Viability of chicken cells in respo

Viability of chicken cells in response to DNA and dsRNA. Viability of cells was measured by MTT cleavage at 1 h post electroporation unless indicated otherwise. A. DNAinduced
cell death in HD-11 cells after electroporation with 10 mg CT DNA. Bars represent data of 14 experiments (mean ± SEM), normalised to the no DNA sample in all experiments.
Statistical significance was determined prior to normalisation by paired one tailed t-test. ****p < 1011. B. DNA-specific response of HD-11 cells. Cells were electroporated
with 10 mg CT DNA that was untreated or treated with DNase I. Bars represent data from 3 experiments (mean ± SEM), normalised to the no DNA sample for each experiment. C.
Dose-dependent response of HD-11 to electroporation with indicated amounts of DNA. Bars represent data from 3 experiments (mean ± SEM), normalised to the no DNA sample for
each experiment. D. HD-11 death in response to DNA, but not to synthetic dsRNA poly(I:C). HD-11 cells were electroporated with 10 mg CT DNA or poly(I:C), and cleavage of MTT
measured after 1 and 3 h. Bars represent data from 3 experiments (mean ± SEM), normalised to the no DNA samples. E. Cytotoxic effect of DNA from different sources. 10 mg of CT
DNA, salmon sperm DNA or E. coli genomic DNA were used in electroporation. Bars represent results of two electroporations (mean ± range). F. Denatured CT DNA induces cell
death in HD-11 cells, but not mouse macrophages. CT DNA was left intact or boiled for 10 min, transferred to ice and 10 mg used immediately for electroporation. Bars represent data
from 3 (HD-11) or 2 (BMMs) experiments (mean ± SEM, or mean ± range, respectively), normalised to the no DNA sample. G. Response of chicken BMMs to DNA and dsRNA. Intact
or DNaseI-digested CT DNA or poly(I:C) (all 10 mg) were transfected via electroporation and viability was measured at 1 and 3 h after treatment using MTT cleavage. Bars represent
data from 2 experiments (mean ± range)

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ชีวิตของไก่เซลล์ที่ดีเอ็นเอและ dsRNA ชีวิตของเซลล์โดยวัดจากความแตกแยกของ MTT ที่ electroporation โพสต์ 1 ชั่วโมงเว้นแต่ระบุไว้เป็นอื่น A. DNAinducedตายของเซลล์ใน HD 11 เซลล์หลัง electroporation กับดีเอ็นเอ 10 มิลลิกรัม CT แถบแสดงข้อมูลของการทดลองปกติตัวอย่างไม่ดีเอ็นเอในการทดลองทั้งหมด 14 (เฉลี่ย± SEM),นัยสำคัญทางสถิติที่ถูกกำหนดก่อน normalisation โดยคู่หนึ่งหางทดสอบ t p < 10 11 ตอบ B. เฉพาะดีเอ็นเอของเซลล์ HD-11 เซลล์ถูก electroporatedกับ 10 มิลลิกรัม CT ดีเอ็นเอที่ไม่ถูกรักษา หรือรักษา ด้วย DNase I. แถบแสดงข้อมูลจากการทดลองที่ 3 (หมายถึง ± SEM), ปกติตัวอย่างไม่ดีเอ็นเอสำหรับแต่ละการทดลอง คขึ้นอยู่กับปริมาณการตอบสนองของ HD-11 การ electroporation พร้อมระบุจำนวนของดีเอ็นเอ แถบแสดงข้อมูลจากการทดลองปกติตัวอย่างไม่ดีเอ็นเอสำหรับ 3 (ค่าเฉลี่ย± SEM),การทดลองแต่ละ D. HD-11 ตายในดีเอ็นเอ แต่ไม่ dsRNA สังเคราะห์ poly(I:C). HD-11 เซลล์ถูก electroporated กับ 10 mg CT ดีเอ็นเอ หรือ poly(I:C) ความแตกแยกของ MTTวัดหลังจากบาร์เอช 1 และ 3 แสดงข้อมูลจากการทดลองที่ 3 (ค่าเฉลี่ย± SEM), ปกติตัวอย่างดีเอ็นเอไม่ E. ผล cytotoxic ของดีเอ็นเอจากแหล่งต่าง ๆ 10 มิลลิกรัมของ CTดีเอ็นเอ ดีเอ็นเอของสเปิร์มแซลมอน หรือดีเอ็นเอของจีโนมของ E. coli ถูกใช้ใน electroporation แถบแสดงผลของ electroporations สอง (±หมายถึงช่วง) F. ลสูง CT ดีเอ็นเอก่อให้เกิดเซลล์ตายในเซลล์ HD-11 แต่ไม่เมาส์ฤทธิ์ CT ดีเอ็นเอถูกทิ้งเหมือนเดิม หรือต้ม 10 นาที โอนไปที่น้ำแข็งและ 10 มก.ใช้ electroporation ทันที แถบแสดงข้อมูลจาก 3 (HD-11) หรือ 2 (BMMs) ทดลอง (หมายความว่า ± SEM หรือช่วง±หมายถึง ตามลำดับ), ปกติตัวอย่างดีเอ็นเอไม่ G. การตอบสนองของไก่ BMMs ดีเอ็นเอและ dsRNA เหมือนเดิมหรือ DNaseI-ย่อยดีเอ็นเอของ CT หรือ poly(I:C) (ทั้งหมด 10 มิลลิกรัม) ที่ transfected ผ่าน electroporation และชีวิตที่มีวัดที่ 1 และ 3 ชั่วโมงหลังการรักษาโดยใช้ความแตกแยกของ MTT แถบแสดงข้อมูลจากการทดลองที่ 2 (ค่าเฉลี่ย±ช่วง)