- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
High and low molecular weight dextr
High and low molecular weight dextran polysaccharide formation in the three juice treatments is
shown in Fig. 3. In the untreated juice, dextran formation was slow in the first 7 h, then accelerated between 7
and 14 h. A slowdown then occurred up to 31 h, and
then a second acceleration phase (this may just be
characteristic of the microbial load). In contrast, in the
pre-heated juice, no dextran was formed in the first 14 h,
because the heat would have destroyed or vastly
reduced the numbers of most of the Leuconostoc bacteria initially present in the juice. The large formation of
dextran between 14 and 23 h could be because of reinnoculation in the incubator from the non-sterile
experimental conditions. A further explanation is that
the heat treatment just reduced the number of viable
Leuconostoc bacteria to a level where lag phase growth
occurred, and it took 14 h for the bacteria to recuperate
and produce dextran, especially in exponential phase
growth. After 23 h no significant dextran was formed
which was likely because the very low pH stopped Leuconostoc growth and/or the activity of dextransucrase.
As expected, in the biocide control juice, there was no
formation of dextran over 71 h. Ravelo et al. (1995)
applied the disinfectant IFOPOLTM to stored billeted
cane and observed that the formation of polysaccharides, as well as total oligosaccharides, was
greatly reduced.
Changes in sucrose, glucose, and fructose concentrations, on a
Brix basis, are illustrated in Fig. 4. Degra-
dation of sucrose in the factory can occur via a variety
of mechanisms. It can be hydrolysed into glucose and
fructose by either acid (acid inversion of sucrose) or by
naturally-occurring cane invertase enzymes (sucrose
inversion). Another mechanism of sucrose loss is by its
utilization by microbes. High infections and stagnant
zones occur often in the cane factory, particularly in the
milling station, and these act as ‘open fermentors’. Leuconostoc bacteria are able to utilize the glucose in the
sucrose molecule to form dextran (a glucose poly-
saccharide). Yeast, particularly Saccharomyces, often
found at factories (Chen & Chou, 1993), can convert
sucrose into ethanol and carbon dioxide, especially
under anaerobic conditions, often found in cane storage
piles and at the factory. Yeasts, and other microbes, are
also known to secrete periplasmic invertase enzymes
(Hanko & Rohrer, 2000).In the untreated juice, sucrose degraded rapidly
(Fig. 4a), particularly over the first 14 h (29.0% sucrose
loss), which is further shown by the concomitant, sharp
increase in glucose and fructose concentrations (Fig. 4b
and c). Although, after 39 h, sucrose loss decelerated, by
71 h very little sucrose, glucose, and fructose remained,
because the solids had been transformed by microbes
(see
Brix results). In comparison, the sucrose in the
biocide-treated juice was only slightly degraded in the
juice (1.7% after 14 h). This slight degree may be
because the biocide is unable to stop the enzymic and acid inversion of sucrose. In the juice preheated before
deterioration, only 0.4% sucrose was measurably lost
during the first 14 h. This strongly suggests that the
heating treatment denatured the invertase enzymes, as
well as markedly reducing the levels of microbes
(including thermophilic bacteria), and that at ambient
temperatures, acid sucrose inversion contributes very
little to sucrose loss in the factory. Glucose and fructose
similarly increased slightly on sucrose inversion and
G/F ratios stayed constant (Table 1).
Using the combination of untreated, biocide-treated,
and heat-treated juices after 14 h deterioration, it was
possible to calculate the contributions of the different
sucrose loss mechanisms. The untreated juice was taken
as equivalent to total deterioration, biocide-treated juice
as equivalent to enzymic and chemical deterioration,
and the pre-heated juice as chemical (acid) deterioration
only. It was calculated that 93.0% of deterioration was
microbial, 5.7% enzymic, and 1.3% was chemical. As
microbiological deterioration is such a major source of
loss, the need to use biocide agents, or other aseptic
conditions at the factory is highlighted.
Dextran formation on deterioration of the untreated
juice was also indicated by the change in G/F ratios
(Table 1). Low G/F ratios indicate a relative increase in
fructose to glucose, which occurs when dextran is
formed because Leuconostoc bacteria utilize glucose to
form dextran, leaving fructose from the sucrose molecule as a by-product.
shown in Fig. 3. In the untreated juice, dextran formation was slow in the first 7 h, then accelerated between 7
and 14 h. A slowdown then occurred up to 31 h, and
then a second acceleration phase (this may just be
characteristic of the microbial load). In contrast, in the
pre-heated juice, no dextran was formed in the first 14 h,
because the heat would have destroyed or vastly
reduced the numbers of most of the Leuconostoc bacteria initially present in the juice. The large formation of
dextran between 14 and 23 h could be because of reinnoculation in the incubator from the non-sterile
experimental conditions. A further explanation is that
the heat treatment just reduced the number of viable
Leuconostoc bacteria to a level where lag phase growth
occurred, and it took 14 h for the bacteria to recuperate
and produce dextran, especially in exponential phase
growth. After 23 h no significant dextran was formed
which was likely because the very low pH stopped Leuconostoc growth and/or the activity of dextransucrase.
As expected, in the biocide control juice, there was no
formation of dextran over 71 h. Ravelo et al. (1995)
applied the disinfectant IFOPOLTM to stored billeted
cane and observed that the formation of polysaccharides, as well as total oligosaccharides, was
greatly reduced.
Changes in sucrose, glucose, and fructose concentrations, on a
Brix basis, are illustrated in Fig. 4. Degra-
dation of sucrose in the factory can occur via a variety
of mechanisms. It can be hydrolysed into glucose and
fructose by either acid (acid inversion of sucrose) or by
naturally-occurring cane invertase enzymes (sucrose
inversion). Another mechanism of sucrose loss is by its
utilization by microbes. High infections and stagnant
zones occur often in the cane factory, particularly in the
milling station, and these act as ‘open fermentors’. Leuconostoc bacteria are able to utilize the glucose in the
sucrose molecule to form dextran (a glucose poly-
saccharide). Yeast, particularly Saccharomyces, often
found at factories (Chen & Chou, 1993), can convert
sucrose into ethanol and carbon dioxide, especially
under anaerobic conditions, often found in cane storage
piles and at the factory. Yeasts, and other microbes, are
also known to secrete periplasmic invertase enzymes
(Hanko & Rohrer, 2000).In the untreated juice, sucrose degraded rapidly
(Fig. 4a), particularly over the first 14 h (29.0% sucrose
loss), which is further shown by the concomitant, sharp
increase in glucose and fructose concentrations (Fig. 4b
and c). Although, after 39 h, sucrose loss decelerated, by
71 h very little sucrose, glucose, and fructose remained,
because the solids had been transformed by microbes
(see
Brix results). In comparison, the sucrose in the
biocide-treated juice was only slightly degraded in the
juice (1.7% after 14 h). This slight degree may be
because the biocide is unable to stop the enzymic and acid inversion of sucrose. In the juice preheated before
deterioration, only 0.4% sucrose was measurably lost
during the first 14 h. This strongly suggests that the
heating treatment denatured the invertase enzymes, as
well as markedly reducing the levels of microbes
(including thermophilic bacteria), and that at ambient
temperatures, acid sucrose inversion contributes very
little to sucrose loss in the factory. Glucose and fructose
similarly increased slightly on sucrose inversion and
G/F ratios stayed constant (Table 1).
Using the combination of untreated, biocide-treated,
and heat-treated juices after 14 h deterioration, it was
possible to calculate the contributions of the different
sucrose loss mechanisms. The untreated juice was taken
as equivalent to total deterioration, biocide-treated juice
as equivalent to enzymic and chemical deterioration,
and the pre-heated juice as chemical (acid) deterioration
only. It was calculated that 93.0% of deterioration was
microbial, 5.7% enzymic, and 1.3% was chemical. As
microbiological deterioration is such a major source of
loss, the need to use biocide agents, or other aseptic
conditions at the factory is highlighted.
Dextran formation on deterioration of the untreated
juice was also indicated by the change in G/F ratios
(Table 1). Low G/F ratios indicate a relative increase in
fructose to glucose, which occurs when dextran is
formed because Leuconostoc bacteria utilize glucose to
form dextran, leaving fructose from the sucrose molecule as a by-product.
0/5000
High and low molecular weight dextran polysaccharide formation in the three juice treatments isshown in Fig. 3. In the untreated juice, dextran formation was slow in the first 7 h, then accelerated between 7and 14 h. A slowdown then occurred up to 31 h, andthen a second acceleration phase (this may just becharacteristic of the microbial load). In contrast, in thepre-heated juice, no dextran was formed in the first 14 h,because the heat would have destroyed or vastlyreduced the numbers of most of the Leuconostoc bacteria initially present in the juice. The large formation ofdextran between 14 and 23 h could be because of reinnoculation in the incubator from the non-sterileexperimental conditions. A further explanation is thatthe heat treatment just reduced the number of viableLeuconostoc bacteria to a level where lag phase growthoccurred, and it took 14 h for the bacteria to recuperateand produce dextran, especially in exponential phasegrowth. After 23 h no significant dextran was formedwhich was likely because the very low pH stopped Leuconostoc growth and/or the activity of dextransucrase.As expected, in the biocide control juice, there was noformation of dextran over 71 h. Ravelo et al. (1995)applied the disinfectant IFOPOLTM to stored billetedcane and observed that the formation of polysaccharides, as well as total oligosaccharides, wasgreatly reduced.Changes in sucrose, glucose, and fructose concentrations, on a Brix basis, are illustrated in Fig. 4. Degra-
dation of sucrose in the factory can occur via a variety
of mechanisms. It can be hydrolysed into glucose and
fructose by either acid (acid inversion of sucrose) or by
naturally-occurring cane invertase enzymes (sucrose
inversion). Another mechanism of sucrose loss is by its
utilization by microbes. High infections and stagnant
zones occur often in the cane factory, particularly in the
milling station, and these act as ‘open fermentors’. Leuconostoc bacteria are able to utilize the glucose in the
sucrose molecule to form dextran (a glucose poly-
saccharide). Yeast, particularly Saccharomyces, often
found at factories (Chen & Chou, 1993), can convert
sucrose into ethanol and carbon dioxide, especially
under anaerobic conditions, often found in cane storage
piles and at the factory. Yeasts, and other microbes, are
also known to secrete periplasmic invertase enzymes
(Hanko & Rohrer, 2000).In the untreated juice, sucrose degraded rapidly
(Fig. 4a), particularly over the first 14 h (29.0% sucrose
loss), which is further shown by the concomitant, sharp
increase in glucose and fructose concentrations (Fig. 4b
and c). Although, after 39 h, sucrose loss decelerated, by
71 h very little sucrose, glucose, and fructose remained,
because the solids had been transformed by microbes
(see
Brix results). In comparison, the sucrose in the
biocide-treated juice was only slightly degraded in the
juice (1.7% after 14 h). This slight degree may be
because the biocide is unable to stop the enzymic and acid inversion of sucrose. In the juice preheated before
deterioration, only 0.4% sucrose was measurably lost
during the first 14 h. This strongly suggests that the
heating treatment denatured the invertase enzymes, as
well as markedly reducing the levels of microbes
(including thermophilic bacteria), and that at ambient
temperatures, acid sucrose inversion contributes very
little to sucrose loss in the factory. Glucose and fructose
similarly increased slightly on sucrose inversion and
G/F ratios stayed constant (Table 1).
Using the combination of untreated, biocide-treated,
and heat-treated juices after 14 h deterioration, it was
possible to calculate the contributions of the different
sucrose loss mechanisms. The untreated juice was taken
as equivalent to total deterioration, biocide-treated juice
as equivalent to enzymic and chemical deterioration,
and the pre-heated juice as chemical (acid) deterioration
only. It was calculated that 93.0% of deterioration was
microbial, 5.7% enzymic, and 1.3% was chemical. As
microbiological deterioration is such a major source of
loss, the need to use biocide agents, or other aseptic
conditions at the factory is highlighted.
Dextran formation on deterioration of the untreated
juice was also indicated by the change in G/F ratios
(Table 1). Low G/F ratios indicate a relative increase in
fructose to glucose, which occurs when dextran is
formed because Leuconostoc bacteria utilize glucose to
form dextran, leaving fructose from the sucrose molecule as a by-product.
dation of sucrose in the factory can occur via a variety
of mechanisms. It can be hydrolysed into glucose and
fructose by either acid (acid inversion of sucrose) or by
naturally-occurring cane invertase enzymes (sucrose
inversion). Another mechanism of sucrose loss is by its
utilization by microbes. High infections and stagnant
zones occur often in the cane factory, particularly in the
milling station, and these act as ‘open fermentors’. Leuconostoc bacteria are able to utilize the glucose in the
sucrose molecule to form dextran (a glucose poly-
saccharide). Yeast, particularly Saccharomyces, often
found at factories (Chen & Chou, 1993), can convert
sucrose into ethanol and carbon dioxide, especially
under anaerobic conditions, often found in cane storage
piles and at the factory. Yeasts, and other microbes, are
also known to secrete periplasmic invertase enzymes
(Hanko & Rohrer, 2000).In the untreated juice, sucrose degraded rapidly
(Fig. 4a), particularly over the first 14 h (29.0% sucrose
loss), which is further shown by the concomitant, sharp
increase in glucose and fructose concentrations (Fig. 4b
and c). Although, after 39 h, sucrose loss decelerated, by
71 h very little sucrose, glucose, and fructose remained,
because the solids had been transformed by microbes
(see
Brix results). In comparison, the sucrose in the
biocide-treated juice was only slightly degraded in the
juice (1.7% after 14 h). This slight degree may be
because the biocide is unable to stop the enzymic and acid inversion of sucrose. In the juice preheated before
deterioration, only 0.4% sucrose was measurably lost
during the first 14 h. This strongly suggests that the
heating treatment denatured the invertase enzymes, as
well as markedly reducing the levels of microbes
(including thermophilic bacteria), and that at ambient
temperatures, acid sucrose inversion contributes very
little to sucrose loss in the factory. Glucose and fructose
similarly increased slightly on sucrose inversion and
G/F ratios stayed constant (Table 1).
Using the combination of untreated, biocide-treated,
and heat-treated juices after 14 h deterioration, it was
possible to calculate the contributions of the different
sucrose loss mechanisms. The untreated juice was taken
as equivalent to total deterioration, biocide-treated juice
as equivalent to enzymic and chemical deterioration,
and the pre-heated juice as chemical (acid) deterioration
only. It was calculated that 93.0% of deterioration was
microbial, 5.7% enzymic, and 1.3% was chemical. As
microbiological deterioration is such a major source of
loss, the need to use biocide agents, or other aseptic
conditions at the factory is highlighted.
Dextran formation on deterioration of the untreated
juice was also indicated by the change in G/F ratios
(Table 1). Low G/F ratios indicate a relative increase in
fructose to glucose, which occurs when dextran is
formed because Leuconostoc bacteria utilize glucose to
form dextran, leaving fructose from the sucrose molecule as a by-product.
การแปล กรุณารอสักครู่..
น้ำหนักโมเลกุลก่อ polysaccharide สูงและต่ำ dextran ในสามรักษาน้ำผลไม้ที่
แสดงในรูป 3. ในน้ำผลไม้ได้รับการรักษารูปแบบ dextran ช้าในสายแรก 7 ชั่วโมงแล้วเร่งระหว่างวันที่ 7
และ 14 ชั่วโมง การชะลอตัวที่เกิดขึ้นแล้วจนถึงวันที่ 31 ชั่วโมงและ
จากนั้นขั้นตอนการเร่งที่สอง (ซึ่งก็อาจจะเป็น
ลักษณะของปริมาณจุลินทรีย์) ในทางตรงกันข้ามใน
น้ำผลไม้ก่อนอุ่นไม่ dextran ก่อตั้งขึ้นในสายแรก 14 ชั่วโมง
เพราะความร้อนจะทำลายหรืออย่างมากมาย
ลดลงจำนวนมากที่สุดของแบคทีเรีย Leuconostoc แรกอยู่ในน้ำผลไม้ การก่อตัวของ
dextran ระหว่าง 14 และ 23 ชั่วโมงอาจเป็นเพราะ reinnoculation ในตู้จากที่ไม่ผ่านการฆ่าเชื้อ
เงื่อนไขการทดลอง คำอธิบายเพิ่มเติมก็คือ
การรักษาความร้อนเพียงแค่ลดจำนวนของการทำงานได้
แบคทีเรีย Leuconostoc ระดับการเจริญเติบโตล่าช้าขั้นตอนที่
เกิดขึ้นและมันต้องใช้เวลา 14 ชั่วโมงสำหรับแบคทีเรียเพื่อพักฟื้น
และผลิต dextran โดยเฉพาะอย่างยิ่งในขั้นตอนการชี้แจง
การเจริญเติบโต หลังจาก 23 ชั่วโมงไม่มีนัยสำคัญ dextran Fi ลาดเทถูกสร้างขึ้น
ซึ่งก็น่าจะเป็นเพราะค่า pH ต่ำมากหยุดการเจริญเติบโต Leuconostoc และ / หรือกิจกรรมของ dextransucrase
ตามที่คาดไว้ในน้ำควบคุมแมลงไม่มี
การก่อตัวของ dextran กว่า 71 ชั่วโมง Ravelo และคณะ (1995)
นำมาใช้ IFOPOLTM ยาฆ่าเชื้อที่จะเก็บซ่อน
อ้อยและตั้งข้อสังเกตว่าการก่อตัวของ polysaccharides เช่นเดียวกับ oligosaccharides ทั้งหมดได้รับการ
ลดลงอย่างมาก
ในการเปลี่ยนแปลงน้ำตาลซูโครสกลูโคสและฟรุกโตสความเข้มข้นใน?
Brix พื้นฐานจะแสดงในรูปที่ 4. Degra-
dation ของน้ำตาลซูโครสในโรงงานสามารถเกิดขึ้นได้ผ่านความหลากหลาย
ของกลไก มันสามารถย่อยเป็นน้ำตาลกลูโคสและ
ฟรุกโตสโดยทั้งกรด (กรดผกผันของน้ำตาลซูโครส) หรือ
เกิดขึ้นตามธรรมชาติเอนไซม์อินเวอร์อ้อย (ซูโครส
ผกผัน) กลไกของการสูญเสียน้ำตาลซูโครสก็คือโดยที่
การใช้ประโยชน์จากจุลินทรีย์ การติดเชื้อสูงและนิ่ง
โซนมักจะเกิดขึ้นในโรงงานอ้อยโดยเฉพาะใน
สถานีโม่และเหล่านี้ทำหน้าที่เป็น 'เปิดหมัก' แบคทีเรีย Leuconostoc จะสามารถใช้น้ำตาลใน
โมเลกุลน้ำตาลซูโครสในรูปแบบ dextran (โพลีกลูโคส
saccharide) ยีสต์ Saccharomyces โดยเฉพาะอย่างยิ่งมักจะ
พบที่โรงงาน (เฉินและโจว 1993) สามารถแปลง
น้ำตาลเป็นเอทานอลและคาร์บอนไดออกไซด์โดยเฉพาะอย่างยิ่ง
ภายใต้สภาวะไร้ออกซิเจนมักจะพบในการจัดเก็บอ้อย
กองและที่โรงงาน ยีสต์และจุลินทรีย์อื่น ๆ จะ
ยังเป็นที่รู้จักหลั่งเอนไซม์อินเวอร์ periplasmic
(Hanko & Rohrer 2000) ในน้ำผลไม้ดิบน้ำตาลซูโครสเสื่อมโทรมอย่างรวดเร็ว
(รูปที่ 4a.) โดยเฉพาะอย่างยิ่งในช่วงแรก Fi 14 ชั่วโมง (29.0% น้ำตาลซูโครส
ขาดทุน) ซึ่ง จะแสดงต่อไปโดยไปด้วยกัน, คมชัด
เพิ่มขึ้นของน้ำตาลกลูโคสและฟรุกโตสความเข้มข้น (รูป 4b.
และค) แม้ว่าหลังจาก 39 ชั่วโมง, การสูญเสียน้ำตาลซูโครสชะลอตัวลงโดย
71 ชั่วโมงน้อยมากซูโครสกลูโคสฟรุกโตสยังคง
เพราะสารที่ได้รับการแปลงรูปแบบโดยจุลินทรีย์
(ดู?
ผล Brix) ในการเปรียบเทียบน้ำตาลซูโครสใน
น้ำผลไม้แมลงได้รับการรักษาได้รับการสลายตัวเพียงเล็กน้อยใน
น้ำผลไม้ (1.7% หลังจาก 14 ชั่วโมง) ระดับนี้เล็กน้อยอาจจะเป็น
เพราะแมลงไม่สามารถที่จะหยุดการผกผันทางเอนไซม์และกรดของน้ำตาลซูโครส ในน้ำผลไม้อุ่นก่อนที่จะ
เสื่อมสภาพซูโครส 0.4% เท่านั้นที่หายไปวัดได้
ในช่วงแรก Fi 14 ชั่วโมง นี้ขอแนะนำว่า
การรักษาความร้อนเอทิลแอลกอฮอล์เอนไซม์อินเวอร์เช่น
เดียวกับการลดระดับความโดดเด่นของจุลินทรีย์
(รวมถึงแบคทีเรียทนร้อน) และที่รอบ
อุณหภูมิผกผันซูโครสกรดส่วนมาก
เล็ก ๆ น้อย ๆ ในการลดน้ำตาลในโรงงาน กลูโคสและฟรุกโตส
ที่เพิ่มขึ้นเล็กน้อยในทำนองกลับกันซูโครสและ
อัตราส่วน G / F อยู่คงที่ (ตารางที่ 1)
โดยใช้การรวมกันของไม่ถูกรักษาแมลงได้รับการรักษา,
และความร้อนได้รับการรักษาน้ำผลไม้หลังจาก 14 ชั่วโมงการเสื่อมสภาพมันเป็น
ไปได้ในการคำนวณเงินสมทบของ ดิ ff ต่างกัน
กลไกการสูญเสียน้ำตาลซูโครส น้ำผลไม้ที่ไม่ได้ถูกนำมา
เป็นเทียบเท่ากับการเสื่อมสภาพน้ำแมลงได้รับการรักษาทั้งหมด
เป็นเทียบเท่ากับเอนไซม์และการเสื่อมสภาพทางเคมี
และน้ำผลไม้ก่อนความร้อนสารเคมี (กรด) การเสื่อมสภาพ
เท่านั้น มันได้รับการคำนวณว่า 93.0% ของการเสื่อมสภาพเป็น
จุลินทรีย์ 5.7% ทางเอนไซม์และ 1.3% เป็นสารเคมี ในขณะที่
การเสื่อมสภาพทางจุลชีววิทยาเป็นเช่นเป็นแหล่งสำคัญของ
การสูญเสียความจำเป็นในการใช้สารฆ่าแมลงหรือปลอดเชื้ออื่น ๆ
เงื่อนไขที่โรงงานมีการเน้น
การสร้าง Dextran ที่เสื่อมสภาพของดิบ
น้ำผลไม้ก็ยังแสดงให้เห็นการเปลี่ยนแปลงในอัตราส่วน G / F
(ตารางที่ 1 ) G ต่ำ / อัตราส่วน F บ่งบอกถึงการเพิ่มขึ้นเมื่อเทียบกับใน
ฟรุกโตสเป็นน้ำตาลกลูโคสซึ่งเกิดขึ้นเมื่อ dextran จะ
เกิดขึ้นเนื่องจากเชื้อแบคทีเรีย Leuconostoc ใช้น้ำตาลในการ
สร้าง dextran ออกจากฟรุกโตสจากโมเลกุลน้ำตาลซูโครสเป็นผลพลอยได้
แสดงในรูป 3. ในน้ำผลไม้ได้รับการรักษารูปแบบ dextran ช้าในสายแรก 7 ชั่วโมงแล้วเร่งระหว่างวันที่ 7
และ 14 ชั่วโมง การชะลอตัวที่เกิดขึ้นแล้วจนถึงวันที่ 31 ชั่วโมงและ
จากนั้นขั้นตอนการเร่งที่สอง (ซึ่งก็อาจจะเป็น
ลักษณะของปริมาณจุลินทรีย์) ในทางตรงกันข้ามใน
น้ำผลไม้ก่อนอุ่นไม่ dextran ก่อตั้งขึ้นในสายแรก 14 ชั่วโมง
เพราะความร้อนจะทำลายหรืออย่างมากมาย
ลดลงจำนวนมากที่สุดของแบคทีเรีย Leuconostoc แรกอยู่ในน้ำผลไม้ การก่อตัวของ
dextran ระหว่าง 14 และ 23 ชั่วโมงอาจเป็นเพราะ reinnoculation ในตู้จากที่ไม่ผ่านการฆ่าเชื้อ
เงื่อนไขการทดลอง คำอธิบายเพิ่มเติมก็คือ
การรักษาความร้อนเพียงแค่ลดจำนวนของการทำงานได้
แบคทีเรีย Leuconostoc ระดับการเจริญเติบโตล่าช้าขั้นตอนที่
เกิดขึ้นและมันต้องใช้เวลา 14 ชั่วโมงสำหรับแบคทีเรียเพื่อพักฟื้น
และผลิต dextran โดยเฉพาะอย่างยิ่งในขั้นตอนการชี้แจง
การเจริญเติบโต หลังจาก 23 ชั่วโมงไม่มีนัยสำคัญ dextran Fi ลาดเทถูกสร้างขึ้น
ซึ่งก็น่าจะเป็นเพราะค่า pH ต่ำมากหยุดการเจริญเติบโต Leuconostoc และ / หรือกิจกรรมของ dextransucrase
ตามที่คาดไว้ในน้ำควบคุมแมลงไม่มี
การก่อตัวของ dextran กว่า 71 ชั่วโมง Ravelo และคณะ (1995)
นำมาใช้ IFOPOLTM ยาฆ่าเชื้อที่จะเก็บซ่อน
อ้อยและตั้งข้อสังเกตว่าการก่อตัวของ polysaccharides เช่นเดียวกับ oligosaccharides ทั้งหมดได้รับการ
ลดลงอย่างมาก
ในการเปลี่ยนแปลงน้ำตาลซูโครสกลูโคสและฟรุกโตสความเข้มข้นใน?
Brix พื้นฐานจะแสดงในรูปที่ 4. Degra-
dation ของน้ำตาลซูโครสในโรงงานสามารถเกิดขึ้นได้ผ่านความหลากหลาย
ของกลไก มันสามารถย่อยเป็นน้ำตาลกลูโคสและ
ฟรุกโตสโดยทั้งกรด (กรดผกผันของน้ำตาลซูโครส) หรือ
เกิดขึ้นตามธรรมชาติเอนไซม์อินเวอร์อ้อย (ซูโครส
ผกผัน) กลไกของการสูญเสียน้ำตาลซูโครสก็คือโดยที่
การใช้ประโยชน์จากจุลินทรีย์ การติดเชื้อสูงและนิ่ง
โซนมักจะเกิดขึ้นในโรงงานอ้อยโดยเฉพาะใน
สถานีโม่และเหล่านี้ทำหน้าที่เป็น 'เปิดหมัก' แบคทีเรีย Leuconostoc จะสามารถใช้น้ำตาลใน
โมเลกุลน้ำตาลซูโครสในรูปแบบ dextran (โพลีกลูโคส
saccharide) ยีสต์ Saccharomyces โดยเฉพาะอย่างยิ่งมักจะ
พบที่โรงงาน (เฉินและโจว 1993) สามารถแปลง
น้ำตาลเป็นเอทานอลและคาร์บอนไดออกไซด์โดยเฉพาะอย่างยิ่ง
ภายใต้สภาวะไร้ออกซิเจนมักจะพบในการจัดเก็บอ้อย
กองและที่โรงงาน ยีสต์และจุลินทรีย์อื่น ๆ จะ
ยังเป็นที่รู้จักหลั่งเอนไซม์อินเวอร์ periplasmic
(Hanko & Rohrer 2000) ในน้ำผลไม้ดิบน้ำตาลซูโครสเสื่อมโทรมอย่างรวดเร็ว
(รูปที่ 4a.) โดยเฉพาะอย่างยิ่งในช่วงแรก Fi 14 ชั่วโมง (29.0% น้ำตาลซูโครส
ขาดทุน) ซึ่ง จะแสดงต่อไปโดยไปด้วยกัน, คมชัด
เพิ่มขึ้นของน้ำตาลกลูโคสและฟรุกโตสความเข้มข้น (รูป 4b.
และค) แม้ว่าหลังจาก 39 ชั่วโมง, การสูญเสียน้ำตาลซูโครสชะลอตัวลงโดย
71 ชั่วโมงน้อยมากซูโครสกลูโคสฟรุกโตสยังคง
เพราะสารที่ได้รับการแปลงรูปแบบโดยจุลินทรีย์
(ดู?
ผล Brix) ในการเปรียบเทียบน้ำตาลซูโครสใน
น้ำผลไม้แมลงได้รับการรักษาได้รับการสลายตัวเพียงเล็กน้อยใน
น้ำผลไม้ (1.7% หลังจาก 14 ชั่วโมง) ระดับนี้เล็กน้อยอาจจะเป็น
เพราะแมลงไม่สามารถที่จะหยุดการผกผันทางเอนไซม์และกรดของน้ำตาลซูโครส ในน้ำผลไม้อุ่นก่อนที่จะ
เสื่อมสภาพซูโครส 0.4% เท่านั้นที่หายไปวัดได้
ในช่วงแรก Fi 14 ชั่วโมง นี้ขอแนะนำว่า
การรักษาความร้อนเอทิลแอลกอฮอล์เอนไซม์อินเวอร์เช่น
เดียวกับการลดระดับความโดดเด่นของจุลินทรีย์
(รวมถึงแบคทีเรียทนร้อน) และที่รอบ
อุณหภูมิผกผันซูโครสกรดส่วนมาก
เล็ก ๆ น้อย ๆ ในการลดน้ำตาลในโรงงาน กลูโคสและฟรุกโตส
ที่เพิ่มขึ้นเล็กน้อยในทำนองกลับกันซูโครสและ
อัตราส่วน G / F อยู่คงที่ (ตารางที่ 1)
โดยใช้การรวมกันของไม่ถูกรักษาแมลงได้รับการรักษา,
และความร้อนได้รับการรักษาน้ำผลไม้หลังจาก 14 ชั่วโมงการเสื่อมสภาพมันเป็น
ไปได้ในการคำนวณเงินสมทบของ ดิ ff ต่างกัน
กลไกการสูญเสียน้ำตาลซูโครส น้ำผลไม้ที่ไม่ได้ถูกนำมา
เป็นเทียบเท่ากับการเสื่อมสภาพน้ำแมลงได้รับการรักษาทั้งหมด
เป็นเทียบเท่ากับเอนไซม์และการเสื่อมสภาพทางเคมี
และน้ำผลไม้ก่อนความร้อนสารเคมี (กรด) การเสื่อมสภาพ
เท่านั้น มันได้รับการคำนวณว่า 93.0% ของการเสื่อมสภาพเป็น
จุลินทรีย์ 5.7% ทางเอนไซม์และ 1.3% เป็นสารเคมี ในขณะที่
การเสื่อมสภาพทางจุลชีววิทยาเป็นเช่นเป็นแหล่งสำคัญของ
การสูญเสียความจำเป็นในการใช้สารฆ่าแมลงหรือปลอดเชื้ออื่น ๆ
เงื่อนไขที่โรงงานมีการเน้น
การสร้าง Dextran ที่เสื่อมสภาพของดิบ
น้ำผลไม้ก็ยังแสดงให้เห็นการเปลี่ยนแปลงในอัตราส่วน G / F
(ตารางที่ 1 ) G ต่ำ / อัตราส่วน F บ่งบอกถึงการเพิ่มขึ้นเมื่อเทียบกับใน
ฟรุกโตสเป็นน้ำตาลกลูโคสซึ่งเกิดขึ้นเมื่อ dextran จะ
เกิดขึ้นเนื่องจากเชื้อแบคทีเรีย Leuconostoc ใช้น้ำตาลในการ
สร้าง dextran ออกจากฟรุกโตสจากโมเลกุลน้ำตาลซูโครสเป็นผลพลอยได้
การแปล กรุณารอสักครู่..
และ polysaccharide dextran สูงน้ำหนักโมเลกุลต่ำก่อตัวใน 3 น้ำผลไม้รักษาคือ
แสดงในรูปที่ 3 . ในน้ำผลไม้ดิบ การสร้างเดกซ์แทรนเป็นช้าในจึงตัดสินใจเดินทาง 7 ชั่วโมง แล้วเร่งระหว่าง
7 และ 14 ชั่วโมง ชะลอตัวแล้วเกิดขึ้นกับ 31 H ,
แล้วระยะเร่งวินาที ( นี่อาจจะเป็น
ลักษณะของโหลดของจุลินทรีย์ ) ในทางตรงกันข้ามในน้ำอุ่น
ก่อนไม่เด็กซ์แทรนก่อตั้งขึ้นในจึงตัดสินใจเดินทาง 14 H ,
เพราะความร้อนจะทำลายหรืออย่างมากมาย
ลดลงตัวเลขของที่สุดของลิวโคน ตอคแบคทีเรียเริ่มต้นที่มีอยู่ในน้ำผลไม้ การพัฒนาขนาดใหญ่ของ
dextran ระหว่าง 14 และ 23 ชั่วโมง อาจเป็นเพราะ reinnoculation ในตู้อบจากไม่เป็นหมัน
2 เงื่อนไข อธิบายเพิ่มเติมว่า
รักษาความร้อน ก็ลดจํานวนได้
ลิวโคน ตอคแบคทีเรียในระดับที่ล้าหลังระยะการเจริญเติบโต
เกิดขึ้นและใช้เวลา 14 ชั่วโมง แบคทีเรีย พักฟื้น
และผลิตเดกซ์แทรน โดยเฉพาะอย่างยิ่งในเฟส
เติบโตชี้แจง หลังจาก 23 H ไม่ signi จึงไม่สามารถสอบผ่านก่อตั้งขึ้น
ซึ่งอาจเป็นเพราะ pH ต่ำมากหยุดลิวโคน ตอคการเจริญเติบโตและ / หรือกิจกรรมของ dextransucrase .
อย่างที่คาดไว้ใน biocide ควบคุมน้ำ ไม่มีการสร้างเดกซ์แทรน
กว่า 71 ชั่วโมง ravelo et al . ( 1995 )
ประยุกต์ ifopoltm ยาฆ่าเชื้อเพื่อเก็บไว้พักชั่วคราว
อ้อยและสังเกตว่า การก่อตัวของพอลิแซ็กคาไรด์ ตลอดจนเทคโนโลยีทั้งหมด ถูก
ลดลงอย่างมาก ในการเปลี่ยนแปลงน้ำตาลซูโครสกลูโคสฟรุกโตสและความเข้มข้นใน
โดยพื้นฐานจะแสดงในรูปที่ 4 degra -
SIRS ซูโครสในโรงงานสามารถเกิดขึ้นผ่านทางความหลากหลาย
ของกลไก สามารถที่เป็นกลูโคสและฟรักโทสด้วยกรด ( กรด
ผกผันของซูโครส ) หรือเกิดขึ้นตามธรรมชาติโดย
อ้อยเปรียบเทียบเอนไซม์ ( ผกผันซูโครส
) กลไกอื่นของน้ำตาลซูโครส สูญเสียการใช้ของ
โดยจุลินทรีย์ เชื้อสูง และโซนนิ่ง
เกิดขึ้นบ่อยครั้งในโรงงานอ้อย โดยเฉพาะอย่างยิ่งใน
โม่สถานี และเหล่านี้เป็น ' เปิดใช้การหมักแบบ ' ลิวโคน ตอค แบคทีเรียที่สามารถใช้น้ำตาลในโมเลกุลของน้ำตาลซูโครสในรูปแบบ dextran (
-
กลูโคสโพลีแซ็กคาไรด์ ) ยีสต์ โดยเฉพาะอย่างยิ่งใน มักจะพบในโรงงาน ( &
เฉินโจว , 1993 ) สามารถแปลง
ซูโครสเป็นเอทานอลและคาร์บอนไดออกไซด์ โดยเฉพาะอย่างยิ่งภายใต้สภาวะไร้อากาศ
กระเป๋า มักพบในอ้อยเสาเข็มและที่โรงงาน ยีสต์และจุลินทรีย์อื่น ๆ ,
เรียกว่าหลั่งเอนไซม์อินเวอร์เทส periplasmic
( hanko &รอเรอร์ , 2000 ) ในผลไม้ดิบ น้ำตาลทรายลดลงอย่างรวดเร็ว
( รูปที่ 4 ) โดยเฉพาะอย่างยิ่งผ่านจึงตัดสินใจเดินทาง 14 ชั่วโมง ( ร้อยละ 29.0 การสูญเสีย %
) ซึ่งเป็นการเพิ่มเติมแสดงโดย concomitant , คม
เพิ่ม ในความเข้มข้นของกลูโคสและฟรักโทส ( รูป 4b
C ) แม้ว่าหลังจาก 39 ชั่วโมง
แสดงในรูปที่ 3 . ในน้ำผลไม้ดิบ การสร้างเดกซ์แทรนเป็นช้าในจึงตัดสินใจเดินทาง 7 ชั่วโมง แล้วเร่งระหว่าง
7 และ 14 ชั่วโมง ชะลอตัวแล้วเกิดขึ้นกับ 31 H ,
แล้วระยะเร่งวินาที ( นี่อาจจะเป็น
ลักษณะของโหลดของจุลินทรีย์ ) ในทางตรงกันข้ามในน้ำอุ่น
ก่อนไม่เด็กซ์แทรนก่อตั้งขึ้นในจึงตัดสินใจเดินทาง 14 H ,
เพราะความร้อนจะทำลายหรืออย่างมากมาย
ลดลงตัวเลขของที่สุดของลิวโคน ตอคแบคทีเรียเริ่มต้นที่มีอยู่ในน้ำผลไม้ การพัฒนาขนาดใหญ่ของ
dextran ระหว่าง 14 และ 23 ชั่วโมง อาจเป็นเพราะ reinnoculation ในตู้อบจากไม่เป็นหมัน
2 เงื่อนไข อธิบายเพิ่มเติมว่า
รักษาความร้อน ก็ลดจํานวนได้
ลิวโคน ตอคแบคทีเรียในระดับที่ล้าหลังระยะการเจริญเติบโต
เกิดขึ้นและใช้เวลา 14 ชั่วโมง แบคทีเรีย พักฟื้น
และผลิตเดกซ์แทรน โดยเฉพาะอย่างยิ่งในเฟส
เติบโตชี้แจง หลังจาก 23 H ไม่ signi จึงไม่สามารถสอบผ่านก่อตั้งขึ้น
ซึ่งอาจเป็นเพราะ pH ต่ำมากหยุดลิวโคน ตอคการเจริญเติบโตและ / หรือกิจกรรมของ dextransucrase .
อย่างที่คาดไว้ใน biocide ควบคุมน้ำ ไม่มีการสร้างเดกซ์แทรน
กว่า 71 ชั่วโมง ravelo et al . ( 1995 )
ประยุกต์ ifopoltm ยาฆ่าเชื้อเพื่อเก็บไว้พักชั่วคราว
อ้อยและสังเกตว่า การก่อตัวของพอลิแซ็กคาไรด์ ตลอดจนเทคโนโลยีทั้งหมด ถูก
ลดลงอย่างมาก ในการเปลี่ยนแปลงน้ำตาลซูโครสกลูโคสฟรุกโตสและความเข้มข้นใน
โดยพื้นฐานจะแสดงในรูปที่ 4 degra -
SIRS ซูโครสในโรงงานสามารถเกิดขึ้นผ่านทางความหลากหลาย
ของกลไก สามารถที่เป็นกลูโคสและฟรักโทสด้วยกรด ( กรด
ผกผันของซูโครส ) หรือเกิดขึ้นตามธรรมชาติโดย
อ้อยเปรียบเทียบเอนไซม์ ( ผกผันซูโครส
) กลไกอื่นของน้ำตาลซูโครส สูญเสียการใช้ของ
โดยจุลินทรีย์ เชื้อสูง และโซนนิ่ง
เกิดขึ้นบ่อยครั้งในโรงงานอ้อย โดยเฉพาะอย่างยิ่งใน
โม่สถานี และเหล่านี้เป็น ' เปิดใช้การหมักแบบ ' ลิวโคน ตอค แบคทีเรียที่สามารถใช้น้ำตาลในโมเลกุลของน้ำตาลซูโครสในรูปแบบ dextran (
-
กลูโคสโพลีแซ็กคาไรด์ ) ยีสต์ โดยเฉพาะอย่างยิ่งใน มักจะพบในโรงงาน ( &
เฉินโจว , 1993 ) สามารถแปลง
ซูโครสเป็นเอทานอลและคาร์บอนไดออกไซด์ โดยเฉพาะอย่างยิ่งภายใต้สภาวะไร้อากาศ
กระเป๋า มักพบในอ้อยเสาเข็มและที่โรงงาน ยีสต์และจุลินทรีย์อื่น ๆ ,
เรียกว่าหลั่งเอนไซม์อินเวอร์เทส periplasmic
( hanko &รอเรอร์ , 2000 ) ในผลไม้ดิบ น้ำตาลทรายลดลงอย่างรวดเร็ว
( รูปที่ 4 ) โดยเฉพาะอย่างยิ่งผ่านจึงตัดสินใจเดินทาง 14 ชั่วโมง ( ร้อยละ 29.0 การสูญเสีย %
) ซึ่งเป็นการเพิ่มเติมแสดงโดย concomitant , คม
เพิ่ม ในความเข้มข้นของกลูโคสและฟรักโทส ( รูป 4b
C ) แม้ว่าหลังจาก 39 ชั่วโมง
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- my father is going to repair the stairs,
- Strains JU4-57 and BY4-523 were grown on
- ฉันไม่กินเนื้อ กินแต่หมู
- เงินเดือนที่คาดหวัง
- เธอเป็นคนร่าเริง แจ่มใส กลับกลายเป็นคนที
- You must have more confidence
- ฉันคิดว่าเราควรจะเรียนรู้กันมากกว่านี้แล
- relieved us from the burden of technical
- เธอบอกเขาว่าคิดถึง
- In conclusion, our work identified some
- 作包装
- letter of award
- Lying on the bed playing smart phoneนอนเ
- We suggest for the benefit of both the m
- cristal de strass
- รูปที่ส่งมาดูเด็กกว่าอายุ ดังนั้นพี่สาวไ
- peak
- - Thank you for helping out. N - I shoul
- กลับมาเที่ยวโคราชบ้างนะคะ
- คุณหายไปไหน
- Grab a bike, please.
- ฉันไปสวดมนต์มา
- เขาต้องแต่งงานกันเท่านั้น
- ดูทีวี
