2.6. Cell surface hydrophobicity te

2.6. Cell surface hydrophobicity test
The hydrophobicity of LAB strains was assessed by the test for
microbial adhesion to hydrocarbons (MATH) [30,31]. Three
different solvents: n-hexadecane (apolar solvents), chloroform (a
monopolar and acidic solvent) and ethyl acetate (a monopolar and
basic solvent) were used in this test. Briefly, LAB was grown in MRS
broth at 37 C for 18 h, centrifuged at 10.000 g for 10 min, and the
pellet was washed three times and re-suspended in quarterstrength
Ringer’s solution (1.5 g NaCl, 0.02 g KCl, 0.03 g CaCl2 and
0.03 g NaHCO3). The optical density at 580 nm of the suspension
was measured using UVevis spectrophotometer and recorded as
reading 1. Then, 1.5 mL of cell suspension was mixed for 2 min with
equal volume of each solvents. The mixture was left to stand for
20 min to ensure the complete separation of the two phases after
which 1 mL of the top (water) phase was carefully collected, and the
optical density was measured at 580 nm and recorded (reading 2).
The experiment was repeated three times.
The percentage of cell-surface hydrophobicity (% H) of the strain
adhering to solvent was expressed as: % Hydrophobicity ¼ [(OD580
reading 1 - OD580 reading 2)/OD580 reading 1]  100. According to
their hydrophobicity, isolates were classified into: isolates with
high (71e100%), medium (36e70%) and low (0e35%) hydrophobicity
[32].

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.6. เซลล์ surface hydrophobicity ทดสอบHydrophobicity ของสายพันธุ์ที่ห้องปฏิบัติการได้รับการประเมิน โดยการทดสอบสำหรับจุลินทรีย์ยึดเกาะเพื่อไฮโดรคาร์บอน (คณิตศาสตร์) [30, 31] สามสารละลายที่แตกต่าง: คลอโรฟอร์ม (a, n-hexadecane (สารละลาย apolar)ตัวทำละลาย monopolar และกรด) และเอทิลอะซิเตท (แบบ monopolar และตัวทำละลายพื้นฐาน) ถูกนำมาใช้ในการทดสอบนี้ สั้น ๆ แล็บถูกปลูกในนางน้ำซุปที่ 37 C สำหรับ 18 h ผลิตภัณฑ์ที่ 10.000 กรัม 10 นาที และเม็ดล้าง 3 ครั้ง และหยุดชั่วคราวอีกครั้งใน quarterstrengthโซลูชั่นของเสียงกริ่ง (1.5 g NaCl, 0.02 กรัม KCl, 0.03 g CaCl2 และ0.03 กรัม NaHCO3) ความหนาแน่นออปติคัลที่ 580 nm ของกันกระเทือนโดยวัดบันทึก และใช้สเปค UVevisอ่าน 1 แล้ว 1.5 mL ของระงับเซลล์ถูกผสมสำหรับ 2 นาทีด้วยระดับเสียงที่เท่ากันของแต่ละสารละลาย ส่วนผสมที่เหลือ20 นาทีเพื่อให้แยกสมบูรณ์ 2 ขั้นตอนหลังจากซึ่ง 1 มล.ของเฟสด้านบน (น้ำ) เก็บรวบรวมอย่างระมัดระวัง และโดยวัดความหนาแน่นออปติคัลที่ 580 nm และบันทึก (อ่าน 2)การทดลองซ้ำ 3 ครั้งเปอร์เซ็นต์ของเซลล์ surface hydrophobicity (% H) ของสายพันธุ์ยึดมั่นในตัวทำละลายถูกแสดงเป็น: % Hydrophobicity ¼ [(OD580reading 1-OD580 reading 2)/OD580 อ่าน 1] 100 ตามที่ตน hydrophobicity แยกถูกแบ่งออกเป็น: แยกด้วยสูง (71e100%), ปานกลาง (36e70%) และต่ำ (0e35%) hydrophobicity[32]

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.6 มือถือไฮโดรพื้นผิวทดสอบ
ไฮโดรสายพันธุ์ LAB ได้รับการประเมินโดยการทดสอบสำหรับ
การยึดเกาะจุลินทรีย์ไฮโดรคาร์บอน (คณิตศาสตร์) [30,31] สาม
ตัวทำละลายที่แตกต่างกัน: N-hexadecane (ตัวทำละลาย apolar) คลอโรฟอร์ม (เป็น
ตัวทำละลาย monopolar และเป็นกรด) และเอทิลอะซิเตท (ก monopolar และ
ตัวทำละลายพื้นฐาน) ถูกนำมาใช้ในการทดสอบนี้ สั้น ๆ , LAB ถูกปลูกใน MRS
น้ำซุปที่ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 18 ชั่วโมง, หมุนเหวี่ยงที่ 10.000 กรัมเป็นเวลา 10 นาทีและ
เม็ดถูกล้างสามครั้งและอีกครั้งที่ลอยอยู่ใน quarterstrength
แก้ปัญหาริงเกอร์ (1.5 กรัมโซเดียมคลอไรด์, 0.02 กรัมโพแทสเซียมคลอไรด์ 0.03 กรัม CaCl2 และ
0.03 กรัม NaHCO3) ความหนาแน่นของแสงที่ 580 นาโนเมตรของการระงับ
การวัดโดยใช้ UVevis spectrophotometer และบันทึกเป็น
อ่าน 1 แล้ว 1.5 มลเซลล์แขวนลอยผสมเป็นเวลา 2 นาทีกับ
ปริมาณที่เท่ากันของแต่ละตัวทำละลาย ส่วนผสมที่ถูกทิ้งให้ยืนสำหรับ
20 นาทีเพื่อให้แน่ใจว่าการแยกสมบูรณ์ของสองขั้นตอนหลังจาก
ที่ 1 มิลลิลิตรของด้านบน (น้ำ) ขั้นตอนที่ถูกเก็บรวบรวมอย่างระมัดระวังและ
ความหนาแน่นของแสงวัดที่ 580 นาโนเมตรและบันทึกได้ (อ่าน 2).
ทดลองซ้ำสามครั้ง.
ร้อยละของเซลล์ผิวไฮโดร (H%) ของสายพันธุ์
ยึดมั่นในการทำละลายจะถูกแสดงเป็น:% hydrophobicity ¼ [(OD580
อ่าน 1 - OD580 อ่าน 2) / OD580 อ่าน 1]? 100 ตามที่
hydrophobicity ของพวกเขาแยกแบ่งเป็น: แยกกับ
สูง (71e100%) กลาง (36e70%) และต่ำ (0e35%) ไฮโดร
[32]

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.6 เซลล์การทดสอบบรรจุภัณฑ์พื้นผิวการบรรจุภัณฑ์ของห้องปฏิบัติการทดสอบสำหรับประเมินสายพันธุ์โดยการยึดเกาะของไฮโดรคาร์บอน ( ทางคณิตศาสตร์ ) [ 30,31 ] สามตัวทำละลายที่แตกต่างกัน : n-hexadecane ( apolar ตัวทำละลายคลอโรฟอร์ม ( )โมโนโพล่าร์และตัวทำละลายกรด ) และเอทิลอะซิเตท ( โมโนโพล่าร์ และตัวทำละลายพื้นฐาน ) สถิติที่ใช้ในการทดสอบนี้ สั้น ๆ , ทดลองปลูกในนางน้ำซุปที่ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 18 ชั่วโมง ระดับที่ 10.000 กรัมเป็นเวลา 10 นาที และเม็ดล้างสามครั้งและอีกครั้งที่แขวนลอยใน quarterstrengthเสียงของโซลูชั่น ( 1.5 กรัม 0.02 g NaCl KCl 0.03 กรัมผลิตและ0.03 กรัม โซเดียมไบคาร์บอเนต ) ความหนาแน่นของแสงที่ 580 nm ของช่วงล่างการวัด uvevis Spectrophotometer และบันทึกเป็นอ่าน 1 แล้ว 1.5 มิลลิลิตร ผสมเซลล์แขวนลอยเป็นเวลา 2 นาทีขนาดเท่ากัน ในสารละลาย ส่วนผสมที่ถูกทิ้งให้ยืน20 นาทีเพื่อให้แน่ใจว่าแยกสองขั้นตอนหลังที่ 1 มิลลิลิตร ด้านบน ( น้ำ ) ระยะคือการเก็บรวบรวมอย่างระมัดระวังและความหนาแน่นของแสง คือ วัดที่ 580 nm และบันทึก ( อ่าน 2 )และทำการทดลองซ้ำ 3 ครั้งร้อยละของความไม่ชอบพื้นผิวเซลล์ ( % H ) ของสายพันธุ์ยึดมั่นในตัวทำละลายจะแสดงเป็น : % ไม่ชอบ¼ [ ( od580อ่าน 1 - od580 อ่าน 2 ) / od580 อ่าน 1 ] 100 ตามบรรจุภัณฑ์ของพวกเขาสามารถแบ่งออกเป็น : ไอโซเลทสูง ( 71e100 % ) กลาง ( 36e70 % ) และต่ำ ( ไม่ชอบ 0e35 % )[ 32 ]