- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
MicroorganismSaccharomyces cerevisi
Microorganism
Saccharomyces cerevisiae strain CCTCC M206111 was separated
from wine lees in our laboratory. The yeast strain was maintained
on malt wort agar medium at 4 C.
2.2. Inoculum culture
The yeast strain was added to 250 mL flasks containing 100 mL
of sterilized medium. The medium composition was as follows:
100 g/L glucose, 1.3 g/L (NH4)2SO4, 0.1 g/L MgSO4 and 8.5 g/L yeast
extract. The culture was incubated at 30 C for approximately 14 h.
The liquid cultures had an initial cell dry weight of 3.0e3.5 g/L.
2.3. Enzymes
The commercial enzymes for liquefaction (Liquozyme Supra,
alpha-amylase) and for saccharification (Suhong GA II, glucosidase)
were purchased from Novozymes. The amount of enzyme that can
hydrolyze 5.26 g soluble starch per hour at pH 5.6 and 37 C is
defined as 1 KNU (Kilo Novo alpha-amylase Unit). The amount of
enzyme that cleaves 1 mmol of maltose per min at pH 4.3 and 25 C
is defined as 1 AGU (Amyloglucosidase Novo Unit) (Novo, 1981).
Liquozyme Supra is a heat-stable a-amylase (EC 3.2.1.1) from
Bacillus licheniformis with a declared activity of 90 KNU/g. Suhong
GA II is a glucoamylase (EC 3.2.1.1) from Aspergillus niger with
a declared activity of 500 AGU/g.
2.4. Raw materials and fermentation culture
Fresh sweet potatoes were collected from Nanchong Agricultural
Research Institute, Sichuan, China. The sweet potato crops
were planted on May 29th, 2008 and harvested after growing for
100, 130 or 160 d.
The fresh sweet potatoes were cleaned and crushed into small
pieces (
Saccharomyces cerevisiae strain CCTCC M206111 was separated
from wine lees in our laboratory. The yeast strain was maintained
on malt wort agar medium at 4 C.
2.2. Inoculum culture
The yeast strain was added to 250 mL flasks containing 100 mL
of sterilized medium. The medium composition was as follows:
100 g/L glucose, 1.3 g/L (NH4)2SO4, 0.1 g/L MgSO4 and 8.5 g/L yeast
extract. The culture was incubated at 30 C for approximately 14 h.
The liquid cultures had an initial cell dry weight of 3.0e3.5 g/L.
2.3. Enzymes
The commercial enzymes for liquefaction (Liquozyme Supra,
alpha-amylase) and for saccharification (Suhong GA II, glucosidase)
were purchased from Novozymes. The amount of enzyme that can
hydrolyze 5.26 g soluble starch per hour at pH 5.6 and 37 C is
defined as 1 KNU (Kilo Novo alpha-amylase Unit). The amount of
enzyme that cleaves 1 mmol of maltose per min at pH 4.3 and 25 C
is defined as 1 AGU (Amyloglucosidase Novo Unit) (Novo, 1981).
Liquozyme Supra is a heat-stable a-amylase (EC 3.2.1.1) from
Bacillus licheniformis with a declared activity of 90 KNU/g. Suhong
GA II is a glucoamylase (EC 3.2.1.1) from Aspergillus niger with
a declared activity of 500 AGU/g.
2.4. Raw materials and fermentation culture
Fresh sweet potatoes were collected from Nanchong Agricultural
Research Institute, Sichuan, China. The sweet potato crops
were planted on May 29th, 2008 and harvested after growing for
100, 130 or 160 d.
The fresh sweet potatoes were cleaned and crushed into small
pieces (
0/5000
จุลินทรีย์มีแยก saccharomyces cerevisiae ต้องใช้ CCTCC M206111จากลีส์ไวน์ในห้องปฏิบัติการของเรา มีการเก็บรักษาสายพันธุ์ยีสต์บนกลาง agar wort มอลต์ที่ค. 42.2. inoculum วัฒนธรรมสายพันธุ์ยีสต์ที่เพิ่มประกอบด้วย 100 mL น้ำ 250 mLของกลางที่ sterilized องค์ประกอบกลางมีดังนี้:กลูโคส 100 g/L, 1.3 g/L (NH4) 2SO4, 0.1 g/L MgSO4 และยีสต์ 8.5 g/Lแยก วัฒนธรรมถูก incubated ที่ C 30 สำหรับประมาณ 14 hวัฒนธรรมของเหลวมีน้ำหนักแห้งเป็นเซลล์เริ่มต้นของ 3.0e3.5 g/l2.3. เอนไซม์เอนไซม์ทางการค้าสำหรับ liquefaction (Liquozyme นี้อัลฟา-amylase) และ saccharification (Suhong GA II, glucosidase)ซื้อจาก Novozymes จำนวนเอนไซม์ที่สามารถhydrolyze 5.26 g แป้งละลายต่อชั่วโมงที่ค่า pH 5.6 และ 37 C คือกำหนดเป็น 1 KNU (หน่วยอัลฟา-amylase Novo กิโล) จำนวนเอนไซม์ที่แยกออก 1 mmol ของ maltose ต่อนาทีที่ค่า pH 4.3 และ 25 Cมีกำหนดเป็น 1 AGU (Amyloglucosidase Novo หน่วย) (Novo, 1981)Liquozyme นี้จะเป็นความร้อนคอก a-amylase (EC 3.2.1.1) จากLicheniformis คัดกับกิจกรรมประกาศของ KNU/กรัม 90 SuhongGA II เป็น glucoamylase (EC 3.2.1.1) จากสาธารณรัฐไนเจอร์ Aspergillus ด้วยกิจกรรมประกาศของ AGU 500 กรัม2.4 ดิบและหมักวัฒนธรรมสดมันเทศได้รวบรวมจากเกษตรหนานชงสถาบันวิจัย เสฉวน จีน ปลูกมันเทศปลูกบน 29 พฤษภาคม 2008 และเก็บเกี่ยวผลผลิตหลังจากเติบโตใน100, 130 หรือ d 160มันฝรั่งหวานสดสะอาด และบดเป็นขนาดเล็กชิ้น (< 3 มิลลิเมตร) แล้ว น้ำถูก impregnated ในต่าง ๆhydromoduli เทศ ที่ corresponded พันธุ์แตกต่างกันการเริ่มต้นรวม fermentable น้ำตาลความเข้มข้นของ180 g/kg ใน fermenters ทั้งหมด หลังจากลดอุณหภูมิอาหาร 85 Cใน 10 นาที ส่วนผสมถูกหมุนใช้ Liquozyme นี้(10 นาที 85 C ค่า pH 5.2 แป้ง KNU กิโลกรัม 120) หมักแหนมทั้งหมดได้ดำเนินการโดยใช้น้ำ Erlenmeyer 250 mL ประกอบด้วยสด 100 กรัมไฮโตรไลซ์เทศ มีปรับ pH เริ่มต้นของสื่อทั้งหมด5 กับ 1 M NaOH และ HCl 1 M น้ำกับสื่อได้ sterilizedโดย autoclaving ที่ 115 C สำหรับ 20 นาทีก่อน inoculation Glucoamylaseเพิ่มที่ปริมาณของแป้ง AGU กิโลกรัม 750 เวลาของ inoculation หมักแหนมเอทานอลได้ดำเนินที่ 30 Cภายใต้เงื่อนไขที่ไม่ใช้ออกซิเจนด้วยอาการกังวลต่อที่ 150 รอบต่อนาที2.5 การวิเคราะห์วิธีเนื้อหารวม fermentable น้ำตาลของมันฝรั่งหวานสดกำหนด โดยกรดไฮโตรไลซ์ (Wang et al., 2007) ซึ่งการตัวอย่างได้รับการรักษากับ HCl ที่ 100 C 2 h และจำนวนลดน้ำตาลถูกวัด โดยวิธี DNS (3,5-dinitroกรดซาลิไซลิ) ใช้กลูโคสเป็นมาตรฐาน (Maldonado และชตราสเซอร์เดสะอัด 1998) เส้นใยหยาบในมันฝรั่งหวานสดเป็นกรด และด่างไม่ละลายตกค้างวิเคราะห์ตามจีนมาตรฐาน GB/T 5009.10-2003 สาร pectic ในมันฝรั่งหวานสดถูกสกัดโดยใช้เอทานอลและน้ำวิธีการ และกำหนดผ่าน galacturonic กรด (Walter et al., 1997)หมักตัวอย่างที่ถ่ายจากใน fermenter และcentrifuged ที่ 8000 รอบต่อนาทีให้เอาของแข็งใด ๆ ออกจากสื่อ ที่ความเข้มข้นของเอทานอลถูกกำหนด โดย chromatography ก๊าซ ในมลที่ 0.8 ของ supernatant ตัวอย่าง 10% เป็นกรองผ่านตัวกรองเมมเบรน 0.45 mm (มาก สหรัฐอเมริกา) ถูกผสมกับ 0.2 mLของ 10% n-อย่างไร propanol Determinations ทั้งหมดได้ดำเนินการโดยใช้โค้งมาตรฐาน Chromatograph แก๊ส (รุ่น 9790 ชุด ชุดคอร์ป จีน) อาบเปลวไฟถูกดำเนินการ ionization จับภายใต้เงื่อนไขต่อไปนี้: แก๊สคอลัมน์สแตนเลส(3.2 มม. 2 m) เต็มไป ด้วย Chromosorb (ชุด Corp. จีน);อุณหภูมิของหัวฉีดและเครื่องตรวจจับ C 200 ไนโตรเจนผู้ขนส่งก๊าซอัตราการไหล 30 mL/min และอุณหภูมิของเตาอบคอลัมน์ 160 C (หลิวร้อยเอ็ด al., 2007) การหมักสารตกค้างที่วัดโดยการวิธีต้องที่ 105 C จนน้ำหนักคงที่สำเร็จความหนืดที่วัดใช้ viscometer ในการหมุน (DV-IIþPRO, Brookfield สหรัฐอเมริกา) พร้อม recirculating น้ำอาบน้ำ (TC200, Brookfield สหรัฐอเมริกา) สำหรับการควบคุมอุณหภูมิภาชนะบรรจุตัวอย่างการเปลี่ยนแปลงความหนืดที่กำหนดที่ 30 C ด้วยความเร็วพายเรือของ 100 รอบต่อนาที ทดลองทุกวิธีในซ้ำ และแสดงถึงการนำเสนอข้อมูลหมายถึง ค่า2.6. วิธีสถิติและการคำนวณข้อจำกัดของการใช้ mashes รากและหัวสำหรับเอทานอลผลิตคือเกิดจากธรรมชาติของความหนืดสูง สูงความหนืดที่เกิดจากความต้านทาน การแยก solideliquid และต่ำกว่าหมักประสิทธิภาพ (Srikanta et al., 1992), ซึ่งจะเพิ่มขึ้นต้นทุนการผลิตเอทานอล ดังนั้น เลือกเป็นมันเทศมีความหนืดต่ำเป็นวัตถุดิบอาจเป็นประโยชน์ต่อการลดต้นทุนการผลิตเอทานอล ตามการศึกษาต่าง ๆ การความหนืดของ pl เป็น
การแปล กรุณารอสักครู่..
Microorganism
Saccharomyces cerevisiae strain CCTCC M206111 was separated
from wine lees in our laboratory. The yeast strain was maintained
on malt wort agar medium at 4 C.
2.2. Inoculum culture
The yeast strain was added to 250 mL flasks containing 100 mL
of sterilized medium. The medium composition was as follows:
100 g/L glucose, 1.3 g/L (NH4)2SO4, 0.1 g/L MgSO4 and 8.5 g/L yeast
extract. The culture was incubated at 30 C for approximately 14 h.
The liquid cultures had an initial cell dry weight of 3.0e3.5 g/L.
2.3. Enzymes
The commercial enzymes for liquefaction (Liquozyme Supra,
alpha-amylase) and for saccharification (Suhong GA II, glucosidase)
were purchased from Novozymes. The amount of enzyme that can
hydrolyze 5.26 g soluble starch per hour at pH 5.6 and 37 C is
defined as 1 KNU (Kilo Novo alpha-amylase Unit). The amount of
enzyme that cleaves 1 mmol of maltose per min at pH 4.3 and 25 C
is defined as 1 AGU (Amyloglucosidase Novo Unit) (Novo, 1981).
Liquozyme Supra is a heat-stable a-amylase (EC 3.2.1.1) from
Bacillus licheniformis with a declared activity of 90 KNU/g. Suhong
GA II is a glucoamylase (EC 3.2.1.1) from Aspergillus niger with
a declared activity of 500 AGU/g.
2.4. Raw materials and fermentation culture
Fresh sweet potatoes were collected from Nanchong Agricultural
Research Institute, Sichuan, China. The sweet potato crops
were planted on May 29th, 2008 and harvested after growing for
100, 130 or 160 d.
The fresh sweet potatoes were cleaned and crushed into small
pieces (<3 mm). Then, water was impregnated in the various
hydromoduli of different varieties of sweet potato, which corresponded
to the initial total fermentable sugar concentration of
180 g/kg in all fermenters. After low-temperature cooking at 85 C
for 10 min, the mixture was liquefied using Liquozyme Supra
(10 min, 85 C, pH 5.2, 120 KNU/kg starch). All fermentations were
carried out using 250 mL Erlenmeyer flasks containing 100 g fresh
sweet potato hydrolysis. The initial pH of all media was adjusted to
5 with 1 M NaOH and 1 M HCl. The flasks with media were sterilized
by autoclaving at 115 C for 20 min prior to inoculation. Glucoamylase
was added at a dosage of 750 AGU/kg starch at the time
of inoculation. The ethanol fermentations were carried out at 30 C
under anaerobic conditions with agitation at 150 rpm.
2.5. Analytical methods
The total fermentable sugar content of the fresh sweet potatoes
was determined by acid hydrolysis (Wang et al., 2007) in which the
samples were treated with HCl at 100 C for 2 h and the amount of
reducing sugar was measured by the DNS method (3,5-dinitro
salicylic acid) using glucose as the standard (Maldonado and
Strasser de Saad, 1998). The crude fiber in the fresh sweet potato
is the acid and alkali-insoluble residue analyzed according to the
Chinese Standard GB/T 5009.10-2003. The pectic substances in
fresh sweet potato were extracted using the ethanol and water
method and determined via galacturonic acid (Walter et al., 1997).
Fermentation samples were taken from the fermenter and
centrifuged at 8000 rpm to remove any solids from the media. The
ethanol concentration was determined by gas chromatography, in
which 0.8 mL of a 10% sample supernatant filtered through
a 0.45 mm membrane filter (Millipore, USA) was mixed with 0.2 mL
of 10% n-propanol. All determinations were performed using
standard curves. A gas chromatograph (model FULI 9790; FULI
Corp., China) fitted with a flame ionization detector was operated
under the following conditions: gas column stainless steel column
(3.2 mm 2 m) packed with Chromosorb (FULI Corp., China);
temperature of injector and detector, 200 C; nitrogen carrier gas
flow rate, 30 mL/min; and temperature of column oven, 160 C (Liu
et al., 2007). The fermentation residue was measured by the
gravimetric method at 105 C until a constant weight was achieved.
The viscosity was measured using a rotational viscometer (DV-IIþ
PRO, Brookfield, USA) equipped with a recirculating water-bath (TC
200, Brookfield, USA) for control of the sample-container temperature.
The viscosity changes were determined at 30 C with
a paddle speed of 100 rpm. Every experiment was conducted in
duplicate, and the data presented represent mean values.
2.6. Statistical methods and calculations
The limitation of using root and tuber mashes for ethanol
production is attributed to their highly viscous nature. High
viscosity caused resistance to solideliquid separation and lower
fermentation efficiency (Srikanta et al., 1992), which will increase
the cost of ethanol production. Therefore, choosing a sweet potato
with low viscosity as the feedstock may be beneficial for reducing
the cost of ethanol production. According to several studies, the
viscosity of a pl
Saccharomyces cerevisiae strain CCTCC M206111 was separated
from wine lees in our laboratory. The yeast strain was maintained
on malt wort agar medium at 4 C.
2.2. Inoculum culture
The yeast strain was added to 250 mL flasks containing 100 mL
of sterilized medium. The medium composition was as follows:
100 g/L glucose, 1.3 g/L (NH4)2SO4, 0.1 g/L MgSO4 and 8.5 g/L yeast
extract. The culture was incubated at 30 C for approximately 14 h.
The liquid cultures had an initial cell dry weight of 3.0e3.5 g/L.
2.3. Enzymes
The commercial enzymes for liquefaction (Liquozyme Supra,
alpha-amylase) and for saccharification (Suhong GA II, glucosidase)
were purchased from Novozymes. The amount of enzyme that can
hydrolyze 5.26 g soluble starch per hour at pH 5.6 and 37 C is
defined as 1 KNU (Kilo Novo alpha-amylase Unit). The amount of
enzyme that cleaves 1 mmol of maltose per min at pH 4.3 and 25 C
is defined as 1 AGU (Amyloglucosidase Novo Unit) (Novo, 1981).
Liquozyme Supra is a heat-stable a-amylase (EC 3.2.1.1) from
Bacillus licheniformis with a declared activity of 90 KNU/g. Suhong
GA II is a glucoamylase (EC 3.2.1.1) from Aspergillus niger with
a declared activity of 500 AGU/g.
2.4. Raw materials and fermentation culture
Fresh sweet potatoes were collected from Nanchong Agricultural
Research Institute, Sichuan, China. The sweet potato crops
were planted on May 29th, 2008 and harvested after growing for
100, 130 or 160 d.
The fresh sweet potatoes were cleaned and crushed into small
pieces (<3 mm). Then, water was impregnated in the various
hydromoduli of different varieties of sweet potato, which corresponded
to the initial total fermentable sugar concentration of
180 g/kg in all fermenters. After low-temperature cooking at 85 C
for 10 min, the mixture was liquefied using Liquozyme Supra
(10 min, 85 C, pH 5.2, 120 KNU/kg starch). All fermentations were
carried out using 250 mL Erlenmeyer flasks containing 100 g fresh
sweet potato hydrolysis. The initial pH of all media was adjusted to
5 with 1 M NaOH and 1 M HCl. The flasks with media were sterilized
by autoclaving at 115 C for 20 min prior to inoculation. Glucoamylase
was added at a dosage of 750 AGU/kg starch at the time
of inoculation. The ethanol fermentations were carried out at 30 C
under anaerobic conditions with agitation at 150 rpm.
2.5. Analytical methods
The total fermentable sugar content of the fresh sweet potatoes
was determined by acid hydrolysis (Wang et al., 2007) in which the
samples were treated with HCl at 100 C for 2 h and the amount of
reducing sugar was measured by the DNS method (3,5-dinitro
salicylic acid) using glucose as the standard (Maldonado and
Strasser de Saad, 1998). The crude fiber in the fresh sweet potato
is the acid and alkali-insoluble residue analyzed according to the
Chinese Standard GB/T 5009.10-2003. The pectic substances in
fresh sweet potato were extracted using the ethanol and water
method and determined via galacturonic acid (Walter et al., 1997).
Fermentation samples were taken from the fermenter and
centrifuged at 8000 rpm to remove any solids from the media. The
ethanol concentration was determined by gas chromatography, in
which 0.8 mL of a 10% sample supernatant filtered through
a 0.45 mm membrane filter (Millipore, USA) was mixed with 0.2 mL
of 10% n-propanol. All determinations were performed using
standard curves. A gas chromatograph (model FULI 9790; FULI
Corp., China) fitted with a flame ionization detector was operated
under the following conditions: gas column stainless steel column
(3.2 mm 2 m) packed with Chromosorb (FULI Corp., China);
temperature of injector and detector, 200 C; nitrogen carrier gas
flow rate, 30 mL/min; and temperature of column oven, 160 C (Liu
et al., 2007). The fermentation residue was measured by the
gravimetric method at 105 C until a constant weight was achieved.
The viscosity was measured using a rotational viscometer (DV-IIþ
PRO, Brookfield, USA) equipped with a recirculating water-bath (TC
200, Brookfield, USA) for control of the sample-container temperature.
The viscosity changes were determined at 30 C with
a paddle speed of 100 rpm. Every experiment was conducted in
duplicate, and the data presented represent mean values.
2.6. Statistical methods and calculations
The limitation of using root and tuber mashes for ethanol
production is attributed to their highly viscous nature. High
viscosity caused resistance to solideliquid separation and lower
fermentation efficiency (Srikanta et al., 1992), which will increase
the cost of ethanol production. Therefore, choosing a sweet potato
with low viscosity as the feedstock may be beneficial for reducing
the cost of ethanol production. According to several studies, the
viscosity of a pl
การแปล กรุณารอสักครู่..
เชื้อ Saccharomyces cerevisiae สายพันธุ์ cctcc
m206111 ถูกแยกออกจากไวน์ตะกอนในห้องปฏิบัติการของเรา ยีสต์สายพันธุ์บนอาหารวุ้นหมักสาโทไว้
4 C .
2.2 . เชื้อยีสต์สายพันธุ์วัฒนธรรม
เพิ่ม 250 ml . ขวดบรรจุ 100 ml
ฆ่าเชื้อแล้ว ) สื่อองค์ประกอบดังนี้
กลูโคส 100 กรัม / ลิตร 1.3 g / l ( NH4 ) 2so4 0.1 กรัม / ลิตร MgSO4 ใ 8.5 กรัม / ลิตรและสารสกัดจากยีสต์
.วัฒนธรรม คือ บ่มที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียส ประมาณ 14 ชั่วโมง
วัฒนธรรมของเหลวมีน้ำหนักเซลล์แห้งเริ่มต้น 3.0e3.5 g / L .
2.3 เอนไซม์เอนไซม์ทางการค้าสำหรับการแปรรูป (
liquozyme Supra อัลฟาอะไมเลส , ) และถูก ( ใน ซู่หง GA II )
ซื้อมาจากกุ้ง . ปริมาณของเอนไซม์ที่สามารถย่อยสลายแป้งละลาย
5.20 กรัมต่อชั่วโมงที่ pH 5.6 และ 37 C
กำหนดเป็น 1 สหภาพแห่งชาติกะเหรี่ยง ( หน่วยกิโลกรัม Novo อุปราคา ) จํานวน
1 มิลลิโมลของเอนไซม์ที่คลีฟส์มอลโตสต่อนาทีที่ pH 4.3 และ 25 C
หมายถึง 1 AGU ( มิโลกลูโคซิเดส Novo หน่วย ) ( Novo , 1981 ) .
liquozyme Supra มีความร้อนคงที่ a-amylase ( EC 3.2.1.1 ) จาก Bacillus licheniformis
กับประกาศกิจกรรม 90 สหภาพแห่งชาติกะเหรี่ยง ซู่หง
/ g GA II เป็นเอนไซม์กลูโคอะไมเลสจาก Aspergillus niger ( EC 3.2.1.1 ) กับ
มีประกาศกิจกรรม 500 AGU / G .
2.4 . วัตถุดิบและ
วัฒนธรรมการหมักมันฝรั่งหวานสดจากการเก็บ Nanchong เกษตรกรรม
สถาบันวิจัย , เสฉวน , จีน
มันฝรั่งหวานที่ปลูกพืชบน 29 พฤษภาคม 2008 และเก็บเกี่ยวหลังจากการปลูกสำหรับ
100 , 130 หรือ 160 D .
สดมันเทศถูกล้างและบดเป็นชิ้นเล็กๆ
( < 3 มม. ) จากนั้นชุบน้ำใน hydromoduli ต่างๆ
ของพันธุ์ที่แตกต่างจากมันเทศ ซึ่งสอดคล้อง
เบื้องต้นรวมหมักน้ำตาลปริมาณ 180 กรัม / กิโลกรัม ทุกคน
fermenters . หลังจากการปรุงอาหารที่อุณหภูมิ 85 C
10 นาที ส่วนผสมเหลวใช้ liquozyme Supra
( 10 นาที 85 C , pH 5.2 120 knu กิโลกรัม แป้ง ) มีทั้งหมด fermentations
โดยใช้ 250 ml . ขวดบรรจุ 100 กรัม เออร์เลนเมเยอร์สด
มันเทศการย่อยสลาย . พีเอชเริ่มต้นของสื่อทั้งหมดปรับ
5 กับ 1 M NaOH และ HCl 1 M . ขวดกับสื่อฆ่าเชื้อ
โดยอัตราส่วนโฟกัสที่ 115 C เป็นเวลา 20 นาทีก่อนการฉีดวัคซีน เอนไซม์กลูโคอะไมเลส
เพิ่มที่ปริมาณ 750 AGU กิโลกรัม แป้งที่เวลา
ของการฉีดวัคซีน เอทานอล fermentations ทดลองที่ 30 C
ภายใต้สภาวะไร้อากาศด้วยการกวน 150 รอบต่อนาที
2.5 วิธีการวิเคราะห์
กรัมน้ำตาลทั้งหมดของมันเทศสด
ถูกกำหนดโดยการไฮโดรไลซ์ด้วยกรด ( Wang et al . , 2007 ) ซึ่งได้รับการรักษาด้วย HCl
จำนวน 100 C 2 H และจํานวน
ลดน้ำตาลวัดจาก DNS วิธี ( 3,5-dinitro
salicylic acid ) ใช้กลูโคส เป็นมาตรฐานและ
( มัลโดนาโดสแตรสเซอร์ เดอ ซาด , 1998 ) ไฟเบอร์ดิบสด
มันเทศเป็นกรดและด่างไม่กาก วิเคราะห์ตาม
จีนมาตรฐาน GB / T 5009.10-2003 . สารที่มีใน
มันเทศสดถูกสกัดโดยใช้เอธานอลและวิธีการน้ำ
และมุ่งมั่นที่ผ่านกรดกาแลค ( วอลเตอร์ et al . , 1997 ) .
ตัวอย่างการหมัก นำมาจากถังหมักและ
ระดับที่ 8 , 000 รอบต่อนาที เอาของแข็งจากสื่อ
เอทานอลความเข้มข้นถูกกำหนดโดยวิธีแก๊สโครมาโตกราฟฟี ในที่ 0.8 มิลลิลิตร นำตัวอย่าง
10 % กรองผ่านเยื่อกรองเป็น 0.45 มม. ( มิลลิ , USA ) ผสมกับ 0.2 มล.
10 % น โพรพาน . ทั้งหมดข้างต้นคือการใช้
เส้นโค้งมาตรฐาน แก๊สโครมาโตกราฟ ( รุ่น Fuli 9790 ; Fuli
.จีน ) พอดีกับเฟลมไอออไนเซชันตรวจจับการ
ภายใต้เงื่อนไขต่อไปนี้ : คอลัมน์คอลัมน์แก๊สสแตนเลส
( 3.2 มิลลิเมตร 2 M ) บรรจุด้วย chromosorb ( Fuli คอร์ป , จีน ) ;
อุณหภูมิของหัวฉีดและเครื่องตรวจจับ , 200 C ; ไนโตรเจนแก๊สตัวพา
อัตรา 30 มิลลิลิตรต่อนาที และอุณหภูมิ คอลัมน์ เตาอบ 160 C ( หลิว
et al . , 2007 ) การหมักกากมันวัดด้วย
ด้วยวิธีที่ 105 C จนน้ำหนักคงที่ พบว่า ความหนืด
วัดโดยใช้การหมุน ( Mesh dv-ii þ
Pro , Brookfield , USA ) พร้อมกับหมุนเวียนน้ำร้อน ( TC
200 Brookfield , USA ) สำหรับควบคุมอุณหภูมิของตัวอย่างภาชนะ .
ความหนืดเปลี่ยนแปลงเป็น 30 C
พายความเร็ว 100 รอบต่อนาที ทุกการทดลองใน
ซ้ำ ,และข้อมูลที่นำเสนอเป็นค่าเฉลี่ย .
2.6 วิธีการทางสถิติและการคำนวณ
ข้อจำกัดของการใช้รากและเหง้า mashes สำหรับการผลิตเอทานอล
จากธรรมชาติหนืดสูงของพวกเขา ความหนืดสูงทำให้ความต้านทานต่อการ solideliquid
และลดประสิทธิภาพของกระบวนการหมัก ( srikanta et al . , 1992 ) ซึ่งจะเพิ่ม
ต้นทุนการผลิตเอทานอล ดังนั้นเลือก
มันเทศต่ำความหนืดเป็นวัตถุดิบ อาจเป็นประโยชน์สำหรับการลด
ต้นทุนการผลิตเอทานอล ตามการศึกษาหลาย
ความหนืดของพี
m206111 ถูกแยกออกจากไวน์ตะกอนในห้องปฏิบัติการของเรา ยีสต์สายพันธุ์บนอาหารวุ้นหมักสาโทไว้
4 C .
2.2 . เชื้อยีสต์สายพันธุ์วัฒนธรรม
เพิ่ม 250 ml . ขวดบรรจุ 100 ml
ฆ่าเชื้อแล้ว ) สื่อองค์ประกอบดังนี้
กลูโคส 100 กรัม / ลิตร 1.3 g / l ( NH4 ) 2so4 0.1 กรัม / ลิตร MgSO4 ใ 8.5 กรัม / ลิตรและสารสกัดจากยีสต์
.วัฒนธรรม คือ บ่มที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียส ประมาณ 14 ชั่วโมง
วัฒนธรรมของเหลวมีน้ำหนักเซลล์แห้งเริ่มต้น 3.0e3.5 g / L .
2.3 เอนไซม์เอนไซม์ทางการค้าสำหรับการแปรรูป (
liquozyme Supra อัลฟาอะไมเลส , ) และถูก ( ใน ซู่หง GA II )
ซื้อมาจากกุ้ง . ปริมาณของเอนไซม์ที่สามารถย่อยสลายแป้งละลาย
5.20 กรัมต่อชั่วโมงที่ pH 5.6 และ 37 C
กำหนดเป็น 1 สหภาพแห่งชาติกะเหรี่ยง ( หน่วยกิโลกรัม Novo อุปราคา ) จํานวน
1 มิลลิโมลของเอนไซม์ที่คลีฟส์มอลโตสต่อนาทีที่ pH 4.3 และ 25 C
หมายถึง 1 AGU ( มิโลกลูโคซิเดส Novo หน่วย ) ( Novo , 1981 ) .
liquozyme Supra มีความร้อนคงที่ a-amylase ( EC 3.2.1.1 ) จาก Bacillus licheniformis
กับประกาศกิจกรรม 90 สหภาพแห่งชาติกะเหรี่ยง ซู่หง
/ g GA II เป็นเอนไซม์กลูโคอะไมเลสจาก Aspergillus niger ( EC 3.2.1.1 ) กับ
มีประกาศกิจกรรม 500 AGU / G .
2.4 . วัตถุดิบและ
วัฒนธรรมการหมักมันฝรั่งหวานสดจากการเก็บ Nanchong เกษตรกรรม
สถาบันวิจัย , เสฉวน , จีน
มันฝรั่งหวานที่ปลูกพืชบน 29 พฤษภาคม 2008 และเก็บเกี่ยวหลังจากการปลูกสำหรับ
100 , 130 หรือ 160 D .
สดมันเทศถูกล้างและบดเป็นชิ้นเล็กๆ
( < 3 มม. ) จากนั้นชุบน้ำใน hydromoduli ต่างๆ
ของพันธุ์ที่แตกต่างจากมันเทศ ซึ่งสอดคล้อง
เบื้องต้นรวมหมักน้ำตาลปริมาณ 180 กรัม / กิโลกรัม ทุกคน
fermenters . หลังจากการปรุงอาหารที่อุณหภูมิ 85 C
10 นาที ส่วนผสมเหลวใช้ liquozyme Supra
( 10 นาที 85 C , pH 5.2 120 knu กิโลกรัม แป้ง ) มีทั้งหมด fermentations
โดยใช้ 250 ml . ขวดบรรจุ 100 กรัม เออร์เลนเมเยอร์สด
มันเทศการย่อยสลาย . พีเอชเริ่มต้นของสื่อทั้งหมดปรับ
5 กับ 1 M NaOH และ HCl 1 M . ขวดกับสื่อฆ่าเชื้อ
โดยอัตราส่วนโฟกัสที่ 115 C เป็นเวลา 20 นาทีก่อนการฉีดวัคซีน เอนไซม์กลูโคอะไมเลส
เพิ่มที่ปริมาณ 750 AGU กิโลกรัม แป้งที่เวลา
ของการฉีดวัคซีน เอทานอล fermentations ทดลองที่ 30 C
ภายใต้สภาวะไร้อากาศด้วยการกวน 150 รอบต่อนาที
2.5 วิธีการวิเคราะห์
กรัมน้ำตาลทั้งหมดของมันเทศสด
ถูกกำหนดโดยการไฮโดรไลซ์ด้วยกรด ( Wang et al . , 2007 ) ซึ่งได้รับการรักษาด้วย HCl
จำนวน 100 C 2 H และจํานวน
ลดน้ำตาลวัดจาก DNS วิธี ( 3,5-dinitro
salicylic acid ) ใช้กลูโคส เป็นมาตรฐานและ
( มัลโดนาโดสแตรสเซอร์ เดอ ซาด , 1998 ) ไฟเบอร์ดิบสด
มันเทศเป็นกรดและด่างไม่กาก วิเคราะห์ตาม
จีนมาตรฐาน GB / T 5009.10-2003 . สารที่มีใน
มันเทศสดถูกสกัดโดยใช้เอธานอลและวิธีการน้ำ
และมุ่งมั่นที่ผ่านกรดกาแลค ( วอลเตอร์ et al . , 1997 ) .
ตัวอย่างการหมัก นำมาจากถังหมักและ
ระดับที่ 8 , 000 รอบต่อนาที เอาของแข็งจากสื่อ
เอทานอลความเข้มข้นถูกกำหนดโดยวิธีแก๊สโครมาโตกราฟฟี ในที่ 0.8 มิลลิลิตร นำตัวอย่าง
10 % กรองผ่านเยื่อกรองเป็น 0.45 มม. ( มิลลิ , USA ) ผสมกับ 0.2 มล.
10 % น โพรพาน . ทั้งหมดข้างต้นคือการใช้
เส้นโค้งมาตรฐาน แก๊สโครมาโตกราฟ ( รุ่น Fuli 9790 ; Fuli
.จีน ) พอดีกับเฟลมไอออไนเซชันตรวจจับการ
ภายใต้เงื่อนไขต่อไปนี้ : คอลัมน์คอลัมน์แก๊สสแตนเลส
( 3.2 มิลลิเมตร 2 M ) บรรจุด้วย chromosorb ( Fuli คอร์ป , จีน ) ;
อุณหภูมิของหัวฉีดและเครื่องตรวจจับ , 200 C ; ไนโตรเจนแก๊สตัวพา
อัตรา 30 มิลลิลิตรต่อนาที และอุณหภูมิ คอลัมน์ เตาอบ 160 C ( หลิว
et al . , 2007 ) การหมักกากมันวัดด้วย
ด้วยวิธีที่ 105 C จนน้ำหนักคงที่ พบว่า ความหนืด
วัดโดยใช้การหมุน ( Mesh dv-ii þ
Pro , Brookfield , USA ) พร้อมกับหมุนเวียนน้ำร้อน ( TC
200 Brookfield , USA ) สำหรับควบคุมอุณหภูมิของตัวอย่างภาชนะ .
ความหนืดเปลี่ยนแปลงเป็น 30 C
พายความเร็ว 100 รอบต่อนาที ทุกการทดลองใน
ซ้ำ ,และข้อมูลที่นำเสนอเป็นค่าเฉลี่ย .
2.6 วิธีการทางสถิติและการคำนวณ
ข้อจำกัดของการใช้รากและเหง้า mashes สำหรับการผลิตเอทานอล
จากธรรมชาติหนืดสูงของพวกเขา ความหนืดสูงทำให้ความต้านทานต่อการ solideliquid
และลดประสิทธิภาพของกระบวนการหมัก ( srikanta et al . , 1992 ) ซึ่งจะเพิ่ม
ต้นทุนการผลิตเอทานอล ดังนั้นเลือก
มันเทศต่ำความหนืดเป็นวัตถุดิบ อาจเป็นประโยชน์สำหรับการลด
ต้นทุนการผลิตเอทานอล ตามการศึกษาหลาย
ความหนืดของพี
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- Two separate power supplies are used
- ครูใหญ่ชื่ออะไร?
- เหมือนเด็ก
- ฉันจะไปกระทรวงศึกษาธิการ
- in the United States
- oc ใหม่ของฉันเอง
- In any way
- ผู้จัดการสำนักงานสาขา
- I don't like you think this way.
- ด้วยกัน
- collected
- ของเสียประจำเดือนมกราคม
- you can tell me about history Loy kratho
- มื้อกลางวัน
- ฉันบอกคุณหลายรอบแล้วนะ
- You ' ve alway doing what's in your hear
- เบื่อมากเลยตอนนี้
- คลังไฟล์ (เนื้อหา )
- แต่ในบางครั้งการค้นหาความจริงไม่ง่ายเสมอ
- ฉันออกมาดื่มเหล้าข้างนอกคนเดียว
- การใช้จ่ายมาก
- คุณหายไปไหนมาหรือ
- เลื่อย
- ok tell me about you more
