MicroRNAs (miRNAs) from milk whey have been considered for their potential as noninvasive biomarkers for milk quality control and disease diagnosis. However, standard protocols for miRNA isolation and quantification from milk whey are not well established. The objective of this study was to compare two methods for the isolation of miRNAs from milk whey. These two methods were modified phenol-based technique (Trizol LS® followed by phenol precipitation, the TP method) and combined phenol and column-based approach (Trizol LS® followed by cleanup using the miRNeasy kit, the TM method). Yield and quality of RNA were rigorously measured using a NanoDrop ND-1000 spectrophotometer and then the distribution of RNA was precisely detected in a Bioanalyzer 2100 instrument by microchip gel electrophoresis. Several endogenous miRNAs (bta-miR-141, bta-miR-146a, bta-miR-148a, bta-miR-200c, bta-miR-362, and bta-miR-375) and an exogenous spike-in synthetic control miRNA (cel-miR-39) were quantified by real-time polymerase chain reaction (PCR) to examine the apparent recovery efficiency of milk whey miRNAs. Both methods could successfully isolate sufficient small RNA (
microRNAs (miRNAs) จากหางนมได้รับการพิจารณาศักยภาพของพวกเขาเป็น biomarkers ไม่รุกล้ำสำหรับการควบคุมคุณภาพนมและการวินิจฉัยโรค อย่างไรก็ตามโปรโตคอลมาตรฐานสำหรับ miRNA การแยกและการหาปริมาณจากหางนมยังไม่ได้จัดตั้งขึ้นรวมทั้ง วัตถุประสงค์ของการศึกษานี้คือการเปรียบเทียบสองวิธีสำหรับการแยก miRNAs จากหางนมนม ทั้งสองวิธีมีการแก้ไขเทคนิคฟีนอลที่ใช้ (Trizol LS®ตามด้วยการเร่งรัดฟีนอล, วิธี TP) และฟีนอลรวมและวิธีการของคอลัมน์-based (Trizol LS®ตามด้วยการทำความสะอาดโดยใช้ชุด miRNeasy วิธีของ TM) ผลผลิตและคุณภาพของ RNA ถูกวัดอย่างจริงจังโดยใช้ spectrophotometer NanoDrop ND-1000 และจากนั้นการกระจายของ RNA ที่ถูกตรวจพบได้อย่างแม่นยำใน Bioanalyzer 2,100 เครื่องโดย Microchip gel electrophoresis miRNAs ภายนอกหลายคน (BTA เมียร์-141, BTA เมียร์-146A, BTA เมียร์-148a, BTA เมียร์-200C, BTA เมียร์-362 และ BTA เมียร์-375) และภายนอกขัดขวางใน miRNA ควบคุมสังเคราะห์ (Cel เมียร์-39) ได้รับการวัดโดยแบบ real-time วิธี Polymerase chain reaction (PCR) เพื่อตรวจสอบประสิทธิภาพการกู้คืนที่ชัดเจนของ miRNAs หางนม ทั้งสองวิธีประสบความสำเร็จสามารถแยก RNA เพียงพอขนาดเล็ก (<200 NT) จากหางนมและอัตราผลตอบแทนของพวกเขาค่อนข้างคล้าย อย่างไรก็ตามผลปริมาณแสดงให้เห็นว่าทั้งหมดมีประสิทธิภาพการกู้คืน miRNA โดยวิธี TM จะดีกว่าที่จะว่าด้วยวิธีการค่า TP วิธี TM ดำเนินการดีกว่า TP สำหรับการกู้คืนของ miRNA นมเวย์เนื่องจากความสอดคล้องและการทำซ้ำที่ดีในภายนอกและขัดขวางการกู้คืนใน miRNA นอกจากนี้การวิเคราะห์เชิงปริมาณของการกู้คืนขัดขวางใน miRNA อาจจะถูกต้องมากขึ้นเพื่อสะท้อนให้เห็นนมเวย์ที่มีประสิทธิภาพการกู้คืน miRNA กว่าการใช้เครื่องมือวิเคราะห์คุณภาพ RNA แบบดั้งเดิม (NanoDrop หรือ Bioanalyzer 2100)
การแปล กรุณารอสักครู่..
