controlled at 60°C before mixing. S

controlled at 60°C before mixing. Subsequently, the
ethanol was removed under a rotary evaporator at 40°C.
Liposomes formed spontaneously after the ethanol was
removed. After removal of ethanol under vacuum, the
volume was measured and adjusted to 10 mL with
acetate buffer (pH 5.5).
Determination of entrapment efficiency
The entrapment efficiency was measured
after separation of the non-entrapped Roselle extract
using a dialysis method. The dialysis membrane
(molecular weight cut off 3,500 dalton) was soaked
in distilled water for 30 minutes. The suspension of
Roselle liposome (1 mL) was transferred into the
dialysis membrane using a pipette and then the top
and bottom of the dialysis bag were clamped with
medicut. The dialysis bag containing liposomes was
stirred in 500 mL of distilled water using a magnetic
stirrer at 300 rpm for 16 hours. The concentration of
free Roselle extract was then determined by analyzing
the total anthocyanin content in the solution outside
the dialysis bag. Subsequently, the total antocyanin
content in the non-dialysed Roselle liposome
formulation was analyzed after disrupting the lipid
vesicles using Triton X-100 (10%, 1:1). The percentage
entrapment efficiency was calculated according to Eq
(4) :
% Roselle extract entrapment efficiency =
100 [1-(REF
/RET)] (4)
Where; RET is the total amount of
anthocyanin in the liposome suspension and REF
is
the anthocyanin content in the 500 mL dialysis fluid
(i.e. un-entrapped Roselle extract).
Determination of vesicle size
Diameters of the lipid vesicles were
determined using photon correlation spectroscopy
employing a Zetasizer (Malvern Instruments, Malver
UK). Samples were diluted with distilled water which
were previously filtered through 0.2 mm membrane filter
to minimize interference from particulate matter.
Stability study
Liposome formulations were evaluated for
their entrapment efficiency and physical properties,
such as color and appearance, after storing at 4°C for 2
months, comparing to values for the freshly prepared
liposome formulations.
In vitro skin permeation study
Newborn pigs that had died of natural causes
shortly after birth were obtained fresh from a local pig
farm (Songkhla, Thailand). Full thickness flank skins of
newborn pigs weighing 1.4-1.8 kg were used. The
epidermal hair at the flank area was clipped with an
electric hair clipper as close as possible to the skin
without causing any damage and the skin carefully
excised with a scalpel. The subcutaneous fat and
underlying tissues were carefully removed from the
dermal surface(26). Studies were performed in a modified
Franz-diffusion cell. Liposomes (2.5 g) were put in the
donor compartment on top of the skin. The receptor
compartment was filled with 12 mL acetate buffer pH
5.5, thermoregulated with a water bath at 37°C and
magnetically stirred at 400 rpm, with effective skin area
0.79 cm2
. Samples (1 mL) were withdrawn at 0.5, 1, 2, 3,
4, 8, 10 and 12 hours. An equal volume of fresh acetate
buffer was immediately added to the receptor solution
after each sampling. Concentration of Roselle extract
in acetate buffer of the receptor compartment was
determined by measuring the antioxidant activity using
the DPPH assay. Aliquot of each sample (100 μg/ml)
were subjected to this assay exactly as described before
for the assay of Roselle extract. The % inhibition of
each sample was calculated as previously described
following Eq (1).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ควบคุมที่ 60° C ก่อนผสม ในเวลาต่อมา การ
เอทานอลถูกเอาใต้ evaporator โรตารี่ที่ 40 ° C.
Liposomes เกิดธรรมชาติหลังจากเอทานอลถูก
เอา หลังจากเอาของเอทานอลภายใต้สูญญากาศ
วัด และปรับปรุง 10 mL มีปริมาณ
acetate บัฟเฟอร์ (pH 5.5) .
กำหนดประสิทธิภาพ entrapment
เป็นวัดประสิทธิภาพ entrapment
หลังจากแยกของสารสกัดกระเจี๊ยบแดงไม่เก็บกัก
วิธีหน่วย เมมเบรนหน่วย
(น้ำหนักโมเลกุลตัด 3500 ดาลตัน) เป็น soaked
ในกลั่นน้ำ 30 นาที ระงับการ
กระเจี๊ยบแดง liposome (1 mL) ถูกถ่ายโอนไป
เยื่อหน่วยใช้เป็นเปตต์ แล้วด้านบน
และก้นกระเป๋าหน่วยถูก clamped ด้วย
medicut กระเป๋าหน่วยประกอบด้วย liposomes ถูก
กวนใน 500 mL ของน้ำกลั่นที่ใช้เป็นแม่เหล็ก
ช้อนคนที่ 300 รอบต่อนาทีชั่วโมง 16 ความเข้มข้นของ
ฟรีกระเจี๊ยบแดงสารสกัดจากนั้นกำหนด โดยวิเคราะห์
เนื้อหามีโฟเลทสูงรวมในโซลูชันนอก
กระเป๋าหน่วย ในเวลาต่อมา antocyanin รวม
เนื้อหาใน liposome กระเจี๊ยบแดงไม่ dialysed
มีวิเคราะห์กำหนดหลังอาจรบกวนกระบวนการ
อสุจิใช้ไตรตั้น X-100 (10%, 1:1) เปอร์เซ็นต์
คำนวณประสิทธิภาพ entrapment ตาม Eq
(4):
%กระเจี๊ยบแดงสารสกัดจากประสิทธิภาพ entrapment =
100 [1-(REF
/RET)] (4)
ที่ RET เป็นยอด
มีโฟเลทสูงระงับ liposome และอ้างอิง
เป็น
เนื้อหามีโฟเลทสูงในน้ำหน่วย 500 mL
(เช่น สารสกัดจากกระเจี๊ยบแดงไม่ entrapped) .
กำหนดของเวสิเคิลขนาด
สมมาตรของอสุจิไขมันถูก
กำหนดใช้โฟตอนสัมพันธ์ก
ใช้เป็น Zetasizer (เครื่องมัลเวิร์น Malver
UK) ตัวอย่างถูกทำให้เจือจาง ด้วยน้ำกลั่นที่
ก่อนหน้านี้ถูกกรองผ่านตัวกรองเมมเบรน 0.2 mm
เพื่อลดสัญญาณรบกวนจากฝุ่นเรื่องการ
ศึกษาเสถียรภาพ
สูตร liposome ถูกประเมิน
entrapment ประสิทธิภาพและคุณสมบัติทางกายภาพ ความ
เช่นสีและลักษณะ หลังจากเก็บที่ 4 ° C 2
เดือน เทียบกับค่าที่ลิ้ม
liposome สูตร
ศึกษาการซึมผ่านผิวหนังใน
สุกรทารกที่เสียชีวิตสาเหตุธรรมชาติ
หลังจากเกิดได้รับสดจากท้องถิ่นหมู
ฟาร์ม (สงขลา ประเทศไทย) เต็มความหนา flank สกินของ
ใช้สุกรทารกน้ำหนัก 1.4-1.8 kg
ผม epidermal flank บริเวณที่ตัดกับการ
คลิปเปอร์ผมปิดเป็นผิว
โดยไม่ก่อให้เกิดความเสียหายใด ๆ และผิวละเอียด
excised กับ scalpel เป็น การระบาย และ
เนื้อเยื่อต้นแบบถูกเอาออกอย่างระมัดระวังจากการ
surface(26) ประมาณการ ดำเนินการศึกษาในการปรับเปลี่ยน
เซลล์ฟรานซ์แพร่ Liposomes (2.5 กรัม) ใส่ใน
บริจาคช่องบนผิวหนัง ตัวรับ
ช่องก็เต็มไป ด้วยค่า pH บัฟเฟอร์ acetate 12 mL
5.5, thermoregulated กับน้ำน้ำที่ 37 ° C และ
ชำระคนที่ 400 rpm พื้นที่ผิวมีประสิทธิภาพ
0.79 cm2
ตัวอย่าง (1 mL) ถูกถอนที่ 0.5, 1, 2, 3,
4, 8, 10 และ 12 ชั่วโมง ปริมาตรการเท่ากันของ acetate สด
บัฟเฟอร์ถูกเพิ่มไปยังตัวรับโซลูชันทันที
หลังจากสุ่มตัวอย่างแต่ละ ความเข้มข้นของสารสกัดกระเจี๊ยบแดง
acetate ใน บัฟเฟอร์ของช่องตัวรับมี
ตามวัดใช้กิจกรรมต้านอนุมูลอิสระ
วิเคราะห์ DPPH Aliquot ของแต่ละตัวอย่าง (100 μg/ml)
ถูกต้องทดสอบนี้เหมือนกับที่อธิบายไว้ก่อน
สำหรับทดสอบของสารสกัดกระเจี๊ยบแดง การยับยั้ง%
แต่ละอย่างไม่ได้อธิบายไว้ก่อนหน้านี้เป็น
ต่อคณะกรรมการ (1)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การควบคุมที่ 60 ° C ก่อนที่จะผสม ต่อมา
เอทานอลจะถูกลบออกภายใต้เครื่องระเหยแบบหมุนที่ 40 ° C.
ไลโปโซมธรรมชาติที่เกิดขึ้นหลังจากที่เอทานอลที่ถูก
ลบออก หลังจากการกำจัดของเอทานอลภายใต้สูญญากาศ,
ปริมาณการวัดและการปรับถึง 10 มิลลิลิตรด้วย
น้ำนมบัฟเฟอร์ (pH 5.5)
การตรวจสอบประสิทธิภาพของกับดัก
กับดักที่มีประสิทธิภาพได้รับการวัด
หลังจากการแยกของที่ไม่ได้กักสารสกัดกระเจี๊ยบแดง
โดยใช้วิธีการฟอกเลือด เยื่อฟอกไต
(น้ำหนักโมเลกุลตัด 3,500 ดาลตัน) ได้รับการแช่
ในน้ำกลั่นเป็นเวลา 30 นาที ระงับการ
กระเจี๊ยบไลโปโซม (1 มิลลิลิตร) ถูกย้ายเข้าไปใน
เยื่อฟอกไตโดยใช้ปิเปตแล้วด้านบน
และด้านล่างของกระเป๋าฟอกไตถูกบีบด้วย
medicut ถุงฟอกไตที่มีไลโปโซมถูก
กวนใน 500 มิลลิลิตรของน้ำกลั่นโดยใช้แม่เหล็ก
กวนที่ 300 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 16 ชั่วโมง ความเข้มข้นของ
สารสกัดกระเจี๊ยบแดงฟรีถูกกำหนดแล้วโดยการวิเคราะห์
เนื้อหา anthocyanin รวมในการแก้ปัญหาที่อยู่นอก
ถุงไต ต่อมา antocyanin รวม
เนื้อหาที่ไม่ dialysed ไลโปโซมกระเจี๊ยบ
สูตรการวิเคราะห์หลังจากกระทบไขมัน
ถุงใช้ Triton X-100 (10%, 1:1) ร้อยละ
ที่มีประสิทธิภาพกับดักที่คำนวณได้ตามสมการที่
(4):
สารสกัดกระเจี๊ยบแดง% ประสิทธิภาพการกักเก็บ =
100 [1 - (REF
/ RET)] (4)
ในกรณีที่; RET เป็นจำนวนเงินทั้งหมดของ
anthocyanin ในการระงับไลโปโซมและ REF
เป็น
เนื้อหา anthocyanin ในน้ำ 500 มิลลิลิตรการฟอกเลือด
(เช่นสารสกัดกระเจี๊ยบแดงยกเลิกการกัก)
การกำหนดขนาดถุงเล็ก
เส้นผ่าศูนย์กลางของถุงไขมันที่ถูก
กำหนดโดยใช้สเปคโทรโฟตอนสัมพันธ์
จ้าง Zetasizer (เวิร์น Instruments, Malver
สหราชอาณาจักร) ตัวอย่างที่เจือจางด้วยน้ำกลั่นซึ่ง
ก่อนหน้านี้ได้รับการกรองผ่าน 0.2 มม. ตัวกรองเมมเบรน
เพื่อลดสัญญาณรบกวนจากอนุภาค
เสถียรภาพศึกษา
สูตรไลโปโซมได้รับการประเมินเพื่อ
ประสิทธิภาพการวางกับดักและสมบัติทางกายภาพของพวกเขา
เช่นสีและลักษณะที่ปรากฏหลังจากการจัดเก็บที่ 4 ° C เป็นเวลา 2
เดือนเมื่อเทียบกับค่าสำหรับเตรียมสด
สูตรไลโปโซม
ในการศึกษาการซึมผ่านผิวหลอดทดลอง
สุกรแรกเกิดที่เสียชีวิตจากสาเหตุตามธรรมชาติ
หลังคลอดได้รับหมูสดจากท้องถิ่น
ฟาร์ม (สงขลา, ไทย) ผิวหนังหนาด้านข้างเต็มไปด้วย
หมูแรกเกิดที่มีน้ำหนัก 1.4-1.8 กิโลกรัมถูกนำมาใช้
ผมผิวหนังที่บริเวณด้านข้างถูกตัดด้วย
กรรไกรตัดขนไฟฟ้าให้ใกล้ที่สุดเท่าที่เป็นไปได้ให้กับผิว
โดยไม่ทำให้เกิดความเสียหายใด ๆ และผิวหนังอย่างรอบคอบ
พอด้วยมีดผ่าตัด ไขมันใต้ผิวหนังและ
เนื้อเยื่อพื้นฐานที่ถูกถอดออกอย่างระมัดระวังจาก
พื้นผิวผิวหนัง (26) การศึกษาได้รับการดำเนินการในการแก้ไข
เซลล์ฟรานซ์กระจาย ไลโปโซม (2.5 กรัม) ถูกวางไว้ใน
ช่องผู้บริจาคที่ด้านบนของผิว รับ
ช่องก็เต็มไปด้วย 12 มิลลิลิตรอะซิเตทบัฟเฟอร์ pH
5.5, thermoregulated ด้วยอ่างน้ำที่ 37 ° C และ
กวนสนามแม่เหล็กที่ 400 รอบต่อนาทีมีพื้นที่ผิวที่มีประสิทธิภาพ
0.79 cm2
. ตัวอย่าง (1 มิลลิลิตร) ถูกถอนออกที่ 0.5, 1, 2, 3,
4, 8, 10 และ 12 ชั่วโมง ปริมาตรที่เท่ากันของน้ำนมสด
บัฟเฟอร์ถูกเพิ่มเข้ามาทันทีเพื่อแก้ปัญหารับ
หลังจากที่แต่ละตัวอย่าง ความเข้มข้นของสารสกัดกระเจี๊ยบแดง
ในบัฟเฟอร์น้ำนมของช่องรับได้รับการ
กำหนดโดยการวัดสารต้านอนุมูลอิสระโดยใช้
การวิเคราะห์ DPPH หารของแต่ละตัวอย่าง (100 mg / ml)
ถูกยัดเยียดให้ทดสอบนี้ตรงตามที่อธิบายไว้ก่อน
การทดสอบของสารสกัดกระเจี๊ยบแดง ยับยั้ง% ของ
แต่ละตัวอย่างที่คำนวณได้ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้
ต่อไปนี้สมการที่ (1)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ควบคุมอุณหภูมิ 60 องศา C ก่อนผสม โดย
เอทานอลระเหยออกภายใต้อุณหภูมิ 40 องศา หมุนคล่องตัวขึ้นหลัง

เอทานอลถูกลบออก หลังจากเอาเอทานอลภายใต้สูญญากาศ
เป็นวัดและปรับปริมาณ 10 ml ด้วย
อะซิเตทบัฟเฟอร์ pH 5.5 ) .
การหาประสิทธิภาพการดักจับประสิทธิภาพวัด

หลังจากการแยกไม่ตรึงกระเจี๊ยบสกัด
ใช้ไดแอลิซิส ส่วนเยื่อกรอง
( น้ำหนักโมเลกุลตัดออก 3 , 500 ดาลตัน ) หมัก
ในน้ำกลั่นนาน 30 นาที การระงับ
กระเจี๊ยบ ไลโปโซม ( 1 มล. ) ถูกย้ายเข้า
เยื่อกรองใช้ปิเปตแล้วด้านบนและด้านล่างของกระเป๋า

medicut ไตถูกบีบด้วย .การฟอกไตเป็นถุงบรรจุในไลโปโซม
กวน 500 มิลลิลิตรของน้ำโดยใช้แม่เหล็ก stirrer
300 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 16 ชั่วโมง ความเข้มข้นของสารสกัดกระเจี๊ยบแดงฟรีแล้ว

กำหนดโดยการวิเคราะห์ปริมาณแอนโธไซยานินในสารละลายภายนอก
ถุงไต ต่อมาปริมาณแอนโธไซยานิน
รวมไม่ dialysed
กระเจี๊ยบไลโปโซมวิเคราะห์หลังการทำลายไขมัน
เล็กใช้ Triton X-100 ( 10% , 1 : 1 ) ค่าประสิทธิภาพ
การคํานวณตาม EQ
( 4 ) :
% กระเจี๊ยบสกัดการประสิทธิภาพ =
100 [ 1 - ( Ref
/ ret ) ] ( 4 )
ที่ ; ret เป็นปริมาณแอนโธไซยานินในการระงับและ


เป็นไลโปโซม อ้างอิงใน 500 มิลลิลิตร ปริมาณแอนโธไซยานิน
ของเหลวไต ( เช่นและตรึงกระเจี๊ยบสกัด ) .
หา vesicle ขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางของไขมันเล็กอยู่

ตั้งใจใช้โฟตอน ) spectroscopy
ใช้เซตาไซเซอร์ ( Malvern เครื่องมือ malver
UK ) ตัวอย่างที่เจือจางด้วยน้ำกลั่นซึ่ง
ก่อนหน้านี้กรองผ่านเยื่อกรอง 0.2 mm
เพื่อลดการรบกวนจากฝุ่นละออง .

ศึกษาเสถียรภาพไลโปโซม สูตรที่ได้รับการประเมินประสิทธิภาพการกักเก็บของพวกเขาและคุณสมบัติทางกายภาพ

เช่น รูปร่าง , สีและหลังจากเก็บรักษาที่อุณหภูมิ 4 องศา C 2
เดือนเปรียบเทียบกับค่าเตรียมไลโปโซมสูตรใหม่
.
ในหลอดทดลอง การศึกษาการซึมผ่านผิวหนังของทารกแรกเกิด
หมูที่ตายโดยธรรมชาติ
ในไม่ช้าหลังคลอดได้สด จากฟาร์มหมู
ท้องถิ่น ( สงขลา )สกินปีกหนาเต็มของทารกแรกเกิดน้ำหนัก 1.4-1.8
หมูกิโลกรัมใช้
ผมตรงบริเวณด้านข้างถูกตัดด้วยไฟฟ้า
ผมได้อย่างใกล้เคียงที่สุดกับผิว
โดยไม่ก่อให้เกิดความเสียหายใด ๆและผิวให้ดี
ตัดด้วยมีดผ่าตัด ไขมันใต้ผิวหนัง และเนื้อเยื่อถูกลบออกอย่างระมัดระวัง
อ้างอิงจาก
ผิวเนื้อ ( 26 ) ศึกษาการดัดแปลง
ในฟรานซ์ การแพร่กระจายของเซลล์ ไลโปโซม ( 2.5 กรัม ) ใส่
ผู้บริจาคช่องด้านบนของผิวหนัง ตัวรับ
ช่องเต็มไปด้วย 12 ml อะซิเตทบัฟเฟอร์ pH
5.5 , thermoregulated กับอาบน้ำที่อุณหภูมิ 37 องศา C
สนามแม่เหล็กกวน 400 รอบต่อนาที มีพื้นที่ผิวเท่ากับ cm2 ผล

ตัวอย่าง ( 1 มิลลิลิตร - 0.5 , 1 , 2 , 3
4 , 8 , 10 และ 12 ชั่วโมง ปริมาณเท่ากันของ
, สดบัฟเฟอร์รับทันทีเพิ่มโซลูชั่น
หลังจากที่แต่ละคน ความเข้มข้นของกระเจี๊ยบสกัด
ในบัพเฟอร์อะซิเตตของรับด้านล่าง
กำหนดโดยการวัดสารต้านอนุมูลอิสระใช้
dpph ตามลำดับ การเทศนาของแต่ละตัวอย่าง ( 100 μ g / ml )
ถูกนี้ต่อตรงตามที่อธิบายไว้ก่อน
สำหรับการทดสอบของกระเจี๊ยบแดง . การยับยั้ง
%แต่ละตัวอย่างคำนวณตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้
ตามคิว ( 1 )