There is increasing interest in biological nitrogen removal technologies that use low levels of oxygen to achieve partial nitrification,the oxidation of ammonia to nitrite by ammonia-oxidizing
bacteria (AOB), and subsequent denitrification via nitrite, the reduction of nitrite to dinitrogen gas by heterotrophic denitrifiers. Alkalinity and oxygen demands are lower for partial nitrification,and organic substrate requirements are lower for denitrification
via nitrite, than the traditional nitrification/denitrification process,resulting in substantial operational savings (2). Partial nitrification relies on the selection of AOB over nitrite-oxidizing bacteria(NOB), which allows the accumulation of nitrite. Sustained nitrite accumulation can be accomplished by controlling solids retention time, temperature, free ammonia and hydroxylamine concentrations,or dissolved oxygen (DO) conditions (2, 12, 15, 19, 23, 42).
The key to efficient and robust biological wastewater treatment relies on knowing the microorganisms involved and how they respond to different operating conditions (41). Several microbial diversity studies of activated sludge and biofilms based on 16S rRNA gene libraries have been reported in the last decade. Denaturant gradient gel electrophoresis (DGGE) has been used to separate amplified 16S rRNA genes and determine the effects of ammonia and dissolved oxygen concentrations on community compositions of nitrifiers (18, 25, 35). However, commonly used 16S rRNA primers for AOB studies have limited specificity, and the high similarity among 16S rRNA genes of AOB makes it impossible to resolve and identify closely related AOB species
(31). Alternatively, the functional gene encoding the alpha subunit of ammonia monooxygenase (amoA), the enzyme responsible for the conversion of ammonia to hydroxylamine found in all
AOB, has been used as a specific molecular marker in environmental studies of AOB using DGGE (4, 5, 32, 39) and real-time PCR (17).
There is increasing interest in biological nitrogen removal technologies that use low levels of oxygen to achieve partial nitrification,the oxidation of ammonia to nitrite by ammonia-oxidizingbacteria (AOB), and subsequent denitrification via nitrite, the reduction of nitrite to dinitrogen gas by heterotrophic denitrifiers. Alkalinity and oxygen demands are lower for partial nitrification,and organic substrate requirements are lower for denitrificationvia nitrite, than the traditional nitrification/denitrification process,resulting in substantial operational savings (2). Partial nitrification relies on the selection of AOB over nitrite-oxidizing bacteria(NOB), which allows the accumulation of nitrite. Sustained nitrite accumulation can be accomplished by controlling solids retention time, temperature, free ammonia and hydroxylamine concentrations,or dissolved oxygen (DO) conditions (2, 12, 15, 19, 23, 42).The key to efficient and robust biological wastewater treatment relies on knowing the microorganisms involved and how they respond to different operating conditions (41). Several microbial diversity studies of activated sludge and biofilms based on 16S rRNA gene libraries have been reported in the last decade. Denaturant gradient gel electrophoresis (DGGE) has been used to separate amplified 16S rRNA genes and determine the effects of ammonia and dissolved oxygen concentrations on community compositions of nitrifiers (18, 25, 35). However, commonly used 16S rRNA primers for AOB studies have limited specificity, and the high similarity among 16S rRNA genes of AOB makes it impossible to resolve and identify closely related AOB species(31). Alternatively, the functional gene encoding the alpha subunit of ammonia monooxygenase (amoA), the enzyme responsible for the conversion of ammonia to hydroxylamine found in allAOB, has been used as a specific molecular marker in environmental studies of AOB using DGGE (4, 5, 32, 39) and real-time PCR (17).
การแปล กรุณารอสักครู่..

มีการเพิ่มความสนใจในเทคโนโลยีการกำจัดไนโตรเจนทางชีวภาพที่ใช้ระดับต่ำของออกซิเจนเพื่อให้บรรลุไนตริฟิเคบางส่วนออกซิเดชันของแอมโมเนียไนไตรท์โดยแอมโมเนียออกซิไดซ์แบคทีเรีย (AOB) และ denitrification ภายหลังผ่านไนไตรท์, การลดลงของไนไตรท์ก๊าซ dinitrogen โดย heterotrophic denitrifiers
ด่างและความต้องการออกซิเจนที่ต่ำกว่าสำหรับไนตริฟิเคบางส่วนและต้องการสารตั้งต้นอินทรีย์ที่ต่ำกว่าสำหรับ denitrification
ผ่านไนไตรท์กว่าเดิมไนตริฟิเค / กระบวนการเซลเซียสทำให้ประหยัดในการดำเนินงานอย่างมีนัยสำคัญ (2) ไนตริฟิเคบางส่วนขึ้นอยู่กับการเลือกของ AOB มากกว่าแบคทีเรียไนไตรท์ออกซิไดซ์ (NOB) ซึ่งช่วยให้การสะสมของไนไตรท์ การสะสมไนไตรท์อย่างต่อเนื่องสามารถทำได้โดยการควบคุมเวลาการเก็บรักษาของแข็งที่อุณหภูมิแอมโมเนียฟรีและความเข้มข้นของไฮดรอกซิหรือออกซิเจนละลายน้ำ (DO) เงื่อนไข (2, 12, 15, 19, 23, 42).
กุญแจสำคัญในการบำบัดน้ำเสียทางชีวภาพที่มีประสิทธิภาพและมีประสิทธิภาพ อาศัยจุลินทรีย์รู้ที่เกี่ยวข้องและวิธีที่พวกเขาตอบสนองต่อสภาพการใช้งานที่แตกต่างกัน (41) การศึกษาความหลากหลายของจุลินทรีย์หลายตะกอนและไบโอฟิล์มอยู่บนพื้นฐานของ 16S rRNA ห้องสมุดยีนที่ได้รับรายงานในทศวรรษที่ผ่านมา denaturant ข่าวคราวการไล่ระดับสี (DGGE) ได้รับการใช้ในการแยกยีน 16S rRNA ขยายและตรวจสอบผลกระทบของแอมโมเนียและความเข้มข้นของออกซิเจนที่ละลายในองค์ประกอบของชุมชน nitrifiers (18, 25, 35) แต่ที่ใช้กันทั่วไป 16S rRNA ไพรเมอร์เพื่อการศึกษา AOB มี จำกัด จำเพาะและความคล้ายคลึงกันสูงในหมู่ยีน 16S rRNA ของ AOB ทำให้มันเป็นไปไม่ได้ที่จะแก้ปัญหาและระบุสายพันธุ์ที่เกี่ยวข้องอย่างใกล้ชิด AOB
(31) อีกวิธีหนึ่งคือการแสดงออกของยีนทำงานเข้ารหัส subunit อัลฟาของ monooxygenase แอมโมเนีย (AMOA) เป็นเอนไซม์ที่มีความรับผิดชอบสำหรับการแปลงของแอมโมเนียเพื่อ hydroxylamine พบในทุก
AOB ได้ถูกนำมาใช้เป็นเครื่องหมายโมเลกุลที่เฉพาะเจาะจงในการศึกษาด้านสิ่งแวดล้อมของ AOB ใช้ DGGE (4, 5 , 32, 39) และแบบ real-time PCR (17)
การแปล กรุณารอสักครู่..
