was repeated with acetone till the

was repeated with acetone till the residue was colourless. The filtered contents were taken in a separating funnel along with 50 ml of diethyl ether. Water was added 5–10 times to remove the acetone layer until the ether layer is free of acetone. The ether extract was transferred to a 100 ml volumetric flask and made up the volume with ether. Anhydrous Na2SO4 was added to remove the traces of moisture. The OD (optical density) was measured using spectrophotometer (Shimadzu 1609, Tokyo, Japan) at 660 and 642.5 nm. The total chlorophyll was calculated using following formula:
Total chlorophyll ðmg=lÞ ¼ ð7:12 Ã OD f660 nmgÞ þ ð16:8 Ã OD f642:5 nmgÞ
2.2.6. Carotenoids
Total carotenoids (TC) were determined according to the procedure described by Kuti (2004). A 5 g of sample was extracted with a solvent mixture containing 40 ml acetone and 60 ml hexane until the residue became colourless. The homogenate was filtered through Whatman No. 4 filter paper and transferred to a separating funnel. Fifty millilitres of hexane was added, and acetone was separated from the extract by repeated washings with distilled water and 5% NaCl solution. The upper hexane layer with extracted pigment was shifted to a 100 ml volumetric flask, and the volume is made up with hexane. The absorbance was measured using spectrophotometer (Shimadzu 1609, Tokyo, Japan) at 450 nm with hexane as blank. The total carotenoids were calculated using the following formula:
Total carotenoids ðmg=100 gÞ
¼ A 450Ãvolume made up ðmlÞÃ1000 2500Ãsample weight ðgÞ
2.2.7. Ascorbic acid
Ascorbic acid was measured as per the method described by Ranganna (1999). Ten grams of sample was macerated using 3% meta-phosphoric acid and volume was made up to 100 ml with meta-phosphoric acid. An aliquot of 10 ml of the extract was taken and titrated with the standard dye (2,6-dichlor- ophenol indophenol) till pale pink end-point was observed which persisted for 15–20 s.
2.2.8. Total phenolics
Ten grams of macerated sample extract was diluted to 100 ml with water and 1 ml of Folin–Ciocalteu reagent was added to 5 ml of this aliquot. After 6 min, 10 ml of Na2CO3 (7%) was added and the volume was made up to 25 ml with distilled water followed by incubation at room temperature for 90 min. The absorbance was measured at 750 nm by spectrophotom- eter (Shimadzu 1609, Tokyo, Japan) using gallic acid as standard and distilled water as blank (Singleton & Rosi, 1965).
2.2.9. Total flavonoids
The sample extract of 15 g was dissolved in water and the volume was made up to 100 ml with distilled water. 5 ml of this aliquot was taken and 0.3 ml of NaNO2 (5%) was added, kept for 5 min followed by addition of 0.3 ml of AlCl3 (10%), again
kept for 6 min followed by addition of 2 ml sodium hydroxide (1 N) solution. Volume was made up to 10 ml with distilled water and absorbance was measured at 510 nm by spectro- photometer (Shimadzu 1609, Tokyo, Japan) using catechin as standard and distilled water as blank (Zhishen, Mengcheng, & Jianming, 1999).
2.2.10. Antioxidant activity
The antioxidant activity was determined by DPPH method described by Blois (1958). One gram of sample was taken along with 29 ml methanol, shaken vigorously, and centrifuged at 5000 rpm for 15 min at 4 8C. To that filtrate 0.5 ml DPPH (Diphenyl picrylic hydrazine) reagent was added and incubat- ed for 45 min in dark. Methanol was taken as blank and 3 ml methanol with 0.5 ml DPPH reagent was taken as control. The absorbance was measured using spectrophotometer (Shi- madzu 1609, Tokyo, Japan) at 517 nm. The antioxidant activity was calculated using the following formula: Antioxidant activityð%Þ ¼ ðODcontrol À ODsampleÞ Â 100 ODcontrol
2.2.11. Capsaicin content
The capsaicin content of chillies was measured by using spectrophotometric method, reported by Sadasivam and Manickam (1997) with slight modifications. Two gram of green chilli paste was taken in 100 ml ethyl acetate and allowed it to stand for 24 h, from that an extract of 1 ml was taken and made the volume to 5 ml using ethyl acetate, to that extract, 0.5 ml of vanadium oxy chloride (Sigma Aldrich, India) solution (vanadium oxychloride 0.5% in ethyl acetate) was added just before taking the absorbance of the sample. Pure capsaicin (0.01%) in ethyl acetate (10 mg in 100 ml) was taken as standard. The absorbance of the blank, standard and sample was read at 720 nm. A colour change was observed after the addition of vanadium oxychloride, the extract changed from green to yellow colour. The readings were taken when the extract was in green colour.
2.2.12. Keeping quality and shelf life
The keeping quality and shelf-life of chillies were evaluated on the basis of sensory attributes in terms of visual sensory score and physiological loss in weight.
2.2.13. Statistical analysis
All measurements were performed in triplicates for different physico-chemical parameters and the data obtained were analyzed statistically for analysis of variance (ANOVA) using completely randomized design (CRD) and least significant difference (LSD) at p < 0.05 using Statistica 7 software (StatSoft, Tulsa, OK, USA).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

มีซ้ำ ด้วยอะซีโตนจนสารตกค้างมีสีใส เนื้อหา filtered ที่ถ่ายในกรวยแยกด้วย 50 ml ของอีเทอร์ diethyl น้ำเพิ่ม 5-10 ครั้งเอาอะซิโตนชั้นจนชั้นอีเทอร์อะซีโตนฟรี สารสกัดอีเทอร์ถูกโอนย้ายไป flask volumetric 100 มล และทำเสียงด้วยอีเทอร์ มีเพิ่มได Na2SO4 จะลบร่องรอยของความชื้น OD (ความหนาแน่นออปติคอล) ถูกวัดโดยใช้เครื่องทดสอบกรดด่าง (Shimadzu 1609 โตเกียว ญี่ปุ่น) ที่ 642.5 และ 660 nm คลอโรฟิลล์รวมถูกคำนวณโดยใช้สูตรต่อไปนี้:คลอโรฟิลล์รวม ðmg = lÞ ¼ ð7:12 ใช้ OD f660 nmgÞ þ ð16:8 ใช้ OD f642:5 nmgÞ2.2.6 การ carotenoidsรวม carotenoids (TC) ได้กำหนดตามขั้นตอนที่อธิบายไว้ โดย Kuti (2004) 5 กรัมของตัวอย่างที่สกัดด้วยตัวทำละลายประกอบด้วยอะซีโตน 40 ml และ 60 ml เฮกเซนจนตกค้างจะกลายเป็นสีใส Homogenate ถูก filtered ผ่าน Whatman เลข 4 filter กระดาษ และโอนย้ายไปที่กรวยแยก เพิ่ม millilitres 50 ของเฮกเซน และอะซีโตนถูกแยกออกจากการดึงข้อมูล โดย washings ซ้ำกับกลั่นน้ำและ 5% NaCl โซลูชัน ชั้นบนโพลีกับรงควัตถุที่แยกได้จาก flask เป็น volumetric 100 ml และไดรฟ์ข้อมูลประกอบ ด้วยเฮกเซน Absorbance ที่ถูกวัดโดยใช้เครื่องทดสอบกรดด่าง (Shimadzu 1609 โตเกียว ญี่ปุ่น) ที่ 450 nm ด้วยเฮกเซนเป็นว่าง Carotenoids รวมถูกคำนวณโดยใช้สูตรต่อไปนี้:Total carotenoids ðmg=100 gÞ¼ A 450Ãvolume made up ðmlÞÃ1000 2500Ãsample weight ðgÞ2.2.7. Ascorbic acidAscorbic acid was measured as per the method described by Ranganna (1999). Ten grams of sample was macerated using 3% meta-phosphoric acid and volume was made up to 100 ml with meta-phosphoric acid. An aliquot of 10 ml of the extract was taken and titrated with the standard dye (2,6-dichlor- ophenol indophenol) till pale pink end-point was observed which persisted for 15–20 s.2.2.8. Total phenolicsTen grams of macerated sample extract was diluted to 100 ml with water and 1 ml of Folin–Ciocalteu reagent was added to 5 ml of this aliquot. After 6 min, 10 ml of Na2CO3 (7%) was added and the volume was made up to 25 ml with distilled water followed by incubation at room temperature for 90 min. The absorbance was measured at 750 nm by spectrophotom- eter (Shimadzu 1609, Tokyo, Japan) using gallic acid as standard and distilled water as blank (Singleton & Rosi, 1965).2.2.9. Total flavonoidsThe sample extract of 15 g was dissolved in water and the volume was made up to 100 ml with distilled water. 5 ml of this aliquot was taken and 0.3 ml of NaNO2 (5%) was added, kept for 5 min followed by addition of 0.3 ml of AlCl3 (10%), againkept for 6 min followed by addition of 2 ml sodium hydroxide (1 N) solution. Volume was made up to 10 ml with distilled water and absorbance was measured at 510 nm by spectro- photometer (Shimadzu 1609, Tokyo, Japan) using catechin as standard and distilled water as blank (Zhishen, Mengcheng, & Jianming, 1999).2.2.10. Antioxidant activityThe antioxidant activity was determined by DPPH method described by Blois (1958). One gram of sample was taken along with 29 ml methanol, shaken vigorously, and centrifuged at 5000 rpm for 15 min at 4 8C. To that filtrate 0.5 ml DPPH (Diphenyl picrylic hydrazine) reagent was added and incubat- ed for 45 min in dark. Methanol was taken as blank and 3 ml methanol with 0.5 ml DPPH reagent was taken as control. The absorbance was measured using spectrophotometer (Shi- madzu 1609, Tokyo, Japan) at 517 nm. The antioxidant activity was calculated using the following formula: Antioxidant activityð%Þ ¼ ðODcontrol À ODsampleÞ Â 100 ODcontrol2.2.11. Capsaicin contentThe capsaicin content of chillies was measured by using spectrophotometric method, reported by Sadasivam and Manickam (1997) with slight modifications. Two gram of green chilli paste was taken in 100 ml ethyl acetate and allowed it to stand for 24 h, from that an extract of 1 ml was taken and made the volume to 5 ml using ethyl acetate, to that extract, 0.5 ml of vanadium oxy chloride (Sigma Aldrich, India) solution (vanadium oxychloride 0.5% in ethyl acetate) was added just before taking the absorbance of the sample. Pure capsaicin (0.01%) in ethyl acetate (10 mg in 100 ml) was taken as standard. The absorbance of the blank, standard and sample was read at 720 nm. A colour change was observed after the addition of vanadium oxychloride, the extract changed from green to yellow colour. The readings were taken when the extract was in green colour.2.2.12. Keeping quality and shelf lifeThe keeping quality and shelf-life of chillies were evaluated on the basis of sensory attributes in terms of visual sensory score and physiological loss in weight.2.2.13. Statistical analysisAll measurements were performed in triplicates for different physico-chemical parameters and the data obtained were analyzed statistically for analysis of variance (ANOVA) using completely randomized design (CRD) and least significant difference (LSD) at p < 0.05 using Statistica 7 software (StatSoft, Tulsa, OK, USA).

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ซ้ำด้วยอะซิโตนจนสารตกค้างที่เป็นสี เนื้อหา ltered ไฟถูกถ่ายในช่องทางแยกพร้อมกับ 50 มิลลิลิตรอีเทอร์ น้ำถูกบันทึก 5-10 ครั้งเพื่อเอาชั้นอะซีโตนจนถึงชั้นอีเทอร์ที่เป็นอิสระของอะซีโตน สารสกัดจากอีเทอร์ถูกย้ายไป 100 มล. ปริมาตรชั้นถามและทำเสียงกับอีเทอร์ รัส Na2SO4 ถูกบันทึกอยู่ในลบร่องรอยของความชื้น OD (ความหนาแน่นแสง) วัดโดยใช้ spectrophotometer (Shimadzu 1609 กรุงโตเกียวประเทศญี่ปุ่น) ที่ 660 และ 642.5 นาโนเมตร คลอโรฟิลรวมที่คำนวณโดยใช้สูตรต่อไปนี้:
คลอโรฟิลรวม DMG = LTH ¼ D7: 12 OD f660 nmgÞþ D16: 8 OD f642: 5 nmgÞ
2.2.6 นอยด์นอยด์รวม (TC) ได้รับการพิจารณาตามขั้นตอนที่อธิบายโดยกู (2004)
5 กรัมของกลุ่มตัวอย่างถูกสกัดด้วยตัวทำละลายผสมที่มีอะซีโตน 40 มล. และ 60 มล. เฮกเซนที่เหลือจนกลายเป็นไม่มีสี homogenate ถูกไฟ ltered ผ่านเบอร์หมายเลข 4 ไฟกระดาษกรองและโอนไปยังช่องทางแยก ห้าสิบมิลลิลิตรเฮกเซนถูกบันทึกและอะซีโตนถูกแยกออกจากสารสกัดจากล้างซ้ำด้วยน้ำกลั่นและ 5% วิธีการแก้ปัญหาโซเดียมคลอไรด์ เฮกเซนชั้นบนที่มีเม็ดสีที่สกัดได้เปลี่ยนไปเป็นปริมาตร 100 มิลลิลิตรชั้นถามและปริมาณถูกสร้างขึ้นด้วยเฮกเซน วัดการดูดกลืนแสงที่ใช้ spectrophotometer (Shimadzu 1609 กรุงโตเกียวประเทศญี่ปุ่น) ที่ 450 นาโนเมตรด้วยเฮกเซนเป็นที่ว่างเปล่า carotenoids รวมจะถูกคำนวณโดยใช้สูตรต่อไปนี้:
นอยด์รวม DMG = 100 GTH
¼450Ãvolumeขึ้นน้ำหนักðmlÞÃ10002500ÃsampleðgÞ
2.2.7 วิตามินซีกรดวิตามินซีวัดตามวิธีการที่อธิบายโดย Ranganna (1999)
สิบกรัมของกลุ่มตัวอย่างได้รับการหมักโดยใช้ 3% กรดฟอสฟเมตาและปริมาณที่ถูกสร้างขึ้นถึง 100 มล. กับกรดฟอสฟเมตา aliquot 10 มล. ของสารสกัดที่ถูกนำมาปรับขนาดและสีย้อมที่มีมาตรฐาน (2,6-dichlor- ophenol indophenol) จนถึงจุดสิ้นสุดสีชมพูอ่อนซึ่งพบว่ายังคงประมาณ 15-20 วินาที.
2.2.8 รวมฟีนอลสิบกรัมของสารสกัดจากตัวอย่าง macerated ถูกเจือจาง 100 มล. น้ำ 1 มิลลิลิตรของสาร Folin-Ciocalteu ถูกบันทึกอยู่ใน 5 มิลลิลิตร aliquot นี้
หลังจากนั้น 6 นาที, 10 มิลลิลิตร Na2CO3 (7%) ถูกบันทึกและปริมาณที่ถูกสร้างขึ้นถึง 25 มล. น้ำกลั่นตามด้วยการบ่มที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 90 นาที การดูดกลืนแสงที่ได้รับการวัดที่ 750 นาโนเมตรโดย eter spectrophotom- (Shimadzu 1609 กรุงโตเกียวประเทศญี่ปุ่น) โดยใช้กรดฝรั่งเศสเป็นมาตรฐานและน้ำกลั่นเป็นว่าง (ซิงเกิลและโรซี, 1965).
2.2.9 ชั้นรวม avonoids
สารสกัดจากกลุ่มตัวอย่าง 15 กรัมถูกละลายในน้ำและปริมาณที่ถูกสร้างขึ้นถึง 100 มล. น้ำกลั่น 5 มิลลิลิตร aliquot นี้ถูกนำและ 0.3 มิลลิลิตร NaNO2 (5%) ถูกบันทึกเก็บไว้เป็นเวลา 5 นาทีตามด้วยนอกเหนือจาก 0.3 มิลลิลิตร AlCl3 (10%)
อีกครั้งเก็บไว้เป็นเวลา6 นาทีตามด้วยนอกเหนือจาก 2 มิลลิลิตรโซดาไฟ ( 1 N) วิธีการแก้ปัญหา เล่มที่ถูกสร้างขึ้นมาถึง 10 มล. ด้วยน้ำกลั่นและการดูดกลืนแสงวัดที่ 510 นาโนเมตรโดยมาตรวัด spectro- (Shimadzu 1609 กรุงโตเกียวประเทศญี่ปุ่น) โดยใช้ catechin เป็นมาตรฐานและน้ำกลั่นเป็นว่าง (Zhishen, Mengcheng และ Jianming, 1999).
2.2 0.10 ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระต้านอนุมูลอิสระถูกกำหนดโดยวิธี DPPH อธิบายโดยบลัว (1958)
หนึ่งกรัมของกลุ่มตัวอย่างถูกนำตัวพร้อมกับ 29 มล. เมทานอลเขย่าแรง ๆ และหมุนเหวี่ยงที่ 5000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 15 นาทีที่ 4 8C ที่สาย ltrate 0.5 มล. DPPH (Diphenyl picrylic ไฮดราซีน) สารถูกบันทึกและเอ็ด incubat- เวลา 45 นาทีในที่มืด เมทานอลถูกนำมาเป็นที่ว่างเปล่าและ 3 มล. เมทานอล 0.5 มลสาร DPPH ถูกนำมาเป็นตัวควบคุม การดูดกลืนแสงที่ได้รับการวัดโดยใช้ spectrophotometer (Shi- madzu 1609 กรุงโตเกียวประเทศญี่ปุ่น) ที่ 517 นาโนเมตร ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระที่คำนวณโดยใช้สูตรต่อไปนี้: activityð% สารต้านอนุมูลอิสระÞ¼ðODcontrolÀODsampleÞ 100 ODcontrol
2.2.11 แคปไซซิเนื้อหาเนื้อหา capsaicin พริกวัดโดยใช้วิธีสเปกรายงานโดย Sadasivam และ Manickam (1997) กับไพเพอร์ Modi ไฟเล็กน้อย
สองกรัมน้ำพริกสีเขียวได้รับการดำเนินการใน 100 มล. เอทิลอะซิเตและได้รับอนุญาตให้ยืนเป็นเวลา 24 ชั่วโมงจากที่สารสกัดจาก 1 มิลลิลิตรถูกนำตัวและทำให้ปริมาณ 5 มล. โดยใช้น้ำนมเพื่อให้สารสกัดที่ 0.5 มิลลิลิตรวานาเดียม ออกซิเจนคลอไรด์ (ซิกม่าดิช, อินเดีย) การแก้ปัญหา (วานาเดียม oxychloride 0.5% ในเอทิลอะซิเตท) ได้รับการเพิ่มเพียงก่อนที่จะดูดกลืนแสงของกลุ่มตัวอย่าง capsaicin บริสุทธิ์ (0.01%) ในเอทิลอะซิเตท (10 มก. ใน 100 มล.) ถูกนำมาเป็นมาตรฐาน การดูดกลืนแสงของว่างที่ได้มาตรฐานและได้รับการอ่านตัวอย่างที่ 720 นาโนเมตร การเปลี่ยนสีที่ถูกตั้งข้อสังเกตหลังจากที่นอกเหนือจาก oxychloride วานาเดียมที่สกัดจากเปลี่ยนจากสีเขียวเป็นสีเหลือง อ่านเมื่อถูกนำสารสกัดที่อยู่ในสีเขียว.
2.2.12 การรักษาคุณภาพและอายุการเก็บรักษาที่มีคุณภาพการรักษาและอายุการเก็บรักษาของพริกได้รับการประเมินบนพื้นฐานของคุณลักษณะทางประสาทสัมผัสในแง่ของคะแนนทางประสาทสัมผัสการมองเห็นและการสูญเสียน้ำหนักในทางสรีรวิทยา. 2.2.13 การวิเคราะห์ทางสถิติทั้งหมดวัดได้ดำเนินการใน triplicates สำหรับพารามิเตอร์ทางกายภาพและทางเคมีที่แตกต่างกันและข้อมูลที่ได้มาวิเคราะห์ทางสถิติสำหรับการวิเคราะห์ความแปรปรวน (ANOVA) โดยใช้แบบสุ่มสมบูรณ์ (CRD) และนัยสำคัญไฟแตกต่างลาดเทน้อย (LSD) ที่ระดับ p <0.05 โดยใช้ซอฟแวร์ Statistica 7 (StatSoft, โอคลาโฮมาสหรัฐอเมริกา)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ทำซ้ำกับอะซิโตนจนตกค้างไม่มีสี จึง ltered เนื้อหาถ่ายในกรวยแยกพร้อมกับ 50 มิลลิลิตร ไดเอทิลอีเทอร์ น้ำเพิ่ม 5 – 10 ครั้ง เอาแบบชั้นจนกว่าชั้นอีเทอร์ฟรี อะซิโตน อีเทอร์สกัดถูกส่งไป 100 มล. ปริมาตรflถามและทำเสียงขึ้นด้วยอีเทอร์รัส na2so4 เพิ่มเพื่อลบร่องรอยของความชื้น OD ( ความหนาแน่นของแสง ) คือการวัดโดยใช้ Spectrophotometer ( Shimadzu ใน โตเกียว , ญี่ปุ่น ) และ 642.5 nm . คลอโรฟิลล์ทั้งหมดถูกคำนวณโดยใช้สูตรต่อไปนี้ :
รวมคลอโรฟิลล์ð = mg L Þ¼ð ( à OD แรก f660 Þþð 16 : 8 à OD แรก f642:5 Þ
2.2.6 . แคโรทีนอยด์
แคโรทีนอยด์รวม ( TC ) พิจารณาตามขั้นตอนที่อธิบายโดยกุฏิ ( 2004 ) 5 กรัมของตัวอย่างที่สกัดด้วยตัวทำละลายผสมที่ประกอบด้วย 40 ml อะซิโตนและ 60 ml ฤทธิ์ตกค้างจนกลายเป็นสี ที่ถูกถ่ายทอดผ่านแยก ltered whatman หมายเลข 4 จึง lter กระดาษและโอนไปยังกรวยแยก . 50 มิลลิลิตรของน้ำถูกเพิ่มและอะซิโตนถูกแยกออกจากสารสกัดโดย washings ซ้ำกับน้ำกลั่นและสารละลายโซเดียมคลอไรด์ 5% สารสกัดจากชั้นบน ด้วยเม็ดสีถูกย้ายไป 100 มล. ปริมาตรflถาม และเสียงถูกสร้างขึ้นด้วยเฮกเซน . นถูกวัดโดยใช้ Spectrophotometer ( Shimadzu ใน โตเกียว , ญี่ปุ่น ) 450 nm ด้วยเฮกเซนเป็นว่างเปล่าcarotenoids ทั้งหมดถูกคำนวณโดยใช้สูตรต่อไปนี้ :
รวม carotenoids ðมิลลิกรัม = 100 กรัมÞ
¼ปริมาณ 450 Ãขึ้นð ml ÞÃ 1000 2500 Ãตัวอย่างðกรัมน้ำหนักÞ
2.2.7 . กรดแอสคอร์บิค
วิตามินซีได้ตามวิธีที่อธิบายไว้โดย ranganna ( 1999 ) 10 กรัม จำนวน 3 % meta macerated ใช้กรดฟอสฟอริค และปริมาณได้ถึง 100 ml เมตากับกรดฟอสฟอริกเป็นส่วนลงตัวของ 10 ml สารสกัดถูกตลอดเวลากับสีมาตรฐาน ( 2,6-dichlor - ophenol indophenol ) ความหมาย : สีชมพูอ่อนจนพบ ซึ่งยืนกราน 15 – 20 S .
2.2.8 . ฟีนอลิกทั้งหมด
10 กรัม macerated ตัวอย่างสกัดเจือจางกับน้ำ 100 มิลลิลิตร และ 1 มิลลิลิตร และใช้ folin ciocalteu เพิ่ม 5 มิลลิลิตร ส่วนที่หารลงตัวนี้ หลังจาก 6 นาที10 ml ของ Na2CO3 ( 7% ) และได้เพิ่มปริมาณขึ้น 25 มิลลิลิตร กับน้ำ ตามด้วยการบ่มที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 90 นาที นวัดที่ 750 นาโนเมตร โดย spectrophotom - diphenyl ( Shimadzu ใน โตเกียว , ญี่ปุ่น ) การใช้เพิ่มขึ้นเป็นมาตรฐานและกลั่นน้ำว่าง ( ฌอน แอสติน&โรซี่ 1965 )
2.2.9 . รวมfl avonoids
ตัวอย่างสารสกัด 15 กรัม ละลายในน้ำและปริมาณได้ถึง 100 ml ด้วยน้ำกลั่น 5 มิลลิลิตร ส่วนที่หารลงตัวนี้ถ่ายและ 0.3 มล. nano2 ( 5% ) ถูกบันทึกเก็บไว้เป็นเวลา 5 นาที ตามด้วยเพิ่ม 0.3 มล. alcl3 ( 10% ) , อีก
เป็นเวลา 6 นาที ตามด้วยนอกเหนือจาก 2 ml โซดาไฟ ( 1 ) โซลูชั่นเสียงถูกสร้างขึ้นถึง 10 ml ด้วยน้ำกลั่นและค่าวัดที่ 510 nm โดย Spectro - โฟโตมิเตอร์ ( Shimadzu ใน โตเกียว , ญี่ปุ่น ) โดยใช้ Catechin เป็นมาตรฐานและน้ำกลั่นเป็นว่าง ( zhishen mengcheng , &เจี้ยนหมิง , 1999 ) .
2.2.10 . ต้านอนุมูลอิสระ
สารต้านอนุมูลอิสระถูกหาโดยวิธีบรรยายโดย dpph บลัว ( 1958 )หนึ่งกรัมของตัวอย่างที่ถ่ายพร้อมกับ 29 ml เมทานอล เขย่าอย่างแรง และระดับที่ 5 , 000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 15 นาทีที่ 4 8C . นั่นจึง ltrate 0.5 ml dpph ( picrylic ไดฟีนิลไฮดราซีน ) สารเคมีที่ถูกเพิ่มและน คิวเบท - ed สำหรับ 45 นาทีในที่มืด เมทานอลไปเป็นว่างเปล่าและ 3 มล. เมทานอลกับ 0.5 ml dpph รีเอเจนต์ถูกควบคุม . นถูกวัดโดยใช้ Spectrophotometer ( ชิ - ใน madzu ,โตเกียว , ญี่ปุ่น ) ที่ 517 nm . สารต้านอนุมูลอิสระถูกคำนวณโดยใช้สูตรต่อไปนี้ : ฤทธิ์ต้านð % Þ¼ð odcontrol À odsample Þ 100 odcontrol
2.2.11 . capsaicin capsaicin เนื้อหา
เนื้อหาของพริกถูกวัดโดยใช้วิธีสเปกโตรโฟ sadasivam และรายงานโดย manickam ( 1997 ) กับเล็กน้อยจึงทำให้ Modi .