4.4. CO2 and C2H4 production from b

4.4. CO2 and C2H4 production from buds of various sizes with
and without removal of tepal and anthers
Both an increase in ethylene synthesis and a climacteric rise in
respiration in senescence of ‘White Sim’ carnation (D. caryophyllus
L.) were associated with the wilting of the corolla (Nichols, 1968;
Reid and Wu, 1992). These peaks could be associated with petal
senescence, but not with anthesis (Halevy and Mayek, 1979). In
Asiatic hybrid lilies, the rise in respiration and ethylene production
was not associated with anthesis (Roh, 1990c), and this may suggest
that development of anthers in small buds is related to flower bud
abscission which depletes stored assimilates via increased respirationor
a limitedsupply of carbohydrates to the anther as reportedin
this study, resulting in ethylene being produced. A similar response
was also reported in Hibiscus rosa-sinensis L. (Force et al., 1988).
It is not known if ethylene production in small flower buds is
directly related to flower bud abscission. Does the low level of
sucrose and accumulation of fructose and sucrose in anthers of
small flower buds affect ethylene production, i.e., does ethylene
production result from arrest in growth of the anther? Since it is
not known whether there is a threshold level or concentration for
sucrose, fructose, and glucose at each organ which may be related
to the induction of abscission of flower buds of various sizes of
flower buds. Once flower buds reached a certain size, assimilates,
i.e., sucrose, in large flower buds may be no longer a limiting factor.
It is most likely that development of pollen grains or tissues
surrounding pollen grains may undergo degenerative physiological
processes, thus ethylene is being evolved. Exposure of young buds
to exogenous ethylene could provide answers to the involvement
of ethylene in abscission of small buds.
Based on the changes in carbohydrate content and accumulation
of 14C sucrose or metabolites in the anther with or without artifi-
cially induction of bud abscission and respiration patterns of whole
bud, buds with tepals removed and buds with tepals and anthers
removed, we conclude that improper development of anther is a
triggering factor in inducing flower bud abscission in Asiatic lilies.
This is due to an inability to hydrolyze sucrose into fructose and
glucose in the anthers. When the supply of fructose and glucose to
anthers on small buds, 1.03 g and 1.61 g, in this study or in buds of
1.8 cm and 2.6 cm, used in Roh (1990a), is limited and is coupled
with lack of sucrose hydrolysis into monosaccharides in anthers,
development of the anther will be halted leading to production of
C2H4. Invertase activity that is involved in the hydrolysis of sucrose
in various organs (Ranwala and Miller, 1998) was not investigated
in this study. It is, therefore, concluded that bud abscission at the
critical stages of bud development is induced by lack of fructose
and sucrose in the developing anther and lack of translocation of 14C sucrose to the anther from filaments, and that the anther, it’s
developing pollen or both, trigger bud abscission in Lilium (Castro
and Clément, 2005). In carnations (D. caryophyllus), ovary (ten Have
and Woltering, 1997) or gynoecium consisting of ovary, style,stigma (Shibuya et al., 2000) may trigger the onset of petal senescence
in D. caryophyllus L. In carnation, petal senescence was not
controlled by the growth of ovary which is not dependent on remobilization
of carbohydrates from the petal (Mor et al., 1980). In the
absence of large flower buds ready to reach anthesis, carbohydrate
from these senescing flowers are not available to the small developing
gladiolus (Gladiolus hybrida) flower buds (Waithaka et al.,
2001). There should be further studies of flower buds of various
sizes which are attached to the stem to study the translocation and
metabolism of monosaccharides and sucrose in small buds when
radioactive 14C sucrose is applied to the cut end of inflorescence,
notto the pedicel attached to an individual flowers. However, it will
be difficult to monitor respiration and ethylene production from
various organs of flower buds attached to the inflorescence if such
studies were to be conducted.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

4.4. CO2 C2H4 ผลิตและจากอาหารขนาดต่าง ๆ ด้วยโดยไม่มีการกำจัดของ tepal และเหมือนการเพิ่มการสังเคราะห์เอทิลีนและขึ้น climactericหายใจใน senescence ของคาร์เนชั่น 'ซิมสีขาว' (D. caryophyllusL.) สัมพันธ์กับ wilting ของโคโรลล่า (นิโคล 1968รีดแล้ววู 1992) ยอดเขาเหล่านี้อาจเกี่ยวข้องกับกลีบดอกไม้senescence แต่ไม่ มี anthesis (Halevy และ Mayek, 1979) ในสวนผสมลิลลี่ เพิ่มขึ้นในการผลิตเอทิลีนและการหายใจไม่เกี่ยวข้องกับ anthesis (Roh, 1990c), และนี้อาจแนะนำเกี่ยวข้องกับดอกไม้ดอกตูมที่พัฒนาเหมือนในอาหารขนาดเล็กหลุดร่วงซึ่งจ้าเก็บ assimilates ผ่าน respirationor เพิ่มขึ้นlimitedsupply ของคาร์โบไฮเดรตกับ anther เป็น reportedinการศึกษานี้ ในการผลิตเอทิลีน การตอบสนองที่คล้ายคลึงกันนอกจากนี้รายงานในกระเจี๊ยบซ่า sinensis L. (แรง et al., 1988)ไม่ทราบว่าการผลิตเอทิลีนในอาหารดอกไม้ขนาดเล็กเกี่ยวข้องโดยตรงกับดอกตูมดอกหลุดร่วง ไม่ระดับต่ำซูโครสและสะสมของฟรักโทสและซูโครสในเหมือนของอาหารดอกไม้ขนาดเล็กมีผลต่อการผลิตเอทิลีน เอทิลีนไม่เช่นผลผลิตจากการจับกุมในการเจริญเติบโตของ anther เนื่องจากเป็นไม่ทราบว่า มีขีดจำกัดระดับหรือความเข้มข้นในซูโครส ฟรักโทส และกลูโคสในแต่ละอวัยวะที่อาจเกี่ยวข้องการเหนี่ยวนำของการหลุดร่วงของดอกไม้อาหารขนาดต่าง ๆ ของดอกไม้อาหาร เมื่อดอกไม้อาหารถึงขนาดบาง assimilatesเช่น ซูโครส ในอาหารดอกไม้ขนาดใหญ่ได้ไม่เป็นปัจจัยจำกัดเป็นส่วนใหญ่ที่พัฒนาของ pollen ธัญพืชหรือเนื้อเยื่อรอบ pollen ธัญพืชอาจรับเสื่อมสรีรวิทยากระบวน เอทิลีนจึงมีการพัฒนา ความเสี่ยงของอาหารเด็กเอทิลีนบ่อยสามารถให้คำตอบของการมีส่วนร่วมของเอทิลีนต่อการร่วงของอาหารขนาดเล็กตามการเปลี่ยนแปลงในเนื้อหาคาร์โบไฮเดรตและสะสมซูโครส 14C หรือ metabolites ใน anther มี หรือไม่ มี artifi-cially การเหนี่ยวนำของดอกตูมหลุดร่วงและการหายใจรูปแบบของทั้งดอกตูม อาหารกับเอา tepals และอาหาร tepals และเหมือนเอาออก เราสรุป anther พัฒนาไม่เหมาะสมเป็นการเรียกปัจจัยใน inducing ฟลาวเวอร์บัดหลุดร่วงดอกบัวบกนี่คือเนื่องจากไม่สามารถ hydrolyze ซูโครสฟรักโทสเป็น และกลูโคสในเหมือน เมื่ออุปทานของฟรักโทสและกลูโคสเพื่อเหมือนอาหารเล็ก 1.03 g และ g 1.61 ในการศึกษานี้ หรือ ในอาหารของ1.8 ซม. 2.6 ซม. ใช้ใน Roh (1990a), ถูกจำกัด และถูกควบคู่ขาดการไฮโตรไลซ์ซูโครสเป็น monosaccharides ในเหมือนจะหยุดพัฒนา anther นำไปสู่การผลิตC2H4 กิจกรรม invertase ที่เกี่ยวข้องในไฮโตรไลซ์ของซูโครสในอวัยวะต่าง ๆ (Ranwala และมิลเลอร์ 1998) ไม่มีการตรวจสอบในการศึกษานี้ มัน ดังนั้น สรุปการหลุดร่วงของดอกตูมที่ยังcritical stages of bud development is induced by lack of fructoseand sucrose in the developing anther and lack of translocation of 14C sucrose to the anther from filaments, and that the anther, it’sdeveloping pollen or both, trigger bud abscission in Lilium (Castroand Clément, 2005). In carnations (D. caryophyllus), ovary (ten Haveand Woltering, 1997) or gynoecium consisting of ovary, style,stigma (Shibuya et al., 2000) may trigger the onset of petal senescencein D. caryophyllus L. In carnation, petal senescence was notcontrolled by the growth of ovary which is not dependent on remobilizationof carbohydrates from the petal (Mor et al., 1980). In theabsence of large flower buds ready to reach anthesis, carbohydratefrom these senescing flowers are not available to the small developinggladiolus (Gladiolus hybrida) flower buds (Waithaka et al.,2001). There should be further studies of flower buds of varioussizes which are attached to the stem to study the translocation andmetabolism of monosaccharides and sucrose in small buds whenradioactive 14C sucrose is applied to the cut end of inflorescence,notto the pedicel attached to an individual flowers. However, it willbe difficult to monitor respiration and ethylene production fromvarious organs of flower buds attached to the inflorescence if suchstudies were to be conducted.

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

4.4 . c2h4 CO2 และการผลิตจากตาขนาดต่าง ๆและไม่มีการกำจัดทีพัลด้วย

และ เรณูทั้งเพิ่มการสังเคราะห์เอทิลีนที่มีขึ้นในการหายใจในการเสื่อมสภาพของ '
' ดอกคาร์เนชั่นสีขาวซิม ( D . caryophyllus
L . ) มีความสัมพันธ์กับการเหี่ยวของโคโรลลา ( นิโคล , 1968 ;
รี้ดและหู 1992 ) ยอดเหล่านี้อาจจะเกี่ยวข้องกับการมีอายุมากขึ้นกลีบดอกไม้
,แต่ไม่ใช่กับดอกบาน ( เฮลวี่ และ mayek , 1979 ) ใน
บัวลูกผสมดอกลิลลี่ ลุกขึ้นในการหายใจและการผลิตเอทิลีน
ไม่สัมพันธ์กับดอกบาน ( ROH 1990c , ) , และนี้อาจจะแนะนำให้
การพัฒนาที่เรณูในตาขนาดเล็กที่เกี่ยวข้องกับการตัดออกที่ depletes เก็บดอกตูม

respirationor assimilates ผ่านเพิ่มขึ้นเป็น limitedsupply คาร์โบไฮเดรตกับอับเรณูเป็น reportedin
การศึกษานี้เป็นผลในเอทิลีนถูกผลิต มีการตอบสนองที่คล้ายกัน
ก็รายงานในชบาโรไซแนนซิส L . ( บังคับ et al . , 1988 ) .
มันไม่เป็นที่รู้จักถ้าการผลิตเอทิลีนในดอกตูมเล็ก
โดยตรงเกี่ยวข้องกับการตัดออก . . . ทำระดับต่ำ และการสะสมของ
ซูโครสฟรุคโตสและซูโครสใน อับเรณูของดอกไม้เล็ก ๆ ส่งผลกระทบต่อการผลิตเอทธิลีนตา

ไม่เอทิลีน ได้แก่การผลิต ผลจากการจับกุมในการเจริญเติบโตของอับเรณู ? เพราะมันคือ
ไม่รู้ว่ามีเกณฑ์หรือระดับความเข้มข้นสำหรับ
ซูโครส ฟรักโทส และกลูโคสที่อวัยวะแต่ละซึ่งอาจเกี่ยวข้องกับการตัดออก
induction ของดอกตูมขนาดต่างๆของ
ตาดอกไม้ เมื่อดอกตูมถึงขนาดหนึ่ง assimilates
, เช่น ซูโครสในดอกตูมขนาดใหญ่อาจจะไม่ได้เป็นปัจจัยจำกัด .
มันมีแนวโน้มว่า การพัฒนาของธัญพืช pollen หรือเนื้อเยื่อ
รอบละอองเรณูอาจผ่านกระบวนการทางสรีรวิทยา
เสื่อม ดังนั้น เอทิลีนจะถูกพัฒนาขึ้น การเปิดรับข่าวสารของหนุ่มตา
กับเอทิลีนสามารถให้คำตอบกับการมีส่วนร่วมของเอธิลีนในการตัดออกของตา

ตัวเล็กบนพื้นฐานของการเปลี่ยนแปลงในคาร์โบไฮเดรตและการสะสมของ 14c
น้ำตาลทรายหรือสารใน ( มีหรือไม่มี artifi -
cially การบัดการตัดออกและการหายใจรูปแบบทั้ง
ป๋า ตา กับ tepals ลบออก และตา และด้วย tepals เรณู
เอาออก เราสรุปได้ว่า การพัฒนาที่ไม่เหมาะสมของอับเรณูเป็น
เรียกปัจจัยกระตุ้นการตัดออกดอกไม้ดอกตูมใน
บัวดอกลิลลี่นี้คือเนื่องจากการไม่สามารถย่อยซูโครสฟรุคโตสและกลูโคสใน
เรณู . เมื่ออุปทานของฟรักโทสและกลูโคส

ตาเล็ก อับเรณูที่ 1.03 กรัมและ 1.61 กรัม ในการศึกษานี้ หรือตา
1.8 เซนติเมตร และ 2.6 ซม ใช้ในโร ( 1990a ) , ถูก จำกัด และควบคู่กับการขาดของน้ำตาลซูโครสใน

โมโนแซ็กคาไรด์ในเรณูพัฒนาการของอับเรณูจะถูกหยุดที่นำไปสู่การผลิต
c2h4 . เปรียบเทียบกิจกรรมที่เกี่ยวข้องกับการย่อยสลายของซูโครส
ในอวัยวะต่าง ๆ ( ranwala และมิลเลอร์ , 2541 ) ได้ศึกษา
ในการศึกษานี้ จึงสรุปได้ว่า บัดการตัดออกที่ขั้นตอนที่สำคัญของการพัฒนาหน่อ

เกิดจากขาดฟรักโทส