The antimicrobial effects of the RC

The antimicrobial effects of the RC and SCP extracts were tested against some food borne pathogens. E. coli (ATCC 25922), S. aureus(ATCC 25923), L. monocytogenes (ATCC 19115), Salmonella Typhimurium(ATCC 14028) and B. cereus (ATCC 10876) were used as test
microorganisms. Two different inoculum doses were applied: low(~3 log CFU/mL) and high (~6 log CFU/mL) to detect the responses of the RC and SCP extracts for different contamination levels. Each of the test cultures were grown at 37 C for 18e24 h in Brain Heart Infusion Broth (BHI, pH 7.4 ± 0.2, LabM-LAB049), and then diluted with 0.1% sterile peptone water (PW, pH 6.3 ± 0.2, Oxoid-L37) to achieve a final inoculum of 6.0 log CFU/mL (high inoculum dose)and 3.0 log CFU/mL (low inoculum dose), appropriately. The MIC value of the each extract was determined by modification of the method described by LaBombardi, Sotos, Allen, and Sullivan (2008).200 mL of extract was placed into the first well of a 96-well microtiter panel. 100 mL BHI Broth was placed into each of the wells from 2nd to 12th in the row. 100 mL of the extract in the first well
was taken and placed into the 2nd well and mixed with BHI Broth.100 mL was taken from this mix in the 2nd well and placed into the 3rd well. Serial dilutions were made from the 2nd well to the 11th well by this method described shortly. 100 mL of the mixture was taken from the 11th well and was discarded. The 12th well which contains no extract was used as a positive control to detect the microbial growth. The final concentrations of extracts in the wells were; 1:1 (100%), 1:2 (50%), 1:4 (25%), 1:8 (12.50%), 1:16 (6.25%),1:32 (3.13%), 1:64 (1.56%), 1:128 (0.78%), 1:256 (0.39%), 1:512(0.20%), 1:1024 (0.10%), and the control (0%). After dilution, 100 mL of test culture was inoculated into each well from 1st to 12th. This procedure was repeated for each extract, each test microorganism and each inoculum dose, separately. The MIC plates were incubated
at 37 C for 24e48 h and the survival of the test microorganismwas checked by plating on Brain Heart Infusion Agar (BHI, pH 7.4 ± 0.2,LabM-LAB048). The petri dishes were incubated at 37 C for 18e24 h then the resultswere recorded. Although, the microflora of
the extracts were controlled to detect the presence of competitive microorganisms, the initial microflora of the extracts were analyzed by surface plating on BHI Agar for each treatment as a negative control. Three replicate trials with 2 parallels were carried out for each experiment.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ผลต้านจุลชีพของสารสกัดจาก RC และ SCP ได้ทดสอบกับเชื้อโรคที่ติดต่อจากอาหาร ใช้ e. coli (ATCC 25922), S. aureus(ATCC 25923), L. monocytogenes (ATCC 19115), Salmonella Typhimurium(ATCC 14028) และ B. cereus (ATCC 10876) เป็นการทดสอบจุลินทรีย์ ใช้ปริมาณ inoculum ที่แตกต่างกันสอง: ต่ำ (~ 3 ล็อก อาหรับ/mL) และสูง (~ 6 บันทึก อาหรับ/mL) เพื่อตรวจหาการตอบสนองของสารสกัด RC และ SCP สำหรับระดับการปนเปื้อนต่าง ๆ ทดสอบแล้ว เจือจาง ด้วยน้ำ peptone เป็นหมัน 0.1% (PW ค่า pH 6.3 ± 0.2, Oxoid L37) ให้ inoculum สุด 6.0 ได้เติบโตที่ 37 C สำหรับ 18e24 h ในสมองหัวใจคอนกรีตซุป (BHI ค่า pH 7.4 ± 0.2, LabM-LAB049), และวัฒนธรรมแต่ละล็อกล็อก 3.0 อาหรับ/mL (ยาต่ำ inoculum), และ อาหรับ/mL (ยาสูง inoculum) อย่างเหมาะสม กำหนดค่า MIC ของสารสกัดแต่ละ โดยการปรับเปลี่ยนวิธีการอธิบายไว้ โดย LaBombardi, Sotos อัลเลน และซัลลิแวน (2008) .200 mL สารสกัดวางลงในบ่อแรกของแผง microtiter 96 ดี 100 มิลลิลิตร BHI ซุปวางลงในหลุมจาก 2 ถึง 12 ในแถวแต่ละ 100 มิลลิลิตรของสารสกัดในบ่อแรกดำเนินการ และอยู่ในอันดับดี และผสมกับ Broth.100 BHI mL นำมาจากส่วนผสมนี้ใน 2 ดี และอยู่ใน 3 ดี Dilutions อนุกรมได้ทำจากดี 2 ดี 11 โดยวิธีนี้อธิบายไม่นานกับ ส่วนผสม 100 มิลลิลิตรถ่ายจาก 11 ที่ดี และถูกละทิ้ง 12 ดีซึ่งสารสกัดไม่ถูกใช้เป็นตัวควบคุมบวกการตรวจสอบการเจริญเติบโตจุลินทรีย์ ความเข้มข้นสุดท้ายของสารสกัดในหลุมได้ 1:1 (100%), 1:2 (50%), 1:4 (25%), 1:8 (12.50%), 1:16 (6.25%), 1:32 (3.13%), 1:64 (1.56%), 1:128 (0.78%), 1:256 (0.39%) 1:512(0.20%), 1:1024 (0.10%), และการควบคุม (0%) หลังจากเจือจาง 100 mL ของทดสอบถูก inoculated ในแต่ละดีจาก 1 ถึง 12 ขั้นตอนนี้สำหรับแยกแต่ละ แต่ละการทดสอบจุลินทรีย์ และแต่ละ ปริมาณ inoculum แยกซ้ำอีกครั้ง แผ่น MIC ได้รับการกกที่ 37 C สำหรับ 24e48 h และการอยู่รอดของ microorganismwas ทดสอบที่ตรวจสอบ โดยชุบบนสมองหัวใจคอนกรีต Agar (BHI ค่า pH 7.4 ± 0.2, LabM-LAB048) จาน petri ได้รับการกกที่ 37 C 18e24 h แล้ว resultswere ที่บันทึก ถึงแม้ว่า จุลินทรีย์ของสารสกัดที่ควบคุมการตรวจหาจุลินทรีย์ที่แข่งขัน จุลินทรีย์เริ่มต้นของสารสกัดถูกวิเคราะห์ โดยผิวชุบใน BHI Agar สำหรับทรีตเมนท์เป็นตัวควบคุมค่าลบ สาม replicate ทดลอง ด้วยแนวที่ 2 ได้ดำเนินการสำหรับแต่ละการทดลอง

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ผลกระทบต่อยาต้านจุลชีพของสารสกัดจาก RC และ SCP ถูกนำมาทดสอบกับอาหารเป็นพาหะเชื้อโรคบาง E. coli (ATCC 25922), เชื้อ S. aureus (ATCC 25923), L. monocytogenes (ATCC 19115) Salmonella Typhimurium (ATCC 14028) และ B. cereus (ATCC 10876) ถูกนำมาใช้การทดสอบ
จุลินทรีย์ สองปริมาณเชื้อที่แตกต่างกันถูกนำไปใช้: ต่ำ (~ 3 log CFU / มิลลิลิตร) และสูง (~ 6 log CFU / มิลลิลิตร) ในการตรวจสอบการตอบสนองของ RC และสารสกัดจาก SCP ระดับการปนเปื้อนที่แตกต่างกัน แต่ละวัฒนธรรมการทดสอบปลูกที่ 37 องศาเซลเซียสสำหรับ 18e24 H ในสมองหัวใจ Infusion น้ำซุป (BHI ค่า pH 7.4 ± 0.2 LabM-LAB049) แล้วเจือจางด้วย 0.1% น้ำหมันเปปโตน (PW ค่า pH 6.3 ± 0.2 Oxoid -L37) เพื่อให้บรรลุเชื้อสุดท้ายของ 6.0 log CFU / mL (ปริมาณเชื้อสูง) และ 3.0 log CFU / mL (ปริมาณเชื้อต่ำ) อย่างเหมาะสม ค่า MIC ของสารสกัดจากแต่ละถูกกำหนดโดยการปรับเปลี่ยนวิธีการอธิบายโดย LaBombardi, Sotos อัลเลนและซัลลิแวน (2008) .200 มิลลิลิตรของสารสกัดถูกนำมาวางลงในดีครั้งแรกของแผงไมโคร 96 หลุม 100 มล BHI น้ำซุปถูกวางไว้ในแต่ละหลุมที่ 2 จาก 12 ในแถว 100 มลของสารสกัดในดีแรก
ที่ถูกนำมาวางลงและดี 2 และผสมกับ BHI Broth.100 มลถูกนำมาจากการผสมนี้ได้เป็นอย่างดี 2 และวางลงในดี 3 เจือจางอนุกรมถูกสร้างขึ้นมาจากบ่อที่ 2 วันที่ 11 ดีโดยวิธีการนี้อธิบายไม่นาน 100 มิลลิลิตรส่วนผสมที่ถูกนำมาจากดีวันที่ 11 และถูกทิ้ง ดีที่ 12 ซึ่งมีสารสกัดไม่ถูกนำมาใช้เป็นตัวควบคุมในเชิงบวกในการตรวจสอบการเจริญเติบโตของเชื้อจุลินทรีย์ ความเข้มข้นของสารสกัดสุดท้ายในหลุมที่ถูก; 1: 1 (100%), 1: 2 (50%), 1: 4 (25%), 1: 8 (12.50%) 01:16 (6.25%) 01:32 (3.13%) 1: 64 (1.56%) 1: 128 (0.78%) 1: 256 (0.39%) 1: 512 (0.20%) 1: 1,024 (0.10%) และการควบคุม (0%) หลังจากเจือจาง 100 มลของวัฒนธรรมทดสอบเชื้อในแต่ละอย่างดีจากวันที่ 1 ถึงวันที่ 12 ขั้นตอนนี้ซ้ำสำหรับแต่ละสารสกัด, การทดสอบแต่ละจุลินทรีย์และแต่ละปริมาณของจุลินทรีย์ที่แยกจากกัน แผ่น MIC ถูกบ่ม
ที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียสเป็น 24e48 H และความอยู่รอดของ microorganismwas การทดสอบการตรวจสอบโดยชุบบนสมองหัวใจ Infusion วุ้น (BHI ค่า pH 7.4 ± 0.2 LabM-LAB048) จาน Petri ถูกบ่มที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียสเป็น 18e24 H แล้ว resultswere ที่บันทึกไว้ แม้ว่าจุลินทรีย์ของ
สารสกัดถูกควบคุมการตรวจสอบสถานะของจุลินทรีย์แข่งขันจุลินทรีย์เริ่มต้นของสารสกัดที่ได้มาวิเคราะห์โดยการชุบผิว BHI วุ้นสำหรับการรักษาแต่ละครั้งเป็นตัวควบคุมเชิงลบ สามการทดลองทำซ้ำกับ 2 แนวได้ดำเนินการสำหรับแต่ละการทดลอง

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การต้านจุลชีพของ RC และระบบทดสอบกับสารสกัดจุลินทรีย์ก่อโรคในอาหาร . ( E . coli ATCC 25922 ) , S . aureus ( ATCC 25923 , L . monocytogenes ( ATCC 19115 ) , Salmonella Typhimurium และ 14028 ) และ B . cereus ( ATCC 9658 ) ที่ใช้ทดสอบจุลินทรีย์ สองปริมาณเชื้อต่างกัน ใช้น้อย ( ~ 3 log CFU / ml ) และสูง ( ~ 6 log CFU / ml ) เพื่อตรวจสอบการตอบสนองของ RC และเป็นสารสกัดจากระดับการปนเปื้อนต่าง ๆ แต่ละวัฒนธรรมทดสอบปลูกที่ 37 C H ใน สมอง หัวใจ 18e24 infusion broth ( BHI pH 7.4 ± 0.2 , labm-lab049 ) แล้วเจือจางด้วยน้ำหมัน extract 0.1% ( PW , pH 6.3 ± 0.2 , oxoid-l37 ) เพื่อให้ได้สายพันธุ์สุดท้ายของ 6.0 log CFU / ml ( ปริมาณเชื้อสูง ) และ 3.0 log CFU / ml ( ปริมาณเชื้อน้อย ) อย่างเหมาะสม ค่า MIC ของแต่ละสารสกัดถูกกำหนดโดยการดัดแปลงวิธีการอธิบายโดย labombardi sotos , อัลเลน และ ซัลลิแวน ( 2008 ) 200 ml สารสกัดอยู่ในแรกของแผง 96 ดีไมโคร . 100 มิลลิลิตร น้ำซุป BHI ถูกวางไว้ในแต่ละหลุมที่ 2 จาก 12 ในแถว 100 มิลลิลิตรของสารสกัดในก่อนดีถูกวางเป็น 2 ดี และผสมกับ BHI broth.100 ml ได้มาจากส่วนผสมนี้ใน 2 ดี และอยู่ในอันดับ 3 ด้วย ซีเรียลเจือจาง ทำมาจาก 2 กับ 11 ครับ โดยวิธีนี้อธิบายในไม่ช้า 100 มิลลิลิตรผสมได้มาจาก 11 ดีและถูกทิ้ง ดี 12 ที่ไม่มีสารสกัดที่ใช้เป็นตัวควบคุมบวกเพื่อตรวจสอบการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ ความเข้มข้นของสารสกัดในหลุมสุดท้าย คือ 1 : 1 , 1 : 2 ( 100 % ) ( 50% ) , 1 : 4 ( 25% ) , 1 : 8 ( 12.50 % ) , 1 : 16 ( 6.25% ) 1 : 32 ( 3.13% ) , 1 : 64 ( 1.56 % ) 1:128 ( 0.78 % ) 1:256 ( 0.39 % ) 1:512 ( 0.20 % ) 1:1024 ( 0.10% ) และการควบคุม ( 0% ) หลังจากเจือจาง 100 ml ของวัฒนธรรมทดสอบเป็นเชื้อกันตั้งแต่วันที่ 12 ขั้นตอนนี้ซ้ำสำหรับแต่ละแยก แต่ละทดสอบแต่ละเชื้อจุลินทรีย์และขนาด , แยก ไมค์ถูกบ่มแผ่นที่ 37 องศาเซลเซียส 24e48 H และความอยู่รอดของการทดสอบ microorganismwas ตรวจสอบโดยชุบบนแช่หัวใจสมองวุ้น ( BHI pH 7.4 ± 0.2 , labm-lab048 ) ในจานเพาะเลี้ยงอุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียส 18e24 H แล้ว ได้แก่ การบันทึก ถึงแม้ว่า , จุลินทรีย์ของสารสกัด ถูกควบคุมตรวจสอบการแสดงตนของจุลินทรีย์จุลินทรีย์เริ่มต้นของการแข่งขัน , สารสกัดได้มาจากผิวชุบบนอาหารวุ้น BHI เพื่อการรักษาแต่ละครั้งเป็นชุดควบคุมลบ 3 ทำซ้ำการทดลองมี 2 แนวทดลองในแต่ละการทดลอง