- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
2.12. Characterization of actinomyc
2.12. Characterization of actinomycetes
The potential actinomycetes selected from the primary and secondary screening was characterized by morphological, biochemical and physiological methods[36].
2.12.1. Morphological characterization by macroscopic method
Morphological characters of the selected isolates were studied by inoculating into sterile media like, glycerol yeast extract agar, oatmeal agar, mineral agar, and starch-casein agar[37]. The media was sterilized and poured into sterile Petri dishes. After solidification, selected isolates were streaked aseptically and incubated at 30 °C for 7 d. Morphological characters such as colony characteristics, pigment production, absence or presence of aerial and substrate mycelium was observed.
2.12.2. Morphological characterization by microscopic cover slip culture method
The arrangement of spores and sporulating structures were examined microscopically by using cover slip culture method by inserting sterile cover slip at an angle of 45 °C in the starch casein agar medium[38],[39]. A loop full of isolates was taken from 7 d old culture media, inoculated at the insertion place of the cover slip and incubated at 30 °C for 7 d. The cover slip was carefully removed by using sterile forceps and placed upward on a clean glass slide. The bacterial growth on the cover slip was fixed with few drops of absolute methanol for 15 min and washed with tap water then flooded with crystal violet reagent for 1 min followed by washing and blot drying. Finally, the cover slip was examined under the microscope by using oil immersion lens (100×).
2.12.3. Biochemical and physiological characterization
In this test, isolates was streaked on starch agar plates and incubated at 30 °C for 7 d. After incubation, iodine solution was poured on the agar and examined for hydrolysis of starch by the production of clear zone around the microbial growth.
Isolates was streaked on gelatin agar plates and incubated at 30 °C for 7 d to test for gelatin hydrolysis. After incubation, plates were flooded with 1 mL of mercuric chloride solution and observed for zone of hydrolysis.
Isolates was streaked on skimmed milk agar medium and incubated at 30 °C for 7 d and observed for zone of casein hydrolysis.
In the urea hydrolysis test, isolates was inoculated in to sterile urea agar slants and incubated at 30 °C for 7 d and a change in colour was observed.
Isolates was streaked on Simon's citrate slant agar and incubated at 30 °C for 7 d and a change in colour was observed.
To test sodium chloride resistance, starch casein agar was prepared in three batches and supplemented with 5%, 7% and 10% sodium chloride. The medium was autoclaved, poured in to the plates and allowed for solidification. The plates were streaked with isolates and incubated at 30 °C for 7 d. The visual observations was made to record the growth of isolates at the highest salt concentration.
The isolates was streaked on starch casein agar plates and incubated at 25 °C, 30 °C, 35 °C and 40 °C for 7 d. The optimum temperature for maximum growth was determined by visual examination of the growth[40].
2.13. Data analysis
The data collected from the secondary screening method was subjected to one way ANOVA to compare the level of significance within the isolates by using SPSS version 16 and the results were interpreted
The potential actinomycetes selected from the primary and secondary screening was characterized by morphological, biochemical and physiological methods[36].
2.12.1. Morphological characterization by macroscopic method
Morphological characters of the selected isolates were studied by inoculating into sterile media like, glycerol yeast extract agar, oatmeal agar, mineral agar, and starch-casein agar[37]. The media was sterilized and poured into sterile Petri dishes. After solidification, selected isolates were streaked aseptically and incubated at 30 °C for 7 d. Morphological characters such as colony characteristics, pigment production, absence or presence of aerial and substrate mycelium was observed.
2.12.2. Morphological characterization by microscopic cover slip culture method
The arrangement of spores and sporulating structures were examined microscopically by using cover slip culture method by inserting sterile cover slip at an angle of 45 °C in the starch casein agar medium[38],[39]. A loop full of isolates was taken from 7 d old culture media, inoculated at the insertion place of the cover slip and incubated at 30 °C for 7 d. The cover slip was carefully removed by using sterile forceps and placed upward on a clean glass slide. The bacterial growth on the cover slip was fixed with few drops of absolute methanol for 15 min and washed with tap water then flooded with crystal violet reagent for 1 min followed by washing and blot drying. Finally, the cover slip was examined under the microscope by using oil immersion lens (100×).
2.12.3. Biochemical and physiological characterization
In this test, isolates was streaked on starch agar plates and incubated at 30 °C for 7 d. After incubation, iodine solution was poured on the agar and examined for hydrolysis of starch by the production of clear zone around the microbial growth.
Isolates was streaked on gelatin agar plates and incubated at 30 °C for 7 d to test for gelatin hydrolysis. After incubation, plates were flooded with 1 mL of mercuric chloride solution and observed for zone of hydrolysis.
Isolates was streaked on skimmed milk agar medium and incubated at 30 °C for 7 d and observed for zone of casein hydrolysis.
In the urea hydrolysis test, isolates was inoculated in to sterile urea agar slants and incubated at 30 °C for 7 d and a change in colour was observed.
Isolates was streaked on Simon's citrate slant agar and incubated at 30 °C for 7 d and a change in colour was observed.
To test sodium chloride resistance, starch casein agar was prepared in three batches and supplemented with 5%, 7% and 10% sodium chloride. The medium was autoclaved, poured in to the plates and allowed for solidification. The plates were streaked with isolates and incubated at 30 °C for 7 d. The visual observations was made to record the growth of isolates at the highest salt concentration.
The isolates was streaked on starch casein agar plates and incubated at 25 °C, 30 °C, 35 °C and 40 °C for 7 d. The optimum temperature for maximum growth was determined by visual examination of the growth[40].
2.13. Data analysis
The data collected from the secondary screening method was subjected to one way ANOVA to compare the level of significance within the isolates by using SPSS version 16 and the results were interpreted
0/5000
2.12 การจำแนกของ actinomycetes
actinomycetes อาจเลือกจากการคัดกรองหลัก และรองถูกลักษณะสัณฐาน ชีวเคมี และสรีรวิทยาวิธี [36] .
2.12.1 การ จำแนกสัณฐาน โดยวิธี macroscopic
อักขระของแยกเลือกได้ศึกษา โดย inoculating เป็นสื่อกอซเช่น กลีเซอรยีสต์สารสกัด agar ข้าวโอ๊ต agar แร่ agar และเคซีนแป้ง agar [37] สื่อ sterilized และ poured ในจาน Petri กอซ หลังจาก solidification แยกเลือกลาย aseptically และ incubated ที่ 30 ° C สำหรับอักขระของ d. 7 เช่นลักษณะโคโลนี pigment ผลิต การขาดงานหรือสถานะของ mycelium ชั้นและพื้นผิวถูกสังเกต
2.12.2 จำแนกสัณฐาน โดยวิธีครอบด้วยกล้องจุลทรรศน์บันทึกวัฒนธรรม
จัดเพาะเฟิร์นและโครงสร้าง sporulating ได้ตรวจสอบ microscopically โดยใช้วิธีจัดส่งครอบคลุมวัฒนธรรมใส่ใส่ปกจัดเป็นมุม 45 องศาเซลเซียสในแป้งเคซีน agar สื่อ [38], [39] วนเต็มแยกได้มาจาก 7 d เก่าวัฒนธรรมสื่อ inoculated สแทรกของใบปก และ incubated ที่ 30 ° C สำหรับ 7 d ใบปกถูกเอาออก โดยใช้คีมกอซอย่างรอบคอบ และวางบนสไลด์แก้วที่สะอาดขึ้น การเจริญเติบโตเชื้อแบคทีเรียบนใบหน้าปกถูกถาวรกับหยดของเมทานอลนอนสำหรับ 15 นาที และล้าง ด้วยน้ำประปา แล้วน้ำท่วมกับรีเอเจนต์คริสตัลไวโอเลตใน 1 นาทีตาม ด้วยการซักผ้าและอบแห้งคืนในตา สุดท้าย ใบปกถูกตรวจสอบภายใต้กล้องจุลทรรศน์ โดยใช้เลนส์แช่น้ำมัน (100 ×) .
2.12.3 จำแนกสรีรวิทยา และชีวเคมี
ในการทดสอบนี้ แยกลายบนแผ่นแป้ง agar และ incubated ที่ 30 ° C สำหรับ 7 d หลังจากบ่ม โซลูชันไอโอดีนถูก poured ใน agar และตรวจสอบสำหรับไฮโตรไลซ์ของแป้ง โดยการผลิตของโซนล้างสถานที่เจริญเติบโตของจุลินทรีย์
แยกเป็นลายบนแผ่นตุ๋น agar และ incubated ที่ 30 ° C สำหรับ 7 d การทดสอบไฮโตรไลซ์ตุ๋น หลังจากบ่ม แผ่นถูกน้ำท่วม ด้วย 1 mL ของ mercuric คลอไรด์ และสังเกตในโซนของไฮโตรไลซ์
แยกลายอยู่กลาง agar นมขาดมันเนย และ incubated ที่ 30 ° C สำหรับ 7 d และสังเกตในโซนของเคซีนไฮโตรไลซ์
ในการทดสอบไฮโตรไลซ์ยูเรีย แยก inoculated ในการใส่ยูเรีย agar slants และ incubated ที่ 30 ° C สำหรับ 7 d และมีสังเกตการเปลี่ยนแปลงสี
แยกลายบนของ Simon ซิเตรตเอียง agar และ incubated ที่ 30 ° C สำหรับ 7 d และมีสังเกตการเปลี่ยนแปลงสี
การทดสอบต้านทานโซเดียมคลอไรด์ แป้งเคซีน agar ถูกเตรียมในสามชุด และเสริม ด้วย 5%, 7% และ 10% โซเดียมคลอไรด์ สื่อถูก autoclaved, poured ในการแผ่น และได้รับอนุญาตสำหรับ solidification แผ่นมีลายกับแยก และ incubated ที่ 30 ° C สำหรับ 7 d สังเกตภาพทำการบันทึกการเจริญเติบโตของแยกในสุดเกลือความเข้มข้น
แยกลายบนแผ่นแป้งเคซีน agar และ incubated ที่ 25 ° C, 30 ° C, 35 ° C และ 40 ° C สำหรับ 7 d อุณหภูมิเหมาะสมสำหรับการเจริญเติบโตสูงสุดถูกกำหนด โดยการตรวจสอบการเจริญเติบโต [40] ภาพ
2.13 วิเคราะห์ข้อมูล
ข้อมูลรวบรวมจากวิธีคัดกรองรองถูกต้องวิเคราะห์ความแปรปรวนทางเดียวเพื่อเปรียบเทียบระดับของความสำคัญในการแยก โดยใช้โปรแกรมรุ่น 16 และมีแปลผล
actinomycetes อาจเลือกจากการคัดกรองหลัก และรองถูกลักษณะสัณฐาน ชีวเคมี และสรีรวิทยาวิธี [36] .
2.12.1 การ จำแนกสัณฐาน โดยวิธี macroscopic
อักขระของแยกเลือกได้ศึกษา โดย inoculating เป็นสื่อกอซเช่น กลีเซอรยีสต์สารสกัด agar ข้าวโอ๊ต agar แร่ agar และเคซีนแป้ง agar [37] สื่อ sterilized และ poured ในจาน Petri กอซ หลังจาก solidification แยกเลือกลาย aseptically และ incubated ที่ 30 ° C สำหรับอักขระของ d. 7 เช่นลักษณะโคโลนี pigment ผลิต การขาดงานหรือสถานะของ mycelium ชั้นและพื้นผิวถูกสังเกต
2.12.2 จำแนกสัณฐาน โดยวิธีครอบด้วยกล้องจุลทรรศน์บันทึกวัฒนธรรม
จัดเพาะเฟิร์นและโครงสร้าง sporulating ได้ตรวจสอบ microscopically โดยใช้วิธีจัดส่งครอบคลุมวัฒนธรรมใส่ใส่ปกจัดเป็นมุม 45 องศาเซลเซียสในแป้งเคซีน agar สื่อ [38], [39] วนเต็มแยกได้มาจาก 7 d เก่าวัฒนธรรมสื่อ inoculated สแทรกของใบปก และ incubated ที่ 30 ° C สำหรับ 7 d ใบปกถูกเอาออก โดยใช้คีมกอซอย่างรอบคอบ และวางบนสไลด์แก้วที่สะอาดขึ้น การเจริญเติบโตเชื้อแบคทีเรียบนใบหน้าปกถูกถาวรกับหยดของเมทานอลนอนสำหรับ 15 นาที และล้าง ด้วยน้ำประปา แล้วน้ำท่วมกับรีเอเจนต์คริสตัลไวโอเลตใน 1 นาทีตาม ด้วยการซักผ้าและอบแห้งคืนในตา สุดท้าย ใบปกถูกตรวจสอบภายใต้กล้องจุลทรรศน์ โดยใช้เลนส์แช่น้ำมัน (100 ×) .
2.12.3 จำแนกสรีรวิทยา และชีวเคมี
ในการทดสอบนี้ แยกลายบนแผ่นแป้ง agar และ incubated ที่ 30 ° C สำหรับ 7 d หลังจากบ่ม โซลูชันไอโอดีนถูก poured ใน agar และตรวจสอบสำหรับไฮโตรไลซ์ของแป้ง โดยการผลิตของโซนล้างสถานที่เจริญเติบโตของจุลินทรีย์
แยกเป็นลายบนแผ่นตุ๋น agar และ incubated ที่ 30 ° C สำหรับ 7 d การทดสอบไฮโตรไลซ์ตุ๋น หลังจากบ่ม แผ่นถูกน้ำท่วม ด้วย 1 mL ของ mercuric คลอไรด์ และสังเกตในโซนของไฮโตรไลซ์
แยกลายอยู่กลาง agar นมขาดมันเนย และ incubated ที่ 30 ° C สำหรับ 7 d และสังเกตในโซนของเคซีนไฮโตรไลซ์
ในการทดสอบไฮโตรไลซ์ยูเรีย แยก inoculated ในการใส่ยูเรีย agar slants และ incubated ที่ 30 ° C สำหรับ 7 d และมีสังเกตการเปลี่ยนแปลงสี
แยกลายบนของ Simon ซิเตรตเอียง agar และ incubated ที่ 30 ° C สำหรับ 7 d และมีสังเกตการเปลี่ยนแปลงสี
การทดสอบต้านทานโซเดียมคลอไรด์ แป้งเคซีน agar ถูกเตรียมในสามชุด และเสริม ด้วย 5%, 7% และ 10% โซเดียมคลอไรด์ สื่อถูก autoclaved, poured ในการแผ่น และได้รับอนุญาตสำหรับ solidification แผ่นมีลายกับแยก และ incubated ที่ 30 ° C สำหรับ 7 d สังเกตภาพทำการบันทึกการเจริญเติบโตของแยกในสุดเกลือความเข้มข้น
แยกลายบนแผ่นแป้งเคซีน agar และ incubated ที่ 25 ° C, 30 ° C, 35 ° C และ 40 ° C สำหรับ 7 d อุณหภูมิเหมาะสมสำหรับการเจริญเติบโตสูงสุดถูกกำหนด โดยการตรวจสอบการเจริญเติบโต [40] ภาพ
2.13 วิเคราะห์ข้อมูล
ข้อมูลรวบรวมจากวิธีคัดกรองรองถูกต้องวิเคราะห์ความแปรปรวนทางเดียวเพื่อเปรียบเทียบระดับของความสำคัญในการแยก โดยใช้โปรแกรมรุ่น 16 และมีแปลผล
การแปล กรุณารอสักครู่..
2.12. Characterization of actinomycetes
The potential actinomycetes selected from the primary and secondary screening was characterized by morphological, biochemical and physiological methods[36].
2.12.1. Morphological characterization by macroscopic method
Morphological characters of the selected isolates were studied by inoculating into sterile media like, glycerol yeast extract agar, oatmeal agar, mineral agar, and starch-casein agar[37]. The media was sterilized and poured into sterile Petri dishes. After solidification, selected isolates were streaked aseptically and incubated at 30 °C for 7 d. Morphological characters such as colony characteristics, pigment production, absence or presence of aerial and substrate mycelium was observed.
2.12.2. Morphological characterization by microscopic cover slip culture method
The arrangement of spores and sporulating structures were examined microscopically by using cover slip culture method by inserting sterile cover slip at an angle of 45 °C in the starch casein agar medium[38],[39]. A loop full of isolates was taken from 7 d old culture media, inoculated at the insertion place of the cover slip and incubated at 30 °C for 7 d. The cover slip was carefully removed by using sterile forceps and placed upward on a clean glass slide. The bacterial growth on the cover slip was fixed with few drops of absolute methanol for 15 min and washed with tap water then flooded with crystal violet reagent for 1 min followed by washing and blot drying. Finally, the cover slip was examined under the microscope by using oil immersion lens (100×).
2.12.3. Biochemical and physiological characterization
In this test, isolates was streaked on starch agar plates and incubated at 30 °C for 7 d. After incubation, iodine solution was poured on the agar and examined for hydrolysis of starch by the production of clear zone around the microbial growth.
Isolates was streaked on gelatin agar plates and incubated at 30 °C for 7 d to test for gelatin hydrolysis. After incubation, plates were flooded with 1 mL of mercuric chloride solution and observed for zone of hydrolysis.
Isolates was streaked on skimmed milk agar medium and incubated at 30 °C for 7 d and observed for zone of casein hydrolysis.
In the urea hydrolysis test, isolates was inoculated in to sterile urea agar slants and incubated at 30 °C for 7 d and a change in colour was observed.
Isolates was streaked on Simon's citrate slant agar and incubated at 30 °C for 7 d and a change in colour was observed.
To test sodium chloride resistance, starch casein agar was prepared in three batches and supplemented with 5%, 7% and 10% sodium chloride. The medium was autoclaved, poured in to the plates and allowed for solidification. The plates were streaked with isolates and incubated at 30 °C for 7 d. The visual observations was made to record the growth of isolates at the highest salt concentration.
The isolates was streaked on starch casein agar plates and incubated at 25 °C, 30 °C, 35 °C and 40 °C for 7 d. The optimum temperature for maximum growth was determined by visual examination of the growth[40].
2.13. Data analysis
The data collected from the secondary screening method was subjected to one way ANOVA to compare the level of significance within the isolates by using SPSS version 16 and the results were interpreted
The potential actinomycetes selected from the primary and secondary screening was characterized by morphological, biochemical and physiological methods[36].
2.12.1. Morphological characterization by macroscopic method
Morphological characters of the selected isolates were studied by inoculating into sterile media like, glycerol yeast extract agar, oatmeal agar, mineral agar, and starch-casein agar[37]. The media was sterilized and poured into sterile Petri dishes. After solidification, selected isolates were streaked aseptically and incubated at 30 °C for 7 d. Morphological characters such as colony characteristics, pigment production, absence or presence of aerial and substrate mycelium was observed.
2.12.2. Morphological characterization by microscopic cover slip culture method
The arrangement of spores and sporulating structures were examined microscopically by using cover slip culture method by inserting sterile cover slip at an angle of 45 °C in the starch casein agar medium[38],[39]. A loop full of isolates was taken from 7 d old culture media, inoculated at the insertion place of the cover slip and incubated at 30 °C for 7 d. The cover slip was carefully removed by using sterile forceps and placed upward on a clean glass slide. The bacterial growth on the cover slip was fixed with few drops of absolute methanol for 15 min and washed with tap water then flooded with crystal violet reagent for 1 min followed by washing and blot drying. Finally, the cover slip was examined under the microscope by using oil immersion lens (100×).
2.12.3. Biochemical and physiological characterization
In this test, isolates was streaked on starch agar plates and incubated at 30 °C for 7 d. After incubation, iodine solution was poured on the agar and examined for hydrolysis of starch by the production of clear zone around the microbial growth.
Isolates was streaked on gelatin agar plates and incubated at 30 °C for 7 d to test for gelatin hydrolysis. After incubation, plates were flooded with 1 mL of mercuric chloride solution and observed for zone of hydrolysis.
Isolates was streaked on skimmed milk agar medium and incubated at 30 °C for 7 d and observed for zone of casein hydrolysis.
In the urea hydrolysis test, isolates was inoculated in to sterile urea agar slants and incubated at 30 °C for 7 d and a change in colour was observed.
Isolates was streaked on Simon's citrate slant agar and incubated at 30 °C for 7 d and a change in colour was observed.
To test sodium chloride resistance, starch casein agar was prepared in three batches and supplemented with 5%, 7% and 10% sodium chloride. The medium was autoclaved, poured in to the plates and allowed for solidification. The plates were streaked with isolates and incubated at 30 °C for 7 d. The visual observations was made to record the growth of isolates at the highest salt concentration.
The isolates was streaked on starch casein agar plates and incubated at 25 °C, 30 °C, 35 °C and 40 °C for 7 d. The optimum temperature for maximum growth was determined by visual examination of the growth[40].
2.13. Data analysis
The data collected from the secondary screening method was subjected to one way ANOVA to compare the level of significance within the isolates by using SPSS version 16 and the results were interpreted
การแปล กรุณารอสักครู่..
2.12 . คุณสมบัติของแอคติโนมัย
ศักยภาพด้วยกัน เลือกจากประถมศึกษาและมัธยมศึกษาการคัดกรองมีลักษณะสัณฐานวิทยาสรีรวิทยา ชีวเคมี และวิธีการ [ 36 ] .
2.12.1 . ลักษณะทางสัณฐานวิทยาลักษณะทางสัณฐานวิทยาโดยวิธี
ตัวอักษรของสายพันธุ์ที่เลือกศึกษาโดยผ่านสื่อเช่นณเป็นกลีเซอรอลยีสต์สกัดวุ้นข้าวโอ๊ตวุ้นวุ้นวุ้นแป้งแร่และเคซีน [ 37 ] สื่อถูกฆ่าเชื้อและเทลงในจาน Petri เป็นหมัน หลังจากการแข็งตัว เลือกจากลาย aseptically บ่มที่ 30 ° C เป็นเวลา 7 วันของตัวละคร เช่น ลักษณะโคโลนี , การผลิตสี ขาดหรือการแสดงตนของอากาศและพื้นผิวเส้นใยพบ
2.12.2 .ลักษณะสัณฐานวิทยาด้วยกล้องจุลทรรศน์ครอบคลุมสลิปวิธีการเลี้ยง
จัดโครงสร้างและผลผลิตสปอร์สปอร์ทดสอบโดยใช้วิธีวัฒนธรรมสลิปครอบคลุมโดยการแทรกเป็นหมันครอบคลุมสลิปที่มุม 45 องศา C ในอาหารวุ้นแป้งเคซีน [ 38 ] [ 39 ] วงเต็มรูปแบบของสายพันธุ์ถูกนำมาจาก 7 D สื่อวัฒนธรรมเก่าแต่ที่แทรกสถานที่ของปกลื่นและบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศา C เป็นเวลา 7 วัน ครอบคลุมสลิปลบออกอย่างระมัดระวังโดยใช้คีมปลอดเชื้อและสะอาดวางขึ้นบนกระจกสไลด์ การเจริญเติบโตของแบคทีเรียบนปกใบถูกตรึงกับไม่กี่หยดของ Absolute methanol 15 นาทีและล้างด้วยน้ำประปา แล้วน้ำท่วมด้วยคริสตัลสีม่วงรีเอเจนต์ 1 นาทีตามด้วยการล้างและ blot แห้งในที่สุด , ปกใบตรวจสอบภายใต้กล้องจุลทรรศน์ โดยใช้น้ำมันแช่เลนส์ ( 100 × )
2.12.3 . ชีวเคมีและสรีรวิทยาลักษณะ
ในการทดสอบนี้ แยกเป็นลายบนแป้งวุ้นแผ่น และบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศา C เป็นเวลา 7 วัน หลังจากบ่มในสารละลายไอโอดีนลงในวุ้น และตรวจสอบการย่อยสลายของแป้ง โดยการผลิตของบริเวณใสรอบการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ .
ไอโซเลตเป็นลายบนแผ่นวุ้นวุ้น และบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศา C 7 D เพื่อทดสอบไฮโดรไลซ์เจลาติน หลังจากบ่มแผ่นเต็มไปด้วย 1 มิลลิลิตรของสารละลายเมอร์คิวริกคลอไรด์และสังเกตสำหรับโซนของการย่อยสลาย
ไอโซเลทเป็นลายบนอาหารวุ้นนมบ่มที่ 30 ° C 7 D และสังเกตสำหรับโซนของเคซีน ไฮโดร
ในยูเรียโดยใช้การทดสอบเชื้อเป็นเชื้อในวุ้นปลอดเชื้อยูเรีย slants บ่มที่ 30 ° C 7 D และเปลี่ยนสีค่า
ไอโซเลทคือไซม่อน ซิเตรต ลาดลายบนวุ้น และบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศา C 7 D และเปลี่ยนสีค่า
เพื่อทดสอบการต้านทานคลอไรด์ โซเดียม วุ้น , เคซีน แป้งที่เตรียมไว้ 3 ชุด และเสริมด้วย 5% , 7% และ 10% โซเดียมคลอไรด์สื่อถูกสังเคราะห์ , เทในจานให้แข็ง . จานลายกับไอโซเลทและบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศา C เป็นเวลา 7 วัน สังเกตภาพที่ได้บันทึกการเจริญเติบโตของเชื้อที่ความเข้มข้นเกลือสูง แยกได้เป็น
ลายบนแป้ง โปรตีนวุ้นแผ่น และบ่มที่อุณหภูมิ 25 องศา C 30 ° C , 35 ° C และ 40 ° C 7 Dอุณหภูมิที่เหมาะสมสำหรับการเจริญเติบโตสูงสุดถูกกำหนดโดยการตรวจสอบภาพในการเจริญเติบโต [ 40 ] .
2.13 . การวิเคราะห์ข้อมูล
ข้อมูลที่รวบรวมได้จากการคัดกรองวิธีภายใต้ทางเดียว ANOVA เพื่อเปรียบเทียบระดับความสำคัญภายในสายพันธุ์โดยการใช้โปรแกรม SPSS รุ่นที่ 16 และการตีความ
ศักยภาพด้วยกัน เลือกจากประถมศึกษาและมัธยมศึกษาการคัดกรองมีลักษณะสัณฐานวิทยาสรีรวิทยา ชีวเคมี และวิธีการ [ 36 ] .
2.12.1 . ลักษณะทางสัณฐานวิทยาลักษณะทางสัณฐานวิทยาโดยวิธี
ตัวอักษรของสายพันธุ์ที่เลือกศึกษาโดยผ่านสื่อเช่นณเป็นกลีเซอรอลยีสต์สกัดวุ้นข้าวโอ๊ตวุ้นวุ้นวุ้นแป้งแร่และเคซีน [ 37 ] สื่อถูกฆ่าเชื้อและเทลงในจาน Petri เป็นหมัน หลังจากการแข็งตัว เลือกจากลาย aseptically บ่มที่ 30 ° C เป็นเวลา 7 วันของตัวละคร เช่น ลักษณะโคโลนี , การผลิตสี ขาดหรือการแสดงตนของอากาศและพื้นผิวเส้นใยพบ
2.12.2 .ลักษณะสัณฐานวิทยาด้วยกล้องจุลทรรศน์ครอบคลุมสลิปวิธีการเลี้ยง
จัดโครงสร้างและผลผลิตสปอร์สปอร์ทดสอบโดยใช้วิธีวัฒนธรรมสลิปครอบคลุมโดยการแทรกเป็นหมันครอบคลุมสลิปที่มุม 45 องศา C ในอาหารวุ้นแป้งเคซีน [ 38 ] [ 39 ] วงเต็มรูปแบบของสายพันธุ์ถูกนำมาจาก 7 D สื่อวัฒนธรรมเก่าแต่ที่แทรกสถานที่ของปกลื่นและบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศา C เป็นเวลา 7 วัน ครอบคลุมสลิปลบออกอย่างระมัดระวังโดยใช้คีมปลอดเชื้อและสะอาดวางขึ้นบนกระจกสไลด์ การเจริญเติบโตของแบคทีเรียบนปกใบถูกตรึงกับไม่กี่หยดของ Absolute methanol 15 นาทีและล้างด้วยน้ำประปา แล้วน้ำท่วมด้วยคริสตัลสีม่วงรีเอเจนต์ 1 นาทีตามด้วยการล้างและ blot แห้งในที่สุด , ปกใบตรวจสอบภายใต้กล้องจุลทรรศน์ โดยใช้น้ำมันแช่เลนส์ ( 100 × )
2.12.3 . ชีวเคมีและสรีรวิทยาลักษณะ
ในการทดสอบนี้ แยกเป็นลายบนแป้งวุ้นแผ่น และบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศา C เป็นเวลา 7 วัน หลังจากบ่มในสารละลายไอโอดีนลงในวุ้น และตรวจสอบการย่อยสลายของแป้ง โดยการผลิตของบริเวณใสรอบการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ .
ไอโซเลตเป็นลายบนแผ่นวุ้นวุ้น และบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศา C 7 D เพื่อทดสอบไฮโดรไลซ์เจลาติน หลังจากบ่มแผ่นเต็มไปด้วย 1 มิลลิลิตรของสารละลายเมอร์คิวริกคลอไรด์และสังเกตสำหรับโซนของการย่อยสลาย
ไอโซเลทเป็นลายบนอาหารวุ้นนมบ่มที่ 30 ° C 7 D และสังเกตสำหรับโซนของเคซีน ไฮโดร
ในยูเรียโดยใช้การทดสอบเชื้อเป็นเชื้อในวุ้นปลอดเชื้อยูเรีย slants บ่มที่ 30 ° C 7 D และเปลี่ยนสีค่า
ไอโซเลทคือไซม่อน ซิเตรต ลาดลายบนวุ้น และบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศา C 7 D และเปลี่ยนสีค่า
เพื่อทดสอบการต้านทานคลอไรด์ โซเดียม วุ้น , เคซีน แป้งที่เตรียมไว้ 3 ชุด และเสริมด้วย 5% , 7% และ 10% โซเดียมคลอไรด์สื่อถูกสังเคราะห์ , เทในจานให้แข็ง . จานลายกับไอโซเลทและบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศา C เป็นเวลา 7 วัน สังเกตภาพที่ได้บันทึกการเจริญเติบโตของเชื้อที่ความเข้มข้นเกลือสูง แยกได้เป็น
ลายบนแป้ง โปรตีนวุ้นแผ่น และบ่มที่อุณหภูมิ 25 องศา C 30 ° C , 35 ° C และ 40 ° C 7 Dอุณหภูมิที่เหมาะสมสำหรับการเจริญเติบโตสูงสุดถูกกำหนดโดยการตรวจสอบภาพในการเจริญเติบโต [ 40 ] .
2.13 . การวิเคราะห์ข้อมูล
ข้อมูลที่รวบรวมได้จากการคัดกรองวิธีภายใต้ทางเดียว ANOVA เพื่อเปรียบเทียบระดับความสำคัญภายในสายพันธุ์โดยการใช้โปรแกรม SPSS รุ่นที่ 16 และการตีความ
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- To accommodate new pedagogical approache
- you just not find he yet.
- ขอให้พระอัลเลาะห์คุ้มครองคุณและครอบครัว
- การเปลี่ยนแปลงของอัตราภาษีที่ใช้รับรู้ภา
- CONCERNING ENVIRONMENTAL MANAGEMENT SYST
- จัดเก็บไม่เรียบร้อย
- I Cancelled all Test Bookings complete
- VDP feedback : This step for fixation of
- ผมลำไส้ใหญ่ไม่รับเนื้อสัตว์ขับถ่ายไม่ตรง
- passage
- ถึงเราจะไม่ได้เจอ คริสกับจัสติน แต่เราเป
- คำนำรายงานเล่มนี้จัดทำขึ้นเพื่อประกอบการ
- จากที่กล่าวไปทั้งสอง คือหมายถึงแอลกอฮอล์
- Just when Naofumi is going to attack mor
- เช็ครอตัดจ่าย
- GPRS Server Settings
- เช็คจ่ายล่วงหน้า
- ยินดีเสมอ
- really? cuz i gotta something tob buy
- whether you are thinking of what.request
- ไปทำงานได้แล้ว
- Pls settle all outstanding COD with agen
- films
- fascinating
