Following existing literatures (Che

Following existing literatures (Chen et al., 2006, 2007; Yu et al.,
2011), Concanavalin A (ConA), Calcofluor white (CW), Fluorescein
isothiocyanate (FITC) and SYTO 63 were used to label
the a- and b-D-glucopyranose polysaccharides, proteins and
total cells, respectively, in the biofouling layer in this study.
The fouled FO membranes were taken out from the OMBR
systems at predetermined time (on days 3, 8 and 25), and then
three pieces with size of about 0.5  0.5 cm were randomly cut
from each fouled FO membrane. As shown in Fig. 2, the fouled
membrane samples were first stained with SYTO 63 (20 mM),
and then the FITC solution (10 g L1
) was dripped onto the
samples after 1 M sodium bicarbonate (NaHCO3) buffer was
applied for keeping the amine group in a non-protonated
form. Subsequently, the ConA (0.25 g L1
) and CW (0.3 g L1
)
solutions were added to the samples, respectively. After each
stage of the labeling process, the samples were incubated for
30 min at room temperature in the dark, and then were
washed twice with phosphate buffered saline (PBS) solution to
remove the extra probes.
T

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ต่อไปนี้อยู่ literatures (Chen et al., 2006, 2007 Yu et al.,2011), Concanavalin A (ConA), Calcofluor สีขาว (ตามน้ำหนักจริง), Fluoresceinisothiocyanate (FITC) และ SYTO 63 ใช้กับป้ายชื่อa - และ b-D-glucopyranose polysaccharides โปรตีน และเซลล์ทั้งหมด ตามลำดับ ในชั้น biofouling ในการศึกษาสารโฟ fouled ถูกนำออกมาจาก OMBRระบบในเวลาที่กำหนดไว้ (ในวันที่ 3, 8 และ 25), และจากนั้นชิ้นสาม มีขนาดประมาณ 0.5 0.5 ซม.ถูกตัดสุ่มจาก fouled โฟเมมเบรน ตามที่แสดงใน Fig. 2 ที่ fouledตัวอย่างเยื่อมีสีครั้งแรกกับ SYTO 63 (20 mM),แล้ว FITC โซลูชัน (10 g L1) เป็น dripped ไปมีตัวอย่างหลังจากบัฟเฟอร์โซเดียมไบคาร์บอเนต (NaHCO3) 1 Mใช้สำหรับรักษากลุ่ม amine ในไม่ใช่-protonatedแบบฟอร์มการ ในเวลาต่อมา ConA (L1 0.25 g) และตามน้ำหนักจริง (0.3 g L1)โซลูชั่นเพิ่มเข้าไปตัวอย่าง ตามลำดับ หลังจากแต่ละขั้นตอนของการติดฉลากกระบวนการ ตัวอย่างการถูก incubated สำหรับ30 นาทีที่อุณหภูมิห้องในมืด และจากนั้นล้างสองครั้ง ด้วยฟอสเฟต buffered saline (PBS) แก้ไขเอาคลิปปากตะเข้พิเศษT

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ต่อไปนี้วรรณกรรมที่มีอยู่ (Chen et al, 2006, 2007;.. ยูเอตอัล
2011) Concanavalin A (CONA) Calcofluor สีขาว (CW) Fluorescein
isothiocyanate (FITC) และ SYTO 63 ถูกนำมาใช้กับป้ายกำกับ
a- และ BD polysaccharides -glucopyranose
โปรตีนและเซลล์รวมตามลำดับในชั้นbiofouling ในการศึกษานี้.
เปื้อน FO เยื่อหุ้มถูกนำออกมาจาก OMBR
ระบบเวลาที่กำหนดไว้ (ในวันที่ 3, 8 และ 25)
และจากนั้นสามชิ้นที่มีขนาดของประมาณ 0.5? 0.5 ซม.
ถูกตัดสุ่มจากกันเปื้อนเมมเบรนFO ดังแสดงในรูป 2,
ชนกลุ่มตัวอย่างเมมเบรนมีการย้อมครั้งแรกกับSYTO 63 (20 มิลลิเมตร)
แล้วการแก้ปัญหา FITC (10 กรัม
L1) ถูกหยดลงบนตัวอย่างหลังวันที่ 1 M โซเดียมไบคาร์บอเนต (NaHCO3) บัฟเฟอร์ถูกนำมาใช้ในการรักษากลุ่มเอมีนในที่ไม่ใช่โปรโตเนตรูปแบบ ต่อจากนั้น CONA (0.25 กรัม L1) และ CW (0.3 กรัม L1) การแก้ปัญหาที่ถูกเพิ่มเข้าตัวอย่างตามลำดับ หลังจากที่แต่ละขั้นตอนของกระบวนการการติดฉลากที่ถูกบ่มตัวอย่างสำหรับ30 นาทีที่อุณหภูมิห้องในที่มืดและจากนั้นได้รับการล้างครั้งที่สองที่มีฟอสเฟตบัฟเฟอร์น้ำเกลือ(PBS) วิธีการลบโพรบพิเศษ. T

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ตามเอกสารที่มีอยู่ ( Chen et al . , 2006 , 2007 ; ยู et al . ,
( 2011 ) , ถูก cona ) , แคลโคฟลู ร์สีขาว ( CW ) , ี่
ไอโซไทโอไซยาเนต ( fitc ) และ syto 63 ใช้ป้าย
- b-d-glucopyranose พอลิแซ็กคาไรด์และโปรตีนและ
รวมเซลล์ ตามลำดับ ใน การ biofouling ชั้นการศึกษา
สิ่งสกปรกสำหรับเมมเบรนถูกออกจาก ombr
ระบบที่กำหนดไว้ล่วงหน้า ( ในวันที่ 3 , 8 และ 25 ) แล้ว
3 ชิ้น มีขนาดประมาณ 0.5  0.5 เซนติเมตร ตัด
สุ่มจากแต่ละสิ่งสกปรกสำหรับเมมเบรน ดังแสดงในรูปที่ 2 , สิ่งสกปรก
เยื่อจำนวนแรกที่เปื้อน syto 63 ( 20 มม. ) ,
แล้ว fitc โซลูชั่น ( 10 g l1
) คือหยดบน
ตัวอย่างหลังจาก โซเดียมไบคาร์บอเนต ( NaHCO3 ) 1
บัฟเฟอร์ใช้สำหรับรักษากลุ่มเอมีนในไม่ protonated
แบบฟอร์ม โดย cona ( 0.25 g l1
) และ CW ( 0.3 g l1
)
โซลูชั่นเพิ่มตัวอย่าง ตามลำดับ หลังจากแต่ละขั้นตอนของการติดฉลาก
กระบวนการจำนวน 20% โดย
30 นาทีที่อุณหภูมิห้องในความมืด แล้วล้างด้วยเกลือฟอสเฟตบัฟเฟอร์
2 ( PBS ) โซลูชั่น


T เอาฟิวส์ที่พิเศษ