IntroductionMaterials and methods2.

Introduction
Materials and methods
2.1. Natural source

Marigold flowers (T. erecta) from a single batch were used for all experiments. The batch contained flowers with a yellow-orange coloration ratio of 10:90 and 30% average weight of receptacles. The marigold flowers were divided in two sets. One set was conserved fresh and separated in two subsets. One of these subsets was processed via solid state fermentation. As for the second fresh flower subset, the petals were separated from their receptacles and processed via uncontrolled ensilage. For the second set, the petals were separated from their receptacles and processed via enzymatic treatments using a raw enzymatic extract (non-commercial enzymes) or commercial cellulose. In order to verify the effect of the original marigold flower moisture on the yield, the marigold was processed in two separate batches: one using fresh petals and the other using dried petals. The dried petals were obtained by dehydration under environmental conditions up to a moisture content of 10% (±1%). Also, to avoid changes on both fresh and dried marigold, all sets were stored at 4 °C and sealed in black polyethylene bags until they were used during experimental assays.

2.2. Traditional uncontrolled ensilage

In order to evaluate the traditional ensilage, the marigold flowers, including theirs receptacles, were stored for up to seven weeks in a closed yard under uncontrolled conditions. At the end, the product obtained was dried and processed to obtain marigold flower flour.

2.3. Microorganisms culture

A mixed culture of microorganisms (Flavobacterium IIb, Acinetobacter anitratus, and Rhizopus nigricans) were propagated and mixed, in the proportions according to Navarrete-Bolaños et al. (2003), to obtain the starter inoculum used in the solid-state fermentation assays. Furthermore, the starter inoculum was filtrated to obtain a raw enzymatic extract that was used in the enzymatic treatment with non-commercial enzymes.

2.4. Enzymatic treatments with non-commercial enzymes

In order to evaluate the effect of raw enzymatic extract on the marigold petals, the supernatants obtained from mixed culture filtrated were blended with dried or fresh petals in 1:12 (w/v) ratio and kept on rotary shaker at 28 °C and 175 rpm (Forma Scientific, model 4520) for 24 h. The samples treated were filtered to separate their solid and liquid phases. The solid phases, marigold petals treated, were processed to obtain marigold flower flour.

2.5. Enzymatic treatment with commercial cellulase

Commercial enzyme solution at 0.05 (±0.01% (w/v)) concentration and endo-1,4-β-d-glucanase (EC 3.2.1.4 from Aspergillus niger, Sigma Chemical Co., St. Louis, MO) activity was used for enzymatic treatment with commercial cellulase according to Navarrete-Bolaños et al. (2004a). In the same manner as for the enzymatic treatments with raw enzymatic extract, the commercial enzyme solutions were blended with dried or fresh petals in 1:12 (w/v) ratio and kept on rotary shaker at 28 °C, 175 rpm for 120 h, the samples treated were filtered and the solid phases were processed to obtain marigold flower flour.

2.6. Solid state fermentation

The mixed culture microorganisms was blended with fresh marigold flower in 1.5:1 (w/v) ratio on a modular rotating drum fermentation system under the following conditions: 73.8% moisture content, intermittent agitation every 14.8 h, and 4.1 l inlet air/min. These conditions maximize the total xanthophylls extraction (Navarrete-Bolaños et al., 2004b) from the fermented marigold flower flour obtained.

2.7. Marigold flower flour

The products obtained by all proposed processes, enzymatic treatment, solid state fermentation and ensilage, were dehydrated in a vacuum oven (Shel Lab. model 1430) to 10% (±1%) moisture content, and milled (0.5-mm sieve) using a Brinkmann mill (Brinkmann, Westbury, NY). The flour obtained was analyzed by AOAC (1984) method 970.64 to determine the total xanthophylls concentration and to obtain oleoresin via a lixiviation process.

2.8. Xanthophylls extraction by hexane

Solid state fermentation and ensilage processes

Solid state fermentation and ensilage processes

The experimental assays on the rotating drum fermentation system under optimum condition resulted on marigold flower flour with higher content of xanthophylls (17.81 (±0.2) g of total xanthophylls/kg of flour) compared against the xanthophylls concentration in flours obtained by the commercial ensilage process (11.54 (±0.5) g of total xanthophylls/kg of flour). In addition, the commercial ensilage required a long processing time, nearly four weeks, to obtain this quality flour (Fig. 2). The difference of the xanthophylls concentration between these processes is associated to the oxygen requirements of the microorganisms. It appears that the oxygen depletion, in the commercial ensilage process, limits the synthesis of hydrolytic enzymes with cellulase activity, whe

Introduction
Materials and methods
2.1. Natural source

Marigold flowers (T. erecta) from a single batch were used for all experiments. The batch contained flowers with a yellow-orange coloration ratio of 10:90 and 30% average weight of receptacles. The marigold flowers were divided in two sets. One set was conserved fresh and separated in two subsets. One of these subsets was processed via solid state fermentation. As for the second fresh flower subset, the petals were separated from their receptacles and processed via uncontrolled ensilage. For the second set, the petals were separated from their receptacles and processed via enzymatic treatments using a raw enzymatic extract (non-commercial enzymes) or commercial cellulose. In order to verify the effect of the original marigold flower moisture on the yield, the marigold was processed in two separate batches: one using fresh petals and the other using dried petals. The dried petals were obtained by dehydration under environmental conditions up to a moisture content of 10% (±1%). Also, to avoid changes on both fresh and dried marigold, all sets were stored at 4 °C and sealed in black polyethylene bags until they were used during experimental assays.

2.2. Traditional uncontrolled ensilage

In order to evaluate the traditional ensilage, the marigold flowers, including theirs receptacles, were stored for up to seven weeks in a closed yard under uncontrolled conditions. At the end, the product obtained was dried and processed to obtain marigold flower flour.

2.3. Microorganisms culture

A mixed culture of microorganisms (Flavobacterium IIb, Acinetobacter anitratus, and Rhizopus nigricans) were propagated and mixed, in the proportions according to Navarrete-Bolaños et al. (2003), to obtain the starter inoculum used in the solid-state fermentation assays. Furthermore, the starter inoculum was filtrated to obtain a raw enzymatic extract that was used in the enzymatic treatment with non-commercial enzymes.

2.4. Enzymatic treatments with non-commercial enzymes

In order to evaluate the effect of raw enzymatic extract on the marigold petals, the supernatants obtained from mixed culture filtrated were blended with dried or fresh petals in 1:12 (w/v) ratio and kept on rotary shaker at 28 °C and 175 rpm (Forma Scientific, model 4520) for 24 h. The samples treated were filtered to separate their solid and liquid phases. The solid phases, marigold petals treated, were processed to obtain marigold flower flour.

2.5. Enzymatic treatment with commercial cellulase

Commercial enzyme solution at 0.05 (±0.01% (w/v)) concentration and endo-1,4-β-d-glucanase (EC 3.2.1.4 from Aspergillus niger, Sigma Chemical Co., St. Louis, MO) activity was used for enzymatic treatment with commercial cellulase according to Navarrete-Bolaños et al. (2004a). In the same manner as for the enzymatic treatments with raw enzymatic extract, the commercial enzyme solutions were blended with dried or fresh petals in 1:12 (w/v) ratio and kept on rotary shaker at 28 °C, 175 rpm for 120 h, the samples treated were filtered and the solid phases were processed to obtain marigold flower flour.

2.6. Solid state fermentation

The mixed culture microorganisms was blended with fresh marigold flower in 1.5:1 (w/v) ratio on a modular rotating drum fermentation system under the following conditions: 73.8% moisture content, intermittent agitation every 14.8 h, and 4.1 l inlet air/min. These conditions maximize the total xanthophylls extraction (Navarrete-Bolaños et al., 2004b) from the fermented marigold flower flour obtained.

2.7. Marigold flower flour

The products obtained by all proposed processes, enzymatic treatment, solid state fermentation and ensilage, were dehydrated in a vacuum oven (Shel Lab. model 1430) to 10% (±1%) moisture content, and milled (0.5-mm sieve) using a Brinkmann mill (Brinkmann, Westbury, NY). The flour obtained was analyzed by AOAC (1984) method 970.64 to determine the total xanthophylls concentration and to obtain oleoresin via a lixiviation process.

2.8. Xanthophylls extraction by hexane

Solid state fermentation and ensilage processes

The experimental assays on the rotating drum fermentation system under optimum condition resulted on marigold flower flour with higher content of xanthophylls (17.81 (±0.2) g of total xanthophylls/kg of flour) compared against the xanthophylls concentration in flours obtained by the commercial ensilage process (11.54 (±0.5) g of total xanthophylls/kg of flour). In addition, the commercial ensilage required a long processing time, nearly four weeks, to obtain this quality flour (Fig. 2). The difference of the xanthophylls concentration between these processes is associated to the oxygen requirements of the microorganisms. It appears that the oxygen depletion, in the commercial ensilage process, limits the synthesis of hydrolytic enzymes with cellulase activity, whe

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

แนะนำวัสดุและวิธีการ2.1. ธรรมชาติแหล่งดอกดาวเรือง (ต.เรือง) จากชุดเดียวถูกใช้สำหรับการทดลองทั้งหมด ชุดประกอบดอกไม้สีส้มเหลืองอัตราส่วนของน้ำหนักเฉลี่ย 10:90 และ 30% ของภาชนะ ดอกดาวเรืองถูกแบ่งออกเป็นสองชุด ชุดอนุรักษ์สด และคั่นในชุดย่อยสอง ชุดย่อยเหล่านี้อย่างใดอย่างหนึ่งถูกประมวลผลผ่านสถานะของแข็งหมัก สำหรับชุดย่อยดอกไม้สดสอง กลีบแยกออกจากภาชนะบรรจุของพวกเขา และประมวลผลผ่านทาง ensilage ไม่สามารถควบคุม สำหรับชุดสอง กลีบแยกออกจากภาชนะบรรจุของพวกเขา และประมวลผลผ่านทางเอนไซม์บำบัดโดยใช้สารสกัดจากเอนไซม์ดิบ (เอนไซม์ไม่ใช่เชิงพาณิชย์) หรือเซลลูโลสพาณิชย์ ตรวจสอบผลของความชื้นของดอกไม้ดาวเรืองเดิมผลผลิต ดาวเรืองถูกประมวลผลในชุดแยกต่างหากที่สอง: หนึ่งใช้กลีบดอกสดและอื่น ๆ โดยใช้แห้งกลีบ กลีบดอกแห้งได้รับ โดยการคายน้ำภายใต้สภาพแวดล้อมความชื้นไม่เกิน 10% (± 1%) นอกจากนี้ เพื่อหลีกเลี่ยงการเปลี่ยนแปลงบนดาวเรืองทั้งสด และแห้ง ชุดทั้งหมดเก็บไว้ที่ 4 ° C และปิดผนึกในถุงพลาสติกสีดำจนกว่าพวกเขาใช้ในระหว่างการทดลอง assays2.2. แบบดั้งเดิมไม่สามารถควบคุม ensilageเพื่อประเมิน ensilage แบบดั้งเดิม ดอกดาวเรือง รวมทั้งภาชนะบรรจุ พวกเขาถูกเก็บไว้นานถึงเจ็ดสัปดาห์ในบ้านปิดไม่มีการควบคุมสภาวะ ปลาย ผลิตภัณฑ์ที่ได้รับคือแห้ง และแปรรูปจะได้รับแป้งดอกไม้ดาวเรือง2.3. จุลินทรีย์วัฒนธรรมวัฒนธรรมผสมของจุลินทรีย์ (Flavobacterium IIb, Acinetobacter anitratus และบท nigricans) แพร่กระจาย และ ผสม ในสัดส่วนตาม Navarrete Bolaños et al. (2003), รับ inoculum starter ที่ใช้ใน assays solid-state หมัก นอกจากนี้ starter inoculum เป็น filtrated จะได้รับสารสกัดจากเอนไซม์การวัตถุดิบที่ใช้ในการรักษาเอนไซม์กับเอนไซม์ไม่2.4. เอนไซม์บำบัด ด้วยเอนไซม์ไม่ใช่เชิงพาณิชย์เพื่อประเมินผลของสารสกัดจากเอนไซม์ดิบในกลีบดอกดาวเรือง filtrated supernatants ที่ได้รับจากวัฒนธรรมผสมได้ผสมกับกลีบดอกที่แห้ง หรือสด 1:12 (w/v) ในอัตราส่วนและเก็บไว้บนหมุนปั่นที่ 28 ° C และ 175 rpm (Forma วิทยาศาสตร์ รุ่น 4520) ใน 24 ชม ตัวอย่างที่ถือว่าถูกถูกกรองแยกเฟสของแข็ง และของเหลว ระยะไม้ รักษา กลีบดอกดาวเรืองถูกประมวลผลรับแป้งดอกไม้ดาวเรือง2.5. เอนไซม์รักษา ด้วยค้า cellulaseใช้เอนไซม์ค้าโซลูชันที่ 0.05 ความเข้มข้น (ค่าความคลากเคลื่อน% (w/v)) และเอนโด 1, 4-β-d-glucanase (EC 3.2.1.4 จาก Aspergillus ไนเจอร์ บริษัทสารเคมี Sigma เซนต์หลุยส์ MO) กิจกรรมรักษาเอนไซม์ cellulase พาณิชย์ตาม Navarrete Bolaños et al. (2004a) ด้วย ในลักษณะเดียวกันสำหรับการรักษาเอนไซม์สกัดจากเอนไซม์ดิบ โซลูชั่นเชิงพาณิชย์เอนไซม์ถูกผสมกับกลีบแห้ง หรือสด 1:12 (w/v) ในอัตราส่วนและเก็บไว้บนหมุนปั่นที่ 28 ° C, 175 rpm สำหรับ 120 h ตัวอย่างถือว่า และเฟสของแข็งถูกประมวลผลเพื่อขอรับดาวเรืองดอกไม้แป้ง2.6. solid state หมักจุลินทรีย์ที่ผสมวัฒนธรรมถูกผสม ด้วยดอกดาวเรืองสดในอัตราส่วน 1.5:1 (w/v) บนเป็นส่วน ๆ หมุนถังหมักระบบภายใต้เงื่อนไขต่อไปนี้: 73.8% ความชื้น ความปั่นป่วนเป็นระยะ ๆ ทุก h 14.8 และ 4.1 ลิตรช่องอากาศ/นาที เงื่อนไขเหล่านี้เพิ่มการสกัดรวม xanthophylls (Navarrete Bolaños et al. 2004b) จากแป้งดอกดาวเรืองที่หมักได้2.7. ดาวเรืองดอกไม้แป้งผลิตภัณฑ์ที่ได้รับจากกระบวนการทั้งหมดเสนอ เอนไซม์บำบัด สถานะของแข็งหมัก และ ensilage ถูกอบแห้งในเตาสูญญากาศ (ห้องปฏิบัติการเลือกรุ่น 1430) ถึง 10% (± 1%) ความชื้นเนื้อหา และข้าวสาร (ตะแกรง 0.5 มิลลิเมตร) โดยใช้โรงสี Brinkmann (Brinkmann เดอะโซโห NY) แป้งได้ถูกวิเคราะห์ โดยวิธี AOAC (1984) 970.64 เพื่อกำหนดความเข้มข้นรวม xanthophylls และรับ oleoresin ผ่านกระบวนการ lixiviation2.8 xanthophylls สกัด ด้วยเฮกเซนกระบวนการหมักและ ensilage สถานะของแข็งกระบวนการหมักและ ensilage สถานะของแข็งAssays ทดลองระบบหมุนถังหมักภายใต้สภาวะที่เหมาะสมส่งผลให้เกิดบนดาวเรืองดอกไม้แป้งสูงเนื้อหา xanthophylls (17.81 (± 0.2) กรัมรวม xanthophylls กิโลกรัมแป้ง) เมื่อเทียบกับความเข้มข้นของ xanthophylls ในแป้งได้ โดยกระบวนการเชิงพาณิชย์ ensilage (11.54 (± 0.5) กรัมรวม xanthophylls กิโลกรัมของแป้ง) นอกจากนี้ ensilage พาณิชย์ต้องยาวเวลา เกือบสี่สัปดาห์ การประมวลผลการขอรับนี้แป้งคุณภาพ (2 รูป) ความแตกต่างของความเข้มข้นของ xanthophylls ระหว่างกระบวนการเหล่านี้ถูกเชื่อมโยงกับความต้องการออกซิเจนของจุลินทรีย์ ปรากฏว่า การสูญเสียออกซิเจน ในกระบวนการค้า ensilage จำกัดการสังเคราะห์ของไฮโดรไลติกเอนไซม์ cellulase กิจกรรม ไหน

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

บทนำ
วัสดุและวิธีการ
2.1 แหล่งธรรมชาติ

ดอกดาวเรือง ( T. erecta) จากชุดเดียวถูกนำมาใช้สำหรับการทดลองทั้งหมด ชุดที่มีดอกไม้ที่มีอัตราส่วนสีสีเหลืองสีส้มของ 10:90 และน้ำหนักเฉลี่ย 30% ของภาชนะ ดอกไม้ดอกดาวเรืองถูกแบ่งออกเป็นสองชุด หนึ่งชุดได้รับการอนุรักษ์สดและแยกออกเป็นสองส่วนย่อย หนึ่งในส่วนย่อยเหล่านี้ได้รับการประมวลผลผ่านการหมักของรัฐที่มั่นคง ในฐานะที่เป็นสองกลุ่มย่อยดอกไม้สดกลีบถูกแยกออกจากภาชนะของพวกเขาและการประมวลผลผ่าน Ensilage ไม่สามารถควบคุมได้ สำหรับชุดที่สองกลีบถูกแยกออกจากภาชนะของพวกเขาและการประมวลผลผ่านการรักษาโดยใช้เอนไซม์สารสกัดดิบเอนไซม์ (เอนไซม์ที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์) หรือเซลลูโลสในเชิงพาณิชย์ เพื่อตรวจสอบผลของความชื้นดอกดาวเรืองเดิมต่อผลผลิตที่ดอกดาวเรืองถูกประมวลผลในสอง batches เฉพาะกิจการ: หนึ่งใช้กลีบดอกสดและอื่น ๆ โดยใช้กลีบดอกแห้ง กลีบดอกแห้งที่ได้จากการคายน้ำภายใต้สภาพแวดล้อมได้ถึงความชื้น 10% (± 1%) นอกจากนี้เพื่อหลีกเลี่ยงการเปลี่ยนแปลงทั้งดอกดาวเรืองสดและแห้ง, ชุดทั้งหมดถูกเก็บไว้ที่ 4 องศาเซลเซียสและปิดผนึกในถุงพลาสติกชนิดสีดำจนกว่าพวกเขาจะถูกนำมาใช้ในระหว่างการตรวจทดลอง.

2.2 Ensilage ไม่มีการควบคุมแบบดั้งเดิม

เพื่อประเมิน Ensilage แบบดั้งเดิมดอกดาวเรืองรวมทั้งภาชนะพวกเขาถูกเก็บไว้ได้ถึงเจ็ดสัปดาห์ในลานปิดภายใต้เงื่อนไขที่ไม่สามารถควบคุมได้ ในตอนท้ายของผลิตภัณฑ์ที่ได้ถูกทำให้แห้งและประมวลผลเพื่อให้ได้แป้งดอกดาวเรือง.

2.3 วัฒนธรรมจุลินทรีย์

วัฒนธรรมผสมของเชื้อจุลินทรีย์ (Flavobacterium IIb, Acinetobacter anitratus และ Rhizopus nigricans) ได้รับการขยายพันธุ์และผสมในสัดส่วนตาม Navarrete-Bolaños et al, (2003) เพื่อให้ได้หัวเชื้อเริ่มต้นใช้ในแบบ solid-state หมักตรวจ นอกจากนี้หัวเชื้อเริ่มต้นที่ถูกกรองเพื่อให้ได้สารสกัดเอนไซม์ดิบที่ใช้ในการรักษาด้วยเอนไซม์เอนไซม์ที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์.

2.4 การรักษาด้วยเอนไซม์ที่มีเอนไซม์ที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์

เพื่อที่จะประเมินผลกระทบของสารสกัดจากเอนไซม์ดิบบนกลีบดอกดาวเรืองที่ supernatants ที่ได้จากการเพาะเลี้ยงผสมกรองถูกผสมกับกลีบแห้งหรือสดใน 1:12 (w / v) อัตราการใช้และเก็บไว้ในแบบหมุน เครื่องปั่นที่ 28 องศาเซลเซียสและ 175 รอบต่อนาที (Forma วิทยาศาสตร์รุ่น 4520) เป็นเวลา 24 ชั่วโมง กลุ่มตัวอย่างที่ได้รับการรักษาถูกกรองเพื่อแยกขั้นตอนของแข็งและของเหลวของพวกเขา ขั้นตอนที่เป็นของแข็งกลีบดอกดาวเรืองได้รับการรักษาที่ถูกประมวลผลเพื่อให้ได้แป้งดอกดาวเรือง.

2.5 เอนไซม์ที่มีเซลลูเลสในเชิงพาณิชย์

แก้ปัญหาเอนไซม์ทางการค้าที่ 0.05 (± 0.01% (w / v)) ความเข้มข้นและ Endo-1,4-β-D-glucanase (EC 3.2.1.4 จากเชื้อรา Aspergillus ไนเจอร์ซิก Chemical Co. , เซนต์หลุยส์ , MO) กิจกรรมที่ถูกนำมาใช้สำหรับการรักษาด้วยเอนไซม์เซลลูเลสในเชิงพาณิชย์ตาม Navarrete-Bolaños et al, (2004a) ในลักษณะเช่นเดียวกับการรักษาด้วยสารสกัดจากเอนไซม์เอนไซม์ดิบโซลูชั่นเอนไซม์ในเชิงพาณิชย์ได้รับการผสมกับกลีบแห้งหรือสด 1:12 (w / v) อัตราการใช้และเก็บไว้ในเครื่องปั่นแบบหมุนที่ 28 ° C, 175 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 120 ชั่วโมง ตัวอย่างได้รับการรักษาถูกกรองและขั้นตอนที่เป็นของแข็งที่ถูกประมวลผลเพื่อให้ได้แป้งดอกดาวเรือง.

2.6 การหมักของรัฐที่มั่นคง

จุลินทรีย์เชื้อผสมได้รับการผสมกับดอกดาวเรืองสดใน 1.5: 1 (w / v) อัตราการใช้ในแบบแยกส่วนหมุนระบบกลองหมักภายใต้เงื่อนไขดังต่อไปนี้: ความชื้น 73.8% ปั่นป่วนต่อเนื่องทุก 14.8 ชั่วโมงและ 4.1 ลิตรที่ไหลเข้า อากาศ / นาที เงื่อนไขเหล่านี้เพิ่มรวมการสกัด xanthophylls (Navarrete-Bolaños et al., 2004b) จากแป้งหมักดอกไม้ดอกดาวเรืองที่ได้รับ.

2.7 ดอกดาวเรืองแป้ง

ผลิตภัณฑ์ที่ได้จากกระบวนการเสนอทั้งหมดเอนไซม์หมักของรัฐที่มั่นคงและ Ensilage เป็นแห้งในเตาอบสูญญากาศ (Shel Lab. รุ่น 1430) ถึง 10% (± 1%) ความชื้นและข้าวสาร (0.5 มม ตะแกรง) โดยใช้โรงงาน Brinkmann (Brinkmann, นิวยอร์กซิตี้) แป้งที่ได้มาวิเคราะห์โดย AOAC (1984) วิธี 970.64 เพื่อตรวจสอบความเข้มข้น xanthophylls รวมและจะได้รับ oleoresin ผ่านกระบวนการ lixiviation ได้.

2.8 สกัด xanthophylls โดยเฮกเซน

โซลิดสเตหมักและการ Ensilage กระบวนการ

แข็งหมักรัฐและ Ensilage กระบวนการ

ทดลองการวิเคราะห์ในการหมุนระบบหมักกลองภายใต้สภาวะที่เหมาะสมส่งผลให้ในแป้งดอกดาวเรืองที่มีเนื้อหาที่สูงขึ้นของ xanthophylls (17.81 (± 0.2) กรัมรวม xanthophylls / กก. ของแป้ง) เมื่อเทียบกับความเข้มข้น xanthophylls ในแป้งที่ได้จากการกระบวนการ Ensilage พาณิชย์ (11.54 (± 0.5) กรัมของ xanthophylls ทั้งหมด / กิโลกรัมของแป้ง) นอกจากนี้ Ensilage เชิงพาณิชย์จำเป็นต้องใช้เวลาในการประมวลยาวเกือบสี่สัปดาห์เพื่อให้ได้แป้งที่มีคุณภาพนี้ (รูปที่. 2) ความแตกต่างของความเข้มข้น xanthophylls ระหว่างกระบวนการเหล่านี้เป็นเรื่องที่เกี่ยวข้องกับความต้องการออกซิเจนของเชื้อจุลินทรีย์ ปรากฏว่าพร่องออกซิเจนในกระบวนการ Ensilage พาณิชย์ จำกัด สังเคราะห์ของเอนไซม์ย่อยสลายด้วยกิจกรรมเซลลูเลส, whe

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

แนะนำวัสดุและวิธีการ2.1 . แหล่งธรรมชาติดอกดาวเรือง ( T . erecta ) จากชุดเดียวที่ใช้ในทุกการทดลอง ชุดมีดอกไม้ด้วยสี เหลือง ส้ม และอัตราส่วนของ 10:90 น้ำหนักเฉลี่ย 30% ของเครื่อง . ดอกดาวเรือง ดอกไม้ถูกแบ่งออกเป็น 2 ชุด ชุดถนอมอาหารสดและถูกแบ่งออกเป็นสองส่วนย่อย . หนึ่งของข้อมูลเหล่านี้ถูกประมวลผลผ่านการหมักของแข็ง . อย่างที่สองย่อยดอกไม้ กลีบแยกจากภาชนะของพวกเขาและประมวลผลผ่านทางเปียกไม่มีการควบคุม . สำหรับชุดสอง กลีบแยกจากภาชนะของพวกเขาและประมวลผลผ่านทางเอนไซม์ เอนไซม์บําบัด โดยใช้วัตถุดิบสารสกัดเอนไซม์ที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์ ) หรือเซลลูโลสเชิงพาณิชย์ เพื่อตรวจสอบผลของความชื้นที่มีผลต่อผลผลิต ต้นดาวเรือง , ดาวเรืองได้ทำแยกเป็น 2 ชุด : ใช้กลีบดอกสดและอื่น ๆ ใช้กลีบดอกแห้ง กลีบดอกแห้ง ( dehydration ภายใต้สภาพแวดล้อมขึ้นอยู่กับความชื้น 10% ( ± 1% ) นอกจากนี้ เพื่อหลีกเลี่ยงการเปลี่ยนแปลง ทั้งสด และแห้ง ดอกดาวเรือง , ชุดทั้งหมดเก็บรักษาที่อุณหภูมิ 4 องศา C และปิดผนึกไว้ในถุงพลาสติกสีดำจนกว่าพวกเขาจะถูกใช้ในวิธีทดลอง2.2 . ไม่มีการควบคุมแบบเปียกเพื่อประเมินเปียกแบบดั้งเดิม , ดอกดาวเรือง รวมทั้งพวกเขา receptacles ถูกเก็บไว้ถึงเจ็ดสัปดาห์ในบ้านปิดภายใต้เงื่อนไขที่ควบคุมไม่ได้ . สุดท้าย ได้ผลิตภัณฑ์เป็นแห้งและประมวลผลเพื่อให้ได้ดอกดาวเรืองแป้ง2.3 เพาะจุลินทรีย์วัฒนธรรมผสมของจุลินทรีย์ ( Acinetobacter anitratus และด้วยฟลาโวแบคทีเรียม , ได้ nigricans ) ไปผสมในสัดส่วนตาม นาบาร์เรเตโบลาเมือง OS et al . ( 2003 ) เพื่อให้ได้เริ่มต้นที่ใช้ในการหมักของเชื้อหรือ . นอกจากนี้ ปริมาณที่ผลิตได้เริ่มต้นที่จะได้รับวัตถุดิบสารสกัดเอนไซม์ ที่ใช้ในการรักษาด้วยเอนไซม์ เอนไซม์ ที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์2.4 . การรักษาด้วยเอนไซม์ เอนไซม์ที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์เพื่อศึกษาผลของการใช้เอนไซม์ดิบสกัดบนกลีบดอกดาวเรือง , supernatants ผลิตได้จากเชื้อจุลินทรีย์ผสมผสมกับกลีบแห้งหรือสด ในอัตราส่วน 1 : 12 ( w / v ) และเก็บไว้ในเครื่องเขย่าที่ 28 ° C และ 175 รอบต่อนาที ( - วิทยาศาสตร์ , รูปแบบใน ) เป็นเวลา 24 ชั่วโมง ตัวอย่างที่ถูกกรอง การแยกของของแข็งและของเหลวเฟส ขั้นตอนที่เป็นของแข็งกลีบดอกดาวเรืองรักษา วิเคราะห์เพื่อให้ได้ดอกดาวเรืองแป้ง2.5 การรักษาด้วยเอนไซม์เซลลูเลส พาณิชย์กับเอนไซม์ทางการค้าในสารละลาย 0.05 ( ± 0.01 % ( w / v ) สมาธิ และ endo-1,4 - บีตา - d-glucanase ( EC 3.2.1.4 จาก Aspergillus niger , Sigma Chemical Co . , St . Louis , MO ) กิจกรรมเอนไซม์เซลลูเลสที่ใช้สำหรับการรักษาด้วยการค้าตาม นาบาร์เรเตโบลาเมือง OS et al . ( 2004a ) ในลักษณะเดียวกันเพื่อรักษาด้วยเอนไซม์ เอนไซม์ดิบสกัดเอนไซม์พาณิชย์โซลูชั่นผสมกับกลีบแห้งหรือสด ในอัตราส่วน 1 : 12 ( w / v ) และเก็บไว้ในเครื่องเขย่าที่ 28 ° C , 175 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 120 ชั่วโมง ตัวอย่างที่ถูกกรองและขั้นตอนที่เป็นของแข็งที่ถูกประมวลผลเพื่อให้ได้ดอกดาวเรืองแป้ง2.6 การหมักของแข็งจุลินทรีย์จุลินทรีย์ผสมก็ผสมกับดอกดาวเรืองสด 1.5 ( w / v ) อัตราส่วนในโมดูลกลองหมุนหมักระบบภายใต้เงื่อนไขต่อไปนี้ : ความชื้น 73.8 % อัตราการกวนทุก 14.8 H และ 4.1 ลิตร / นาที ลมเข้า เงื่อนไขเหล่านี้เพิ่มการสกัดสารแซนโทฟิลล์ทั้งหมด ( นาวาร์เร็ตเต้โบลาเมือง OS et al . , 2004b ) จากดอกดาวเรืองหมักแป้งได้2.7 . ดาวเรืองดอกไม้แป้งผลิตภัณฑ์ที่ได้จากการนำเสนอกระบวนการ , เอนไซม์ , การหมักสถานะของแข็งและเปียก , แห้งในเตาอบสูญญากาศ ( เชลแล็บ รุ่น 1 ) 10% ( ± 1% ) มีความชื้น และข้าวสาร ( 0.5-mm ตะแกรง ) โดยใช้ brinkmann โรงสี ( brinkmann Westbury , NY ) แป้งที่ได้วิเคราะห์โดยวิธีไม่ ( 1984 ) 970.64 เพื่อตรวจสอบความเข้มข้นของแซนโทฟิลล์รวมและเพื่อให้ได้ปริมาณโอลีโอเรซินผ่านกระบวนการ lixiviation .2.8 . การสกัดด้วยสารแซนโธฟิลล์กระบวนการหมักสถานะของแข็งและเปียกกระบวนการหมักสถานะของแข็งและเปียกทดลองใช้ในการหมักภายใต้สภาวะที่เหมาะสมของระบบกลองหมุนที่เกิดในดอกดาวเรืองด้วยแป้งสูงกว่าปริมาณแซนโทฟิลล์ ( 17.81 ( ± 0.2 กรัม / กก. ) แซนโทฟิลล์ทั้งหมดของแป้ง ) เมื่อเทียบกับปริมาณแซนโทฟิลล์ในแป้งที่ได้จากกระบวนการเปียกพาณิชย์ ( 11.54 ( ± 0.5 กรัมของแซนโทฟิลล์ทั้งหมด / kg ของแป้ง ) นอกจากนี้ การค้าต้องเปียกเวลาการประมวลผลนานเกือบสี่สัปดาห์ เพื่อให้ได้แป้งที่มีคุณภาพนี้ ( รูปที่ 2 ) ความแตกต่างของแซนโทฟิลล์เข้มข้นระหว่างกระบวนการเหล่านี้เกี่ยวข้องกับออกซิเจนความต้องการของจุลินทรีย์ ปรากฏว่าออกซิเจนพร่องในกระบวนการเปียกพาณิชย์ จำกัด การสังเคราะห์เอนไซม์ย่อยสลายด้วยกิจกรรมสร้างเซลลูเลส

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.