In this study, the effect of plasma

In this study, the effect of plasma and ozone treatments on the quality of orange juice was evaluated. The juice was directly and indirectly exposed to a plasma field at 70 kV for different treatment times: 15, 30, 45 and 60 s. For ozone processing, different loads (0.057, 0.128 and 0.230 mg/O3 mL of juice) were evaluated. After the treatments, the oligosaccharides were quantified by HPLC. The juice pH, color, total phenolic content and total antioxidant activity were also determined. Both processes promoted a partial degradation of the oligosaccharides in the juice. However, the juice maintained an enough amount of oligosaccharides to be classified as a prebiotic food. The phenolic content and antioxidant capacity of the treated samples was also well preserved as the pH and color. Thus, atmospheric cold plasma and ozone are suitable non-thermal alternatives for prebiotic orange juice treatment.

Industrial relevance
Consumers are looking for safe food products with high quality. Thus, the food industry is currently considering non-thermal processes as an alternative to reduce the nutrient loss in processed foods. Despite atmospheric cold plasma and ozone are technologies already evaluated as an efficient non-thermal alternative for pathogens inactivation in orange juice, no previous studies on their effects on the oligosaccharides in functional fruit juice was published. This study is of industrial relevance because it demonstrates that after plasma and ozone treatment the overall quality of prebiotic orange juice was preserved and the product maintained its functional appeal.

Emerging technologies; Orange juice; Phenolic; Antioxidant activity

2. Materials and methods
2.1. Orange juice
Orange juice (Squeez©, Fruit Juices Ltd., Ireland) was purchased from a local supermarket (Dunnes, Dublin 1, Ireland). The pH of the juice was determined by direct measurement in a 420A potentiometer (Orion research Inc., Beverly, MA. US). The pH meter was calibrated before use with buffer solutions of pH 4.0, 7.0 and 10.0.
Reducing sugars were measured by high-performance liquid chromatography (HPLC) analysis using an Agilent Technologies System. Separation was achieved in a Supelcogel-Ca column at 80 °C. Ultrapure water (MilliQ System, Millipore, Bilberica, MA, USA) at 0.5 mL/min was used as eluent, and the detector temperature was 35 °C. All samples were analyzed in duplicate.

2.2. Dextransucrase production and enzyme activity determination
The dextransucrase production was carried out according to Rodrigues et al. (2003). The enzyme produced was stocked frozen at − 20 °C prior to use. The enzymatic activity of the dextransucrase was determined by quantifying the released fructose by the DNS (3.5 dinitrosalicylic acid) method (Miller, 1959) using as substrate a 10% (w/v) sucrose solution in sodium acetate (20 mM, pH 5.2) at 30 °C ( Rabelo et al., 2009 and Rodrigues et al., 2005). Dextransucrase activity was expressed in IU/mL. One international unit (IU) is the amount of enzyme that releases 1 μmol of fructose per minute under the assay condition.

2.3. Prebiotic oligosaccharides synthesis in orange juice
Oligosaccharides synthesis was carried out using the partially purified enzyme and the optimum synthesis conditions (30 °C and pH 5.2). Synthesis was carried out in 1000 mL Erlenmeyer flask at 30 °C for 24 h (Rabelo et al., 2006) containing 800 mL of the orange juice and using enzyme with 0.05 UI/mL. The amount of enzyme was modulated to avoid the oligosaccharides overproduction, which can cause intestinal discomfort and or diarrhea.

2.4. Plasma treatment on prebiotic orange juice
The plasma treatment was carried out using a plasma generation (DBD-ACP), model: 6CP120/60–7.5-Phenix Technologies (Fig. 1). The system consisted of a variable high voltage transformer with an input voltage of 230 V at 50 Hz and a maximum high voltage output of 70 kV at 50 Hz. The two 15 cm diameter aluminum disc electrodes were separated by a polypropylene container, which served both as a sample holder and as a dielectric barrier with wall thickness of 1.2 mm. The distance between the two electrodes was 22 mm, equal to the height of the container. Voltage was monitored using an InfiniVision 2000 X-Series Oscilloscope (Agilent Technologies Inc., Santa Clara, CA, USA). All experiments were performed at 70 kV peak to peak at ambient air and atmospheric pressure conditions

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ในการศึกษานี้ มีประเมินผลของพลาสม่าและโอโซนบำบัดคุณภาพน้ำส้ม น้ำผลไม้โดยตรง และโดยอ้อมษทมัคเขตพลาที่ 70 kV ครั้งรักษาที่แตกต่าง: 15, 30, 45 และ 60 s สำหรับโอโซน ถูกประเมินประมวลผล อื่นโหลด (0.057, 0.128 และ 0.230 มิลลิกรัม/O3 mL ของน้ำ) หลัง oligosaccharides ถูกวัด โดย HPLC ค่า pH ของน้ำ สี กำหนดกิจกรรมรวมฟีนอเนื้อหา และรวมสารต้านอนุมูลอิสระ เป็นการลดบางส่วนของ oligosaccharides ในน้ำการส่งเสริมกระบวนการทั้งสอง อย่างไรก็ตาม น้ำผลไม้รักษาเพียงพอจำนวน oligosaccharides ให้จัดแบ่งประเภทเป็นอาหาร prebiotic ความจุฟีนอของเนื้อหาและสารต้านอนุมูลอิสระตัวอย่างปฏิบัติถูกเก็บรักษาไว้ยังเป็นค่า pH และสี ดังนั้น ทางเลือกความร้อนเหมาะสำหรับบำบัดน้ำส้ม prebiotic มีพลาสม่าเย็นบรรยากาศและโอโซนเกี่ยวข้องอุตสาหกรรมผู้บริโภคกำลังมองหาผลิตภัณฑ์อาหารที่ปลอดภัยมีคุณภาพสูง ดังนั้น อุตสาหกรรมอาหารจะพิจารณากระบวนการความร้อนเป็นทางเลือกเพื่อลดการสูญเสียสารอาหารในอาหารแปรรูป แม้ มีพลาสม่าเย็นบรรยากาศและโอโซนเป็นเทคโนโลยีที่ถูกประเมินแล้วเป็นทางเลือกความร้อนมีประสิทธิภาพสำหรับยกเลิกการเรียกเชื้อโรคในน้ำส้ม ไม่มีการศึกษาก่อนหน้านี้บนผล oligosaccharides ในน้ำผลไม้ทำงานเผยแพร่ การศึกษานี้มีความเกี่ยวข้องอุตสาหกรรม เพราะมันแสดงให้เห็นว่า รักษาคุณภาพโดยรวมของน้ำส้ม prebiotic หลังพลาสม่าและโอโซน และผลิตภัณฑ์รักษาอุทธรณ์การทำงานเทคโนโลยีใหม่ ๆ น้ำส้ม ฟีนอล อนุมูล2. วัสดุและวิธีการ2.1. ส้มน้ำส้ม (Squeez ©, ผลไม้น้ำผลไม้ จำกัด ไอร์แลนด์) ซื้อจากซูเปอร์มาร์เก็ตท้องถิ่น (Dunnes ดับลิน 1 ไอร์แลนด์) กำหนดค่า pH ของน้ำ โดยวัดโดยตรงในตัวมิเตอร์ 420A (Orion วิจัย Inc. เบเวอร์ลี่ MA เรา) วัด pH ถูกปรับเทียบก่อนใช้โซลูชันบัฟเฟอร์ของ pH 4.0, 7.0 และ 10.0ลดน้ำตาลถูกวัด โดยใช้ระบบเทคโนโลยี Agilent วิเคราะห์ประสิทธิภาพของเหลว chromatography (HPLC) แยกสำเร็จในคอลัมน์ Supelcogel Ca ที่ 80 องศาเซลเซียส น้ำบริสุทธิ์พิเศษ (ระบบ MilliQ มิลลิพอร์ Bilberica, MA, USA) ที่ 0.5 mL/นาที ถูกใช้เป็น eluent และเครื่องตรวจจับอุณหภูมิ 35 องศาเซลเซียส ตัวอย่างทั้งหมดมาวิเคราะห์ในรายการซ้ำ2.2. กำหนดกิจกรรมการผลิตและเอนไซม์ DextransucraseDextransucrase การผลิตดำเนินการตามที่โรดริเกวส et al. (2003) เอนไซม์ผลิตถูกเก็บสต็อกหยุด− 20 ° C ก่อนที่จะใช้ กิจกรรมเอนไซม์ของ dextransucrase ถูกกำหนด โดยเชิงปริมาณฟรักโทสออกมาโดยวิธีการ DNS (3.5 dinitrosalicylic กรด) (Miller, 1959) โดยใช้เป็นพื้นผิวการแก้ไขซูโครส 10% (w/v) ในโซเดียมอะซิเตท (20 มม. pH 5.2) ที่ 30 ° C (Rabelo et al. 2009 และโรดริเกวส et al. 2005) Dextransucrase กิจกรรมได้แสดงออกใน IU/mL หนึ่งหน่วยสากล (IU) คือ จำนวนของเอนไซม์ที่ออก 1 ไมโครโมลของฟรักโทสต่อนาทีภายใต้สภาวะทดสอบ2.3. prebiotic oligosaccharides สังเคราะห์ในน้ำส้มการสังเคราะห์ oligosaccharides ที่ถูกดำเนินการโดยใช้เงื่อนไขการสังเคราะห์ที่เหมาะสม (30 ° C และ pH 5.2) และเอนไซม์บริสุทธิ์บางส่วน สังเคราะห์ได้ดำเนินการใน Erlenmeyer ขวดที่ 30 ° C ใน 24 h (Rabelo et al. 2006) ขนาด 1000 มล. 800 มล.น้ำส้มที่ประกอบด้วยอยู่ และใช้เอนไซม์ 0.05 UI/mL ปริมาณของเอนไซม์ถูกสันทัด oligosaccharides นมากกว่าปกติ สามารถทำให้รู้สึกไม่สบายในลำไส้และโรคท้องร่วงหรือหลีกเลี่ยง2.4. พลาสม่ารักษาน้ำส้ม prebioticการรักษาพลาดำเนินการโดยใช้การสร้างพลาสม่า (DBD-ACP), รุ่น: 6CP120/60 – 7.5-ฟีนิกซ์เทคโนโลยี (รูปที่ 1) ระบบประกอบด้วยหม้อแปลงไฟฟ้าแรงสูงที่ตัวแปร ด้วยแรงดันที่อินพุตของ 230 V 50 Hz ที่และการแสดงผลแรงดันไฟฟ้าสูงสุดของ 70 kV ที่ความถี่ 50 Hz สอง 15 ซม.เส้นผ่าศูนย์กลางอลูมิเนียมแผ่นอิเล็กโทรดถูกคั่น ด้วยภาชนะโพรพิลีน ซึ่ง เป็นที่ใส่ตัวอย่าง และ เป็นอุปสรรคเป็นฉนวนกับผนังความหนา 1.2 มม. ระยะห่างระหว่างขั้วไฟฟ้าสองถูก 22 mm เท่ากับความสูงของภาชนะ แรงดันไฟฟ้าถูกตรวจสอบโดยใช้ Oscilloscope InfiniVision 2000 X-Series (Agilent เทคโนโลยี อิงค์ ซานตาคลารา CA, USA) ดำเนินการทดลองทั้งหมดที่ 70 kV สูงสุดไปสูงสุดที่สภาพอากาศและความดันบรรยากาศโดยรอบ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ในการศึกษานี้ผลของพลาสม่าและโอโซนการรักษาคุณภาพของน้ำผลไม้สีส้มได้รับการประเมิน น้ำผลไม้ที่ได้รับโดยตรงและโดยอ้อมสัมผัสกับสนามพลาสม่าที่ 70 กิโลโวลต์สำหรับเวลาการรักษาที่แตกต่างกัน 15, 30, 45 และ 60 วินาที สำหรับการประมวลผลโอโซนโหลดที่แตกต่างกัน (0.057, 0.128 และ 0.230 มิลลิกรัม / มิลลิลิตร O3 ของน้ำ) ได้รับการประเมิน หลังจากการรักษาที่ oligosaccharides ถูกวัดโดยวิธี HPLC ค่าความเป็นกรดน้ำผลไม้สีเนื้อหาฟีนอลรวมและสารต้านอนุมูลอิสระทั้งหมดนอกจากนี้ยังได้รับการพิจารณา กระบวนการทั้งการส่งเสริมการย่อยสลายบางส่วนของ oligosaccharides ในน้ำผลไม้ แต่น้ำผลไม้ไว้ในปริมาณที่เพียงพอของ oligosaccharides ที่จะจัดเป็นอาหาร prebiotic เนื้อหาฟีนอลและสารต้านอนุมูลอิสระของกลุ่มตัวอย่างได้รับการรักษาก็ยังเก็บไว้อย่างดีในขณะที่พีเอชและสี ดังนั้นบรรยากาศเย็นพลาสม่าและโอโซนเป็นทางเลือกที่ไม่ใช่ความร้อนเหมาะสำหรับการบำบัดน้ำผลไม้สีส้ม prebiotic.

ความสัมพันธ์กันอุตสาหกรรม
ผู้บริโภคกำลังมองหาผลิตภัณฑ์อาหารที่ปลอดภัยมีคุณภาพสูง ดังนั้นอุตสาหกรรมอาหารในปัจจุบันคือการพิจารณากระบวนการไม่ใช่ความร้อนเป็นทางเลือกเพื่อลดการสูญเสียสารอาหารในอาหารแปรรูป แม้จะมีพลาสม่าเย็นบรรยากาศและโอโซนเป็นเทคโนโลยีการประเมินแล้วเป็นทางเลือกที่ไม่ใช่ความร้อนที่มีประสิทธิภาพสำหรับการใช้งานเชื้อโรคในน้ำผลไม้สีส้ม, ไม่มีการศึกษาก่อนหน้านี้เกี่ยวกับผลกระทบของพวกเขาใน oligosaccharides ในน้ำผลไม้การทำงานได้รับการตีพิมพ์ การศึกษาครั้งนี้มีความสัมพันธ์กันในอุตสาหกรรมเพราะมันแสดงให้เห็นว่าหลังจากที่พลาสม่าและโอโซนคุณภาพโดยรวมของน้ำส้ม prebiotic ได้รับการเก็บรักษาไว้และผลิตภัณฑ์รักษาอุทธรณ์การทำงานของ.

เทคโนโลยีที่เกิดขึ้นใหม่ น้ำส้ม; ฟีนอล; ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ

2 วัสดุและวิธีการ
2.1 น้ำส้ม
น้ำผลไม้สีส้ม (Squeez ©ผลไม้น้ำผลไม้ จำกัด ไอร์แลนด์) ซื้อมาจากซูเปอร์มาร์เก็ตท้องถิ่น (Dunnes ดับลิน 1 ไอร์แลนด์) ค่าพีเอชของน้ำถูกกำหนดโดยการวัดโดยตรงในมิเตอร์ 420A (Orion วิจัยอิงค์ Beverly, MA. สหรัฐ) เครื่องวัดค่า pH ได้รับการสอบเทียบก่อนที่จะใช้กับสารละลายบัฟเฟอร์ค่า pH 4.0, 7.0 และ 10.0.
น้ำตาลลดถูกวัดโดยมีประสิทธิภาพสูงของเหลว chromatography (HPLC) การวิเคราะห์โดยใช้ Agilent Technologies ระบบ แยกก็ประสบความสำเร็จในคอลัมน์ Supelcogel-CA ที่ 80 ° C น้ำบริสุทธิ์ (MilliQ ระบบค Bilberica, MA, USA) ที่ 0.5 มิลลิลิตร / นาทีถูกใช้เป็นตัวชะและอุณหภูมิเครื่องตรวจจับ 35 ° C ตัวอย่างทั้งหมดถูกนำมาวิเคราะห์ในที่ซ้ำกัน.

2.2 Dextransucrase การผลิตและการทำงานของเอนไซม์มุ่งมั่น
ผลิต dextransucrase ได้ดำเนินการตามโรดริกู, et al (2003) เอนไซม์ที่ผลิตได้มีการเก็บรักษาแช่แข็ง - 20 ° C ก่อนที่จะใช้ กิจกรรมของเอนไซม์ dextransucrase ถูกกำหนดโดยเชิงปริมาณฟรุกโตสที่ออกโดย DNS (3.5 กรด dinitrosalicylic) วิธีการ (มิลเลอร์, 1959) โดยใช้เป็นสารตั้งต้น 10% (w / v) สารละลายน้ำตาลซูโครสในโซเดียมอะซิเตท (20 มิลลิเมตรมีค่า pH 5.2) วันที่ 30 ° C (Rabelo et al., 2009 และโรดริกู et al., 2005) กิจกรรม Dextransucrase ถูกแสดงออกใน IU / mL หนึ่งหน่วยสากล (IU) คือปริมาณของเอนไซม์ที่เผยแพร่ 1 ไมโครโมลของฟรุกโตสต่อนาทีภายใต้เงื่อนไขการทดสอบได้.

2.3 การสังเคราะห์ oligosaccharides prebiotic ในน้ำส้ม
สังเคราะห์ oligosaccharides ได้ดำเนินการโดยใช้เอนไซม์บางส่วนและเงื่อนไขการสังเคราะห์ที่เหมาะสม (30 องศาเซลเซียสและมีค่า pH 5.2) สังเคราะห์ได้ดำเนินการใน 1,000 มล Erlenmeyer ขวดที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง (Rabelo et al., 2006) ที่มี 800 มลน้ำส้มและการใช้เอนไซม์กับ UI 0.05 / มิลลิลิตร ปริมาณของเอนไซม์ที่ถูก modulated เพื่อหลีกเลี่ยงการ oligosaccharides มากเกินไปซึ่งอาจทำให้เกิดความรู้สึกไม่สบายลำไส้และหรือท้องเสีย.

2.4 การรักษาพลาสม่าในน้ำส้ม prebiotic
การรักษาพลาสม่าได้ดำเนินการโดยใช้รุ่นพลาสม่า (DBD-ACP) รุ่น (Fig. 1) 6CP120 / 60-7.5-ฟีนิกซ์เทคโนโลยี ระบบประกอบด้วยตัวแปรหม้อแปลงไฟฟ้าแรงสูงที่มีแรงดันไฟฟ้าอินพุต 230 V 50 Hz และเอาท์พุทแรงดันสูงได้สูงสุด 70 กิโลโวลต์ 50 เฮิร์ตซ์ ทั้งสองขั้วไฟฟ้า 15 ซมแผ่นดิสก์อลูมิเนียมขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางถูกแยกออกจากภาชนะโพรพิลีนซึ่งทำหน้าที่เป็นทั้งผู้ถือตัวอย่างและเป็นอุปสรรคอิเล็กทริกที่มีความหนาของผนัง 1.2 มิลลิเมตร ระยะห่างระหว่างสองขั้วไฟฟ้าได้ 22 มมเท่ากับความสูงของภาชนะ แรงดันไฟฟ้าได้รับการตรวจสอบโดยใช้ InfiniVision 2000 X-Series Oscilloscope (Agilent Technologies, Inc, ซานตาคลารา, แคลิฟอร์เนีย, สหรัฐอเมริกา) การทดสอบทั้งหมดได้ดำเนินการที่ 70 กิโลโวลต์ยอดสูงสุดที่อากาศแวดล้อมและเงื่อนไขความดันบรรยากาศ