Photocatalytic antibacterial activi

Photocatalytic antibacterial activity
E. coli XL1-blue (Invitrogen Life Technologies, USA) was used as
the model bacterium in the study. LB agar and broth were used as
solid and liquid media, respectively. Cultivations were performed
by using shaker (170 rpm) and incubator at 35 ◦C. Stock cultures
containing glycerol were stored in a deep-freezer at −80 ◦C and
working cultures were maintained on slants and stored at 4 ◦C.
After cultivation of E. coli in liquid medium, cells were separated
by using a centrifuge (5000 × g) for 10 min and the harvested cells
were washed twice with sterilized phosphate buffer solution (0.2 M
PBS) at pH 7.2. Cells were then re-suspended in PBS, and the number
of cells was adjusted as 106–108 per ml liquid which is used in
photocatalytic cell inactivation experiments. The number of cells in
cell suspensions was determined by using viable cell count method.
For this purpose, 100 l sample was diluted serially between 10−1
and 10−6 dilution in phosphate buffer solutions (pH 7.2) and pipetted
onto Luria Bertani (LB) agar plates. The numbers of colonies on
plates were counted after overnight incubation at 35 ◦C.
The antibacterial activity of the thin film samples for suspended
cells was determined by exposing 200 l of cell suspension over
sample surface to artificial solar radiation (Suntest Atlas CPS+
equipped with Special window glass filter) with a power flux of
300W/m2 between 310 and 800 nm at 35 ◦C. The flux was measured
and controlled by built in radiometer of solar simulator. Each
thin film compositions were tested by at least 6 different parallel
thin film samples, initially and the time course of number of viable
cells was determined by removing one plate out of test chamber.
100 l samples were collected from thin film surfaces and the time
course of number of viable cells was determined;
Antimicrobial activity
= initial number of microorganisms − final number of microorganisms
initial number of microorganisms × 100 (2

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

กระต้านแบคทีเรียE. coli XL1-น้ำเงิน (Invitrogen ชีวิตเทคโนโลยี สหรัฐอเมริกา) ถูกใช้เป็นแบคทีเรียแบบจำลองในการศึกษา LB อาหารและน้ำถูกใช้เป็นสื่อที่เป็นของแข็ง และของเหลว ตามลำดับ ดำเนินการ cultivationsโดยใช้เชคเกอร์ (170 รอบต่อนาที) และตู้อบที่ 35 ◦C สินค้าวัฒนธรรมประกอบด้วยกลีเซอรอลถูกเก็บอยู่ใน deep-freezer ที่ −80 ◦C และวัฒนธรรมการทำงานที่อยู่ใน slants และเก็บไว้ที่ 4 ◦Cหลังจากการเพาะปลูกของ E. coli ในเหลว เซลล์ถูกแยกออกโดยใช้เครื่องหมุนเหวี่ยง (5000 × g) สำหรับ 10 นาทีและเก็บเกี่ยวเซลล์ถูกล้าง ด้วยสารละลายบัฟเฟอร์ฟอสเฟตผ่านการฆ่าเชื้อ (0.2 M สองครั้งPBS) ที่ pH 7.2 เซลล์มีการหยุดชั่วคราวใน PBS และหมายเลขของเซลล์เปลี่ยนเป็น 106 – 108 ต่อมล.ของเหลวซึ่งใช้ในการกระเซลล์ขั้นทดลอง จำนวนของเซลล์ในสารแขวนลอยเซลล์ที่กำหนด โดยใช้วิธีการนับเซลล์ทำงานได้สำหรับวัตถุประสงค์นี้ 100 l ตัวอย่างถูกเจือจาง serially ระหว่าง 10−1และเวลา 10-6 ในฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 7.2) โซลูชั่น และ pipettedลงบนจานอาหาร Luria Bertani (ปอนด์) หมายเลขของอาณานิคมบนแผ่นถูกนับหลังจากบ่มข้ามคืนที่ 35 ◦Cแบคทีเรียตัวอย่างฟิล์มบางสำหรับการหยุดชั่วคราวเซลล์ที่กำหนด โดยเปิดเผยระงับเซลล์ 200 ลิตรมากกว่าตัวอย่างพื้นผิวเทียมอาทิตย์ (Suntest Atlas CPS +พร้อมหน้าต่างพิเศษกรองแก้ว) มีการไหลพลังงานของ300W/m2 ระหว่าง 310 และ 800 nm ที่ 35 ◦C มีวัดการไหลและควบคุม โดย radiometer ในการจำลองแสงอาทิตย์ แต่ละทดสอบฟิล์มบางองค์น้อย 6 ขนานแตกต่างกันตัวอย่างภาพยนตร์ แรก และการเรียนของทางเซลล์ที่ถูกกำหนด โดยการเอาแผ่นหนึ่งจากห้องทดสอบ100 l ตัวอย่างถูกเก็บมาจากพื้นผิวของฟิล์มบางและเวลากำหนดหลักสูตรของเซลล์ทำงานได้ต้านจุลชีพ=จำนวนจุลินทรีย์−จำนวนจุลินทรีย์เริ่มต้นหมายเลขเริ่มต้นของจุลินทรีย์× 100 (2

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ฤทธิ์ต้านแบคทีเรียโฟ
อี coli XL1 สีฟ้า (Invitrogen ไลฟ์เทคโนโลยีส์, สหรัฐอเมริกา) ถูกใช้เป็น
แบคทีเรียรูปแบบในการศึกษา LB วุ้นและน้ำซุปที่ถูกนำมาใช้เป็น
สื่อของแข็งและของเหลวตามลำดับ ปลูกได้ดำเนินการ
โดยใช้เครื่องปั่น (170 รอบต่อนาที) และศูนย์บ่มเพาะที่ 35 ◦C วัฒนธรรมหุ้น
ที่มีกลีเซอรีนที่ถูกเก็บไว้ในช่องแช่แข็งลึกที่ -80 ◦Cและ
วัฒนธรรมการทำงานที่ได้รับการดูแลใน slants และเก็บไว้ที่ 4 ◦C.
หลังจากการเพาะปลูกของเชื้อ E. coli ในอาหารเหลวเซลล์ถูกแยกออก
โดยใช้เครื่องหมุนเหวี่ยง (5000 × g) เป็นเวลา 10 นาทีและเซลล์เก็บเกี่ยว
ถูกล้างครั้งที่สองกับการแก้ปัญหาการฆ่าเชื้อฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (0.2 M
พีบีเอส) ที่ pH 7.2 เซลล์ที่ถูกแล้วอีกครั้งที่ลอยอยู่ในพีบีเอสและจำนวน
ของเซลล์ที่มีการปรับเป็นของเหลว 106-108 ต่อมล. ซึ่งจะใช้ใน
ปฏิกิริยาการทดลองการใช้งานมือถือ จำนวนของเซลล์ใน
เซลล์แขวนลอยถูกกำหนดโดยใช้วิธีการนับเซลล์ทำงานได้.
เพื่อจุดประสงค์นี้ 100 L ตัวอย่างถูกเจือจางลำดับระหว่าง 10-1
และ 10-6 เจือจางในสารละลายบัฟเฟอร์ฟอสเฟต (pH 7.2) และปิเปต
บน Luria Bertani (LB ) แผ่นวุ้น ตัวเลขของอาณานิคมบน
แผ่นนับหลังจากการบ่มค้างคืนที่ 35 ◦C.
กิจกรรมต้านเชื้อแบคทีเรียของตัวอย่างฟิล์มบางสำหรับระงับ
เซลล์ถูกกำหนดโดยการเปิดเผย 200 ลิตรเซลล์แขวนลอยกว่า
พื้นผิวตัวอย่างรังสีแสงอาทิตย์เทียม (Suntest Atlas CPS +
พร้อมกับพิเศษ กรองกระจกหน้าต่าง) กับฟลักซ์พลังของ
300W / m2 ระหว่าง 310 และ 800 นาโนเมตรที่ 35 ◦C ฟลักซ์ได้รับการวัด
และควบคุมโดยสร้างขึ้นใน Radiometer จำลองแสงอาทิตย์ แต่ละ
องค์ประกอบฟิล์มบางได้รับการทดสอบอย่างน้อย 6 คู่ขนานที่แตกต่างกัน
ตัวอย่างฟิล์มบางต้นและเวลาที่แน่นอนของจำนวนการทำงาน
ของเซลล์ที่ถูกกำหนดโดยการเอาจานหนึ่งออกมาจากห้องทดสอบ.
100 ตัวอย่าง L ถูกเก็บรวบรวมจากพื้นผิวฟิล์มบางและเวลาที่
แน่นอน จำนวนของเซลล์ที่มีชีวิตถูกกำหนด;
ฤทธิ์ต้านจุลชีพ
= จำนวนเริ่มต้นของจุลินทรีย์ - ตัวเลขสุดท้ายของจุลินทรีย์
จำนวนเริ่มต้นของจุลินทรีย์× 100 (2

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ฤทธิ์ต้านแบคทีเรียรีE . coli xl1 สีฟ้า ( Invitrogen ชีวิตเทคโนโลยี , USA ) คือใช้เป็นรูปแบบ ซึ่งในการศึกษา วุ้นปอนด์ และน้ำซุปที่ใช้เป็นของแข็งและของเหลวสื่อตามลำดับ เพาะได้โดยใช้เครื่องปั่น ( 170 รอบต่อนาที ) และเครื่องฟักไข่ที่ 35 ◦ C สินค้าวัฒนธรรมที่ประกอบด้วยกลีเซอรอลที่ถูกเก็บไว้ในช่องแช่แข็งลึก 80 ◦ C ที่ บริษัท เวสเทิร์นวัฒนธรรมการทำงานถูกเก็บรักษาไว้ใน slants และเก็บไว้ที่ 4 ◦ Cหลังจากเลี้ยงในอาหารเหลว เซลล์ E . coli , แยกกันโดยใช้เครื่องปั่นเหวี่ยง ( × 5000 กรัม ) 10 นาที และเก็บเซลล์ถูกล้างด้วยสารละลายฟอสเฟตบัฟเฟอร์สองครั้งฆ่าเชื้อ ( 0.2 Mพีบีเอส ) ที่ pH 7.2 . แล้วเรื่องเซลล์แขวนลอยใน PBS , และหมายเลขเซลล์มีการปรับเป็น 106 - 108 ต่อมิลลิลิตร น้ำที่ใช้ในเมื่อรีเซลล์ ผลการทดลอง จำนวนเซลล์ในเซลล์แขวนลอยถูกกำหนดโดยการใช้วิธีนับเซลล์ในที่ทำงานได้เพื่อวัตถุประสงค์นี้ , 100 ลิตรตัวอย่างที่เจือจางเป็นระหว่าง 10 − 1และ 10 − 6 เจือจางในโซลูชั่นฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.2 ) และ pipettedลงลุเรียแบร์ตานิ ( LB ) วุ้นแผ่น ตัวเลขของอาณานิคมในจานถูกนับหลังจากคืนบ่มที่ 35 ◦ Cมีฤทธิ์ต้านแบคทีเรียของฟิล์มตัวอย่าง เพื่อระงับเซลล์ที่ถูกกำหนดโดยการเปิดเผยของเซลล์แขวนลอยกว่า 200 ล.ผิวตัวอย่างให้รังสีแสงอาทิตย์เทียม ( suntest CPS + แผนที่ติดตั้งกระจกกรองแสงหน้าต่างพิเศษ ) กับพลังของฟลักซ์300W ก็ / m2 ระหว่าง 310 และ 800 nm ที่ 35 ◦ C วัดฟลักซ์และควบคุมโดยสร้างขึ้นในฐานข้อมูลของแสงอาทิตย์ . แต่ละองค์ประกอบฟิล์มทดสอบอย่างน้อย 6 แตกต่างกันขนานตัวอย่างภาพยนตร์บาง แรก และแน่นอนเวลาของจำนวนได้เซลล์ที่ถูกกำหนด โดยการเอาแผ่นหนึ่งออกมาจากห้องสอบ100 ลิตร โดยเก็บตัวอย่างจากพื้นผิวของฟิล์มบาง และ เวลาหลักสูตรของจำนวนเซลล์ได้ถูกกำหนด ;ฤทธิ์ต้านจุลชีพ= หมายเลขเริ่มต้นของจุลินทรีย์−หมายเลขสุดท้ายของจุลินทรีย์หมายเลขเริ่มต้นของจุลินทรีย์× 100 ( 2