเนินการทั้งสามใบ และฤทธิ์ต้านเชื้อแบคทีเรียถูก
แสดงเป็นค่าเฉลี่ยของขนาดเส้นผ่านศูนย์กลาง ( มม. ) และผลิตจากสารสกัดสมุนไพร
.
2.3.2 . กำหนดขั้นต่ำและความเข้มข้นที่ฆ่าเชื้อแบคทีเรียยับยั้ง

( MIC ) ค่าความเข้มข้นต่ำสุดในการยับยั้ง
จุลินทรีย์ที่ถูกกำหนดโดยไว
microdilution สารสกัดในการทดสอบ การทดลองนี้กระทำ
โดยวิธี [ 5 ] สั้น ๆ , 96 ดีจานถูก
เตรียมจ่ายยา 190 - ซุปผมμและ 10 - μผมเชื้อใน
แต่ละอย่างดี 190 - μผมเริ่มเตรียมสารสกัดที่ความเข้มข้น
5 มก. / มล. เพิ่มเป็นครั้งแรกด้วย แล้ว 200 μ
lจากวิธีการของพวกเขาถูกถ่ายโอนลงในบ่อต่อเนื่องติดต่อกัน 8

เล่มสุดท้ายในแต่ละดี 200 μ L .
จากการถูกกำหนดโดยการดูดกลืนแสงที่ 590 นาโนเมตรโดยใช้เครื่องอ่าน และกำหนดพื้นที่ภาคเหนือของประเทศไทย

MBC จากการเจริญเติบโตของแบคทีเรียในชัดเจนได้ดีในอาหารเลี้ยงเชื้อ ไมค์ถูกกำหนดเป็นค่า


ความเข้มข้นของสารประกอบที่ยับยั้งการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์และน้อยที่สุด
ความเข้มข้นที่ฆ่าเชื้อ ( MBC ) ถูกกำหนดเป็นค่าความเข้มข้นของสารประกอบ
เพื่อฆ่าจุลินทรีย์
2.4 . การคัดกรองและสารพฤกษเคมี bioautography
สกัดภายใต้เทคนิค TLC พบ
( TLC ) ซิลิกาเจล gf254 แผ่นถูกพัฒนาด้วย
chcl3 : etoac : เมทิลแอลกอฮอล์ ( 8:1:1 ) การ componentswere แยก
ลงในช่วงกว้างของ RF ค่า วิธีช่วยให้
bioautographicการใช้สารสกัดจากพืช ส่วนประกอบในดิบ การศึกษานี้ใช้เทคนิค bioautographic เปิดเผย

สังเกตสายตาของเคลียร์โซนยับยั้งการเจริญเติบโตแบคทีเรียเพื่อ
ชี้นำสารประกอบที่ใช้งานของสารสกัด . bioautographywas
ดำเนินการกับวัฒนธรรมของแบคทีเรีย ซึ่งพบว่ามีความไวดี
กับสารสกัด การพัฒนาแผ่น TLC คือ
แห้งอย่างระมัดระวังสำหรับการกำจัดที่สมบูรณ์ของตัวทำละลาย โดย
วุ้นหุ้มเมล็ด และไปค้างคืนที่ 37 ° C plateswere วิ่ง
ซ้ำ ; ชุดหนึ่งถูกใช้เป็นอ้างอิง chromatogram
และอื่น ๆ ใช้ bioautography . พื้นที่ของ
ยับยั้ง , สีเหลือง , เปรียบเทียบกับ RF
เกี่ยวข้องจุดในการอ้างอิง TLC plate .
2.5 การแยกและการทำให้บริสุทธิ์ของแอลฟาแมงโกสติน
Gเกิดสารสกัดแยกด้วยแรงโน้มถ่วง
คอลัมน์โครมาโตกราฟฟี ( ซิลิกาเจล 60 , กระตุ้นการทดาร์มสตัดท์เยอรมนี , ,
) ได้มาเริ่มกับ 100% คลอโรฟอร์ม
เปลี่ยนแล้วส่วนผสมของเฮกเซนคลอโรฟอร์ม , เอธิลอะซีเตท :
: คลอโรฟอร์ม , เอธิลอะซีเตต และเมทานอลเมทานอล
ใช้งานมากที่สุดส่วนเพิ่มเติมบริสุทธิ์โดยคอลัมน์โครมาโทกราฟีบนซิลิกาเจล
แรงโน้มถ่วงโดยใช้เฮกเซนไดเ ธิลอีเธอร์ , ,
เมทานอลภายใต้การและเงื่อนไข แอลฟาแมงโกสตินถูกระบุ
โดยเปรียบเทียบกับข้อมูลที่เผยแพร่ทาง [ 6 ] .
3 ผลและการอภิปราย
กิจกรรมการยับยั้ง 17 สมุนไพรกับ S .
) ถูกตรวจสอบโดยวิธีการแพร่แผ่นดิสก์ ผลพบว่า barleria lupulina
, G . เกิด , ชบา
ของชุมเห็ดเทศ , ดาวเรือง , ฝรั่ง
, สารสกัดสามารถยับยั้งการเจริญเติบโตของเชื้อ S . aureus มาตรฐาน .
1 โดย ยับยั้งการเจริญเติบโตของโรค พ. lupulina
h , ตรวจสอบ , หน้าอาจ Eupatorium odoratum เทียนกิ่ง
, , 90 , S . ชุมเห็ดเทศและ ต. erecta . กลุ่ม จี ที่สามารถยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์เกิด

กับการยับยั้งสูงสุด ( ตารางที่ 1 ) เมื่อความเข้มข้นต่ำสุดที่ยับยั้ง
พืชสมุนไพรที่ถูกกำหนดโดยวิธี broth dilution
, G )
ยับยั้งผลกระทบที่เกิดจากทั้งสองสายพันธุ์โดยมีค่า MIC เท่ากับ 39 μกรัม / มล.
E odoratumwas อันดับที่สองในกิจกรรมต่อต้าน Staphylococcus
( ตารางที่ 2 ) 16 คลินิกเชื้อ MRSA ยัง
ทดสอบกับ G . เกิดสารสกัด ข้อมูล พบว่า ส่วนใหญ่
คลินิกแยกสายพันธุ์มีความไว .ตารางที่ 1

เกิดการยับยั้งความไวของพืชสมุนไพรที่กำหนดโดยดิสก์กระจายวิธี
สมุนไพรไว ofmedicinal พืชแบคทีเรีย ( มม. )
S . aureus S
1 อาหารฟ้าทะลายโจร ND และ ND
Azadirachta indica และ ND ND
barleria lupulina 11.50 ± 0.50 ND 9.70 ± 1.20
P
carthamus nd nd nd บัวบก ND และ ND
สะบ้ามอญ nd nd nd
ตะไคร้ citratus nd nd nd
Eupatorium odoratum nd nd 8.20 ± 0.70
เปลือกมังคุด 11.3 ± 0.60 10.50 ± 0.70 10.00 ± 0.00
ชบาของ 19.70 ± 8.50 ± 0.50 0.60 9.50 ± 1.80
เทียนกิ่ง 90 ครั้ง± 1.30
murdannia 7.90 และใน ND และ ND
ฝรั่ง 7.30 ± 0.80 และ 8.70 ± 0.60
ชุมเห็ดเทศ 7.80 ± 0.40 และ 7.70 ± 0.60
เซนนา occidentalis ND และ ND
ขี้เหล็ก nd nd nd
ดาวเรือง 7.70 ± 0.30 และ 7.00 ± 0.20
ผลลัพธ์ที่ได้จากการทดลอง ( 3 แยก± SD ค่า )
A : ไม่พบ .