- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
AbstractOxidoreductases can be appl
Abstract
Oxidoreductases can be applied for bonding of fiberboards, particle boards, paper boards and kraft-liner boards. In this work we report on pilot-scale production of laccase bonded fiberboards made from fibers of beech (Fagus sylvatica). Dioxane extractable lignin from fibers and boards are isolated and the molecular mass estimated by gel permeation chromatography. The strength properties of the enzyme bonded boards are comparable to boards bonded by an urea–formaldehyde adhesive, whereas the dimensional stability properties of the enzyme bonded boards are not at the same level. Wax treatment of the fibers, in order to improve dimensional stability of boards, is not compatible with the enzyme treatment. Cross-linking of the lignin can be observed in enzyme treated fibers and boards. Hot pressing of enzyme treated fibers results in a substantial cross-linking of lignin in boards. The enzymatic bonding effect may be caused by covalent bonds between fibers or an adhesive effect of polymerized loosely associated lignin. Laccase catalyzed bonding requires higher pressing temperatures and longer pressing times, and the concept may not be economically feasible as it is. However, it shows promise and possibilities in the use of oxidative enzymes for industrial bonding and modification of lignin.
Keywords
Laccase; Fiberboards; Lignin; Oxidation; Pilot-scale production
1. Introduction
Bonding of wood fibers and particles by adhesives can be accomplished by forming a resinous matrix in which the particles or fibers are bonded together, e.g. by mechanical entanglement or covalent cross-linking. The bonding is caused not only by the added adhesive but also by the auto-adhesive properties of the wood components. Oxidoreductases such as laccase and peroxidase may be used for polymerization or cross-linking of wood components in order to bond these components.
The concept of using lignin-oxidizing enzymes for bonding applications is based on the reactivity of phenoxy radicals in the plant cell wall. In vivo, oxidoreductases catalyze polymerization of lignin through cross-linking of phenoxy radicals, and thus it may be possible to utilize a similar type of reaction for bonding of lignocellulosic materials in vitro.
Previous work reported the use of oxidoreductases for bonding of fiberboards, particle boards, paper boards and kraft-liner boards [1], [2], [3], [4], [5], [6] and [7]. So far, the work reported has been done on a laboratory-scale, and the results suggest the possibility of a new technology for bonding of lignocellulosic materials.
In this work we report on pilot-scale production of laccase bonded fiberboards made from fibers of beech (Fagus sylvatica). The physicomechanical properties of the boards are presented and discussed. A new method for isolation of fiber surface lignin from boards is presented, and the molecular mass of lignin in boards and fibers is characterized by gel permeation chromatography (GPC).
2. Materials and methods
2.1. Materials
Myceliophtera thermophila laccase was obtained from Novozymes A/S, Bagsvaerd, Denmark. Enzyme activity was measured in units (U), with 1 U defined as the amount of enzyme that oxidizes 1 μmol syringaldazine per minute in potassium phosphate buffer pH 7.0, 30 °C.
Urea–formaldehyde (UF)-resin was obtained from Casco-Nobel, Stockholm, Sweden. Mobilcer 072 liquid wax for improving the water tolerance of fiberboards was obtained from Mobil, London, UK. Beech wood chips for preparation of fiberboards were supplied by Junckers Industrier, Koege, Denmark.
1,4-Dioxane from Fisher Scientific, Leicestershire, UK for lignin extraction was distilled over sodium borhydride prior to use. Tetrahydrofuran (THF) as eluent for GPC was supplied by Merck, Darmstadt, Germany. Polystyrene standards with nominal molecular mass of 2500, 5000, 17500, and 30000 Da were supplied by Supelco, Bellafonte, PA and standards with nominal molecular mass of 3000 and 10000 Da were supplied by Crompak, Church Stretton, UK.
2.2. Preparation of fiberboards
The fiberboards were made at Sunds Defibrator pilot-plant, Sundsvall, Sweden. This facility is capable of fully simulating a medium density fiberboard production from refining of chips to mat forming of fibers. Pressing was done in an electrically heated daylight type press using a dynamic press cycle.
Fiberboards were prepared from five different treatments:
Control—untreated
UF-resin (8% w/w) + wax (1% w/w)
Laccase treated 6 U/g fiber
Laccase treated 24 U/g fiber
Laccase+wax treated 6 U/g fiber+wax (1% w/w).
Note that no control treatment using deactivated laccase is included as it was shown in [4], that there is no adhesive effect of deactivated laccase. For each treatment a minimum of six boards ( mm) were pressed. Target thickness and density of the boards were 8 mm and 850 kg/m3, i.e. that each board contained approximately 1700 g of fibers.
The chips were preheated for 4 min and refined in a twin-disk refiner at 8.5 bar. The target moisture content before adding enzyme was set to 55%, water was added in the blow-line in order to reach this level. UF-resin and wax was added at the end of the blow line. An aqueous solution (pH 7) of the enzyme was applied to the fibers in an atmospheric refiner preheated to 60 °C. The atmospheric refiner only served as a mixer for enzymes and fibers and caused no further mechanical separation of the fibers. In order to allow sufficient time for the enzymatic reaction, fibers blended with enzyme were transferred to a 8 m3 rotary bin for 30 min at 50 °C. Fibers from all treatments were dried in a flash drier to a moisture content (MC) of 14–18%. From the dried fibers, air-laid mats were formed and pre-pressed in a cold press. Note that the air layering of the mats lowered the moisture content to 11–13%. Hot pressing was done for 150 s at 180 °C for UF-resin+wax treatment, and 203 s at 200 °C for control and enzyme treatments. The full process is outlined in Fig. 1, and the process parameters are listed in Table 1.
Full-size image (7 K)
Fig. 1.
Schematic plot of pilot-scale process for production of laccase bonded fiberboards.
Figure options
Table 1.
Processing parameters for pilot-scale production of fiberboards
Parameter UF-resin (8% w/w) + wax (1% w/w) Laccase treated 6 U/g fiber Laccase treated 24 U/g fiber Laccase + wax treated 6 U/g fiber + wax (1% w/w) Control
Preheating pressure (bar) 8.5 8.5 8.5 8.5 8.5
Specific energy excluding idle load (kWh/ton) 55 55 55 55 55
True disc clearance (mm) 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0
Production rate (kg/h) 60 60 60 60 60
Preheating time (min) 4 4 4 4 4
Preheating temperature (°C) 170 170 170 170 170
Defibrator house pressure (bar) 8.4 8.4 8.4 8.4 8.4
Differential pressure (bar) −0.1 −0.1 −0.1 −0.1 −0.1
Main motor speed (rpm) 1500 1500 1500 1500 1500
Drier inlet temperature (°C) 94 86 78 106 108
Drier outlet temperature (°C) 45 38 39 50 53
Pressing temperature (°C) 180 200 200 200 200
Pressing time (s) 150 203 203 203 203
Table options
2.3. Board properties
For each treatment the boards were tested for modulus of elasticity (MOE), modulus of rupture (MOR), internal bond strength (IB), thickness swell (TS), and water absorption (WA) following a 24 h cold water soak. All testing was done according to ASTM D1037-78, except that the board samples were equilibrated at 55% RH and 20 °C prior to testing.
2.4. Electron spin resonance analysis
Quantification of radicals by electron spin resonance (ESR) spectrometry was done by preparing the samples in Wilmad, Buena, NJ 710-SQ quartz tubes. Each tube contained approximately 400 mg of fibers corresponding to a sample height of 25 mm. Fiber samples were frozen in liquid nitrogen to stop further reactions of residual laccase. A Bruker, Karlsruhe, Germany ECS 106 X-band ESR spectrometer equipped with an X-band ER 403TM cavity was used for the measurements. Radicals on frozen fibers were quantified at −73 °C by double integration of the first derivative ESR signal and compared to a weak pitch sample (Bruker) containing a known amount of unpaired spins [8]. Quantification of radicals was done for all treatments except for fibers treated with UF-resin+wax. Samples were prepared on site following the enzyme reaction in the rotary bin (wet) and after the drying of the fibers (dry).
2.5. Determination of lignin molecular mass by GPC
Samples of MDF boards were disintegrated into fibers or bundles of fibers by gently grating the board. Lignin was extracted from a 5% suspension of the grated sample in 90% dioxane and 10% water at 40 °C for 24 h. Subsequently, lignin was isolated from this solution by removing dioxane and then lowering pH to 2.5 with 1 M HCl, thereby precipitating the lignin. The suspension was frozen to facilitate coalescing of lignin. Remaining carbohydrate, extractives, and other water-soluble components were removed from the isolated lignin by washing the precipitate three times with water acidified to pH 2.4. Finally, water was removed from the isolated lignin by freeze-drying. For determination of molecular mass the isolated lignin samples were derivatized by acetylation following the procedure in [9]. The derivatized sample was then dissolved in 1.5 ml THF, filtered through a 0.45 μm PTFE filter and injected into the HPLC. Molecular mass was determined relative to polystyrene standards by separation on Styragel HR 6, HR 4, and HR 3 columns (Waters, Milford, MA) connected in series [10]. Flow rate was set at 1 ml/min. Absorbance was monitored at 280 nm for lignin samples and at 254 nm for the polystyrene standards. Mass and number average molecular mass (Mw and Mn) were calculated according to [11].
3. Results and discussion
In each of the individual treatments the results for MOE, MOR, and IB had a coefficient of variance of less than 6% within board samples and less than 9% between board samples. For TS and WA the figures were 11 and 16%, respectively.
During the pilot-scale trials each treatment wa
Oxidoreductases can be applied for bonding of fiberboards, particle boards, paper boards and kraft-liner boards. In this work we report on pilot-scale production of laccase bonded fiberboards made from fibers of beech (Fagus sylvatica). Dioxane extractable lignin from fibers and boards are isolated and the molecular mass estimated by gel permeation chromatography. The strength properties of the enzyme bonded boards are comparable to boards bonded by an urea–formaldehyde adhesive, whereas the dimensional stability properties of the enzyme bonded boards are not at the same level. Wax treatment of the fibers, in order to improve dimensional stability of boards, is not compatible with the enzyme treatment. Cross-linking of the lignin can be observed in enzyme treated fibers and boards. Hot pressing of enzyme treated fibers results in a substantial cross-linking of lignin in boards. The enzymatic bonding effect may be caused by covalent bonds between fibers or an adhesive effect of polymerized loosely associated lignin. Laccase catalyzed bonding requires higher pressing temperatures and longer pressing times, and the concept may not be economically feasible as it is. However, it shows promise and possibilities in the use of oxidative enzymes for industrial bonding and modification of lignin.
Keywords
Laccase; Fiberboards; Lignin; Oxidation; Pilot-scale production
1. Introduction
Bonding of wood fibers and particles by adhesives can be accomplished by forming a resinous matrix in which the particles or fibers are bonded together, e.g. by mechanical entanglement or covalent cross-linking. The bonding is caused not only by the added adhesive but also by the auto-adhesive properties of the wood components. Oxidoreductases such as laccase and peroxidase may be used for polymerization or cross-linking of wood components in order to bond these components.
The concept of using lignin-oxidizing enzymes for bonding applications is based on the reactivity of phenoxy radicals in the plant cell wall. In vivo, oxidoreductases catalyze polymerization of lignin through cross-linking of phenoxy radicals, and thus it may be possible to utilize a similar type of reaction for bonding of lignocellulosic materials in vitro.
Previous work reported the use of oxidoreductases for bonding of fiberboards, particle boards, paper boards and kraft-liner boards [1], [2], [3], [4], [5], [6] and [7]. So far, the work reported has been done on a laboratory-scale, and the results suggest the possibility of a new technology for bonding of lignocellulosic materials.
In this work we report on pilot-scale production of laccase bonded fiberboards made from fibers of beech (Fagus sylvatica). The physicomechanical properties of the boards are presented and discussed. A new method for isolation of fiber surface lignin from boards is presented, and the molecular mass of lignin in boards and fibers is characterized by gel permeation chromatography (GPC).
2. Materials and methods
2.1. Materials
Myceliophtera thermophila laccase was obtained from Novozymes A/S, Bagsvaerd, Denmark. Enzyme activity was measured in units (U), with 1 U defined as the amount of enzyme that oxidizes 1 μmol syringaldazine per minute in potassium phosphate buffer pH 7.0, 30 °C.
Urea–formaldehyde (UF)-resin was obtained from Casco-Nobel, Stockholm, Sweden. Mobilcer 072 liquid wax for improving the water tolerance of fiberboards was obtained from Mobil, London, UK. Beech wood chips for preparation of fiberboards were supplied by Junckers Industrier, Koege, Denmark.
1,4-Dioxane from Fisher Scientific, Leicestershire, UK for lignin extraction was distilled over sodium borhydride prior to use. Tetrahydrofuran (THF) as eluent for GPC was supplied by Merck, Darmstadt, Germany. Polystyrene standards with nominal molecular mass of 2500, 5000, 17500, and 30000 Da were supplied by Supelco, Bellafonte, PA and standards with nominal molecular mass of 3000 and 10000 Da were supplied by Crompak, Church Stretton, UK.
2.2. Preparation of fiberboards
The fiberboards were made at Sunds Defibrator pilot-plant, Sundsvall, Sweden. This facility is capable of fully simulating a medium density fiberboard production from refining of chips to mat forming of fibers. Pressing was done in an electrically heated daylight type press using a dynamic press cycle.
Fiberboards were prepared from five different treatments:
Control—untreated
UF-resin (8% w/w) + wax (1% w/w)
Laccase treated 6 U/g fiber
Laccase treated 24 U/g fiber
Laccase+wax treated 6 U/g fiber+wax (1% w/w).
Note that no control treatment using deactivated laccase is included as it was shown in [4], that there is no adhesive effect of deactivated laccase. For each treatment a minimum of six boards ( mm) were pressed. Target thickness and density of the boards were 8 mm and 850 kg/m3, i.e. that each board contained approximately 1700 g of fibers.
The chips were preheated for 4 min and refined in a twin-disk refiner at 8.5 bar. The target moisture content before adding enzyme was set to 55%, water was added in the blow-line in order to reach this level. UF-resin and wax was added at the end of the blow line. An aqueous solution (pH 7) of the enzyme was applied to the fibers in an atmospheric refiner preheated to 60 °C. The atmospheric refiner only served as a mixer for enzymes and fibers and caused no further mechanical separation of the fibers. In order to allow sufficient time for the enzymatic reaction, fibers blended with enzyme were transferred to a 8 m3 rotary bin for 30 min at 50 °C. Fibers from all treatments were dried in a flash drier to a moisture content (MC) of 14–18%. From the dried fibers, air-laid mats were formed and pre-pressed in a cold press. Note that the air layering of the mats lowered the moisture content to 11–13%. Hot pressing was done for 150 s at 180 °C for UF-resin+wax treatment, and 203 s at 200 °C for control and enzyme treatments. The full process is outlined in Fig. 1, and the process parameters are listed in Table 1.
Full-size image (7 K)
Fig. 1.
Schematic plot of pilot-scale process for production of laccase bonded fiberboards.
Figure options
Table 1.
Processing parameters for pilot-scale production of fiberboards
Parameter UF-resin (8% w/w) + wax (1% w/w) Laccase treated 6 U/g fiber Laccase treated 24 U/g fiber Laccase + wax treated 6 U/g fiber + wax (1% w/w) Control
Preheating pressure (bar) 8.5 8.5 8.5 8.5 8.5
Specific energy excluding idle load (kWh/ton) 55 55 55 55 55
True disc clearance (mm) 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0
Production rate (kg/h) 60 60 60 60 60
Preheating time (min) 4 4 4 4 4
Preheating temperature (°C) 170 170 170 170 170
Defibrator house pressure (bar) 8.4 8.4 8.4 8.4 8.4
Differential pressure (bar) −0.1 −0.1 −0.1 −0.1 −0.1
Main motor speed (rpm) 1500 1500 1500 1500 1500
Drier inlet temperature (°C) 94 86 78 106 108
Drier outlet temperature (°C) 45 38 39 50 53
Pressing temperature (°C) 180 200 200 200 200
Pressing time (s) 150 203 203 203 203
Table options
2.3. Board properties
For each treatment the boards were tested for modulus of elasticity (MOE), modulus of rupture (MOR), internal bond strength (IB), thickness swell (TS), and water absorption (WA) following a 24 h cold water soak. All testing was done according to ASTM D1037-78, except that the board samples were equilibrated at 55% RH and 20 °C prior to testing.
2.4. Electron spin resonance analysis
Quantification of radicals by electron spin resonance (ESR) spectrometry was done by preparing the samples in Wilmad, Buena, NJ 710-SQ quartz tubes. Each tube contained approximately 400 mg of fibers corresponding to a sample height of 25 mm. Fiber samples were frozen in liquid nitrogen to stop further reactions of residual laccase. A Bruker, Karlsruhe, Germany ECS 106 X-band ESR spectrometer equipped with an X-band ER 403TM cavity was used for the measurements. Radicals on frozen fibers were quantified at −73 °C by double integration of the first derivative ESR signal and compared to a weak pitch sample (Bruker) containing a known amount of unpaired spins [8]. Quantification of radicals was done for all treatments except for fibers treated with UF-resin+wax. Samples were prepared on site following the enzyme reaction in the rotary bin (wet) and after the drying of the fibers (dry).
2.5. Determination of lignin molecular mass by GPC
Samples of MDF boards were disintegrated into fibers or bundles of fibers by gently grating the board. Lignin was extracted from a 5% suspension of the grated sample in 90% dioxane and 10% water at 40 °C for 24 h. Subsequently, lignin was isolated from this solution by removing dioxane and then lowering pH to 2.5 with 1 M HCl, thereby precipitating the lignin. The suspension was frozen to facilitate coalescing of lignin. Remaining carbohydrate, extractives, and other water-soluble components were removed from the isolated lignin by washing the precipitate three times with water acidified to pH 2.4. Finally, water was removed from the isolated lignin by freeze-drying. For determination of molecular mass the isolated lignin samples were derivatized by acetylation following the procedure in [9]. The derivatized sample was then dissolved in 1.5 ml THF, filtered through a 0.45 μm PTFE filter and injected into the HPLC. Molecular mass was determined relative to polystyrene standards by separation on Styragel HR 6, HR 4, and HR 3 columns (Waters, Milford, MA) connected in series [10]. Flow rate was set at 1 ml/min. Absorbance was monitored at 280 nm for lignin samples and at 254 nm for the polystyrene standards. Mass and number average molecular mass (Mw and Mn) were calculated according to [11].
3. Results and discussion
In each of the individual treatments the results for MOE, MOR, and IB had a coefficient of variance of less than 6% within board samples and less than 9% between board samples. For TS and WA the figures were 11 and 16%, respectively.
During the pilot-scale trials each treatment wa
0/5000
บทคัดย่อOxidoreductases สามารถใช้สำหรับงาน fiberboards อนุภาคกระดาน กระดาษบอร์ด และบอร์ดซับคราฟท์ ในงานนี้เรารายงานในระดับนำร่องผลิตของ laccase ถูกผูกมัดที่ทำจากเส้นใยของบีช (Fagus sylvatica) fiberboards Dioxane lignin extractable จากเส้นใยและกระดานจะแยก และมวลโมเลกุลประมาณ โดยเจลซึม chromatography คุณสมบัติความแข็งแรงของบอร์ดเอนไซม์ที่ถูกผูกมัดจะเทียบได้กับบอร์ดที่ถูกผูกมัด โดยกาวยูเรียฟอร์มาลดีไฮด์ ในขณะที่คุณสมบัติในการคงรูปของบอร์ดเอนไซม์ที่ถูกผูกมัดไม่ได้อยู่ที่ระดับเดียวกัน รักษาหุ่นขี้ผึ้งของเส้นใย การปรับปรุงในการคงรูปของบอร์ด ไม่เข้ากันกับการรักษาเอนไซม์ Cross-linking ของ lignin การตรวจสอบเอนไซม์รักษาเส้นใยและบอร์ด กดร้อนของเส้นใยเอนไซม์ถือว่าผลลัพธ์ในการพบ cross-linking ของ lignin ในบอร์ด ผลงานเอนไซม์ในระบบอาจเกิดจากพันธบัตรโคเวเลนต์ระหว่างเส้นใยหรือลักษณะพิเศษกาวของ lignin polymerized ซึ่งเกี่ยวข้อง Laccase ยึดกระบวนต้องกดสูงอุณหภูมิและเวลากดยาว และแนวคิดอาจไม่มีประสิทธิภาพก็ อย่างไรก็ตาม มันแสดงสัญญาและไปในการใช้เอนไซม์ oxidative สำหรับงานอุตสาหกรรมและการปรับเปลี่ยน ligninคำสำคัญLaccase Fiberboards Lignin ออกซิเดชัน ผลิตในระดับนำร่อง1. บทนำสามารถดำเนินการติดยึดของเส้นใยไม้และอนุภาค ด้วยกาว โดยขึ้นรูปเมทริกซ์ resinous ที่อนุภาคหรือเส้นใยผูกพันกัน เช่น entanglement กลหรือ covalent cross-linking งานที่เกิดขึ้นไม่เพียง ด้วยกาวเพิ่ม แต่ยัง ตามคุณสมบัติกาวอัตโนมัติประกอบไม้ Oxidoreductases laccase และ peroxidase อาจจะใช้การ polymerization หรือ cross-linking ประกอบไม้เพื่อตราสารหนี้ส่วนประกอบเหล่านี้แนวคิดของการใช้เอนไซม์ lignin รับอิเล็กตรอนในการใช้งานขึ้นอยู่กับการเกิดปฏิกิริยาของอนุมูล phenoxy ในผนังเซลล์พืช ในสัตว์ทดลอง oxidoreductases สถาบัน polymerization ของ lignin ผ่าน cross-linking ของอนุมูล phenoxy และดังนั้น อาจจะสามารถใช้ชนิดของปฏิกิริยาการยึดของวัสดุเพาะเลี้ยง lignocellulosic คล้ายก่อนหน้างานรายงานการใช้ oxidoreductases สำหรับงาน fiberboards อนุภาคกระดาน กระดานกระดาษ และถุงคราฟท์บอร์ด [1], [2], [3], [4], [5], [6] และ [7] เพื่อห่างไกล ทำงานที่รายงานในระดับห้องปฏิบัติการ และผลของเทคโนโลยีใหม่สำหรับการติดยึดวัสดุ lignocellulosic ที่แนะนำในงานนี้เรารายงานในระดับนำร่องผลิตของ laccase ถูกผูกมัดที่ทำจากเส้นใยของบีช (Fagus sylvatica) fiberboards คุณสมบัติ physicomechanical ของบอร์ดจะนำเสนอ และกล่าวถึง นำเสนอวิธีการใหม่ในการแยก lignin ผิวไฟเบอร์จากบอร์ด และมวลโมเลกุลของ lignin ในบอร์ดและเส้นใยมีลักษณะเจลซึม chromatography (GPC)2. วัสดุและวิธีการ2.1. วัสดุMyceliophtera thermophila laccase ได้รับจาก a/s Novozymes, Bagsvaerd เดนมาร์ก เอนไซม์ถูกวัดในหน่วย (U), 1 U ที่กำหนดเป็นจำนวนเอนไซม์ที่ oxidizes 1 μmol syringaldazine ต่อนาทีโพแทสเซียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.0, 30 องศาเซลเซียสยูเรียฟอร์มาลดีไฮด์ (UF) -เรซินได้รับจากบริษัทโนเบล สต็อกโฮล์ม สวีเดน Mobilcer 072 ขี้ผึ้งเหลวสำหรับการปรับปรุงค่าเผื่อน้ำของ fiberboards ได้รับมาจากมือถือ ลอนดอน สหราชอาณาจักร เศษไม้บีชสำหรับการเตรียมการของ fiberboards ถูกจัด โดย Junckers Industrier, Koege เดนมาร์ก1,4-dioxane จากวิทยาศาสตร์ฟิชเชอร์ เลสเตอร์เชอร์ UK สำหรับสกัด lignin ถูกกลั่นมากกว่าโซเดียม borhydride ก่อนที่จะใช้ Tetrahydrofuran (THF) เป็น eluent สำหรับ GPC ถูกกำหนด โดยบริษัทเมอร์ค ดาร์มส เยอรมนี โฟมมาตรฐานระบุมวลโมเลกุลของ 2500, 5000, 17500 และดา 30000 ถูกจัดทำ โดย Supelco, Bellafonte, PA และมาตรฐาน ด้วยมวลโมเลกุลระบุของดา 3000 และ 10000 ถูกจัดทำ โดย Crompak คริสตจักร UK2.2 การเตรียม fiberboardsFiberboards ได้ทำที่ Sunds Defibrator นำร่องพืช โอเรโบร สวีเดน สถานที่นี้เป็นความสามารถในการจำลองการผลิตแผ่นใยไม้อัดความหนาแน่นปานกลางจากการกลั่นของชิการขึ้นรูปของเส้นใยพรมเต็ม กดเสร็จในกดชนิดอุ่นนวดตามฤดูกาลของการใช้วงจรกดแบบไดนามิกFiberboards ถูกเตรียมจากห้ารักษาแตกต่างกัน:ควบคุมซึ่งไม่ถูกรักษาเรซิ่น UF (8% w/w) + ขี้ผึ้ง (1% w/w)Laccase ถือว่าไฟเบอร์ U/g 6Laccase ถือว่าไฟเบอร์ U/g 24Laccase + ขี้ผึ้งรักษา 6 ใย U/g + ขี้ผึ้ง (1% w/w)หมายเหตุว่า ใช้รักษาควบคุมไม่ปิด laccase มามันถูกแสดงใน [4], ที่มีไม่มีผลต่อกาวของ laccase ปิด การรักษาแต่ละ อย่างน้อย 6 กระดาน (mm) ถูกกด เป้าหมายความหนาและความหนาแน่นของบอร์ดได้ 8 มม.และ 850 kg/m3 เช่นว่า แต่ละคณะมีอยู่ประมาณ 1700 กรัมของเส้นใยชิที่ต่ำใน 4 นาที และกลั่นในสำหรับดิสก์คู่ 8.5 บาร์ เป้าหมายความชื้นก่อนที่จะเพิ่มเอนไซม์ถูกตั้งค่าให้ 55% น้ำเพิ่มในบรรทัดเป่าเพื่อเข้าถึงระดับนี้ UF-เรซินและขี้ผึ้งถูกเพิ่มที่สิ้นสุดของบรรทัดเป่า การละลาย (pH 7) ของเอนไซม์ถูกประยุกต์ใช้เส้นใยในตัวสำหรับอากาศที่ต่ำถึง 60 องศาเซลเซียส สำหรับบรรยากาศเป็นผสมเอนไซม์และเส้นใย และเกิดการแยกเชิงกลของเส้นใยไปเท่านั้น เพื่อมีเวลาเพียงพอสำหรับปฏิกิริยาเอนไซม์ในระบบ เส้นใยผสมกับเอนไซม์ถูกโอนย้ายไปช่องโรตารี่ 8 m3 ใน 30 นาทีที่ 50 องศาเซลเซียส เส้นใยจากการรักษาทั้งหมดถูกอบแห้งในพริบตาที่แห้งให้ความชื้น (MC) 14-18% จากเส้นใยแห้ง เสื่อวางอากาศได้เกิดขึ้น และก่อนกดกดเย็น หมายเหตุว่า layering อากาศของเสื่อชื้น 11 – 13% ลดลง กดร้อนทำการ 150 s ที่ 180 ° C สำหรับ ยาง UF + ขี้ผึ้งรักษา และ 203 s ที่ 200 ° C สำหรับควบคุมและเอนไซม์บำบัด กระบวนการทั้งหมดมีรายละเอียดใน Fig. 1 และแสดงไว้ในตารางที่ 1 พารามิเตอร์กระบวนการรูปภาพขนาดเต็ม (7 K)Fig. 1 พล็อตมันการระดับนำร่องสำหรับการผลิตของ laccase ถูกผูกมัด fiberboardsตัวเลือกรูปตารางที่ 1ประมวลผลพารามิเตอร์สำหรับการผลิตนำร่องขนาด fiberboardsพารามิเตอร์ UF-เรซิน (8% w/w) ขี้ผึ้ง (1% w/w) + Laccase รับ 6 U/g ไฟเบอร์ Laccase รับ 24 U/g ไฟเบอร์ Laccase + ขี้ผึ้งรักษา 6 ใย U/g + ขี้ผึ้ง (1% w/w) ควบคุมPreheating แรงดัน (บาร์) 8.5 8.5 8.5 8.5 8.5โหลดใช้งานไม่รวมพลังงานเฉพาะ (ไม่ / ตัน) 55 55 55 55 55จริงเคลียร์ดิสก์ (mm) 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0อัตราการผลิต (kg/h) 60 60 60 60 60Preheating เวลา (นาที) 4 4 4 4 4Preheating อุณหภูมิ (° C) 170 170 170 170 170Defibrator บ้านดัน (บาร์) 8.4 8.4 8.4 8.4 8.4ความดัน (บาร์) −0.1 −0.1 −0.1 −0.1 −0.1หลักความเร็วมอเตอร์ (rpm) 1500 1500 1500 1500 1500ทางเข้าของแห้งอุณหภูมิ (° C) 94 86 78 106 108เครื่องเป่าปลั๊กอุณหภูมิ (° C) 45 38 39 50 53กดอุณหภูมิ (° C) 180 200 200 200 200กดเวลา (s) 150 203 203 203 203ตัวเลือกตาราง2.3. คณะคุณสมบัติการรักษาแต่ละ บอร์ดได้ทดสอบสำหรับโมดูลัสของความยืดหยุ่น (หมอ), โมดูลัสแตก (MOR), ความแข็งแรงของพันธะภายใน (IB), ความหนาบวม (TS), และดูดซับน้ำ (WA) ต่อการแช่น้ำ 24 ชม ทดสอบทำตามมาตรฐาน ASTM D1037-78 ยกเว้นว่าถูก equilibrated ตัวอย่างคณะ ที่ 55% RH และ 20 ° C ก่อนทดสอบ2.4. อิเล็กตรอนหมุนสั่นพ้องวิเคราะห์นับของอนุมูลโดยอิเล็กตรอนหมุนสั่นพ้อง (ESR) spectrometry ได้โดยเตรียมตัวอย่างใน Wilmad คบัวนา NJ หลอดควอตซ์ 710 ตร. แต่ละหลอดอยู่ประมาณ 400 มิลลิกรัมของเส้นใยที่สอดคล้องกับความสูงตัวอย่างของ 25 mm. เส้นใย ตัวอย่างถูกแช่แข็งในไนโตรเจนเหลวเพื่อหยุดปฏิกิริยาของ laccase เหลือเพิ่มเติม Bruker สเปกโตรมิเตอร์ ESR คาร์ลส์รูเออ เยอรมนี ECS 106 X แบนด์พร้อมช่อง 403TM ER วง X ถูกใช้สำหรับการประเมิน อนุมูลบนเส้นใยแข็งถูก quantified โดยรวมคู่ของสัญญาณแรกแบบ ESR ที่ −73 ° C และเมื่อเปรียบเทียบกับตัวอย่างระดับอ่อน (Bruker) ที่ประกอบด้วยยอดเงินชื่อดังของสปิน unpaired [8] นับของอนุมูลเสร็จสำหรับการรักษาทั้งหมดยกเว้นเส้นใยรับยาง UF + ขี้ผึ้ง ตัวอย่างเตรียมไว้บนเว็บไซต์ต่อไปนี้ปฏิกิริยาเอนไซม์ ในช่องโรตารี่ (เปียก) และหลัง จากการแห้งของเส้นใย (แห้ง)2.5 การกำหนดมวลโมเลกุล lignin โดย GPCตัวอย่างของบอร์ด MDF มีค่ากลับเป็นเส้นใยหรือรวมกลุ่มของเส้นใย โดย grating กระดานเบา ๆ Lignin ถูกสกัดจากระงับ 5% ของตัวอย่างยัง 90% dioxane และ 10% น้ำที่ 40 ° C ใน 24 ชม ในเวลาต่อมา lignin ได้แยกต่างหากจากการแก้ไขปัญหานี้ ด้วยการเอา dioxane แล้ว ลด pH 2.5 กับ HCl M 1 จึงปัจจัย lignin ระบบกันสะเทือนถูกแช่แข็งเพื่อ coalescing ของ lignin คาร์โบไฮเดรตที่เหลือ extractives และส่วนประกอบอื่น ๆ ที่ละลายในถูกเอาออกจาก lignin แยก โดยการซักผ้า precipitate สามครั้งน้ำ acidified ให้ pH 2.4 สุดท้าย น้ำถูกเอาจาก lignin แยกตามขั้น สำหรับการกำหนดมวลโมเลกุล ตัวอย่าง lignin แยกถูก derivatized โดย acetylation วิธีใน [9] ตัวอย่าง derivatized จากนั้นละลายใน 1.5 ml THF กรองผ่านตัวกรองไฟเบอร์ μm 0.45 และฉีดเข้าไปใน HPLC มวลโมเลกุลถูกกำหนดเมื่อเทียบกับโฟมมาตรฐาน โดยแยก Styragel 6 ชั่วโมง 4 ชั่วโมง และ HR 3 คอลัมน์ (น้ำ ลฟอร์ด MA) เชื่อมต่อในชุด [10] มีการตั้งค่าอัตราการไหลที่ 1 ml/นาที Absorbance ถูกตรวจสอบที่ 280 nm สำหรับตัวอย่าง lignin และ 254 nm สำหรับมาตรฐานโฟม มวลและเลขเฉลี่ยมวลโมเลกุล (Mw และ Mn) คำนวณได้ตาม [11]3. ผลลัพธ์ และสนทนาในแต่ละทรีตเมนต์แต่ละผลลัพธ์สำหรับหมอ MOR และ IB มีสัมประสิทธิ์ของความแปรปรวนน้อยกว่า 6% ภายในตัวอย่างกระดานและน้อยกว่า 9% ระหว่างตัวอย่างกระดาน สำหรับ TS และ WA ตัวเลขได้ 16% และ 11 ตามลำดับในระหว่างการทดลองนำร่องขนาดรักษาแต่ละหว้า
การแปล กรุณารอสักครู่..
บทคัดย่อ
Oxidoreductases สามารถนำมาใช้สำหรับพันธะของ fiberboards อนุภาคบอร์ดบอร์ดกระดาษคราฟท์และแผงซับ ในงานนี้เรารายงานเกี่ยวกับการผลิตนักบินขนาดของแลคเคสผูกมัด fiberboards ที่ทำจากเส้นใยของบีช (Fagus sylvatica) Dioxane ลิกนินที่สกัดจากเส้นใยและกระดานจะแยกและมวลโมเลกุลประมาณโดยโคเจลซึมผ่าน คุณสมบัติความแข็งแรงของเอนไซม์กระดานผูกมัดจะเปรียบกับบอร์ดผูกมัดโดยกาวยูเรียฟอร์มาลดีไฮด์ในขณะที่คุณสมบัติของมิติความมั่นคงของเอนไซม์กระดานผูกมัดไม่ได้ในระดับเดียวกัน รักษาหุ่นขี้ผึ้งของเส้นใยเพื่อที่จะปรับปรุงเสถียรภาพมิติของบอร์ด, เข้ากันไม่ได้กับการรักษาเอนไซม์ ข้ามการเชื่อมโยงของลิกนินสามารถสังเกตได้ในเส้นใยได้รับการรักษาเอนไซม์และกระดาน ร้อนเร่งด่วนของเอนไซม์ได้รับการรักษาผลเส้นใยในการเชื่อมโยงที่สำคัญของลิกนินในกระดาน ผลกระทบพันธะเอนไซม์อาจจะเกิดจากพันธะโควาเลนระหว่างเส้นใยหรือผลกระทบกาวของลิกนิน polymerized ที่เกี่ยวข้องอย่างอิสระ แลคเคสเร่งพันธะต้องใช้อุณหภูมิสูงขึ้นและเร่งด่วนอีกต่อไปกดครั้งและแนวความคิดอาจจะไม่เป็นไปได้ทางเศรษฐกิจอย่างที่มันเป็น แต่ก็แสดงให้เห็นถึงคำมั่นสัญญาและความเป็นไปในการใช้เอนไซม์ออกซิเดชันสำหรับพันธะอุตสาหกรรมและการเปลี่ยนแปลงของลิกนิน. คำสำคัญแลคเคส; Fiberboards; ลิกนิน; ออกซิเดชัน; การผลิตนักบินระดับ1 บทนำติดเส้นใยไม้และอนุภาคโดยกาวสามารถทำได้โดยการสร้างเมทริกซ์ยางซึ่งในอนุภาคหรือเส้นใยจะถูกผูกมัดด้วยกันเช่นโดยพัวพันกลหรือโควาเลนข้ามการเชื่อมโยง พันธะที่เกิดไม่เพียง แต่โดยกาวเพิ่ม แต่ยังตามคุณสมบัติอัตโนมัติกาวของส่วนประกอบไม้ Oxidoreductases เช่นแลคเคสและ peroxidase อาจจะใช้สำหรับพอลิเมอหรือข้ามการเชื่อมโยงของส่วนประกอบไม้เพื่อที่จะผูกพันองค์ประกอบเหล่านี้. แนวคิดของการใช้เอนไซม์ลิกนินออกซิไดซ์สำหรับการใช้งานพันธะจะขึ้นอยู่กับปฏิกิริยาของอนุมูล phenoxy ในผนังเซลล์พืช ในร่างกาย, oxidoreductases กระตุ้นพอลิเมอลิกนินผ่านการเชื่อมโยงของอนุมูล phenoxy และทำให้มันอาจจะเป็นไปได้ที่จะใช้ประเภทที่คล้ายกันของการเกิดปฏิกิริยาสำหรับพันธะของวัสดุลิกโนเซลลูโลสในหลอดทดลอง. ทำงานก่อนหน้านี้รายงานการใช้ oxidoreductases พันธะของ fiberboards อนุภาค กระดานบอร์ดกระดาษคราฟท์และแผงซับ [1], [2], [3] [4] [5] [6] และ [7] เพื่อให้ห่างไกลการทำงานที่มีการรายงานที่ได้รับการทำในห้องปฏิบัติการขนาดและผลการชี้ให้เห็นความเป็นไปได้ของเทคโนโลยีใหม่สำหรับพันธะของวัสดุลิกโนเซลลูโลส. ในงานนี้เรารายงานเกี่ยวกับการผลิตนักบินขนาดของแลคเคสผูกมัด fiberboards ที่ทำจากเส้นใยของบีช (Fagus sylvatica) คุณสมบัติ physicomechanical ของบอร์ดจะนำเสนอและพูดคุยกัน วิธีการใหม่สำหรับการแยกลิกนินผิวของเส้นใยจากคณะกรรมการจะนำเสนอและมวลโมเลกุลของลิกนินในผ้าและเส้นใยมีเอกลักษณ์เฉพาะด้วยการซึมผ่านของโคเจล (GPC). 2 วัสดุและวิธีการ2.1 วัสดุMyceliophtera แลคเคส thermophila ที่ได้รับจาก Novozymes A / S, Bagsvaerd, เดนมาร์ก เอนไซม์ที่ถูกวัดในหน่วย (U) มี 1 U กำหนดเป็นปริมาณของเอนไซม์ที่ oxidizes 1 ไมโครโมล syringaldazine ต่อนาทีในฟอสเฟตบัฟเฟอร์โพแทสเซียมค่า pH 7.0 ที่ 30 ° C. ยูเรียฟอร์มาลดีไฮด์ (UF) -resin ที่ได้รับจาก Casco- โนเบล, สตอกโฮล์ม, สวีเดน Mobilcer 072 ขี้ผึ้งเหลวสำหรับการปรับปรุงความทนทานต่อน้ำ fiberboards ที่ได้รับจากมือลอนดอนสหราชอาณาจักร ชิปบีชไม้สำหรับการเตรียมการ fiberboards ถูกจัดทำโดย Junckers Industrier, Koege, เดนมาร์ก. 1,4-Dioxane จาก Fisher Scientific เลสเตอร์เชียร์สหราชอาณาจักรในการสกัดลิกนินถูกกลั่นกว่าโซเดียม borhydride ก่อนที่จะใช้ tetrahydrofuran (THF) เป็นตัวชะสำหรับ GPC ถูกจัดทำโดยเมอร์ค, Darmstadt, Germany มาตรฐานสไตรีนที่มีมวลโมเลกุลน้อย 2500, 5000, 17500, 30000 และดาถูกจัดทำโดย Supelco, Bellafonte, PA และมาตรฐานที่มีมวลโมเลกุลเล็กน้อยจาก 3000 และ 10000 ดาถูกจัดทำโดย Crompak โบสถ์รี, สหราชอาณาจักร. 2.2 เตรียม fiberboards fiberboards ได้ทำที่ Sunds Defibrator โรงงานต้นแบบ, Sundsvall, สวีเดน สถานที่นี้มีความสามารถอย่างเต็มที่จำลองการผลิตแผ่นใยไม้อัดความหนาแน่นปานกลางจากการกลั่นของชิปเสื่อการขึ้นรูปของเส้นใย กดที่ทำในชนิดกลางวันอุ่นไฟฟ้ากดโดยใช้วงจรการกดแบบไดนามิก. Fiberboards ที่เตรียมจากห้าการรักษาที่แตกต่างกันได้รับการรักษาควบคุมUF-เรซิน (8% w / W) + ขี้ผึ้ง (1% w / W) ได้รับการรักษาแลคเคส 6 U / กรัมใยแลคเคสได้รับการรักษา 24 U / กรัมใยแลคเคส + ขี้ผึ้งรับการรักษา 6 U / กรัมใย + ขี้ผึ้ง (1% w / W). โปรดทราบว่าไม่มีการรักษาควบคุมการใช้ปิดการใช้งานแลคเคสจะรวมเป็นมันแสดงให้เห็นใน [4] ว่ามี ไม่มีผลกระทบกาวของแลคเคสที่ถูกยกเลิก สำหรับการรักษาแต่ละอย่างน้อยหกบอร์ด (มม) ถูกกด ความหนาและความหนาแน่นของบอร์ดได้ 8 มิลลิเมตรและ 850 kg / m3 คือว่าคณะกรรมการแต่ละคนมีอยู่ประมาณ 1,700 กรัมของเส้นใย. ชิปถูกอุ่น 4 นาทีและการกลั่นในโรงกลั่นคู่ดิสก์ที่ 8.5 บาร์ ความชื้นเป้าหมายก่อนที่จะเพิ่มเอนไซม์ที่ถูกกำหนดให้ 55% ของน้ำที่เพิ่มขึ้นในระเบิดสายเพื่อไปให้ถึงระดับนี้ UF-เรซินและขี้ผึ้งถูกเพิ่มเข้ามาที่ท้ายบรรทัดระเบิด สารละลาย (pH 7) ของเอนไซม์ที่ถูกนำไปใช้กับเส้นใยในโรงกลั่นบรรยากาศอุ่นถึง 60 ° C กลั่นบรรยากาศทำหน้าที่เป็นเพียงผสมเอนไซม์และเส้นใยและไม่ก่อให้เกิดการแยกกลเพิ่มเติมของเส้นใย เพื่อที่จะให้มีเวลาเพียงพอสำหรับการเกิดปฏิกิริยาเส้นใยผสมกับเอนไซม์ถูกโอนไปยังถังหมุน 8 m3 เวลา 30 นาทีที่ 50 ° C เส้นใยจากการรักษาทั้งหมดถูกตากแห้งแฟลชความชื้น (MC) ของ 14-18% จากเส้นใยแห้งเสื่อเครื่องวางกำลังก่อตัวขึ้นและก่อนกดกดเย็น โปรดทราบว่าชั้นบรรยากาศของเสื่อลดความชื้น 11-13% ร้อนกดได้ทำ 150 S ที่ 180 องศาเซลเซียสเป็นเวลา UF-เรซิน + รักษาขี้ผึ้งและ 203 S ที่ 200 ° C สำหรับการควบคุมและการรักษาเอนไซม์ กระบวนการทั้งหมดจะถูกระบุไว้ในรูป 1 และพารามิเตอร์กระบวนการมีการระบุไว้ในตารางที่ 1. ภาพขนาดเต็ม (7 K) รูป 1. พล็อตแผนผังของกระบวนการนักบินใหญ่สำหรับการผลิตของแลคเคสผูกมัด fiberboards. รูปที่ตัวเลือกตารางที่ 1. พารามิเตอร์การประมวลผลสำหรับการผลิตนักบินขนาดของ fiberboards พารามิเตอร์ UF-เรซิน (8% w / W) + ขี้ผึ้ง (1% w / W) แลคเคสได้รับการรักษา 6 U / กรัมใยแลคเคสได้รับการรักษา 24 U / กรัมใยแลคเคส + ขี้ผึ้งรับการรักษา 6 U / กรัมใย + ขี้ผึ้ง (1% w / W) การควบคุมความดันอุ่น (บาร์) 8.5 8.5 8.5 8.5 8.5 พลังงานเฉพาะไม่รวมโหลดไม่ได้ใช้งาน (kWh / ตัน) 55 55 55 55 55 กวาดล้างแผ่น True (มม) 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0 อัตราการผลิต (กก. / ชั่วโมง) 60 60 60 60 60 Preheating เวลา (นาที) 4 4 4 4 4 อุณหภูมิอุ่น (° C) 170 170 170 170 170 Defibrator ดันบ้าน (บาร์) 8.4 8.4 8.4 8.4 8.4 ความดันที่แตกต่างกัน (บาร์) -0.1 -0.1 -0.1 -0.1 -0.1 ความเร็วมอเตอร์หลัก (รอบต่อนาที) 1500 1500 1500 1500 1500 อุณหภูมิแห้ง (° C) 94 86 78 106 108 แห้งอุณหภูมิขาออก (° C) 45 38 39 50 53 กดอุณหภูมิ (° C) 180 200 200 200 200 กดเวลา (s) 150 203 203 203 203 ตัวเลือกตารางที่2.3 คุณสมบัติคณะกรรมการสำหรับการรักษาแต่ละบอร์ดได้ผ่านการโมดูลัสของความยืดหยุ่น (MOE) เหนียว (MOR), ความแข็งแรงของพันธะภายใน (IB), บวมหนา (TS) และการดูดซึมน้ำ (WA) ดังต่อไปนี้ 24 ชั่วโมงแช่น้ำเย็น . การทดสอบทั้งหมดทำตามมาตรฐาน ASTM D1037-78 ยกเว้นว่ากลุ่มตัวอย่างคณะกรรมการที่ได้รับการ equilibrated ที่ 55% RH และ 20 ° C ก่อนที่จะมีการทดสอบ. 2.4 การวิเคราะห์ด้วยคลื่นอิเล็กตรอนหมุนปริมาณของอนุมูลโดยเสียงสะท้อนอิเล็กตรอนสปิน (ESR) spectrometry ทำโดยการเตรียมความพร้อมตัวอย่างใน Wilmad, Buena, นิวเจอร์ซีย์ 710-SQ หลอดควอทซ์ แต่ละหลอดมีอยู่ประมาณ 400 มิลลิกรัมของเส้นใยที่สอดคล้องกับความสูงของกลุ่มตัวอย่าง 25 มิลลิเมตร ตัวอย่างไฟเบอร์ถูกแช่แข็งในไนโตรเจนเหลวที่จะหยุดปฏิกิริยาต่อไปของแลคเคสที่เหลือ Bruker, Karlsruhe เยอรมนี ECS 106 X-band สเปกโตรมิเตอร์ ESR พร้อมกับ X-band ช่อง ER 403TM ถูกนำมาใช้สำหรับการตรวจวัด อนุมูลบนเส้นใยแช่แข็งได้รับการวัดที่ -73 องศาเซลเซียสโดยการรวมสองของสัญญาณ ESR อนุพันธ์เป็นครั้งแรกและเมื่อเทียบกับตัวอย่างสนามอ่อนแอ (Bruker) ที่มีจำนวนเงินที่เป็นที่รู้จักกันของการหมุน unpaired [8] ปริมาณของอนุมูลได้ทำสำหรับการรักษาทั้งหมดยกเว้นสำหรับเส้นใยรับการรักษาด้วย UF-เรซิน + ขี้ผึ้ง ตัวอย่างที่ถูกจัดทำขึ้นในเว็บไซต์ต่อไปนี้ปฏิกิริยาเอนไซม์ในถังหมุน (เปียก) และหลังจากการอบแห้งของเส้นใย (แห้ง). 2.5 ความมุ่งมั่นของมวลโมเลกุลลิกนินโดย GPC ตัวอย่างแผง MDF ถูกชำรุดทรุดโทรมเป็นเส้นใยหรือการรวมกลุ่มของเส้นใยโดยละม่อมตะแกรงบอร์ด ลิกนินเป็นสารสกัดจากระงับ 5% ของกลุ่มตัวอย่างในการขูด dioxane 90% และน้ำ 10% ที่ 40 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง ต่อมาลิกนินที่แยกได้จากการแก้ปัญหานี้โดยการเอา dioxane แล้ว pH ลดลงถึง 2.5 1 M HCl จึงเกิดความวุ่นวายลิกนิน ระงับการถูกแช่แข็งเพื่ออำนวยความสะดวก coalescing ของลิกนิน คาร์โบไฮเดรตที่เหลือ extractives และองค์ประกอบที่ละลายน้ำอื่น ๆ ที่ถูกลบออกจากลิกนินที่แยกโดยการล้างตะกอนสามครั้งด้วยน้ำกรดจะมีค่า pH 2.4 ในที่สุดน้ำจะถูกลบออกจากลิกนินโดยแยกแช่แข็งแห้ง สำหรับความมุ่งมั่นของมวลโมเลกุลตัวอย่างแยกลิกนินถูก derivatized acetylation โดยขั้นตอนต่อไปใน [9] ตัวอย่าง derivatized ก็เลือนหายไปแล้วใน 1.5 มล THF กรองผ่าน 0.45 ไมครอนกรอง PTFE และฉีดเข้าไปใน HPLC มวลโมเลกุลถูกกำหนดเทียบกับมาตรฐานของสไตรีนโดยแยกบน HR Styragel 6, HR 4 และทรัพยากรบุคคล 3 คอลัมน์ (น้ำ, ฟอร์ด, MA) ที่เชื่อมต่อในซีรีส์ [10] อัตราการไหลอยู่ที่ 1 มิลลิลิตร / นาที คือการตรวจสอบการดูดกลืนแสงที่ 280 นาโนเมตรสำหรับตัวอย่างและลิกนินที่ 254 นาโนเมตรสำหรับมาตรฐานสไตรีน มวลและเลขมวลโมเลกุลเฉลี่ย (Mw และ Mn) จะถูกคำนวณตาม [11]. 3 ผลและการอภิปรายในแต่ละบุคคลการรักษาผลสำหรับกระทรวงศึกษาธิการ, MOR และ IB มีค่าสัมประสิทธิ์ของความแปรปรวนน้อยกว่า 6% ภายในตัวอย่างคณะกรรมการและน้อยกว่า 9% ระหว่างกลุ่มตัวอย่างที่คณะกรรมการ สำหรับ TS และ WA ตัวเลขอยู่ที่ 11 และ 16% ตามลำดับ. ในระหว่างการทดลองนำร่องระดับการรักษาแต่ละวา
Oxidoreductases สามารถนำมาใช้สำหรับพันธะของ fiberboards อนุภาคบอร์ดบอร์ดกระดาษคราฟท์และแผงซับ ในงานนี้เรารายงานเกี่ยวกับการผลิตนักบินขนาดของแลคเคสผูกมัด fiberboards ที่ทำจากเส้นใยของบีช (Fagus sylvatica) Dioxane ลิกนินที่สกัดจากเส้นใยและกระดานจะแยกและมวลโมเลกุลประมาณโดยโคเจลซึมผ่าน คุณสมบัติความแข็งแรงของเอนไซม์กระดานผูกมัดจะเปรียบกับบอร์ดผูกมัดโดยกาวยูเรียฟอร์มาลดีไฮด์ในขณะที่คุณสมบัติของมิติความมั่นคงของเอนไซม์กระดานผูกมัดไม่ได้ในระดับเดียวกัน รักษาหุ่นขี้ผึ้งของเส้นใยเพื่อที่จะปรับปรุงเสถียรภาพมิติของบอร์ด, เข้ากันไม่ได้กับการรักษาเอนไซม์ ข้ามการเชื่อมโยงของลิกนินสามารถสังเกตได้ในเส้นใยได้รับการรักษาเอนไซม์และกระดาน ร้อนเร่งด่วนของเอนไซม์ได้รับการรักษาผลเส้นใยในการเชื่อมโยงที่สำคัญของลิกนินในกระดาน ผลกระทบพันธะเอนไซม์อาจจะเกิดจากพันธะโควาเลนระหว่างเส้นใยหรือผลกระทบกาวของลิกนิน polymerized ที่เกี่ยวข้องอย่างอิสระ แลคเคสเร่งพันธะต้องใช้อุณหภูมิสูงขึ้นและเร่งด่วนอีกต่อไปกดครั้งและแนวความคิดอาจจะไม่เป็นไปได้ทางเศรษฐกิจอย่างที่มันเป็น แต่ก็แสดงให้เห็นถึงคำมั่นสัญญาและความเป็นไปในการใช้เอนไซม์ออกซิเดชันสำหรับพันธะอุตสาหกรรมและการเปลี่ยนแปลงของลิกนิน. คำสำคัญแลคเคส; Fiberboards; ลิกนิน; ออกซิเดชัน; การผลิตนักบินระดับ1 บทนำติดเส้นใยไม้และอนุภาคโดยกาวสามารถทำได้โดยการสร้างเมทริกซ์ยางซึ่งในอนุภาคหรือเส้นใยจะถูกผูกมัดด้วยกันเช่นโดยพัวพันกลหรือโควาเลนข้ามการเชื่อมโยง พันธะที่เกิดไม่เพียง แต่โดยกาวเพิ่ม แต่ยังตามคุณสมบัติอัตโนมัติกาวของส่วนประกอบไม้ Oxidoreductases เช่นแลคเคสและ peroxidase อาจจะใช้สำหรับพอลิเมอหรือข้ามการเชื่อมโยงของส่วนประกอบไม้เพื่อที่จะผูกพันองค์ประกอบเหล่านี้. แนวคิดของการใช้เอนไซม์ลิกนินออกซิไดซ์สำหรับการใช้งานพันธะจะขึ้นอยู่กับปฏิกิริยาของอนุมูล phenoxy ในผนังเซลล์พืช ในร่างกาย, oxidoreductases กระตุ้นพอลิเมอลิกนินผ่านการเชื่อมโยงของอนุมูล phenoxy และทำให้มันอาจจะเป็นไปได้ที่จะใช้ประเภทที่คล้ายกันของการเกิดปฏิกิริยาสำหรับพันธะของวัสดุลิกโนเซลลูโลสในหลอดทดลอง. ทำงานก่อนหน้านี้รายงานการใช้ oxidoreductases พันธะของ fiberboards อนุภาค กระดานบอร์ดกระดาษคราฟท์และแผงซับ [1], [2], [3] [4] [5] [6] และ [7] เพื่อให้ห่างไกลการทำงานที่มีการรายงานที่ได้รับการทำในห้องปฏิบัติการขนาดและผลการชี้ให้เห็นความเป็นไปได้ของเทคโนโลยีใหม่สำหรับพันธะของวัสดุลิกโนเซลลูโลส. ในงานนี้เรารายงานเกี่ยวกับการผลิตนักบินขนาดของแลคเคสผูกมัด fiberboards ที่ทำจากเส้นใยของบีช (Fagus sylvatica) คุณสมบัติ physicomechanical ของบอร์ดจะนำเสนอและพูดคุยกัน วิธีการใหม่สำหรับการแยกลิกนินผิวของเส้นใยจากคณะกรรมการจะนำเสนอและมวลโมเลกุลของลิกนินในผ้าและเส้นใยมีเอกลักษณ์เฉพาะด้วยการซึมผ่านของโคเจล (GPC). 2 วัสดุและวิธีการ2.1 วัสดุMyceliophtera แลคเคส thermophila ที่ได้รับจาก Novozymes A / S, Bagsvaerd, เดนมาร์ก เอนไซม์ที่ถูกวัดในหน่วย (U) มี 1 U กำหนดเป็นปริมาณของเอนไซม์ที่ oxidizes 1 ไมโครโมล syringaldazine ต่อนาทีในฟอสเฟตบัฟเฟอร์โพแทสเซียมค่า pH 7.0 ที่ 30 ° C. ยูเรียฟอร์มาลดีไฮด์ (UF) -resin ที่ได้รับจาก Casco- โนเบล, สตอกโฮล์ม, สวีเดน Mobilcer 072 ขี้ผึ้งเหลวสำหรับการปรับปรุงความทนทานต่อน้ำ fiberboards ที่ได้รับจากมือลอนดอนสหราชอาณาจักร ชิปบีชไม้สำหรับการเตรียมการ fiberboards ถูกจัดทำโดย Junckers Industrier, Koege, เดนมาร์ก. 1,4-Dioxane จาก Fisher Scientific เลสเตอร์เชียร์สหราชอาณาจักรในการสกัดลิกนินถูกกลั่นกว่าโซเดียม borhydride ก่อนที่จะใช้ tetrahydrofuran (THF) เป็นตัวชะสำหรับ GPC ถูกจัดทำโดยเมอร์ค, Darmstadt, Germany มาตรฐานสไตรีนที่มีมวลโมเลกุลน้อย 2500, 5000, 17500, 30000 และดาถูกจัดทำโดย Supelco, Bellafonte, PA และมาตรฐานที่มีมวลโมเลกุลเล็กน้อยจาก 3000 และ 10000 ดาถูกจัดทำโดย Crompak โบสถ์รี, สหราชอาณาจักร. 2.2 เตรียม fiberboards fiberboards ได้ทำที่ Sunds Defibrator โรงงานต้นแบบ, Sundsvall, สวีเดน สถานที่นี้มีความสามารถอย่างเต็มที่จำลองการผลิตแผ่นใยไม้อัดความหนาแน่นปานกลางจากการกลั่นของชิปเสื่อการขึ้นรูปของเส้นใย กดที่ทำในชนิดกลางวันอุ่นไฟฟ้ากดโดยใช้วงจรการกดแบบไดนามิก. Fiberboards ที่เตรียมจากห้าการรักษาที่แตกต่างกันได้รับการรักษาควบคุมUF-เรซิน (8% w / W) + ขี้ผึ้ง (1% w / W) ได้รับการรักษาแลคเคส 6 U / กรัมใยแลคเคสได้รับการรักษา 24 U / กรัมใยแลคเคส + ขี้ผึ้งรับการรักษา 6 U / กรัมใย + ขี้ผึ้ง (1% w / W). โปรดทราบว่าไม่มีการรักษาควบคุมการใช้ปิดการใช้งานแลคเคสจะรวมเป็นมันแสดงให้เห็นใน [4] ว่ามี ไม่มีผลกระทบกาวของแลคเคสที่ถูกยกเลิก สำหรับการรักษาแต่ละอย่างน้อยหกบอร์ด (มม) ถูกกด ความหนาและความหนาแน่นของบอร์ดได้ 8 มิลลิเมตรและ 850 kg / m3 คือว่าคณะกรรมการแต่ละคนมีอยู่ประมาณ 1,700 กรัมของเส้นใย. ชิปถูกอุ่น 4 นาทีและการกลั่นในโรงกลั่นคู่ดิสก์ที่ 8.5 บาร์ ความชื้นเป้าหมายก่อนที่จะเพิ่มเอนไซม์ที่ถูกกำหนดให้ 55% ของน้ำที่เพิ่มขึ้นในระเบิดสายเพื่อไปให้ถึงระดับนี้ UF-เรซินและขี้ผึ้งถูกเพิ่มเข้ามาที่ท้ายบรรทัดระเบิด สารละลาย (pH 7) ของเอนไซม์ที่ถูกนำไปใช้กับเส้นใยในโรงกลั่นบรรยากาศอุ่นถึง 60 ° C กลั่นบรรยากาศทำหน้าที่เป็นเพียงผสมเอนไซม์และเส้นใยและไม่ก่อให้เกิดการแยกกลเพิ่มเติมของเส้นใย เพื่อที่จะให้มีเวลาเพียงพอสำหรับการเกิดปฏิกิริยาเส้นใยผสมกับเอนไซม์ถูกโอนไปยังถังหมุน 8 m3 เวลา 30 นาทีที่ 50 ° C เส้นใยจากการรักษาทั้งหมดถูกตากแห้งแฟลชความชื้น (MC) ของ 14-18% จากเส้นใยแห้งเสื่อเครื่องวางกำลังก่อตัวขึ้นและก่อนกดกดเย็น โปรดทราบว่าชั้นบรรยากาศของเสื่อลดความชื้น 11-13% ร้อนกดได้ทำ 150 S ที่ 180 องศาเซลเซียสเป็นเวลา UF-เรซิน + รักษาขี้ผึ้งและ 203 S ที่ 200 ° C สำหรับการควบคุมและการรักษาเอนไซม์ กระบวนการทั้งหมดจะถูกระบุไว้ในรูป 1 และพารามิเตอร์กระบวนการมีการระบุไว้ในตารางที่ 1. ภาพขนาดเต็ม (7 K) รูป 1. พล็อตแผนผังของกระบวนการนักบินใหญ่สำหรับการผลิตของแลคเคสผูกมัด fiberboards. รูปที่ตัวเลือกตารางที่ 1. พารามิเตอร์การประมวลผลสำหรับการผลิตนักบินขนาดของ fiberboards พารามิเตอร์ UF-เรซิน (8% w / W) + ขี้ผึ้ง (1% w / W) แลคเคสได้รับการรักษา 6 U / กรัมใยแลคเคสได้รับการรักษา 24 U / กรัมใยแลคเคส + ขี้ผึ้งรับการรักษา 6 U / กรัมใย + ขี้ผึ้ง (1% w / W) การควบคุมความดันอุ่น (บาร์) 8.5 8.5 8.5 8.5 8.5 พลังงานเฉพาะไม่รวมโหลดไม่ได้ใช้งาน (kWh / ตัน) 55 55 55 55 55 กวาดล้างแผ่น True (มม) 1.0 1.0 1.0 1.0 1.0 อัตราการผลิต (กก. / ชั่วโมง) 60 60 60 60 60 Preheating เวลา (นาที) 4 4 4 4 4 อุณหภูมิอุ่น (° C) 170 170 170 170 170 Defibrator ดันบ้าน (บาร์) 8.4 8.4 8.4 8.4 8.4 ความดันที่แตกต่างกัน (บาร์) -0.1 -0.1 -0.1 -0.1 -0.1 ความเร็วมอเตอร์หลัก (รอบต่อนาที) 1500 1500 1500 1500 1500 อุณหภูมิแห้ง (° C) 94 86 78 106 108 แห้งอุณหภูมิขาออก (° C) 45 38 39 50 53 กดอุณหภูมิ (° C) 180 200 200 200 200 กดเวลา (s) 150 203 203 203 203 ตัวเลือกตารางที่2.3 คุณสมบัติคณะกรรมการสำหรับการรักษาแต่ละบอร์ดได้ผ่านการโมดูลัสของความยืดหยุ่น (MOE) เหนียว (MOR), ความแข็งแรงของพันธะภายใน (IB), บวมหนา (TS) และการดูดซึมน้ำ (WA) ดังต่อไปนี้ 24 ชั่วโมงแช่น้ำเย็น . การทดสอบทั้งหมดทำตามมาตรฐาน ASTM D1037-78 ยกเว้นว่ากลุ่มตัวอย่างคณะกรรมการที่ได้รับการ equilibrated ที่ 55% RH และ 20 ° C ก่อนที่จะมีการทดสอบ. 2.4 การวิเคราะห์ด้วยคลื่นอิเล็กตรอนหมุนปริมาณของอนุมูลโดยเสียงสะท้อนอิเล็กตรอนสปิน (ESR) spectrometry ทำโดยการเตรียมความพร้อมตัวอย่างใน Wilmad, Buena, นิวเจอร์ซีย์ 710-SQ หลอดควอทซ์ แต่ละหลอดมีอยู่ประมาณ 400 มิลลิกรัมของเส้นใยที่สอดคล้องกับความสูงของกลุ่มตัวอย่าง 25 มิลลิเมตร ตัวอย่างไฟเบอร์ถูกแช่แข็งในไนโตรเจนเหลวที่จะหยุดปฏิกิริยาต่อไปของแลคเคสที่เหลือ Bruker, Karlsruhe เยอรมนี ECS 106 X-band สเปกโตรมิเตอร์ ESR พร้อมกับ X-band ช่อง ER 403TM ถูกนำมาใช้สำหรับการตรวจวัด อนุมูลบนเส้นใยแช่แข็งได้รับการวัดที่ -73 องศาเซลเซียสโดยการรวมสองของสัญญาณ ESR อนุพันธ์เป็นครั้งแรกและเมื่อเทียบกับตัวอย่างสนามอ่อนแอ (Bruker) ที่มีจำนวนเงินที่เป็นที่รู้จักกันของการหมุน unpaired [8] ปริมาณของอนุมูลได้ทำสำหรับการรักษาทั้งหมดยกเว้นสำหรับเส้นใยรับการรักษาด้วย UF-เรซิน + ขี้ผึ้ง ตัวอย่างที่ถูกจัดทำขึ้นในเว็บไซต์ต่อไปนี้ปฏิกิริยาเอนไซม์ในถังหมุน (เปียก) และหลังจากการอบแห้งของเส้นใย (แห้ง). 2.5 ความมุ่งมั่นของมวลโมเลกุลลิกนินโดย GPC ตัวอย่างแผง MDF ถูกชำรุดทรุดโทรมเป็นเส้นใยหรือการรวมกลุ่มของเส้นใยโดยละม่อมตะแกรงบอร์ด ลิกนินเป็นสารสกัดจากระงับ 5% ของกลุ่มตัวอย่างในการขูด dioxane 90% และน้ำ 10% ที่ 40 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง ต่อมาลิกนินที่แยกได้จากการแก้ปัญหานี้โดยการเอา dioxane แล้ว pH ลดลงถึง 2.5 1 M HCl จึงเกิดความวุ่นวายลิกนิน ระงับการถูกแช่แข็งเพื่ออำนวยความสะดวก coalescing ของลิกนิน คาร์โบไฮเดรตที่เหลือ extractives และองค์ประกอบที่ละลายน้ำอื่น ๆ ที่ถูกลบออกจากลิกนินที่แยกโดยการล้างตะกอนสามครั้งด้วยน้ำกรดจะมีค่า pH 2.4 ในที่สุดน้ำจะถูกลบออกจากลิกนินโดยแยกแช่แข็งแห้ง สำหรับความมุ่งมั่นของมวลโมเลกุลตัวอย่างแยกลิกนินถูก derivatized acetylation โดยขั้นตอนต่อไปใน [9] ตัวอย่าง derivatized ก็เลือนหายไปแล้วใน 1.5 มล THF กรองผ่าน 0.45 ไมครอนกรอง PTFE และฉีดเข้าไปใน HPLC มวลโมเลกุลถูกกำหนดเทียบกับมาตรฐานของสไตรีนโดยแยกบน HR Styragel 6, HR 4 และทรัพยากรบุคคล 3 คอลัมน์ (น้ำ, ฟอร์ด, MA) ที่เชื่อมต่อในซีรีส์ [10] อัตราการไหลอยู่ที่ 1 มิลลิลิตร / นาที คือการตรวจสอบการดูดกลืนแสงที่ 280 นาโนเมตรสำหรับตัวอย่างและลิกนินที่ 254 นาโนเมตรสำหรับมาตรฐานสไตรีน มวลและเลขมวลโมเลกุลเฉลี่ย (Mw และ Mn) จะถูกคำนวณตาม [11]. 3 ผลและการอภิปรายในแต่ละบุคคลการรักษาผลสำหรับกระทรวงศึกษาธิการ, MOR และ IB มีค่าสัมประสิทธิ์ของความแปรปรวนน้อยกว่า 6% ภายในตัวอย่างคณะกรรมการและน้อยกว่า 9% ระหว่างกลุ่มตัวอย่างที่คณะกรรมการ สำหรับ TS และ WA ตัวเลขอยู่ที่ 11 และ 16% ตามลำดับ. ในระหว่างการทดลองนำร่องระดับการรักษาแต่ละวา
การแปล กรุณารอสักครู่..
oxidoreductases นามธรรม
สามารถนำมาใช้สำหรับการเชื่อมของ fiberboards อนุภาคบอร์ด แผ่นกระดาษและกระดาน Liner คราฟท์ ในงานนี้เรารายงานนำร่องการผลิต - bonded fiberboards ที่ทําจากใยของต้นบีช ( ฟากัส sylvatica ) ปริมาณลิกนินและไดออกเซนจากไฟเบอร์บอร์ดแยกและมวลโมเลกุลประมาณโดยวิธีเข้มข้นเจลความแข็งแรง คุณสมบัติของเอนไซม์ถูกผูกมัดแผงเทียบได้กับบอร์ดถูกผูกมัดโดยยูเรียฟอร์มาลดีไฮด์ และกาว ส่วนมิติคุณสมบัติความเสถียรของเอนไซม์ถูกผูกมัดแผงไม่ได้อยู่ในระดับเดียวกัน การรักษาขี้ผึ้งของเส้นใยเพื่อปรับปรุงความมั่นคงมิติของบอร์ดจะไม่เข้ากันได้กับการรักษาเอนไซม์การเชื่อมโยงของลิกนินสามารถสังเกตได้ในเอนไซม์และไฟเบอร์บอร์ด กดร้อนของเอนไซม์ผลในการเชื่อมโยงเส้นใยจำนวนมากของลิกนินในบอร์ด ผลต่อเอนไซม์ อาจเกิดจากพันธะโควาเลนต์ระหว่างเส้นใย หรือกาวโพลิเมอร์ที่หลวม ๆผลของลิกนิน- เร่งเชื่อมต้องสูงกว่าอุณหภูมิกดกดอีกครั้ง และแนวคิดที่ไม่อาจเป็นไปได้ทางเศรษฐกิจ ตามที่มันเป็น แต่มันแสดงให้เห็นสัญญาและความเป็นไปได้ในการใช้เอนไซม์อุตสาหกรรมและการเกิดพันธะของลิกนิน คำหลัก
-
; fiberboards ; ลิกนิน ; ออกซิเจน ; นำร่องการผลิต
1 บทนำ
พันธะของเส้นใยไม้และอนุภาคโดยกาวสามารถทำได้โดยการขึ้นรูปยางไม้เมทริกซ์ซึ่งอนุภาคหรือเส้นใยจะถูกผูกมัดเข้าด้วยกัน เช่น เครื่องจักรกล หรือโมเลกุลโคเวเลนต์พัวพันด้วย . เชื่อมเกิดขึ้นไม่เพียง แต่ยังเพิ่มกาวกาวอัตโนมัติคุณสมบัติของไม้ส่วนประกอบ- มี oxidoreductases เช่นและอาจจะใช้สารหรือโมเลกุลของส่วนประกอบของไม้เพื่อพันธบัตรส่วนประกอบเหล่านี้
แนวคิดของการใช้น้ำเอนไซม์ออกซิไดซ์พันธะโปรแกรมจะขึ้นอยู่กับการ phenoxy อนุมูลอิสระในผนังเซลล์ของพืช . โดย oxidoreductases , เร่งแบบน้ำผ่านการเชื่อมโยงของ phenoxy แพร่หลายและดังนั้นจึงอาจเป็นไปได้ที่จะใช้ประเภทที่คล้ายกันของปฏิกิริยาพันธะของวัสดุ lignocellulosic หลอด
ก่อนหน้านี้งานรายงานการใช้ oxidoreductases พันธะของ fiberboards อนุภาคบอร์ด แผ่นกระดาษและกระดาน Liner คราฟท์ [ 1 ] , [ 2 ] , [ 3 ] , [ 4 ] , [ 5 ] [ 6 ] [ 7 ] ดังนั้นไกล งานรายงานได้รับการทำในห้องปฏิบัติการมาตราส่วนและชี้ให้เห็นความเป็นไปได้ของเทคโนโลยีใหม่สำหรับพันธะของวัสดุ lignocellulosic
ในงานนี้เรารายงานนำร่องการผลิต - bonded fiberboards ที่ทําจากใยของต้นบีช ( ฟากัส sylvatica ) คุณสมบัติ physicomechanical ของบอร์ดนำเสนอและอภิปราย วิธีใหม่ในการแยกลิกนินเส้นใยผิวจากบอร์ดมีเสนอและมวลโมเลกุลของลิกนินในบอร์ดและเส้นใยมีลักษณะ โดยวิธีเจลซึม ( GPC )
2 วัสดุและวิธีการ
2.1 . วัสดุ
myceliophtera thermophila - ได้จากกุ้ง / S , bagsvaerd เดนมาร์ก กิจกรรมของเอนไซม์ถูกวัดในหน่วย ( U )1 U กำหนดปริมาณของเอนไซม์ที่ oxidizes 1 syringaldazine μโมลต่อนาทีในโพแทสเซียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.0 , 30 ° C .
ยูเรียฟอร์มาลดีไฮด์เรซิน ) ( MF ) ที่ได้รับจาก กัส โนเบล , สตอกโฮล์ม , สวีเดน mobilcer 072 ขี้ผึ้งเหลวสำหรับการปรับปรุงน้ำทน fiberboards ได้จากโมบิล , ลอนดอน , สหราชอาณาจักร
สามารถนำมาใช้สำหรับการเชื่อมของ fiberboards อนุภาคบอร์ด แผ่นกระดาษและกระดาน Liner คราฟท์ ในงานนี้เรารายงานนำร่องการผลิต - bonded fiberboards ที่ทําจากใยของต้นบีช ( ฟากัส sylvatica ) ปริมาณลิกนินและไดออกเซนจากไฟเบอร์บอร์ดแยกและมวลโมเลกุลประมาณโดยวิธีเข้มข้นเจลความแข็งแรง คุณสมบัติของเอนไซม์ถูกผูกมัดแผงเทียบได้กับบอร์ดถูกผูกมัดโดยยูเรียฟอร์มาลดีไฮด์ และกาว ส่วนมิติคุณสมบัติความเสถียรของเอนไซม์ถูกผูกมัดแผงไม่ได้อยู่ในระดับเดียวกัน การรักษาขี้ผึ้งของเส้นใยเพื่อปรับปรุงความมั่นคงมิติของบอร์ดจะไม่เข้ากันได้กับการรักษาเอนไซม์การเชื่อมโยงของลิกนินสามารถสังเกตได้ในเอนไซม์และไฟเบอร์บอร์ด กดร้อนของเอนไซม์ผลในการเชื่อมโยงเส้นใยจำนวนมากของลิกนินในบอร์ด ผลต่อเอนไซม์ อาจเกิดจากพันธะโควาเลนต์ระหว่างเส้นใย หรือกาวโพลิเมอร์ที่หลวม ๆผลของลิกนิน- เร่งเชื่อมต้องสูงกว่าอุณหภูมิกดกดอีกครั้ง และแนวคิดที่ไม่อาจเป็นไปได้ทางเศรษฐกิจ ตามที่มันเป็น แต่มันแสดงให้เห็นสัญญาและความเป็นไปได้ในการใช้เอนไซม์อุตสาหกรรมและการเกิดพันธะของลิกนิน คำหลัก
-
; fiberboards ; ลิกนิน ; ออกซิเจน ; นำร่องการผลิต
1 บทนำ
พันธะของเส้นใยไม้และอนุภาคโดยกาวสามารถทำได้โดยการขึ้นรูปยางไม้เมทริกซ์ซึ่งอนุภาคหรือเส้นใยจะถูกผูกมัดเข้าด้วยกัน เช่น เครื่องจักรกล หรือโมเลกุลโคเวเลนต์พัวพันด้วย . เชื่อมเกิดขึ้นไม่เพียง แต่ยังเพิ่มกาวกาวอัตโนมัติคุณสมบัติของไม้ส่วนประกอบ- มี oxidoreductases เช่นและอาจจะใช้สารหรือโมเลกุลของส่วนประกอบของไม้เพื่อพันธบัตรส่วนประกอบเหล่านี้
แนวคิดของการใช้น้ำเอนไซม์ออกซิไดซ์พันธะโปรแกรมจะขึ้นอยู่กับการ phenoxy อนุมูลอิสระในผนังเซลล์ของพืช . โดย oxidoreductases , เร่งแบบน้ำผ่านการเชื่อมโยงของ phenoxy แพร่หลายและดังนั้นจึงอาจเป็นไปได้ที่จะใช้ประเภทที่คล้ายกันของปฏิกิริยาพันธะของวัสดุ lignocellulosic หลอด
ก่อนหน้านี้งานรายงานการใช้ oxidoreductases พันธะของ fiberboards อนุภาคบอร์ด แผ่นกระดาษและกระดาน Liner คราฟท์ [ 1 ] , [ 2 ] , [ 3 ] , [ 4 ] , [ 5 ] [ 6 ] [ 7 ] ดังนั้นไกล งานรายงานได้รับการทำในห้องปฏิบัติการมาตราส่วนและชี้ให้เห็นความเป็นไปได้ของเทคโนโลยีใหม่สำหรับพันธะของวัสดุ lignocellulosic
ในงานนี้เรารายงานนำร่องการผลิต - bonded fiberboards ที่ทําจากใยของต้นบีช ( ฟากัส sylvatica ) คุณสมบัติ physicomechanical ของบอร์ดนำเสนอและอภิปราย วิธีใหม่ในการแยกลิกนินเส้นใยผิวจากบอร์ดมีเสนอและมวลโมเลกุลของลิกนินในบอร์ดและเส้นใยมีลักษณะ โดยวิธีเจลซึม ( GPC )
2 วัสดุและวิธีการ
2.1 . วัสดุ
myceliophtera thermophila - ได้จากกุ้ง / S , bagsvaerd เดนมาร์ก กิจกรรมของเอนไซม์ถูกวัดในหน่วย ( U )1 U กำหนดปริมาณของเอนไซม์ที่ oxidizes 1 syringaldazine μโมลต่อนาทีในโพแทสเซียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.0 , 30 ° C .
ยูเรียฟอร์มาลดีไฮด์เรซิน ) ( MF ) ที่ได้รับจาก กัส โนเบล , สตอกโฮล์ม , สวีเดน mobilcer 072 ขี้ผึ้งเหลวสำหรับการปรับปรุงน้ำทน fiberboards ได้จากโมบิล , ลอนดอน , สหราชอาณาจักร
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- แก่
- Yes... but chat also but you just can re
- how are you
- kinds of classes
- sleeping
- Agriculture
- คู่แข่งในอุตสาหกรรมเดียวกันส่วนใหญ่มีปัจ
- เมื่อไหร่จะขอเป็นแฟน
- เมื่อนำมาทำให้เข้มข้นจนมีปริมาณtss เท่าก
- In conclusion, the use of squid by-produ
- แต่ฉันอยากไป
- flatten
- คุณเคยมาไทยไหม?
- A static synchronous compensator
- As a result, they lack the wealth to sup
- Goals of treatment: achieve and maintain
- ได้โปรดบอกฉัน
- potential divider
- Odds ratios did not change significantly
- Who are you with
- New Colors 2015 0089 1 Polarized 4 HD Le
- ภรรยาของคุณ
- Most or all of this aggregation of plumo
- HPLC analysis was carried out on a Dione
