1. Identification of the agent
1.1. Virus isolation (the prescribed test for international trade)
Virus isolation is the “gold standard” but laborious and time insensitive, used primarily for diagnosis of
first clinical case and to obtain virus isolated for further laboratory analysis.
Samples taken from dead birds should include intestinal contents (faeces) or cloacal swabs and
oropharyngeal swabs. Samples from trachea, lungs, air sacs, intestine, spleen, kidney, brain, liver and
heart should also be collected and processed either separately or as a pool.
Samples from live birds should include both oropharyngeal and cloacal swabs. To avoid harming them,
swabbing of small delicate birds should be done with the use of especially small swabs that are usually
commercially available and intended for use in human paediatrics. Where these are not available, the
collection of fresh faeces may serve as an alternative. Similar swab samples can be pooled (i.e. cloacal
swabs with cloacal swabs, oropharyngeal swabs with oropharyngeal swabs), and most commonly
pooling of 5 or 11 samples, but specific swab types should be used (Spackman et al., 2013).
The samples should be placed in isotonic phosphate-buffered saline (PBS), pH 7.0–7.4 with antibiotics
or a solution containing protein and antibiotics. The antibiotics can be varied according to local
conditions, but could be, for example, penicillin (2000 units/ml), streptomycin (2 mg/ml), gentamycin
(50 µg/ml) and mycostatin (1000 units/ml) for tissues and oropharyngeal swabs, but at five-fold higher
concentrations for faeces and cloacal swabs. It is important to readjust the pH of the solution to
pH 7.0–7.4 following the addition of the antibiotics. It is recommended that a solution for transport of
the swabs should contain protein to stabilise the virus (e.g. brain–heart infusion, up to 5% [v/v] cattle
serum, 0.5% [w/v] bovine albumen or similar commercially available transport media). Faeces and
finely minced tissues should be prepared as 10–20% (w/v) suspensions in the antibiotic solution.
Suspensions should be processed as soon as possible after incubation for 1–2 hours at room
temperature. When immediate processing is impracticable, samples may be stored at 4°C for up to
4 days. For prolonged storage, diagnostic samples and isolates should be kept at –80°C. Repeated
freezing and thawing should be avoided.
1. Identification of the agent
1.1. Virus isolation (the prescribed test for international trade)
Virus isolation is the “gold standard” but laborious and time insensitive, used primarily for diagnosis of
first clinical case and to obtain virus isolated for further laboratory analysis.
Samples taken from dead birds should include intestinal contents (faeces) or cloacal swabs and
oropharyngeal swabs. Samples from trachea, lungs, air sacs, intestine, spleen, kidney, brain, liver and
heart should also be collected and processed either separately or as a pool.
Samples from live birds should include both oropharyngeal and cloacal swabs. To avoid harming them,
swabbing of small delicate birds should be done with the use of especially small swabs that are usually
commercially available and intended for use in human paediatrics. Where these are not available, the
collection of fresh faeces may serve as an alternative. Similar swab samples can be pooled (i.e. cloacal
swabs with cloacal swabs, oropharyngeal swabs with oropharyngeal swabs), and most commonly
pooling of 5 or 11 samples, but specific swab types should be used (Spackman et al., 2013).
The samples should be placed in isotonic phosphate-buffered saline (PBS), pH 7.0–7.4 with antibiotics
or a solution containing protein and antibiotics. The antibiotics can be varied according to local
conditions, but could be, for example, penicillin (2000 units/ml), streptomycin (2 mg/ml), gentamycin
(50 µg/ml) and mycostatin (1000 units/ml) for tissues and oropharyngeal swabs, but at five-fold higher
concentrations for faeces and cloacal swabs. It is important to readjust the pH of the solution to
pH 7.0–7.4 following the addition of the antibiotics. It is recommended that a solution for transport of
the swabs should contain protein to stabilise the virus (e.g. brain–heart infusion, up to 5% [v/v] cattle
serum, 0.5% [w/v] bovine albumen or similar commercially available transport media). Faeces and
finely minced tissues should be prepared as 10–20% (w/v) suspensions in the antibiotic solution.
Suspensions should be processed as soon as possible after incubation for 1–2 hours at room
temperature. When immediate processing is impracticable, samples may be stored at 4°C for up to
4 days. For prolonged storage, diagnostic samples and isolates should be kept at –80°C. Repeated
freezing and thawing should be avoided.
การแปล กรุณารอสักครู่..
1 . รหัสของตัวแทน
1.1 . การแยกเชื้อไวรัส ( กำหนดทดสอบการค้าระหว่างประเทศ )
ไวรัสที่แยกได้คือ " มาตรฐานทอง " แต่ลําบากและเฉยชา ใช้หลักการวินิจฉัย
กรณีคลินิกแรก และได้รับเชื้อไวรัสที่แยกได้ สำหรับการวิเคราะห์ทางห้องปฏิบัติการเพิ่มเติม
ตัวอย่างจากนกตายควรรวมเนื้อหาลำไส้ ( อุจจาระ ) หรือ swabs และ
cloacaloropharyngeal swabs . ตัวอย่างจากหลอดลม ปอด ถุงลม ไส้ ม้าม ไต สมอง ตับ และหัวใจ
ควรเก็บรวบรวมและประมวลผลให้แยกกัน หรือสระว่ายน้ำ
ตัวอย่างจากชีวิตนกควรรวมทั้ง oropharyngeal cloacal swabs และ . เพื่อหลีกเลี่ยงการทำร้ายพวกเขา
ซับมือของนกละเอียดอ่อนเล็ก ๆควรทำ ด้วยการใช้สำลีป้ายขนาดเล็กที่มักจะ
โดยเฉพาะพร้อมใช้งานในเชิงพาณิชย์ และมีวัตถุประสงค์เพื่อใช้ในกุมารเวชศาสตร์ ของมนุษย์ ที่เหล่านี้จะไม่สามารถใช้ได้ ,
คอลเลกชันของอุจจาระสดอาจเป็นทางเลือก ตัวอย่างป้ายที่คล้ายกันสามารถรวม ( เช่น cloacal
swabs กับ cloacal swabs oropharyngeal swabs กับ oropharyngeal swabs ) และมัก
รวม 5 หรือ 11 ตัวอย่าง แต่ประเภทที่เฉพาะเจาะจงควรใช้ไม้กวาด ( สแป็กเมิ่น et al . ,
) )ตัวอย่างที่ควรเก็บไว้ในฟอสเฟตบัฟเฟอร์ไอโซน้ำเกลือ ( PBS ) , pH 7.0 ) 7.4 กับยาปฏิชีวนะ
หรือสารละลายที่มีโปรตีน และให้ยาปฏิชีวนะ ยาปฏิชีวนะสามารถแตกต่างกันตามสภาพท้องถิ่น
, แต่อาจจะมี เช่น เพนนิซิลิน ( 2000 หน่วย / มิลลิลิตร สเตรปโตมัยซิน ( 2 mg / ml ) เจนตาไมซิน
( 50 µกรัม / มิลลิลิตร ) และไมโครสตาติน ( 1000 หน่วยต่อมิลลิลิตร ) ในเนื้อเยื่อและ oropharyngeal swabsแต่ที่ความเข้มข้นสูงกว่า
5 พับเสีย cloacal swabs และ . มันเป็นสิ่งสำคัญเพื่อปรับ pH ของสารละลาย
pH 7.0 – 7.4 ต่อไปนี้นอกเหนือจากยาปฏิชีวนะ ขอแนะนำให้โซลูชันสำหรับการขนส่งของ
swabs ควรประกอบด้วยโปรตีนเสถียรภาพไวรัส ( เช่น สมอง หัวใจ และฉีดได้ถึง 5 % [ 5 / 5 ] โค
เซรั่ม , 0% [ 5 w / v ] ไข่ขาววัวหรือคล้ายกันสื่อการขนส่งในเชิงพาณิชย์ ) อุจจาระและ
สับละเอียด ควรเตรียมกระดาษทิชชู่เป็น 10 - 20 % ( w / v ) ที่แขวนลอยในสารละลายปฏิชีวนะ .
ช่วงล่างควรจะดำเนินการโดยเร็วที่สุด หลังจากบ่มเป็นเวลา 1 - 2 ชั่วโมง ที่อุณหภูมิห้อง
เมื่อการประมวลผลทันทีคือเหลือวิสัย ตัวอย่างอาจจะเก็บไว้ที่ 4 ° C ถึง
4 วันนานกระเป๋า , ตัวอย่างการวินิจฉัยและแยกจะถูกเก็บไว้ที่ - 80 องศา ซ้ำ
การแช่แข็งและละลายควรหลีกเลี่ยง
การแปล กรุณารอสักครู่..