Results and discussion
Rate of bud formation
Bud formation in root tip segments of C. fimbriatum is
a direct process (it does not involve callus formation),
triggered by the isolation of these organs (Fig. 1, step
1). To study the hormonal alterations involved in shoot
initiation (Fig. 1, steps 1 and 2), two genotypes with
markedly different rates of bud formation were
selected (Fig. 2). While CFC1 took between 14–19 days
1004
Table 1 Endogenous levels (pmol g–1 fresh weight) of IAA (free and conjugated forms) and four cytokinins in root tip segments of
Catasetum fimbriatum genotypes CFC1 and CFC4 at 0, 5, and 10 days of incubation on the Vacin and Went hormone-free medium.
Values are meansBSE (np4)
Hormones levels CFC1 CFC4
0 days 5 days 10 days 0 days 5 days 10 days
Cytokinins
iP 1.55B0.30 2.83B0.24 7.06B0.52 5.29B0.21 3.24B0.39 3.50B0.82
[9R]iP 0.06B0.00 27.27B1.79 133.75B14.11 2.14B0.24 18.01B3.03 63.39B1.77
Z 8.01B0.50 5.60B0.60 15.22B0.87 5.04B0.66 7.3B0.94 10.87B2.41
[9R]Z 3.86B0.24 82.16B5.76 363.74B13.96 7.05B1.15 50.93B3.86 127.28B7.27
Total 13.48 117.86 519.77 19.52 79.48 205.04
Auxins
IAA 6.90B0.49 9.16B1.31 24.21B1.95 10.28B1.22 15.50B0.90 10.74B1.27
Conjugated IAA (nmol) 0.005B0.00 8.93B3.53 64.64B15.16 0.90B0.27 1.84B0.38 23.87B6.59
IAA/cytokinins 0.51 0.08 0.05 0.53 0.19 0.05
for 50% of roots to convert to shoots, in the genotype
CFC4, 50% conversion took between 19 and 26 days
(Fig. 2). However, by the 40th day of incubation, all
roots of both genotypes were converted, showing that
the genotype differed basically in the speed of organogenetic
expression.
Endogenous levels of IAA and cytokinins during
shoot bud initiation
One of the most prominent events during the root-toshoot
conversion period (0–10 days of incubation) was
a marked accumulation of practically all the cytokinins
measured (Z, [9R]Z, iP, and [9R]iP) in the isolated root
tips of both genotypes (Table 1). Thus, after 10 days of
culture, the total cytokinin content had increased about
10- and 38-fold in CFC4 and CFC1 roots, respectively
(Table 1). Although the level of free IAA changed
slightly in CFC4, in CFC1 genotype it rose substantially
(more than 3-fold) during the period of incubation
(Table 1). Bound IAA also accumulated markedly over
the 10 days of incubation in both genotypes (Table 1).
It has long been suggested that plant organogenesis is
controlled by the ratio of auxin to cytokinin rather than
by their absolute levels (Skoog and Miller 1957). The
total cytokinins after 10 days led to a 10-fold reduction
in the IAA/cytokinin ratio (0.5 to 0.05) in both genotypes
(Table 1). Measurements performed on day 5
showed that CFC1 reached this ratio more quickly than
CFC4 (Table 1), strongly reflecting the higher conversion
capacity of the former (Fig. 2).
The high accumulation of cytokinins in C.
fimbriatum roots occurred predominantly in the riboside
form ([9R]Z and [9R]iP) in both genotypes
(Table 1). Roots are well-documented as the main sites
of cytokinin production (Syõno et al. 1976; Van Staden
and Smith 1978; Davies 1995), ribosides being considered
as transport forms (Lethan and Palni 1983). Thus,
cytokinin riboside accumulation in isolated roots of C.
fimbriatum may be due to the physical interruption of
the transport system to shoots, as suggested for isolated
tomato roots (Van Staden and Smith 1978). The results
presented in this work also suggest a higher cytokinin
biosynthetic capacity in the roots of the genotype with
a higher rate of bud formation (CFC1; Table 1, Fig. 2).
There are few reports on auxin biosynthesis in isolated
roots (Feldman 1980; Ribaut et al. 1993). The accumulation
of IAA conjugates in isolated roots of the two
genotypes throughout the incubation period (Table 1)
suggests de novo synthesis of auxin instead of hydrolysis
of preexisting conjugated forms. Active biosynthesis
of IAA in epiphytic orchid roots has been
suggested for the Vanda and Aranda genera (Zhang et
al. 1995).
The present experiment indicates that the direct
conversion of C. fimbriatum root tips into shoot apices
is predominantly mediated by the establishment of an
endogenous IAA/cytokinin ratio favoring cytokinins.
This assumption corroborates recent studies on the
effect of exogenous auxins and cytokinins on shoot
formation in orchidaceous roots and rhizomes (Paek
and Yeung 1991; Colli and Kerbauy 1993) as wells as
endogenous hormonal levels during root bud formation
in some non-orchidaceous roots (Yoshimatsu and
Shimomura 1994; Sarul et al. 1995).
Factors associated with root tip conversion
competence in C. fimbriatum
The results presented here strongly indicate that
physical isolation of the root is important for accumulation
of root-derived cytokinins to reach an endogenous
IAA/cytokinin ratio adequate for shoot initiation in C.
fimbriatum. Detached roots of C. fimbriatum can
convert into buds in hormone-free media, but attached
roots cannot, even in the presence of relatively high
levels of cytokinins (Colli and Kerbauy 1993). To a
certain extent, attached roots are capable of exporting
cytokinins toward the shoot system, and simultaneously
importing IAA from shoot parts, thus controlling the
IAA/cytokinin ratio and thus inhibiting bud formation.
Root tip excision may be necessary for cytokinin accu
ผลและการสนทนาอัตราการก่อตัวของดอกตูมผู้แต่งดอกตูมในส่วนคำแนะนำรากของ C. fimbriatum เป็นตรงกระบวนการ (มันไม่เกี่ยวข้องกับการให้กำเนิด),ทริกเกอร์ โดยแยกของอวัยวะเหล่านี้ (Fig. 1 ขั้นตอน1) ศึกษาการเปลี่ยนแปลงของฮอร์โมนที่เกี่ยวข้องในการยิงเริ่มต้น (Fig. 1 ขั้นตอนที่ 1 และ 2), การศึกษาจีโนไทป์สองด้วยมีราคาแตกต่างกันอย่างเด่นชัดของผู้แต่งดอกตูมเลือก (Fig. 2) ในขณะที่ CFC1 ใช้เวลาระหว่างวันที่ 14 – 191004ตารางที่ 1 Endogenous ระดับ (pmol g-1 สดน้ำหนัก) ของ IAA (ฟอร์มฟรี และกลวง) และ cytokinins สี่ในรากคำแนะนำของCatasetum fimbriatum ศึกษาจีโนไทป์ CFC1 และ CFC4 ในวันที่ 0, 5 และ 10 บ่มใน Vacin และ Went ฮอร์โมนฟรีสื่อการค่าเป็น meansBSE (np4)ระดับฮอร์โมน CFC1 CFC40 วัน 5 วัน 10 วัน 0 วัน 5 วัน 10 วันCytokininsiP 1.55B0.30 2.83B0.24 7.06B0.52 5.29B0.21 3.24B0.39 3.50B0.82[9R] iP 0.06B0.00 27.27B1.79 133.75B14.11 2.14B0.24 18.01B3.03 63.39B1.77Z 8.01B0.50 5.60B0.60 15.22B0.87 5.04B0.66 7.3B0.94 10.87B2.41[9R] Z 3.86B0.24 82.16B5.76 363.74B13.96 7.05B1.15 50.93B3.86 127.28B7.27117.86 รวม 13.48 519.77 19.52 79.48 205.04AuxinsIAA 6.90B0.49 9.16B1.31 24.21B1.95 10.28B1.22 15.50B0.90 10.74B1.27กลวง IAA (nmol) 0.005B0.00 8.93B3.53 64.64B15.16 0.90B0.27 1.84B0.38 23.87B6.59IAA cytokinins 0.51 0.08 0.05 0.53 0.19 0.0550% ของรากการแปลง ถ่ายภาพในลักษณะทางพันธุกรรมCFC4 แปลง 50% เกิดระหว่างวันที่ 19 และ 26(Fig. 2) อย่างไรก็ตาม โดยคณะทันตแพทยศาสตร์ วัน 40 ทั้งหมดรากของทั้งสองได้แปลง แสดงที่ลักษณะทางพันธุกรรมแตกต่างโดยทั่วไปความเร็วของ organogeneticนิพจน์ระดับ endogenous ของ IAA และ cytokinins ในระหว่างเริ่มต้นยิงดอกตูมเหตุการณ์ที่โดดเด่นมากที่สุดระหว่างราก-toshoot หนึ่งระยะเวลาแปลงได้ (0-10 วันของคณะทันตแพทยศาสตร์)รวบรวมเครื่องหมายของ cytokinins จริงทั้งหมดวัด (Z, Z [9R] iP และ [9R] iP) ในรากแยกเคล็ดลับของทั้งสอง (ตารางที่ 1) ดังนั้น หลังจากวันที่ 10วัฒนธรรม เนื้อหารวม cytokinin มีเพิ่มเกี่ยวกับ10 - และ 38 - fold CFC4 และ CFC1 ราก ตามลำดับ(ตาราง 1) แม้ว่าการเปลี่ยนแปลงระดับของ IAA ฟรีเล็กน้อยใน CFC4 ในลักษณะทางพันธุกรรม CFC1 มันกุหลาบมาก(3-fold กว่า) ในระหว่างรอบระยะเวลาการบ่ม(ตาราง 1) ผูก IAA ที่ยัง สะสมอย่างเด่นชัดวันที่ 10 ของคณะทันตแพทยศาสตร์ในทั้งศึกษาจีโนไทป์ (ตาราง 1)มันมีนานแล้วแนะนำเป็นที่เกิดของอวัยวะพืชควบคุม โดยอัตราส่วนของออกซินและการ cytokinin rather กว่าโดยของพวกเขาแน่นอนระดับ (Skoog และ 1957 มิลเลอร์) ที่รวม cytokinins หลังจาก 10 วันนำไปลด 10-foldอัตราส่วน IAA/cytokinin (0.5-0.05) ในทั้งสองการศึกษาจีโนไทป์(ตาราง 1) วัดที่ดำเนินการใน 5 วันแสดงให้เห็นว่า CFC1 ถึงอัตราส่วนนี้เพิ่มเติมอย่างรวดเร็วกว่าCFC4 (ตาราง 1), สะท้อนการแปลงสูงอย่างยิ่งกำลังการผลิตเดิม (Fig. 2)สะสมสูงของ cytokinins ใน cราก fimbriatum เกิด riboside เป็นแบบฟอร์ม (Z [9R] และ [9R] iP) ในการศึกษาจีโนไทป์ทั้ง(ตาราง 1) รากมีเอกสารเชิญเป็นเว็บไซต์หลักผลิต cytokinin (Syõno et al. 1976 รถตู้ Stadenและ Smith 1978 Ribosides เดวีส์ 1995), การพิจารณาเป็นแบบฟอร์มขนส่ง (Lethan และ Palni 1983) ดังนั้นcytokinin riboside สะสมในรากแยกของ cfimbriatum อาจเนื่องจากการหยุดชะงักทางกายภาพของถ่ายภาพ เป็นที่แนะนำสำหรับระบบขนส่งแยกต่างหากรากมะเขือเทศ (Van Staden และ Smith 1978) ผลลัพธ์ในการนำเสนองานยังแนะนำ cytokinin สูงกำลังการผลิต biosynthetic ในรากของลักษณะทางพันธุกรรมด้วยผู้แต่งดอกตูม (CFC1 อัตราสูง ตาราง 1, Fig. 2)มีบางรายงานในการสังเคราะห์ออกซินในแยกราก (Feldman 1980 Ribaut และ al. 1993) สะสมของ conjugates IAA ในรากแยกที่สองการศึกษาจีโนไทป์ตลอดระยะฟักตัว (ตารางที่ 1)แนะนำ de novo สังเคราะห์ออกซินแทนไฮโตรไลซ์อิงรูปแบบกลวง การสังเคราะห์งานของ IAA ในราก epiphytic กล้วยไม้ได้แนะนำสำหรับสกุลแวนด้าและสัมมนา (Zhang etal. 1995)ทดลองนำเสนอหมายถึงตรงแปลงของ C. fimbriatum เคล็ดลับรากเข้ายิง apicesmediated เป็นส่วนใหญ่ โดยการจัดตั้งการอัตรา IAA/cytokinin endogenous นความ cytokininsนี้ corroborates การศึกษาล่าสุดในการผลของบ่อย auxins และ cytokinins ยิงใน orchidaceous รากและเหง้า (Paekและ Yeung 1991 Colli และ Kerbauy 1993) เป็นบ่อเป็นระดับฮอร์โมน endogenous ระหว่างก่อรากดอกตูมในบางรากไม่ใช่ orchidaceous (Yoshimatsu และปี 1994 Shimomura Sarul et al. 1995)ปัจจัยที่เกี่ยวข้องกับรากคำแนะนำการแปลงความสามารถใน C. fimbriatumผลลัพธ์ที่แสดงที่นี่ขอบ่งชี้ว่าแยกทางกายภาพของรากเป็นสิ่งสำคัญสำหรับสะสมของรากมา cytokinins ถึงมี endogenousเพียงพอสำหรับการถ่ายภาพครบครัน C. IAA/cytokinin อัตราfimbriatum รากเดี่ยวของ C. fimbriatumแปลงเป็นอาหารปราศจากฮอร์โมนสื่อ แต่แนบรากไม่ แม้ในสถานะของค่อนข้างสูงระดับของ cytokinins (Colli และ Kerbauy 1993) เพื่อการขอบเขตบางอย่าง รากแนบมีความสามารถในการส่งออกcytokinins ไปทางระบบยิง และพร้อมกันนำเข้า IAA จากส่วนยิง การควบคุมดังนี้อัตราส่วนของ IAA/cytokinin และดัง inhibiting ก่อดอกตูมตอนรากคำแนะนำการผ่าตัดอาจจำเป็นสำหรับ cytokinin accu
การแปล กรุณารอสักครู่..

และการอภิปรายผลอัตราการก่อตาก่อหน่อในส่วนปลายรากของซีfimbriatum เป็นกระบวนการโดยตรง(มันไม่ได้เกี่ยวข้องกับการก่อตัวแคลลัส) ที่เกิดจากการแยกของอวัยวะเหล่านี้ (รูปที่ 1. ขั้นตอนที่1) เพื่อศึกษาการเปลี่ยนแปลงของฮอร์โมนที่เกี่ยวข้องกับการถ่ายทำเริ่มต้น (รูป. 1 ขั้นตอนที่ 1 และ 2) สองสายพันธุ์ที่มีอัตราที่แตกต่างกันอย่างเห็นได้ชัดของการก่อตาถูกเลือก(รูปที่. 2) ในขณะที่ CFC1 เอาระหว่างวันที่ 14-19 1,004 ตารางที่ 1 ระดับภายนอก (pmol-1 กรัมน้ำหนักสด) ของ IAA (รูปแบบฟรีและผัน) และสี่ cytokinins ในส่วนปลายรากของCatasetum ยีน fimbriatum CFC1 และ CFC4 ที่ 0, 5, 10 และ วันของการบ่มใน Vacin and Went ฮอร์โมนกลางฟรี. ค่า meansBSE (np4) ระดับฮอร์โมน CFC1 CFC4 0 วัน 5 วัน 10 วัน 0 วัน 5 วัน 10 วันcytokinins iP 1.55B0.30 2.83B0.24 7.06B0.52 5.29 B0.21 3.24B0.39 3.50B0.82 [9R] iP 0.06B0.00 27.27B1.79 133.75B14.11 2.14B0.24 18.01B3.03 63.39B1.77 Z 8.01B0.50 5.60B0.60 15.22B0 0.87 5.04B0.66 7.3B0.94 10.87B2.41 [9R] Z 3.86B0.24 82.16B5.76 363.74B13.96 7.05B1.15 50.93B3.86 127.28B7.27 รวม 117.86 519.77 13.48 19.52 79.48 205.04 Auxins IAA 6.90B0.49 9.16B1.31 24.21B1.95 10.28B1.22 15.50B0.90 10.74B1.27 Conjugated IAA (nmol) 0.005B0.00 8.93B3.53 64.64B15.16 0.90B0.27 1.84B0.38 23.87B6.59 IAA / cytokinins 0.51 0.08 0.05 0.53 0.19 0.05 50% ของรากแปลงเป็นยอดในจีโนไทป์CFC4 แปลง 50% ใช้เวลาระหว่างวันที่ 19 และ 26 วัน(รูปที่ 2) อย่างไรก็ตามในวันที่ 40 ของการบ่มทั้งหมดรากของยีนทั้งสองแปลงแสดงให้เห็นว่ายีนแตกต่างโดยทั่วไปในความเร็วของorganogenetic แสดงออก. ระดับภายนอกของ IAA และ cytokinins ในช่วงเริ่มต้นการถ่ายตาหนึ่งในกิจกรรมที่ประสบความสำเร็จมากที่สุดในช่วงroot- toshoot สิทธิแปลง (0-10 วันของการบ่ม) คือการสะสมทำเครื่องหมายของจริงทุกcytokinins วัด (Z [9R] Z, IP, และ [9R] IP) ในรากแยกเคล็ดลับของยีนทั้งสอง(ตารางที่ 1) ดังนั้นหลังจาก 10 วันนับจากวันวัฒนธรรมเนื้อหาไซโตไคนิได้รวมเพิ่มขึ้นประมาณ10 และ 38 เท่าใน CFC4 และราก CFC1 ตามลำดับ(ตารางที่ 1) แม้ว่าระดับของการเปลี่ยนแปลง IAA ฟรีเล็กน้อยCFC4 ในจีโนไทป์ CFC1 เพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญมัน(มากกว่า 3 เท่า) ในช่วงระยะเวลาของการบ่ม(ตารางที่ 1) ผูก IAA สะสมอย่างเห็นได้ชัดในช่วง10 วันของการบ่มทั้งในยีน (ตารางที่ 1). จะได้รับการแนะนำอวัยวะพืชที่ถูกควบคุมโดยอัตราส่วนของการออกซินไซโตไคนิมากกว่าระดับที่แน่นอนของพวกเขา(กุคและมิลเลอร์ 1957) cytokinins รวมหลัง 10 วันนำไปสู่การลดลง 10 เท่าในอัตราส่วนIAA / ไซโตไคนิ (0.5-0.05) ในยีนทั้งสอง(ตารางที่ 1) วัดดำเนินการในวันที่ 5 แสดงให้เห็นว่า CFC1 ถึงอัตราส่วนนี้ได้อย่างรวดเร็วกว่าCFC4 (ตารางที่ 1) อย่างยิ่งสะท้อนให้เห็นถึงการแปลงสูงความจุของอดีต(รูปที่. 2). การสะสมสูงของไซโตไคใน C. ราก fimbriatum ที่เกิดขึ้นส่วนใหญ่ใน riboside รูปแบบ ([9R] Z และ [9R] IP) ในยีนทั้งสอง(ตารางที่ 1) รากดีเอกสารเป็นเว็บไซต์หลักของการผลิตไซโตไคนิ (Syõno et al, 1976;. Van Staden และสมิ ธ 1978; เดวีส์ 1995) ribosides ได้รับการพิจารณาเป็นรูปแบบการขนส่ง(Lethan และ Palni 1983) ดังนั้นไซโตไคนิ riboside สะสมในรากแยกซี fimbriatum อาจเกิดจากการหยุดชะงักทางกายภาพของระบบขนส่งเพื่อหน่อที่แนะนำสำหรับแยกรากมะเขือเทศ(Van Staden สมิ ธ และ 1978) ผลที่นำเสนอในงานนี้ยังแนะนำให้ไซโตไคนิสูงกว่ากำลังการผลิตชีวสังเคราะห์ในรากของพันธุ์ที่มีอัตราที่สูงขึ้นของการก่อตา(CFC1. ตารางที่ 1, รูปที่ 2). มีรายงานไม่กี่สังเคราะห์ออกซินในบางแห่งราก (เฟลด์แมน 1980 ; Ribaut et al, 1993). การสะสมของ conjugates IAA ในรากแยกของทั้งสองสายพันธุ์ตลอดระยะเวลาการบ่ม(ตารางที่ 1) แสดงให้เห็นการสังเคราะห์โนโวของออกซินแทนการย่อยสลายของนิยายในรูปแบบคอนจูเกต การสังเคราะห์ที่ใช้งานของ IAA ในรากกล้วยไม้อิงอาศัยที่ได้รับการแนะนำให้จำพวกแวนด้าและด้า(Zhang et al. 1995). การทดลองแสดงให้เห็นว่าในปัจจุบันโดยตรงแปลงของปลายรากซี fimbriatum เข้า apices ยิงเป็นผู้ไกล่เกลี่ยโดยส่วนใหญ่สถานประกอบการที่. IAA ภายนอก / อัตราส่วนไซโตไคนินิยม cytokinins สมมติฐานนี้ยืนยันการศึกษาล่าสุดเกี่ยวกับผลกระทบของการ auxins ภายนอกและ cytokinins ในการถ่ายภาพการก่อตัวอยู่ในรากorchidaceous และเหง้า (Paek และเหยิง 1991; Colli และ Kerbauy 1993) เป็นหลุมเป็นระดับฮอร์โมนภายนอกในระหว่างการก่อตารากในบางรากที่ไม่ orchidaceous (Yoshimatsu และ. Shimomura 1994. Sarul et al, 1995) ปัจจัยที่เกี่ยวข้องกับการแปลงปลายรากสามารถในซี fimbriatum ผลนำเสนอที่นี่อย่างมากแสดงให้เห็นว่าการแยกทางกายภาพของรากเป็นสิ่งสำคัญสำหรับการสะสมของที่ได้มาจากรากcytokinins ไปถึงภายนอกIAA / ไซโตไคนิอัตราส่วนที่เพียงพอสำหรับการเริ่มต้นถ่ายทำใน C. fimbriatum รากเดี่ยวซี fimbriatum สามารถแปลงเป็นตาในสื่อฮอร์โมนฟรีแต่ติดอยู่ที่รากไม่สามารถแม้ในที่ที่ค่อนข้างสูงระดับของไซโตไค (Colli และ Kerbauy 1993) ไปในระดับหนึ่งรากที่แนบมามีความสามารถในการส่งออกของไซโตไคต่อระบบการถ่ายทำและในขณะเดียวกันการนำเข้าชิ้นส่วนจากIAA ยิงจึงควบคุมIAA / อัตราส่วนไซโตไคนิและทำให้ยับยั้งการก่อตา. ตัดตอนปลายรากอาจจะเป็นสิ่งที่จำเป็นสำหรับ Accu ไซโตไคนิ
การแปล กรุณารอสักครู่..

การอภิปรายผลและอัตราของการบัดบัด
การพัฒนาในส่วนของปลายราก C fimbriatum คือ
กระบวนการโดยตรง ( มันไม่ได้เกี่ยวข้องกับการสร้างแคลลัส ) ,
ถูกทริกเกอร์ โดยการแยกของอวัยวะเหล่านี้ ( รูปที่ 1 ขั้นตอน
1 ) เพื่อศึกษาการเปลี่ยนแปลงของฮอร์โมนที่เกี่ยวข้องกับการเริ่มต้นถ่ายภาพ
( รูปที่ 1 , ขั้นตอนที่ 1 และ 2 ) , สองชนิดที่มีอัตราการแตกต่างกันอย่างเห็นได้ชัด
ป๋าถูกเลือก ( รูปที่ 2 )ในขณะที่ cfc1 เอาระหว่าง 14 – 19 วัน
( ตารางที่ 1 ในระดับที่จะ pmol กรัมน้ำหนักสด ( 1 ) ของ IAA ( รูปแบบฟรีและ conjugated ) และสี่ไซโตไคนินในส่วนของปลายรากและ cfc1
Catasetum fimbriatum พันธุ์ cfc4 ที่ 0 , 5 และ 10 วันของการบ่มเพาะในอาหารเหลวสูตร Vacin and Went ฮอร์โมนกลางฟรี .
ค่า meansbse ( np4 ) ระดับฮอร์โมน cfc1 cfc4
0 วัน 5 วัน 10 วัน 3 วัน 5 วัน 10 วัน
ไซโตไคนิน
IP 1.55b0.30 2.83b0.24 7.06b0.52 5.29b0.21 3.24b0.39 3.50b0.82
[ 9R ] IP 0.06b0.00 27.27b1.79 133.75b14.11 2.14b0.24 18.01b3.03 63.39b1.77
z 8.01b0.50 5.60b0.60 15.22b0.87 5.04b0.66 7.3b0.94 10.87b2.41
[ 9R ] Z 3.86b0.24 82.16b5.76 363.74b13.96 7.05b1.15 50.93b3.86 127.28b7.27
รวม 13.48 117.86 519.77 19.52 79.48 205.04 มั่วซั่ว
เอ 6.90b0.49 9.16b1.31 24.21b1.95 10.28b1.22 15.50b0.90 1074b1.27
และ IAA ( ? ) 0.005b0.00 8.93b3.53 64.64b15.16 0.90b0.27 1.84b0.38 23.87b6.59
IAA / ไซโตไคนิน 0.51 0.08 0.05 เท่ากับ 0.19 อย่างมีนัยสำคัญ
50% ของรากจะแปลงเป็นยอดในทางพันธุกรรม
cfc4 การแปลง 50% เอาระหว่าง 19 และ 26 วัน
( รูปที่ 2 ) อย่างไรก็ตาม โดยวันที่ 40 ของระยะเวลาทั้งหมดของทั้งสองพันธุ์มีราก
เปลี่ยน แสดงว่าทางพันธุกรรมแตกต่างกัน โดยทั่วไปในความเร็วของ organogenetic
ในการแสดงออก และระดับของ IAA ไซโตไคนินในการยิงเพื่อน
หนึ่งเหตุการณ์ที่โดดเด่นที่สุดในราก toshoot
ระยะเวลาการแปลง ( 0 – 10 วัน 1 ) คือการทำเครื่องหมายการสะสมจริงทุกไซโตไคนิน
วัด ( Z , [ 9R ] Z , IP , และ [ 9R ] IP ) ในการแยกราก
เคล็ดลับของทั้งสองชนิด ( ตารางที่ 1 )ดังนั้น หลังจาก 10 วันของ
วัฒนธรรม เนื้อหาทั้งหมดมี ) เพิ่มขึ้นประมาณ 10
- 38 พับใน cfc4 และราก cfc1 ตามลำดับ
( ตารางที่ 1 ) แม้ว่าระดับของ IAA ฟรีเปลี่ยน
เล็กน้อยใน cfc4 ใน cfc1 พันธุกรรมมันเพิ่มขึ้นอย่างมาก
( มากกว่า 3-fold ) ในช่วงระยะเวลาของการบ่ม
( ตารางที่ 1 ) เอ ยังสะสมไว้อย่างเด่นชัดกว่า
10 วัน ของการบ่มเพาะทั้งพันธุ์ ( ตารางที่ 1 ) .
มันได้รับการแนะนำว่าแกโนเจเนซีสพืช
ควบคุมโดยอัตราส่วนของออกซินต่อไซโตไคนินมากกว่า
โดยระดับของพวกเขาแน่นอน ( Skoog และมิลเลอร์ 1957 )
รวมไซโทไคนินหลังจาก 10 วัน ทำให้ลด 10 เท่า
ในอัตราส่วนเอ / ) ( 0.5 ถึง 0.05 ) ทั้งในพันธุ์
( ตารางที่ 1 ) การวัดการ 5 วัน พบว่า อัตราส่วนนี้
cfc1 ถึงเร็วกว่า
cfc4 ( ตารางที่ 1 )ขอสะท้อนการแปลงสูงความจุของอดีต
( รูปที่ 2 ) สูงการสะสมของไซโตไคนินใน C .
fimbriatum รากที่เกิดขึ้นส่วนใหญ่ในรูปแบบไรโบไซด์
( [ 9R ] Z และ [ 9R ] IP ) ทั้งสายพันธุ์
( ตารางที่ 1 ) รากข้อมูลเป็นหลัก เว็บไซต์
การผลิต ) ( SY õไม่มี et al . 1976 ; รถตู้ staden
และ Smith , 1978 ; Davies 1995 )
ribosides ถูกพิจารณาเป็นรูปแบบการขนส่ง ( lethan และ palni 1983 ) ดังนั้น ,
) ไรโบไซด์ที่สะสมในแยกรากของ C .
fimbriatum อาจจะเนื่องจากการหยุดชะงักของระบบการขนส่งทางกายภาพ
แนะนำให้แยกหน่อ เป็นรากมะเขือเทศ ( รถตู้ staden และ Smith 1978 ) ผลลัพธ์ที่นำเสนอในงานนี้ยังได้แนะนำ
) สูงกว่าความสามารถในการรากของจีโนไทป์กับ
อัตราที่สูงของการเสนอราคา ( cfc1 ตารางที่ 1 รูปที่ 2 ) .
มีรายงานในระดับที่แยก
ราก ( เฟลด์แมน 1980 ; ribaut et al . 1993 ) การสะสมของสารประกอบที่แยกได้ในเอ
เมื่อรากของทั้งสองตลอดระยะเวลา ( ตารางที่ 1 )
แนะนำอีกครั้งการสังเคราะห์ออกซิน แทนการย่อย
ของประวัติและรูปแบบ ปราดเปรียวใน
กล้วยไม้อิงอาศัย ในรากของ IAA ได้
แนะนำสำหรับแวนด้าและ Aranda สกุล ( Zhang et
อัล 1995 ) .
การทดลองปัจจุบันบ่งชี้ว่า การแปลงโดยตรงของ C .
fimbriatum รากเคล็ดลับเข้าไปยิง apices
เด่น ) โดยจัดตั้งในอัตราส่วนเอ /
) นิยม ไซโตไคนิน .
สมมติฐานนี้ HUB การศึกษาล่าสุดบน
ผลของออกซินและไซโตไคนินภายนอกในการยิง
ในรากและเหง้า orchidaceous ( แป๊ก
ปี 1991 และ 1993 และ ; colli kerbauy ) เป็นบ่อในระดับ hormonal ในรากเป็น
เพื่อนเกิดในไม่ orchidaceous ราก ( yoshimatsu และ
ชิโมมุระ 1994 ; sarul et al . 1995 ) .
ปัจจัยที่เกี่ยวข้องกับความสามารถในการแปลงปลายรากฟัน fimbriatum
Cผลลัพธ์ที่แสดงที่นี่ ขอระบุว่า
แยกทางกายภาพของรากเป็นสิ่งสำคัญสำหรับการสะสม
ของรากได้ไซโตไคนินจะถึงภายใน
IAA / ) อัตราส่วนเพียงพอสำหรับยิงเริ่มต้นใน C .
fimbriatum . รากของ C . บ้านเดี่ยว fimbriatum สามารถ
แปลงเป็นตาในฮอร์โมนสื่อฟรี แต่แนบ
รากไม่ได้ ต่อหน้า
แม้จะค่อนข้างสูงระดับของไซโตไคนิน ( colli และ kerbauy 1993 ) เพื่อบางขอบเขต
แนบรากมีความสามารถของการส่งออก
ไซโตไคนินต่อระบบยิง และพร้อมกัน
นำเข้า IAA จากส่วนยิง ดังนั้น การควบคุมอัตราส่วนเอ /
) จึงยับยั้งการบัด .
ที่ปลายราก อาจเป็นไซโตไคนิน accu
การแปล กรุณารอสักครู่..
