data are presented as mean±standard

data are presented as mean±standard error of the mean
(SEM).
Efficacy of ALE on oocyte maturation
Two different concentrations of ALE, 120 and 250 ppm, were
taken in a separate glass aquaria of 36-l capacity; thereafter,
120 numbers of female parasites of 11 and 14-day age groups
were released into each of those aquaria and left for 24-h static
exposure with continuous aeration. Certain parasites may die
due to inoculation hazards. Only the live parasites were used
for oocyte count and for detection of chromatin condensation.
In the case of the control group, female parasites were maintained
in equivalent condition for 24 h without ALE treatment.
Different maturity stages of the oocytes were examined and
counted following the method stated earlier. Oocyte count was
done from 60 parasites. The experiment was repeated for three
times (n=180), and the data are presented as mean±SEM. The
data were analyzed statistically between control and treated
groups with one-way ANOVA followed by Tukey HSD test.
The values of P

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ข้อมูลจะแสดงเป็น mean±standard ข้อผิดพลาดของค่าเฉลี่ย(SEM)ประสิทธิภาพของ ALE บนใช้ไข่เจริญเติบโตความเข้มข้นแตกต่างกันสองของ ALE, 120 และ 250 ppm ถูกถ่ายในอควาเรียแยกแก้วความจุ 36 ลิตร หลังจากนั้นเลขที่ 120 ของปรสิตหญิงในกลุ่มอายุ 11 และ 14 วันเผยแพร่ไว้ที่อควาเรียและซ้ายสำหรับสถิต 24 ชมสัมผัสกับอากาศอย่างต่อเนื่อง ปรสิตบางอาจตายเนื่องจากการกักบริเวณอันตราย ใช้เฉพาะปรสิตสดสำหรับจำนวนการใช้ไข่ และการตรวจสอบของโครมาตินควบแน่นในกรณีที่มีกลุ่มควบคุม ปรสิตหญิงถูกเก็บรักษาไว้ในสภาพที่เทียบเท่าใน 24 ชมโดยไม่ต้องรักษา ALEขั้นตอนครบกำหนดแตกต่างกันของเซลล์ไข่ถูกตรวจสอบ และนับตามวิธีที่ระบุไว้ก่อนหน้านี้ คือจำนวนการใช้ไข่ทำจากปรสิต 60 การทดลองซ้ำ 3ครั้ง (n = 180), และข้อมูลที่ได้แสดงเป็น mean±SEMข้อมูลวิเคราะห์ทางสถิติระหว่างการควบคุม และรักษากลุ่ม มีทางเดียว ANOVA ตาม ด้วยการทดสอบ Tukey ชะค่าของ P < 0.05 และ P < 0.01 การพิจารณาว่ามีนัยสำคัญวิเคราะห์ทางสถิติทั้งหมดดำเนินการโดยใช้SigmaStat สำหรับ Windows เวอร์ชัน 2.03ย้อมสี Hoechstเซลล์ไข่ของการควบคุมและรักษาปรสิตถ่ายบนโพลี-L-ไลซีนเคลือบภาพนิ่ง และคงที่ ด้วย paraformaldehyde 3.7%(pH 7.4) สำหรับ 10 นาทีที่อุณหภูมิห้อง หลังจากที่ μl 20น้ำเกลือฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (PBS pH 7.4) ถูกเจือจางตัวอย่าง เซลล์ไข่ถูกทิ้ง 30 นาทีสำหรับยึดมั่นในภาพนิ่ง สารละลาย 0.5% Triton X-100 ใน PBS ถูกเพิ่มและซ้าย 5 นาทีสำหรับ permeabilization ของเยื่อหุ้มเซลล์การย้อมสี ตัวอย่างแล้วมี incubated ในมืดที่ 37 ° C 30 นาทีด้วยโซลูชัน Hoechst 33258 (1 μ ml)ภาพนิ่งติดอยู่ชั่วคราวกับกลีเซอรอลและ PBSโซลูชัน (1:1) และดูภายใต้กล้องจุลทรรศน์ฟลูออเรสเซนต์ BX-41(Olympus) ที่ 350 nm กระตุ้นและปล่อย 460 nmใช้ป้อมปืนหน่วยกระจกวูผลของ ALE oviposition และฟักไข่สำหรับการศึกษาของ oviposition และฟักไข่ของไข่ของการปรสิตภายใต้รักษา จำนวน 120 ตัวเมียที่ 11, 14และถูกจัดวางในแต่ละบีกเกอร์แก้วของอายุ 21 วันความจุ 100 มิลลิลิตรประกอบด้วย ALE 120 และ 250 ppm การตั้งค่าweremaintained 24 ชั่วโมงเสริม ด้วยอากาศที่อ่อนโยนแล้ว ปรสิตเผยแพร่ในอควาเรียแก้วที่ประกอบด้วยแตะน้ำ และหลัง จากบรรลุวุฒิภาวะ ปรสิตเหล่านั้นวางไข่บนผนังอควาเรียอายุ 17 ถึงวันที่ 24 ถ้าพบอควาเรียเป็นบวกสมบูรณ์แถบของคลัทช์ไข่ แล้วผู้ที่พิจารณาว่าเป็นการทดลองอควาเรีย คลัชขนาดกำหนด โดยนับจำนวนไข่ต่อ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ข้อมูลจะถูกนำเสนอเป็นค่าเฉลี่ย±ข้อผิดพลาดมาตรฐานของค่าเฉลี่ย
(SEM).
การศึกษาประสิทธิภาพของเอลในไข่เจริญเติบโต
สองความเข้มข้นแตกต่างกันของเบียร์ 120 และ 250 ppm ถูก
ถ่ายในตู้กระจกที่แยกต่างหากจากความจุ 36 ลิตร; หลังจากนั้น
120 หมายเลขของปรสิตหญิงของกลุ่มอายุ 11 และ 14 วัน
ได้รับการปล่อยตัวในแต่ละตู้เหล่านั้นและที่เหลือเป็นเวลา 24 ชั่วโมงคงที่
การสัมผัสกับอากาศอย่างต่อเนื่อง ปรสิตบางอย่างอาจจะตาย
เนื่องจากอันตรายจากการฉีดวัคซีน เฉพาะปรสิตสดถูกนำมาใช้
สำหรับการนับไข่และการตรวจสอบของการควบแน่นโคร.
ในกรณีที่กลุ่มควบคุมปรสิตเพศหญิงถูกเก็บรักษา
ในสภาพเทียบเท่าเป็นเวลา 24 ชั่วโมงโดยไม่ต้องรักษาเบียร์.
ขั้นตอนครบกําหนดที่แตกต่างกันของการพัฒนาของไข่ที่ถูกตรวจสอบและ
นับต่อไปนี้ วิธีการระบุไว้ก่อนหน้า นับไข่ถูก
ทำจาก 60 ปรสิต การทดลองซ้ำสาม
ครั้ง (n = 180) และข้อมูลที่นำเสนอเป็นค่าเฉลี่ย± SEM
วิเคราะห์ข้อมูลทางสถิติระหว่างการควบคุมและการรักษา
กลุ่มที่มีทางเดียว ANOVA ตามด้วยการทดสอบ Tukey HSD.
ค่าของ P <0.05 และ P <0.01 ได้รับการพิจารณาอย่างมีนัยสำคัญ.
ทั้งหมดการวิเคราะห์ทางสถิติได้ดำเนินการโดยใช้
SigmaStat สำหรับ Windows รุ่น 2.03.
Hoechst การย้อมสี
เซลล์ไข่ของการควบคุมและปรสิตได้รับการรักษาที่ถูกนำบนโพลี
L-ไลซีนเคลือบภาพนิ่งและแก้ไขด้วย% paraformaldehyde 3.7
(pH 7.4) เป็นเวลา 10 นาทีที่อุณหภูมิห้อง หลังจากนั้น 20 ไมโครลิตร
ฟอสเฟตบัฟเฟอร์น้ำเกลือ (พีบีเอสพีเอช 7.4) ถูกเพิ่มเข้ามาเพื่อเจือจาง
ตัวอย่าง พบว่าไข่ถูกทิ้งไว้เป็นเวลา 30 นาทีสำหรับการยึดมั่นใน
ภาพนิ่ง วิธีการแก้ปัญหา 0.5% Triton X-100 ในพีบีเอสได้ถูกเพิ่ม
ไปและทิ้งไว้เป็นเวลา 5 นาทีสำหรับ permeabilization ของเยื่อหุ้มเซลล์
จะคราบ กลุ่มตัวอย่างที่ถูกบ่มแล้วในที่มืด
. ที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 นาทีกับ Hoechst 33258 วิธีการแก้ปัญหา (1 ไมโครกรัม / มิลลิลิตร)
ภาพนิ่งถูกติดตั้งชั่วคราวกับกลีเซอรอลและพีบีเอส
แก้ปัญหา (1: 1) และดูภายใต้ BX-41 กล้องจุลทรรศน์เรืองแสง
(Olympus) ที่ 350 นาโนเมตรการกระตุ้นและการปล่อย 460 นาโนเมตร
โดยใช้ WU หน่วยกระจกป้อมปืน.
ผลของเบียร์ในการวางไข่และฟักไข่
สำหรับการศึกษาของการวางไข่และฟักไข่ของ
พยาธิภายใต้การรักษา 120 ตัวเลขของเพศหญิงที่ 11, 14
และอายุ 21 วันถูกวางไว้ในแต่ละบีกเกอร์แก้ว
ความจุ 100 มล. มี 120 และ 250 ppm เบียร์ การตั้งค่า
weremaintained เวลา 24 ชั่วโมงไม่ถูกรบกวนด้วยการเติมอากาศอ่อนโยน.
จากนั้นปรสิตได้รับการปล่อยตัวในตู้กระจกที่มี
น้ำประปาสดและหลังจากความสำเร็จของการกำหนดปรสิตเหล่านั้น
วางไข่บนผนังของตู้ที่ตอนอายุ 17 กับ
24 วัน ถ้าตู้ที่ถูกพบในเชิงบวกกับที่สมบูรณ์
แถบของคลัทช์ไข่แล้วผู้ที่ได้รับการพิจารณาเป็นทดลอง
ตู้ ขนาดคลัชถูกกำหนดโดยการนับจำนวนของไข่ต่อ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ข้อมูลจะถูกนำเสนอเป็นค่าเฉลี่ย±ความคลาดเคลื่อนมาตรฐานของค่าเฉลี่ย( SEM )ประสิทธิภาพของเบียร์ในอัตราการเจริญพันธุ์สองความเข้มข้นที่แตกต่างกันของเบียร์ , 120 และ 250 ppm คือถ่ายโดยแยกแก้วนุกูล ความจุ 36-l ; หลังจากนั้น120 ตัวเลขของปรสิตของหญิงอายุ 11 และ 14 วันถูกปล่อยออกมาในแต่ละของสัตว์น้ำเหล่านั้น และไป 24-h ไฟฟ้าสถิตการสัมผัสกับอากาศอย่างต่อเนื่อง ปรสิตบางอย่างอาจตายเนื่องจากอันตรายจากการฉีดวัคซีน อยู่อย่างปรสิตที่ใช้เท่านั้นสำหรับนับไข่และตรวจจับการการควบแน่นในกรณีของกลุ่มผู้หญิงยังคง ปรสิตในเงื่อนไขเทียบเท่า 24 ชั่วโมงโดยไม่แต่การรักษาที่แตกต่างกันสำหรับขั้นตอนของการตรวจร่างกาย และไข่นับตามวิธีที่ระบุไว้ก่อนหน้านี้ นับไข่คือเสร็จจาก 60 ปรสิต และทำการทดลองซ้ำ สำหรับสามครั้ง ( n = 180 ) และข้อมูลที่นำเสนอเป็นค่าเฉลี่ย± SEM ที่วิเคราะห์ข้อมูลทางสถิติระหว่างการควบคุม และการปฏิบัติกลุ่มการวิเคราะห์ความแปรปรวนทางเดียว ตามด้วยการทดสอบวิธีการทดสอบ .ค่า p < 0.05 และ P < 0.01 ) การพิจารณาที่สำคัญวิเคราะห์ข้อมูลโดยใช้สถิติทั้งหมดsigmastat สำหรับ Windows รุ่น 2.03 .Hoechst .ไข่ของการควบคุมและปรสิตที่ถูกถ่ายบนโพลีl-lysine-coated ภาพนิ่งและคงที่กับ 3.7% พาราฟอร์มาลดิไฮด์( pH 7.4 ) เป็นเวลา 10 นาที ที่อุณหภูมิห้อง หลังจากนั้น 20 μ lเกลือฟอสเฟตบัฟเฟอร์ ( PBS pH 7.4 ) ถูกเพิ่มเข้ามาเพื่อเจือจางตัวอย่าง ร่วมกับเหลือ 30 นาที ในบนสไลด์ สารละลาย 0.5% Triton X-100 ใน PBS ถูกเพิ่มเข้าไปไปและเหลือ 5 นาที สำหรับ permeabilization ของเซลล์เมมเบรนไปคราบ ตัวอย่างแล้วบ่มในที่มืดที่ 37 ° C เป็นเวลา 30 นาที 33258 Hoechst โซลูชั่น ( 1 μ g / ml )สไลด์ติดตั้งชั่วคราวกับกลีเซอรอล และช่องวิธีแก้ปัญหา ( 1 : 1 ) และดูภายใต้กล้องจุลทรรศน์ bx-41 เรืองแสง( Olympus ) 350 nm ไทเทเนียม 460 nm ปล่อยการใช้หน่วยกระจกอู๋ ป้อมปืนผลกระทบของเอลในการวางไข่ฟักสำหรับการศึกษาการวางไข่ฟัก ไข่ของการรักษาพยาธิภายใต้ 120 หมายเลขของผู้หญิงที่ 11 , 14และ 21 อายุวันถูกวางไว้ในแต่ละแก้ว ถ้วยของ100 มิลลิลิตร ประกอบด้วยความจุ 120 และ 250 ppm เลย การตั้งค่าweremaintained 24 H คงสภาพกับอากาศเบาๆแล้ว ซึ่งได้รับการปล่อยตัวในสัตว์น้ำแก้วที่มีน้ำบริสุทธิ์ และหลังจากความสำเร็จของความแก่ พยาธินั้นวางไข่บนผนังของวาเรียที่อายุ 1724 วัน หากสัตว์น้ำที่พบบวกกับเสร็จสมบูรณ์แผ่นคลัชไข่ แล้วนั้น ถือว่าเป็นการทดลองสัตว์น้ำ . ขนาดคลัชถูกกำหนดโดยนับไข่ต่อ