germination of the control multipli

germination of the control multiplied by 100. The experiment was
repeated once. Conidial germination test for L. theobromae was not
done due to its poor sporulation on PDA.
Mycelial discs (4 mm) from a 5-day-old pathogen in a PDA dish
were transferred aseptically into a test tube with 15 mL SDW. The
test tube was dipped in pre-heated water bath at the exposure
times described above. After hot water dip, three mycelial discs
were seeded equidistantly onto fresh PDA plates. Mycelial growth
was measured after 7 days of incubation at 25 C. Mycelium discs
seeded onto fresh PDA plates without exposure to hot water served
as a control. Six plates were provided for each treatment and the
experiment was repeated once. Percentage reduction in colony
diameter was estimated by the difference in colony diameter of the
control and the treatment divided by the colony diameter of the
control, multiplied by 100.
2.4. Tolerance of fruit to hot water
Naturally infected matured green fruit were placed in plastic
mesh bags to avoid touching the walls of the water bath and for
ease in handling during treatment. Each treatment used 20 fruit
with exposure times as defined in Section 2.3. Thereafter, fruit were
hydro-cooled for 10 min and air dried for 30 min prior to storage in
an air conditioned room (18e20 C). Fruit were inspected for severe
scalds (SS), localized light brown scalds (LLBS), and shriveling (SH)
right after treatment, 7 days, and 14 days after treatment. The
experiment was repeated once.
2.5. Pathogenicity of pathogens exposed to HWT
Spore suspension and mycelium discs of C. gloeosporioides were
exposed in hot water (53 C, 20 min) to examine capabilities to
cause rotting on matured green naturally infected fruit. Fruit were
dipped in chlorox solution for 5 s and immediately rinsed in SDW
three times. One side of a fruit was marked with three squares
(1 1 cm) well-spaced from each other with a black waterproof
pen. Each square was inoculated with a 5-day-old mycelium disc
(4 mm) or 0.5 mL spore suspension (106 spores mL 1). The control
fruit were inoculated with pathogen inocula without dipping in hot
water. Fruit were kept in transparent plastic boxes lined with moist
sterile paper towels in an air conditioned room and inspected after
7 days for development of disease symptons. Each treatment was
replicated in three fruit and the experiment was repeated once.
2.6. Postharvest application
An electric water bath, described in 2.3, was preheated before
dipping the matured green naturally infected fruit at 53 C for
20 min. Immediately thereafter, fruit were hydro-cooled for 10 min,
air dried for 30 min, and placed in a carton box lined with perforated
plastic sheets. The box was kept in an air conditioned room
for 14 days. Fruit immersed for 10 min in Mancozeb solution (2.5 g/
L of tap water) or SDW served as control checks. The experiment
was repeated once with 20 fruit per treatment.
2.7. Assessment of fruit quality
Weight loss (WL), fruit hardness (FH), pH, total soluble solid
(TSS), pulp firmness (PF), titratable acidity (TA), color (b* value),
and incidence of postharvest diseases were evaluated 14 days after
treatment. For WL, the fruit were weighed on a Mettler Toledo New
Classic ML Precision Balance (Cole Parmer, Vernon Hills, IL, USA) at
the start and end of the experiment. WL was determined using the
formula (Wi Wf)/Wi 100 ¼ %WL, where Wi represents the initial
mass and Wf the final mass. PF was determined by measuring the maximum force required to penetrate 10 mm into the fruit, using a
texture analyzer (EZ-Test, Shimadzu, MD, USA) equipped with a
2 mm diam cylindrical penetrometer moving at 10 mm/min speed.
Fruit hardness was measured in kg m/s. Color (b* value) was
evaluated using a portable colorimeter BYK Gardner (MT, USA).
Positive b* denotes yellowness while negative b* indicates blueness
of the fruit. pH was measured by an Omega PHH224 Meter with pH
TDS probe (Stamford, CT, USA). TSS content was determined by the
index of refraction using a refractometer (Atago, WA, USA), and is
referred to as degrees Brix. Brix is the percentage of sucrose (sugar)
in the solution (60 Brix is equivalent to a sugar content of 60%).
Titrationwas done with an alkaline solution-sodium hydroxide and
the value represents the g of citric acid/100 mL. Ten readings were
randomly taken for each fruit. Severity of anthracnose and stem
end-rot in mango was evaluated using indexes described in Figs. 1
and 2.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

การงอกของตัวควบคุมที่คูณ ด้วย 100 การทดลองเป็นซ้ำอีกครั้ง ทดสอบการงอก conidial L. theobromae ไม่ทำจาก sporulation ของดีบน PDAMycelial ดิสก์ (4 mm) จากการศึกษาอายุ 5 วันในอาหาร PDAมีการถ่ายโอน aseptically ลงในหลอดทดสอบกับ 15 mL SDW ที่หลอดทดสอบถูกจุ่มลงในอ่างน้ำอุ่นก่อนที่ความเสี่ยงเวลาที่อธิบายไว้ข้างต้น หลังจากแช่น้ำร้อน ดิสก์สาม mycelialมี seeded equidistantly บนแผ่น PDA สด เจริญเติบโต mycelialไม่วัดหลังจาก 7 วันบ่มที่ 25 C. Mycelium ดิสก์seeded ลงสดแผ่น PDA โดยไม่ต้องสัมผัสกับน้ำที่เสิร์ฟร้อนเป็นตัวควบคุม แผ่นที่ 6 ได้สำหรับแต่ละและทดลองถูกซ้ำอีกครั้ง เปอร์เซ็นต์การลดในอาณานิคมเส้นผ่าศูนย์กลางได้ประมาณ โดยความแตกต่างของเส้นผ่านศูนย์กลางโคโลนีควบคุมและการรักษาหาร ด้วยเส้นผ่าศูนย์กลางโคโลนี่ของควบคุม คูณ ด้วย 1002.4 การยอมรับของผลไม้กับน้ำร้อนธรรมชาติผลไม้สีเขียว matured ติดไวรัสไว้ในพลาสติกตาข่ายถุงเพื่อหลีกเลี่ยงผนัง ของห้องน้ำ และการสัมผัสความสะดวกในการจัดการในระหว่างการรักษา แต่ละใช้ผลไม้ 20เวลาเปิดรับแสงตามที่กำหนดไว้ใน 2.3 ส่วน หลังจากนั้น มีผลไม้ระบายความร้อนด้วยน้ำ 10 นาทีและอากาศที่แห้งใน 30 นาทีก่อนที่จะจัดเก็บในห้องมีเครื่องปรับอากาศ (18e20 C) มีการตรวจสอบผลไม้สำหรับรุนแรงร้อนลวก (SS), ภาษาท้องถิ่นร้อนลวกสีน้ำตาลอ่อน (LLBS), และ shriveling (SH)ทันทีหลังจากรักษา วัน และ 14 วันหลังการรักษา ที่ทดลองถูกซ้ำอีกครั้ง2.5. pathogenicity ของโรคสัมผัสกับ HWTดิสก์ระบบกันสะเทือนและ mycelium ของสปอร์ของ C. gloeosporioides ได้สัมผัสในน้ำอุ่น (53 C, 20 นาที) การตรวจสอบความสามารถในการทำให้หึ่งใน matured ผลไม้ติดเชื้อตามธรรมชาติสีเขียว ผลไม้ได้จุ่มลงในโซลูชัน chlorox สำหรับ 5 s และ rinsed ทันทีใน SDWสามครั้ง ด้านหนึ่งของผลไม้ถูกทำเครื่องหมายสามเหลี่ยม(1 ซม. 1) ดีลที่กัน ด้วยกันน้ำสีดำปากกา แต่ละช่องมี inoculated กับดิสก์ mycelium อายุ 5 วัน(4 mm) หรือ 0.5 มล.สปอร์ระงับ (เพาะเฟิร์น 106 mL 1) ตัวควบคุมผลไม้มี inoculated กับ inocula ศึกษา โดยจุ่มในร้อนน้ำ ผลไม้ที่ถูกเก็บไว้ในกล่องพลาสติกโปร่งใสที่เต็มไป ด้วยความชุ่มชื่นกระดาษใส่ผ้าขนหนูในห้องปรับอากาศ และตรวจสอบหลังจากการพัฒนาของโรค symptons 7 วัน ทรีตเมนท์ถูกจำลองในผลไม้สาม และทดลองถูกซ้ำอีกครั้ง2.6 การแอพลิเคชันหลังการเก็บเกี่ยวอาบน้ำน้ำไฟฟ้า ใน 2.3 ที่ต่ำก่อนจุ่มสีเขียว matured ธรรมชาติผลไม้ที่ 53 C สำหรับการติดเชื้อประมาณ 20 นาทีทันทีหลัง ผลไม้ระบายความร้อนด้วยน้ำสำหรับ 10 นาทีอากาศแห้งใน 30 นาที และใส่ในกล่องกระดาษเรียงรายไปด้วย perforatedพลาสติกแผ่น กล่องถูกเก็บไว้ในห้องเครื่องปรับอากาศสำหรับ 14 วัน ผลไม้ที่แช่อยู่ใน 10 นาทีในโซลูชัน Mancozeb (2.5 g /L ของน้ำประปา) หรือ SDW ผู้ทรงควบคุมตรวจสอบ ทดลองถูกซ้ำอีกครั้งพร้อมกับผลไม้ 20 ต่อการรักษา2.7. Assessment of fruit qualityWeight loss (WL), fruit hardness (FH), pH, total soluble solid(TSS), pulp firmness (PF), titratable acidity (TA), color (b* value),and incidence of postharvest diseases were evaluated 14 days aftertreatment. For WL, the fruit were weighed on a Mettler Toledo NewClassic ML Precision Balance (Cole Parmer, Vernon Hills, IL, USA) atthe start and end of the experiment. WL was determined using theformula (Wi Wf)/Wi 100 ¼ %WL, where Wi represents the initialmass and Wf the final mass. PF was determined by measuring the maximum force required to penetrate 10 mm into the fruit, using atexture analyzer (EZ-Test, Shimadzu, MD, USA) equipped with a2 mm diam cylindrical penetrometer moving at 10 mm/min speed.Fruit hardness was measured in kg m/s. Color (b* value) wasevaluated using a portable colorimeter BYK Gardner (MT, USA).Positive b* denotes yellowness while negative b* indicates bluenessof the fruit. pH was measured by an Omega PHH224 Meter with pHTDS probe (Stamford, CT, USA). TSS content was determined by theindex of refraction using a refractometer (Atago, WA, USA), and isreferred to as degrees Brix. Brix is the percentage of sucrose (sugar)in the solution (60 Brix is equivalent to a sugar content of 60%).Titrationwas done with an alkaline solution-sodium hydroxide andthe value represents the g of citric acid/100 mL. Ten readings wererandomly taken for each fruit. Severity of anthracnose and stemสิ้นสุด-rot ในมะม่วงถูกประเมินโดยใช้ดัชนีที่อธิบายไว้ใน Figs. 1และ 2

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การงอกของการควบคุมคูณด้วย 100
การทดลองซ้ำแล้วซ้ำอีกครั้งหนึ่ง การทดสอบการงอกของเชื้อรา L. theobromae
สำหรับไม่ได้ทำเนื่องจากการสร้างสปอร์ที่น่าสงสารบนPDA.
แผ่นเส้นใย (4 มิลลิเมตร) จากเชื้อโรค 5
วันเก่าในจานพีดีเอที่ถูกย้ายปลอดเชื้อลงในหลอดทดสอบกับ15 มิลลิลิตร SDW
หลอดทดลองถูกจุ่มลงในอ่างน้ำอุ่นก่อนที่การสัมผัสครั้งที่อธิบายข้างต้น
หลังจากแช่น้ำร้อนสามแผ่นเส้นใยเมล็ด equidistantly ลงบนแผ่น PDA สด
การเจริญเติบโตของเส้นใยวัดหลังจากวันที่ 7 ของการบ่มที่อุณหภูมิ 25 องศาเซลเซียสแผ่นเส้นใยเมล็ดลงบนแผ่นPDA สดโดยไม่ต้องสัมผัสกับน้ำร้อนทำหน้าที่เป็นตัวควบคุม หกแผ่นมีให้สำหรับการรักษาแต่ละและทดลองซ้ำครั้งเดียว ลดลงร้อยละอาณานิคมขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางเป็นที่คาดกันโดยความแตกต่างในเส้นผ่าศูนย์กลางอาณานิคมของการควบคุมและการรักษาหารด้วยเส้นผ่าศูนย์กลางอาณานิคมของการควบคุมคูณด้วย100 2.4 ความอดทนของผลไม้ลงไปในน้ำร้อนที่ติดเชื้อตามธรรมชาติสุกผลไม้สีเขียวอยู่ในพลาสติกถุงตาข่ายเพื่อหลีกเลี่ยงการสัมผัสผนังของอ่างน้ำและเพื่อความสะดวกในการจัดการในระหว่างการรักษา การรักษาแต่ละคนใช้ 20 ผลไม้ที่มีเวลาการเปิดรับตามที่กำหนดในมาตรา2.3 หลังจากนั้นผลไม้ที่ถูกน้ำระบายความร้อนด้วยเวลา 10 นาทีและอากาศแห้งเป็นเวลา 30 นาทีก่อนที่จะมีการจัดเก็บในห้องแอร์(18e20 C) ผลไม้ที่ได้รับการตรวจสอบอย่างรุนแรงscalds (เอสเอส) เป็นภาษาท้องถิ่นสีน้ำตาลอ่อน scalds (LLBS) และย่น (SH) ทันทีหลังจากที่การรักษา 7 วันและ 14 วันหลังการรักษา ทดลองซ้ำครั้งเดียว. 2.5 ก่อให้เกิดโรคของเชื้อโรคสัมผัสกับ HWT ระงับสปอร์และแผ่นเส้นใยของ gloeosporioides ซีได้รับการเปิดเผยในน้ำร้อน(53 C, 20 นาที) ในการตรวจสอบความสามารถในการที่จะทำให้เกิดการเน่าเปื่อยในผลไม้สุกสีเขียวที่ติดเชื้อตามธรรมชาติ ผลไม้ที่ถูกจุ่มลงในสารละลาย chlorox 5 และล้างทันทีใน SDW สามครั้ง อีกด้านหนึ่งของผลไม้ที่ถูกทำเครื่องหมายกับสามสี่เหลี่ยม(1 1 เซนติเมตร) ดีระยะห่างจากแต่ละอื่น ๆ ที่มีน้ำสีดำปากกา ตารางแต่ละคนได้รับเชื้อด้วยแผ่นเส้นใย 5 วันเก่า(4 มิลลิเมตร) หรือ 0.5 มิลลิลิตรสปอร์แขวนลอย (106 มิลลิลิตรสปอร์ 1) การควบคุมผลไม้ที่ได้รับเชื้อด้วย inocula เชื้อโรคโดยไม่ต้องจุ่มร้อนในน้ำ ผลไม้ที่ถูกเก็บไว้ในกล่องพลาสติกใสที่เรียงรายไปด้วยชื้นผ้าขนหนูกระดาษผ่านการฆ่าเชื้อในห้องปรับอากาศและตรวจสอบหลังจาก7 วันสำหรับการพัฒนาของโรค symptons การรักษาที่แต่ละคนได้รับการจำลองแบบในสามผลไม้และการทดสอบซ้ำครั้งเดียว. 2.6 การประยุกต์ใช้หลังการเก็บเกี่ยวอาบน้ำอุ่นไฟฟ้าที่อธิบายไว้ใน 2.3 ได้รับการอุ่นก่อนที่จะจุ่มสุกผลไม้สีเขียวที่ติดเชื้อตามธรรมชาติที่53 องศาเซลเซียสเป็นเวลา20 นาที ทันทีหลังจากนั้นผลไม้ที่ถูกน้ำระบายความร้อนด้วยเวลา 10 นาที, อากาศแห้งเป็นเวลา 30 นาทีและวางไว้ในกล่องกล่องเรียงรายไปด้วยพรุนแผ่นพลาสติก กล่องถูกเก็บไว้ในห้องที่มีเครื่องปรับอากาศเป็นเวลา 14 วัน ผลไม้แช่เป็นเวลา 10 นาทีในการแก้ปัญหา Mancozeb (2.5 กรัม / ลิตรน้ำประปา) หรือ SDW ทำหน้าที่เป็นผู้ตรวจสอบการควบคุม การทดลองซ้ำอีกครั้งกับ 20 ผลไม้ต่อการรักษา. 2.7 การประเมินคุณภาพผลไม้ลดน้ำหนัก (WL) ความแข็งผลไม้ (FH) ค่า pH, ปริมาณของแข็งที่ละลาย (TSS) ความแน่นเนื้อเยื่อกระดาษ (PF) ปริมาณกรด (TA) สี (ขค่า *) และอุบัติการณ์ของโรคหลังการเก็บเกี่ยวได้ การประเมินผล 14 วันหลังการรักษา สำหรับ WL ผลไม้ที่ถูกชั่งน้ำหนักบน Mettler Toledo ใหม่คลาสสิกML แม่นยำสมดุล (โคล Parmer เวอร์นอนฮิลส์, IL, USA) ที่เริ่มต้นและสิ้นสุดของการทดลอง WL ถูกกำหนดโดยใช้สูตร(Wi Wf) / Wi ¼ 100% WL ที่แสดงให้เห็นถึงการเชื่อมต่อ Wi เริ่มต้นมวลและWf มวลสุดท้าย PF ถูกกำหนดโดยการวัดแรงสูงสุดที่จำเป็นในการเจาะ 10 มมลงไปในผลไม้โดยใช้การวิเคราะห์พื้นผิว(EZ-ทดสอบ Shimadzu, MD, USA) พร้อมกับ2 มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลางทรงกระบอก Penetrometer ย้ายที่ 10 มิลลิเมตร / นาทีความเร็ว. ความแข็งผลไม้ วัดกก m / s สี (ขค่า *) ได้รับการประเมินโดยใช้แบบพกพาcolorimeter BYK การ์ดเนอร์ (มอนแทนาสหรัฐอเมริกา). บวก b * หมายถึงสีเหลืองในขณะที่ b * ลบแสดงสีน้ำเงินของผลไม้ วัดค่า pH โดยโอเมก้า PHH224 มิเตอร์ที่มีค่า pH สอบสวน TDS (Stamford, CT, USA) เนื้อหา TSS ถูกกำหนดโดยดัชนีหักเหโดยใช้เครื่องวัด(Atago, WA, USA) และเรียกว่าเป็นองศาบริกซ์ Brix เป็นร้อยละของน้ำตาลซูโครส (น้ำตาล) ในการแก้ปัญหา (60 Brix เทียบเท่ากับปริมาณน้ำตาล 60%). Titrationwas ทำกับไฮดรอกไซแก้ปัญหาโซเดียมอัลคาไลน์และค่าหมายถึงกรัมของกรดซิตริก/ 100 มล สิบการอ่านที่ถูกถ่ายโดยการสุ่มสำหรับผลไม้แต่ละ ความรุนแรงของแอนแทรกโนและลำต้นปลายเน่าในมะม่วงได้รับการประเมินโดยใช้ดัชนีที่อธิบายไว้ในมะเดื่อ 1 และ 2

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การงอกของการควบคุมคูณด้วย 100 การทดลอง
ซ้ำอีกครั้ง การทดสอบความงอกเป็นเวลาเชื้อรา L . theobromae ไม่เสร็จเนื่องจากการยากจน
บน PDA .
ของดิสก์ ( 4 มม. ) จาก 5-day-old เชื้อโรคในอาหาร PDA
โอน aseptically ลงไปในหลอดทดลองด้วย sdw 15 ml .
หลอดทดสอบถูกจุ่มลงในน้ำอุ่นก่อนอาบน้ำในแสง
ครั้งที่อธิบายข้างต้นหลังจากแช่น้ำร้อน สามเจริญเป็นเมล็ดลงบนจานดิสก์
equidistantly PDA ใหม่
เจริญวัดหลังจาก 7 วัน บ่มที่อุณหภูมิ 25 องศาเซลเซียสโดยเมล็ดลงบนจานดิสก์
PDA สดโดยไม่ต้องสัมผัสกับน้ำร้อนเสิร์ฟ
เป็นตัวควบคุม 6 แผ่น มีการรักษาแต่ละ
ทำการทดลองซ้ำอีกครั้ง การลดเปอร์เซ็นต์ในอาณานิคม