Real Lab Scenarios Hemocytometer co

Real Lab Scenarios

Hemocytometer counts are, however, subject to the following sources of error:

Non-uniform suspensions: It is assumed that the volume of cell suspension placed in the chamber represents a truly random sample. This will not be a valid assumption unless the suspension is monodispersable and free of cell clumps. Distribution in the hemocytometer chamber depends on the number of particles, rather than particle mass. Thus, cell clumps will distribute in the same way as single cells, distorting the final result. Unless 90% or more of the cells are free from contact with other cells the count should be repeated with a fresh sample from the original culture. Clumping can be minimized by keeping the suspension in an ice bath in plastic tubes, and by using a diluents without calcium and magnesium. Always mix thoroughly before sampling.
Improper filling of chambers: In order to fill properly by capillary action, a hemocytometer chamber must be very clean and this also applies to the Micro pipette used to fill the chamber. New pipettes may be dry-heat sterilized. In a laboratory where the hemocytometer is in regular use throughout the day, following rinsing with water after use, and the coverslip may be placed in small beaker containing soapy water so that it is always ready for its next use.
The chamber and cover slip are cleaned first with distilled water, then by 70% ethanol and wiped dry. If the cell suspension does not flow in and fill the chamber immediately and smoothly when the drop from the pipette is placed in the depression under the coverslip, the chamber must be dirty and should be recleaned.
Failure to adopt a convention for counting cells in contact with boundary lines or each other: In order to determine what to count and what not to count, concerning a cell on a boarder, you should develop a convention in which you do not count half of the cells that touch a boarder. For example you may decide not to count cells if they touch the bottom or right boarder or the top and left boarder. You can decide on your own convention but whichever you choose, you MUST be consistent. One should count the cells in the four squares of both the upper and lower chambers for the most accuracy although, in many laboratories, for convenience, only the four squares of one of the two chambers are counted.
Statistical error: With careful attention to detail, the overall error can be reduced to between 10% and 15%.

Precautions:

Type of counting chambers: There are different types of counting chambers available, with different grid sizes. Some counting chambers also have grids of different sizes. Take care to know the grid height and size otherwise make calculation errors.
Use the provided cover glasses: They are thicker than the standard 0.15mm cover glasses. Therefore they are less flexible and the surface tension of the fluid will not deform them. The height of the fluid is standardized this way.
Moving cells: Moving cells, like sperm cells, are difficult to count. The cells should immoblized first.
Objective: The hemocytometer is thicker than a regular slide. Be careful to not crash the objective into the hemocytometer at the time of focusing.

Usage tips

Use an appropriate dilution of the mixture with regard to the number of cells to be counted. If the sample is not dissolved well, the cells become crowded and will be difficult to count. If it is too dissolved, the sample size will not be enough to develop strong inferences about the concentration in the original mixture. Commonly, a rough idea of the concentration must be known before beginning in order to guess an appropriate dilution.
Bubbles are removed from the hemacytometer before counting.
Analyze multiple chambers. Performed by a redundant test on a second chamber, the results can be compared. If the difference is larger, the method of taking the sample may be unreliable. The average of the results is taken for a more accurate calculation.
For drying the excess liquid do not use paper wipes. The capillary action that filled the chamber will then dry it out. After using trypan blue, rinse the hemocytometer with distilled water to remove the dye and allow it to dry. Alcohol or methylated spirits may also be used to sterilize the hemocytometer.
It is not necessary for the tube used for the trypan blue dilution to be sterile. However, if non-sterile tubes are used, make sure that all pipettes and pipette tips that come in contact with the cell suspension are sterile and that these do not come in contact with the cell suspension once they have been exposed to a non-sterile environment.
Count rows or columns. Use the gridlines to help remember which areas' cells have already been counted.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

สถานการณ์การปฏิบัติจริง จำนวน Hemocytometer อย่างไรก็ตาม อาจมีแหล่งของข้อผิดพลาดต่อไปนี้: บริการไม่สม่ำเสมอ: มันสันนิษฐานว่า ปริมาณเซลล์แขวนไว้ในห้องแสดงตัวอย่างแบบสุ่มอย่างแท้จริง นี้จะไม่มีอัสสัมชัญถูกต้องเว้นแต่ monodispersable เป็นการระงับ และไม่กระจุกเซลล์ กระจายในห้อง hemocytometer ขึ้นอยู่กับจำนวนของอนุภาค มากกว่าอนุภาคมวล ดังนั้น จะกระจายกระจุกเซลล์เดียวเป็นเซลล์เดียว distorting ผลสุดท้าย ถ้าเซลล์อย่างน้อย 90% อยู่ฟรีจากที่ติดต่อกับเซลล์อื่นๆ นับควรทำซ้ำกับตัวอย่างสดจากวัฒนธรรมดั้งเดิม Clumping สามารถถูกย่อให้เล็กสุด โดยรักษาการระงับในอ่างอาบน้ำเป็นน้ำแข็งในท่อพลาสติก และใช้ตัวไม่ มีแคลเซียมและแมกนีเซียม เสมอจนกระทั่งส่วนผสมก่อนสุ่มตัวอย่างไม่เหมาะสมบรรจุของหอ: กรอกข้อมูลได้อย่างถูกต้อง โดยแรงยก หอการค้า hemocytometer ต้องสะอาด และจะเปตต์ขนาดเล็กที่ใช้ในการเติมหอการค้า Pipettes ใหม่อาจ sterilized ความร้อน แห้ง ในห้องปฏิบัติการ hemocytometer ที่ใช้ปกติตลอดทั้งวัน ล้าง ด้วยน้ำหลังจากการใช้ และ coverslip ต่อไปนี้อาจถูกวางลงในบีกเกอร์ขนาดเล็กที่ประกอบด้วยน้ำ soapy เพื่อให้มันพร้อมเสมอสำหรับการใช้ต่อไปหอการค้าและครอบคลุมการจัดส่งมีก่อนล้าง ด้วยน้ำกลั่น แล้ว ตามด้วย 70% เอทานอล และเช็ดแห้ง หากไม่ระงับเซลล์ไหลใน และกรอกข้อมูลเกี่ยวกับหอการค้าทันที และอย่างราบรื่น เมื่อหล่นจากเปตต์ที่อยู่ในภาวะซึมเศร้าภายใต้การ coverslip หอการค้าต้องสกปรก และควร recleanedล้มเหลวในการนำประชุมสำหรับการตรวจนับเซลล์กับเส้นขอบหรือกัน: เพื่อกำหนดสิ่งที่จะนับและอะไรไม่นับ เกี่ยวกับเซลล์บนพึงมี คุณควรพัฒนามีแผนการที่คุณไม่นับรวมครึ่งหนึ่งของเซลล์ที่สัมผัสที่พึง ตัวอย่าง คุณสามารถกำหนดไม่ให้นับเซลล์หากพวกเขาสัมผัสด้านล่าง หรือขวาพึง หรือพึงด้านบน และด้านซ้าย คุณสามารถตัดสินใจในแผนของคุณเองแล้วที่คุณเลือก คุณต้องสอดคล้องกัน หนึ่งควรนับเซลล์ในช่อง 4 ของทั้งสองด้านบน และล่างหอความถูกต้องมากที่สุดแม้ว่า จะนับเฉพาะช่อง 4 หนึ่งห้องสองห้องปฏิบัติการจำนวนมาก สะดวกข้อผิดพลาดทางสถิติ: ล่างรายละเอียด ข้อผิดพลาดโดยรวมจะลดลงไประหว่าง 10% และ 15% ได้ ข้อควรระวัง: ชนิดนับแชมเบอร์ส: มีชนิดต่าง ๆ นับหอพร้อม ขนาดตารางอื่น บางห้องตรวจนับได้กริดขนาดแตกต่างกัน ดูแลรู้ตารางความสูงและขนาดควรคำนวณผิดพลาดใช้แก้วครอบคลุมบริการ: จะหนากว่าแว่นตาครอบคลุมมาตรฐาน 0.15mm ดังนั้นพวกเขาจะมีความยืดหยุ่นน้อย และแรงตึงผิวของน้ำจะไม่เบี้ยวได้ ความสูงของของเหลวเป็นมาตรฐานแบบนี้ย้ายเซลล์: การย้ายเซลล์ เช่นเซลล์อสุจิ ยากนับ เซลล์ควร immoblized แรกวัตถุประสงค์: การ hemocytometer คือหนากว่าภาพนิ่งธรรมดา ระวังไม่ผิดวัตถุประสงค์ในการ hemocytometer ในขณะกำลัง เคล็ดลับการใช้งาน ใช้การเจือจางที่เหมาะสมของส่วนผสมตามจำนวนเซลล์ที่นับได้ ถ้าตัวอย่างส่วนถูกไม่ยุบดี เซลล์กลายเป็นแออัด และจะยากที่จะนับ ถ้ามันถูกเกินไปส่วนยุบ ขนาดตัวอย่างจะไม่พอที่จะพัฒนา inferences แข็งแรงเกี่ยวกับความเข้มข้นในส่วนผสมเดิม ทั่วไป ต้องทราบก่อนที่จะเริ่มต้นความคิดคร่าว ๆ ของความเข้มข้นการเดาการเจือจางที่เหมาะสมฟองอากาศจะถูกเอาออกจาก hemacytometer ก่อนนับวิเคราะห์หลายหอ ดำเนินการ โดยการทดสอบซ้ำซ้อนบนหอสอง ผลลัพธ์สามารถเปรียบเทียบ ถ้าความแตกต่างใหญ่ วิธีการทำตัวอย่างอาจจะไม่ ค่าเฉลี่ยของผลการใช้สำหรับการคำนวณที่แม่นยำมากขึ้นสำหรับการอบแห้ง ของเหลวส่วนเกินไม่ใช้กระดาษกำหนนด แรงยกที่เติมกับหอการค้าจะแล้วแห้งออก หลังจากใช้ trypan blue ล้าง hemocytometer น้ำกลั่นเอาการย้อม และอนุญาตให้แห้ง แอลกอฮอล์หรือสุรา methylated ยังสามารถใช้ฆ่าเชื้อ hemocytometerไม่จำเป็นต้องใช้สำหรับเจือจาง trypan blue จะใส่ท่อ อย่างไรก็ตาม ถ้าใช้หลอดไม่ใส่ ให้แน่ใจว่า pipettes และเคล็ดลับเปตต์ที่มาพร้อมกับระงับเซลล์ทั้งหมดผ่านการฆ่าเชื้อ และที่นี้ไม่ได้มาติดต่อระงับเซลล์เมื่อพวกเขาได้สัมผัสสภาพแวดล้อมไม่ใส่นับจำนวนแถวหรือคอลัมน์ ใช้เส้นตารางเพื่อช่วยในการจดจำนับเซลล์ของพื้นที่แล้ว

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

สถานการณ์ Lab จริงนับHemocytometer มี แต่ขึ้นอยู่กับแหล่งที่มาของข้อผิดพลาดต่อไปนี้: แขวนลอยไม่สม่ำเสมอ: มันจะสันนิษฐานว่าปริมาณของเซลล์แขวนลอยที่วางอยู่ในห้องแสดงให้เห็นถึงตัวอย่างสุ่มอย่างแท้จริง นี้จะไม่เป็นสมมติฐานที่ถูกต้องเว้นแต่ระงับเป็น monodispersable และเป็นอิสระจากกลุ่มก้อนเซลล์ กระจายอยู่ในห้อง hemocytometer ขึ้นอยู่กับจำนวนของอนุภาคมากกว่ามวลของอนุภาค ดังนั้นกอเซลล์จะแจกจ่ายในลักษณะเดียวกับเซลล์เดียวบิดเบือนผลสุดท้าย เว้นแต่จะได้ 90% หรือมากกว่าของเซลล์มีอิสระจากการสัมผัสกับเซลล์อื่น ๆ นับควรจะซ้ำกับตัวอย่างสดจากวัฒนธรรมเดิม clumping สามารถลดการระงับโดยการเก็บรักษาในห้องอาบน้ำน้ำแข็งในหลอดพลาสติกและโดยใช้สารช่วยโดยไม่มีแคลเซียมและแมกนีเซียม มักจะผสมอย่างทั่วถึงก่อนที่จะสุ่มตัวอย่าง. เติมไม่เหมาะสมของห้อง: เพื่อที่จะเติมเต็มความถูกต้องโดยการกระทำของเส้นเลือดฝอย, ห้อง hemocytometer ต้องสะอาดมากและนอกจากนี้ยังนำไปใช้กับไมโครปิเปตใช้ในการกรอกห้อง ปิเปตใหม่อาจจะเป็นความร้อนแห้งผ่านการฆ่าเชื้อ ในห้องปฏิบัติการที่ hemocytometer ที่อยู่ในการใช้งานปกติตลอดทั้งวันต่อไปนี้การล้างด้วยน้ำหลังการใช้งานและ coverslip อาจจะอยู่ในบีกเกอร์ขนาดเล็กที่มีน้ำสบู่เพื่อให้มีความพร้อมเสมอสำหรับการใช้งานต่อไป. ห้องและใบฝาครอบอยู่ ทำความสะอาดครั้งแรกกับน้ำกลั่นเอทานอลแล้วโดย 70% และเช็ดให้แห้ง หากเซลล์แขวนลอยไม่ไหลในและกรอกห้องทันทีและอย่างราบรื่นเมื่อลดลงจากปิเปตจะอยู่ในภาวะซึมเศร้าภายใต้ coverslip ที่ห้องจะต้องมีความสกปรกและควรได้รับการ recleaned. ความล้มเหลวที่จะนำมาใช้การประชุมสำหรับการนับเซลล์ในการติดต่อ ที่มีเส้นเขตแดนหรือแต่ละอื่น ๆ : ในการตรวจสอบสิ่งที่จะนับและสิ่งที่ไม่นับที่เกี่ยวข้องกับเซลล์ในนักเรียนประจำที่คุณควรจะพัฒนาในการประชุมที่คุณไม่นับครึ่งหนึ่งของเซลล์ที่สัมผัสนักเรียนประจำ ตัวอย่างเช่นคุณอาจตัดสินใจที่จะไม่นับเซลล์ถ้าพวกเขาสัมผัสด้านล่างหรือนักเรียนไปทางขวาหรือด้านบนซ้ายและนักเรียน คุณสามารถตัดสินใจเกี่ยวกับการประชุมของคุณเอง แต่ใดก็ตามที่คุณเลือกคุณจะต้องสอดคล้องกัน หนึ่งควรนับเซลล์ในสี่สี่เหลี่ยมของทั้งสองห้องบนและล่างความถูกต้องมากที่สุดแม้ว่าในห้องปฏิบัติการจำนวนมากเพื่อความสะดวกสบายเพียงสี่สี่เหลี่ยมของหนึ่งในสองห้องจะถูกนับ. ข้อผิดพลาดทางสถิติด้วยความเอาใจใส่และระมัดระวังในรายละเอียด ข้อผิดพลาดโดยรวมจะลดลงอยู่ระหว่าง 10% และ 15%. ข้อควรระวัง: ประเภทห้องนับ: มีหลายประเภทที่แตกต่างกันของการนับห้องที่มีอยู่มีขนาดที่แตกต่างกันตาราง บางห้องยังมีการนับกริดขนาดแตกต่างกัน ดูแลที่จะรู้ว่าความสูงของตารางและขนาดอื่นทำผิดพลาดในการคำนวณ. ใช้ฝาครอบแก้วให้พวกเขามีความหนากว่า 0.15 มมมาตรฐานแว่นตาปก ดังนั้นพวกเขาจึงมีความยืดหยุ่นน้อยลงและแรงตึงผิวของของเหลวจะไม่เบี้ยวพวกเขา ความสูงของของเหลวที่เป็นมาตรฐานด้วยวิธีนี้. ย้ายเซลล์: เซลล์ย้ายเช่นเซลล์สเปิร์มเป็นเรื่องยากที่จะนับ เซลล์ควร immoblized แรก. วัตถุประสงค์: hemocytometer คือหนากว่าปกติสไลด์ โปรดใช้ความระมัดระวังที่จะไม่ผิดพลาดวัตถุประสงค์ hemocytometer เข้าสู่ช่วงเวลาของการโฟกัส. เคล็ดลับการใช้งานใช้การลดสัดส่วนที่เหมาะสมของส่วนผสมในเรื่องเกี่ยวกับจำนวนของเซลล์ที่จะนับ หากกลุ่มตัวอย่างที่ไม่ได้ละลายเข้ากันดีเซลล์กลายเป็นแออัดและจะเป็นเรื่องยากที่จะนับ ถ้ามันจะละลายเกินไปขนาดของกลุ่มตัวอย่างจะไม่เพียงพอที่จะพัฒนาข้อสรุปที่ดีเกี่ยวกับความเข้มข้นในส่วนผสมเดิม โดยทั่วไปความคิดที่หยาบของความเข้มข้นจะต้องรู้จักกันก่อนที่จะเริ่มในการสั่งซื้อที่จะคาดเดาการลดสัดส่วนที่เหมาะสม. ฟองจะถูกลบออกจาก hemacytometer ก่อนนับ. วิเคราะห์หลายห้อง ดำเนินการโดยการทดสอบที่ซ้ำซ้อนในห้องที่สองผลที่สามารถนำมาเปรียบเทียบ หากแตกต่างกันมีขนาดใหญ่วิธีการของการตัวอย่างที่อาจจะไม่น่าเชื่อถือ ค่าเฉลี่ยของผลเป็นที่สำหรับการคำนวณที่ถูกต้องมากขึ้น. สำหรับการอบแห้งส่วนเกินของเหลวไม่ได้ใช้ผ้าเช็ดทำความสะอาดกระดาษ การกระทำของเส้นเลือดฝอยที่เต็มห้องแล้วจะแห้งออก หลังจากใช้ Trypan สีฟ้าล้าง hemocytometer ด้วยน้ำกลั่นที่จะเอาสีย้อมและอนุญาตให้แห้ง สุราหรือเครื่องดื่มแอลกอฮอล์แอลกอฮอล์นอกจากนี้ยังอาจถูกนำมาใช้ในการฆ่าเชื้อ hemocytometer ได้. มันไม่จำเป็นสำหรับหลอดที่ใช้สำหรับการลดสัดส่วนสีฟ้า Trypan จะเป็นหมัน แต่ถ้าท่อที่ไม่ผ่านการฆ่าเชื้อที่ใช้ตรวจสอบให้แน่ใจว่าปิเปตและเคล็ดลับปิเปตที่มาในการติดต่อกับเซลล์แขวนลอยที่มีการฆ่าเชื้อและว่าสิ่งเหล่านี้ไม่ได้มาในการติดต่อกับเซลล์แขวนลอยเมื่อพวกเขาได้รับการสัมผัสที่ไม่ใช่การฆ่าเชื้อ สภาพแวดล้อม. นับแถวหรือคอลัมน์ ใช้เส้นตารางที่จะช่วยให้จำที่เซลล์พื้นที่ 'ได้รับการนับ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

สถานการณ์

hemocytometer ห้องทดลองนับได้ อย่างไรก็ตาม เรื่องการติดตามแหล่งที่มาของข้อผิดพลาด :

ไม่สม่ำเสมอช่วงล่าง : มันจะสันนิษฐานว่าปริมาณเซลล์แขวนลอยอยู่ในหอแสดงตัวอย่างสุ่มอย่างแท้จริง นี้จะไม่เป็นสมมติฐานถูกต้องเว้นแต่การระงับจะ monodispersable ฟรีเซลล์และของกระจุกการกระจายในห้อง hemocytometer ขึ้นอยู่กับจำนวนของอนุภาคมากกว่ามวลของอนุภาค ดังนั้น เซลล์เปียกจะแจกจ่ายในลักษณะเดียวกันเป็นเซลล์เดียว การบิดเบือนผลลัพธ์สุดท้าย นอกจาก 90% หรือมากกว่าของเซลล์ ฟรี จาก ติดต่อกับเซลล์อื่น ๆนับควรจะซ้ำกับตัวอย่างสดจากวัฒนธรรมเดิมทำให้สามารถลดโดยการรักษาจังหวะในน้ำแข็ง นํ้าในหลอดพลาสติก และการใช้สารโดยแคลเซียมและแมกนีเซียม มักจะผสมอย่างละเอียดก่อนบรรจุที่ไม่เหมาะสมของห้องตัวอย่าง .
: เพื่อที่จะกรอกอย่างถูกต้องโดยแรงยกตัว , hemocytometer ห้องต้องสะอาดมากและนี้ยังใช้กับไมโครปิเปตที่ใช้ให้เต็มห้องปิเปตใหม่อาจจะแห้งความร้อนฆ่าเชื้อ . ในห้องปฏิบัติการที่ hemocytometer อยู่ในการใช้งานปกติตลอดทั้งวัน ตาม ล้างด้วยน้ำหลังจากใช้และปิดสไลด์อาจจะอยู่ในบีกเกอร์ที่มีขนาดเล็ก soapy น้ำเพื่อให้มันพร้อมเสมอสำหรับการใช้งานต่อไปของมัน .
ห้องและครอบคลุมลื่นล้างด้วยน้ำกลั่น แล้วตามด้วยแอลกอฮอล์ 70% เช็ดแห้งถ้าเซลล์แขวนลอยไม่ไหลในและเติมห้องทันทีและได้อย่างราบรื่นเมื่อหล่นจากปิเปตต์อยู่ในภาวะซึมเศร้าภายใต้ปิดสไลด์ ที่ห้องต้องสกปรก และควร recleaned .
ความล้มเหลวที่จะใช้เพื่อการนับเซลล์สัมผัสกับเส้นขอบหรือแต่ละอื่น ๆเพื่อตรวจสอบว่า : นับแล้วไม่นับเกี่ยวกับเซลล์ในคน คุณควรพัฒนาอนุสัญญาในที่ที่คุณไม่นับครึ่งเซลล์ที่สัมผัสมา . ตัวอย่างเช่นคุณอาจตัดสินใจที่จะไม่นับเซลล์ถ้าพวกเขาสัมผัสหรือขวาด้านล่างหรือด้านบนและกินนอนอยู่ด้านซ้าย คุณสามารถตัดสินใจเกี่ยวกับการประชุมของคุณเองแต่ใดก็ตามที่คุณเลือกคุณต้องสอดคล้องกันหนึ่งควรนับเซลล์ในสี่สี่เหลี่ยมทั้งบนและล่าง เพื่อให้ความถูกต้องถึงห้อง , ห้องปฏิบัติการ , มากเพื่อความสะดวกสบายเพียงสี่เหลี่ยมของคนทั้งสองห้องจะนับ .
สถิติข้อผิดพลาด : กับความเอาใจใส่และระมัดระวังรายละเอียดข้อผิดพลาดโดยรวมจะลดลงระหว่างร้อยละ 10 และ 15 %

ข้อควรระวัง :

พิมพ์นับห้องมีชนิดที่แตกต่างกันของที่นับใช้ได้กับขนาดตารางที่แตกต่างกัน บางห้องยังมีการนับกริดขนาดต่างๆ ดูแลรู้ตารางความสูงและขนาดอื่นทำให้ข้อผิดพลาดในการคำนวณ
ใช้ให้ครอบคลุมแว่นตา : พวกเขามีความหนากว่ามาตรฐาน 0.15 มม. ปกแก้วดังนั้น พวกเขาจะมีความยืดหยุ่นน้อยลงและความตึงผิวของของเหลวจะไม่เบี้ยวเลย ความสูงของของเหลวเป็นมาตรฐานแบบนี้
ย้ายเซลล์ที่ย้ายเซลล์ เช่น เซลล์สเปิร์ม , ยากที่จะนับ เซลล์น่าจะท่อก่อน
วัตถุประสงค์ : hemocytometer หนากว่าสไลด์ปกติ ระวังอย่าชน วัตถุประสงค์ใน hemocytometer เวลา

เน้นการใช้เคล็ดลับ

ใช้เจือจางที่เหมาะสมของส่วนผสมที่เกี่ยวข้องกับจำนวนเซลล์จะถูกนับ ถ้าตัวอย่างไม่ละลายดี เซลล์จะกลายเป็นแออัดและจะสามารถยากที่จะนับ ถ้ามันก็ยุบ ขนาดตัวอย่างไม่เพียงพอที่จะพัฒนาใช้ที่แข็งแกร่งเกี่ยวกับความเข้มข้นของส่วนผสมเดิม ทั่วไปคร่าวๆของความเข้มข้นจะต้องรู้ก่อนที่จะเริ่มต้นในการเดาการเจือจางที่เหมาะสม .
ฟองอากาศจะถูกลบออกจาก hemacytometer ก่อนนับ
วิเคราะห์หลายห้อง โดยทดสอบซ้ำซ้อนในสภาสูง ผลลัพธ์จะเทียบได้ ถ้าความแตกต่างขนาดใหญ่ วิธีการถ่ายตัวอย่างอาจจะไม่น่าเชื่อถือค่าเฉลี่ยของผลจะนำมาคำนวณถูกต้องมากขึ้น .
สำหรับของเหลวส่วนเกินที่ไม่ได้ใช้ผ้าเช็ดทำความสะอาดแบบกระดาษ มีแรงยกตัวที่เต็มห้องแล้วจะแห้งออก หลังจากใช้ไตรแพนสีฟ้า , ล้าง hemocytometer ด้วยน้ำกลั่นเพื่อลบสีและอนุญาตให้แห้ง เหล้าหรือสุรา methylated อาจจะใช้ในการฆ่าเชื้อ hemocytometer .
มันไม่ได้เป็นสิ่งจำเป็นสำหรับท่อที่ใช้สำหรับไตรแพนสีน้ำเงินเจือจางจะเป็นหมัน แต่ถ้าไม่มีหลอดฆ่าเชื้อ ใช้ ให้แน่ใจว่า และ ปิเปต ทิปปิเปตทั้งหมดที่มาในการติดต่อกับเซลล์แขวนลอยเป็นหมัน และที่เหล่านี้ไม่ได้มาสัมผัสกับเซลล์แขวนลอยเมื่อพวกเขามีการสัมผัสกับสิ่งแวดล้อมนับไม่เป็นหมัน .
แถวหรือคอลัมน์ใช้เส้นตารางเพื่อช่วยจำ ซึ่งพื้นที่เซลล์นับออกมาแล้ว