- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
3.2. Hydrolysis of neutral sugar ch
3.2. Hydrolysis of neutral sugar chains in enzymatically extracted
pectins
Neutral sugars released during pectin and apple pomace hydrolysis
were obtained by HPLC. A complete separation of the NS was
obtained on a CarboPac PA 20 column (Fig. 2). As in the case of
GalA, the conditions of hydrolysis significantly influenced the
amount and profile of neutral sugars in the analysed samples
(Table 2). The highest share of NS in both pectins and apple pomace
was measured after acidic hydrolysis conducted in mild conditions
(2.5 h at 100 C). The values obtained amounted to 30.17% for Pcel,
29.67% for Px and 32.89% for apple pomace. On the contrary, when
the hydrolysis was performed in the conditions optimal for PGalA
depolymerisation, (120 C for 2.5 h), a drastic reduction of NS levels,
by almost 50% was observed. This is particularly interesting, as
the latter conditions are recommended by many researchers and
are commonly used for pectin hydrolysis (Arnous & Meyer, 2008;
Fissore et al., 2009; Methacanon et al., 2014). The level of neutral
sugars obtained after 2.5 h of hydrolysis at 120 C was also significantly
lower than those measured after combined (chemical and
enzymatic) hydrolysis. The results obtained in our study clearly
indicate that even a short treatment of pectin with 2 M TFA at
120 C causes its depolymerisation and also the severe degradation
of the released monosaccharides. What is more, according to literature
data (Lim et al., 2012; Yapo, 2009) and the results of our
study, both glycosidic bonds and sugar moieties differ in their susceptibility
to concentrated acid and high temperature. Thus, the
rate of different component losses may vary during pectin hydrolysis,
the consequence of which are mistakes in subsequent determinations
of sugar profiles. This is of particular importance for
pectins rich in neutral sugars. Rhamnose is a constituent of
rhamnogalacturonan I and rhamnogalacturonan II structures. As
presented in Table 2, rhamnose was very sensitive to high temperature and concentrated acid treatments. The HPLC measurement
of rhamnose after 2.5 h hydrolysis of pectins at 120 C
showed a strong underestimation of this hexose content, by over
65%. The same conditions were proven to be even more destructive
for mannose. Pectins most probably do not contain mannose in
their structure (Caffall & Mohnen, 2009; Voragen et al., 2009).
However, this monosaccharide may be present in many pectin
preparations as a component of mannans and galactomannans,
precipitated together with pectins (Methacanon et al., 2014;
Round, Rigby, MacDougall, & Morris, 2010). Moreover, in the case
of pectin extracted enzymatically, the source of mannose may also
be the applied enzymatic preparation. Most of the extracellular
enzymes are glycoproteins which may contain mannose in their
sugar moiety (Beckham et al., 2010). Mannose percentage measured
in our study after 2 h hydrolysis at 100 C amounted to 0.5
for apple pomace, 2.8 for Pcel and as much as 4.1 for Px. The hydrolysis
conducted at 120 C resulted in severe, 91–100% losses of this
sugar, dependently of the process duration. This is consistent with
very low mannose contents (0.08–0.15%) reported by Arnous and
Meyer (2008) after 2 h hydrolysis of apple peels with 2 M TFA at
120 C. The share of other monosaccharides in pectin preparations
was less, but still statistically dependent on the applied hydrolysis
conditions. Depending on the durability of the process, resulting
arabinose amounts differed twice and that of fucose, galactose, glucose
and xylose – 1.8 times (Table 2). This is in accordance with
Garna et al. (2004) who reported that arabinose was more labile
than other pectin sugars in conditions of concentrated acids. Taking
into consideration the efficiency of 2 M TFA at 120 C vs. combined
hydrolysis, it is evident that the application of multicatalytic
enzymatic preparations enabled more precise determination of NS.
However, the amounts of neutral sugars measured after the latter
treatment were significantly lower than ones obtained after 2.5 h
hydrolysis with 2 M TFA at 100 C (Table 2). These findings are contrary to the conclusion of Garna et al. (2004, 2006), who postulated
that the combined acidic–enzymatic hydrolysis is the best
method of pectin composition determination. The result is strongly
depended on the type of pectin, which was commercial pectin in
the studies of Garna et al., and enzymatically extracted samples
in our study. Moreover, the researchers cited above compared
the combined hydrolysis to 0.2 and 1 M TFA treatments, while
our study showed that the best results were obtained with 2 M
TFA.
Acidic hydrolysis at 100 C (the optimal conditions for NS
releasing) always resulted in underestimation of pectin composition,
which most probably was caused by the incomplete PGalA
hydrolysis. The sum of neutral sugars and galacturonic acid
obtained by HPLC was up to 68.9% in Pcel and Px, and 58.9% in
apple pomace (Table 3). Panouillé et al. (2006) also reported only
69% (49.9% GalA and 19.1% NS) of sugars in pectin enzymatically
extracted from chicory after 2 h hydrolysis at 100 C with 1 M
H2SO4. Similar results were also shown by Zykwinska et al.
(2008) for green labelled pectins hydrolysed with 2 M H2SO4 for
2 h at 100 C (66–69% for chicory pectins and 63.1% for sugar beet
pectin). The results of our study prove that the increase of pectin
hydrolysis temperature up to 120 C resulted in a higher sum of
GalA and NS. After 2 h of such hydrolysis, the measured values
amounted to 75.8%, 77.9% and 60.3% for Pcel, Px and apple pomace,
respectively (Table 3). These results were slightly lower than
expected, which could be the consequence of partial degradation
of NS due to drastic hydrolysis conditions (Table 2). The same
explanation may be given for underestimated sums of NS and
GalA in pectin extracted from butternut with hemicellulase and
cellulase – 56 and 81%, respectively (Fissore et al., 2009), and
apple peels – 55.7% for Golden Delicious (Arnous & Meyer,
2008). As shown in Fig. 3, the application of combined acidic –
enzymatic hydrolysis (72 h with 0.2 M TFA at 80 C, followed by
24 h with preparation Energex L at 50 C) resulted in further
reduction of pectin component losses. The most important issue
is the time of hydrolysis (total 96 h) and proper choice of the
enzyme. For example, in our study, the Viscozyme preparation,
suggested previously by Garna et al. (2004, 2006), was not suitable
neither for enzymatically extracted pectins, nor apple
pomace.
pectins
Neutral sugars released during pectin and apple pomace hydrolysis
were obtained by HPLC. A complete separation of the NS was
obtained on a CarboPac PA 20 column (Fig. 2). As in the case of
GalA, the conditions of hydrolysis significantly influenced the
amount and profile of neutral sugars in the analysed samples
(Table 2). The highest share of NS in both pectins and apple pomace
was measured after acidic hydrolysis conducted in mild conditions
(2.5 h at 100 C). The values obtained amounted to 30.17% for Pcel,
29.67% for Px and 32.89% for apple pomace. On the contrary, when
the hydrolysis was performed in the conditions optimal for PGalA
depolymerisation, (120 C for 2.5 h), a drastic reduction of NS levels,
by almost 50% was observed. This is particularly interesting, as
the latter conditions are recommended by many researchers and
are commonly used for pectin hydrolysis (Arnous & Meyer, 2008;
Fissore et al., 2009; Methacanon et al., 2014). The level of neutral
sugars obtained after 2.5 h of hydrolysis at 120 C was also significantly
lower than those measured after combined (chemical and
enzymatic) hydrolysis. The results obtained in our study clearly
indicate that even a short treatment of pectin with 2 M TFA at
120 C causes its depolymerisation and also the severe degradation
of the released monosaccharides. What is more, according to literature
data (Lim et al., 2012; Yapo, 2009) and the results of our
study, both glycosidic bonds and sugar moieties differ in their susceptibility
to concentrated acid and high temperature. Thus, the
rate of different component losses may vary during pectin hydrolysis,
the consequence of which are mistakes in subsequent determinations
of sugar profiles. This is of particular importance for
pectins rich in neutral sugars. Rhamnose is a constituent of
rhamnogalacturonan I and rhamnogalacturonan II structures. As
presented in Table 2, rhamnose was very sensitive to high temperature and concentrated acid treatments. The HPLC measurement
of rhamnose after 2.5 h hydrolysis of pectins at 120 C
showed a strong underestimation of this hexose content, by over
65%. The same conditions were proven to be even more destructive
for mannose. Pectins most probably do not contain mannose in
their structure (Caffall & Mohnen, 2009; Voragen et al., 2009).
However, this monosaccharide may be present in many pectin
preparations as a component of mannans and galactomannans,
precipitated together with pectins (Methacanon et al., 2014;
Round, Rigby, MacDougall, & Morris, 2010). Moreover, in the case
of pectin extracted enzymatically, the source of mannose may also
be the applied enzymatic preparation. Most of the extracellular
enzymes are glycoproteins which may contain mannose in their
sugar moiety (Beckham et al., 2010). Mannose percentage measured
in our study after 2 h hydrolysis at 100 C amounted to 0.5
for apple pomace, 2.8 for Pcel and as much as 4.1 for Px. The hydrolysis
conducted at 120 C resulted in severe, 91–100% losses of this
sugar, dependently of the process duration. This is consistent with
very low mannose contents (0.08–0.15%) reported by Arnous and
Meyer (2008) after 2 h hydrolysis of apple peels with 2 M TFA at
120 C. The share of other monosaccharides in pectin preparations
was less, but still statistically dependent on the applied hydrolysis
conditions. Depending on the durability of the process, resulting
arabinose amounts differed twice and that of fucose, galactose, glucose
and xylose – 1.8 times (Table 2). This is in accordance with
Garna et al. (2004) who reported that arabinose was more labile
than other pectin sugars in conditions of concentrated acids. Taking
into consideration the efficiency of 2 M TFA at 120 C vs. combined
hydrolysis, it is evident that the application of multicatalytic
enzymatic preparations enabled more precise determination of NS.
However, the amounts of neutral sugars measured after the latter
treatment were significantly lower than ones obtained after 2.5 h
hydrolysis with 2 M TFA at 100 C (Table 2). These findings are contrary to the conclusion of Garna et al. (2004, 2006), who postulated
that the combined acidic–enzymatic hydrolysis is the best
method of pectin composition determination. The result is strongly
depended on the type of pectin, which was commercial pectin in
the studies of Garna et al., and enzymatically extracted samples
in our study. Moreover, the researchers cited above compared
the combined hydrolysis to 0.2 and 1 M TFA treatments, while
our study showed that the best results were obtained with 2 M
TFA.
Acidic hydrolysis at 100 C (the optimal conditions for NS
releasing) always resulted in underestimation of pectin composition,
which most probably was caused by the incomplete PGalA
hydrolysis. The sum of neutral sugars and galacturonic acid
obtained by HPLC was up to 68.9% in Pcel and Px, and 58.9% in
apple pomace (Table 3). Panouillé et al. (2006) also reported only
69% (49.9% GalA and 19.1% NS) of sugars in pectin enzymatically
extracted from chicory after 2 h hydrolysis at 100 C with 1 M
H2SO4. Similar results were also shown by Zykwinska et al.
(2008) for green labelled pectins hydrolysed with 2 M H2SO4 for
2 h at 100 C (66–69% for chicory pectins and 63.1% for sugar beet
pectin). The results of our study prove that the increase of pectin
hydrolysis temperature up to 120 C resulted in a higher sum of
GalA and NS. After 2 h of such hydrolysis, the measured values
amounted to 75.8%, 77.9% and 60.3% for Pcel, Px and apple pomace,
respectively (Table 3). These results were slightly lower than
expected, which could be the consequence of partial degradation
of NS due to drastic hydrolysis conditions (Table 2). The same
explanation may be given for underestimated sums of NS and
GalA in pectin extracted from butternut with hemicellulase and
cellulase – 56 and 81%, respectively (Fissore et al., 2009), and
apple peels – 55.7% for Golden Delicious (Arnous & Meyer,
2008). As shown in Fig. 3, the application of combined acidic –
enzymatic hydrolysis (72 h with 0.2 M TFA at 80 C, followed by
24 h with preparation Energex L at 50 C) resulted in further
reduction of pectin component losses. The most important issue
is the time of hydrolysis (total 96 h) and proper choice of the
enzyme. For example, in our study, the Viscozyme preparation,
suggested previously by Garna et al. (2004, 2006), was not suitable
neither for enzymatically extracted pectins, nor apple
pomace.
0/5000
3.2การย่อยสลายของกลุ่มน้ำตาลเป็นกลางในการสกัดเอนไซม์pectins น้ำตาลกลางการปล่อยตัวในช่วงเพคตินและแอปเปิ้ลไฮโดรไลซิกากที่ได้รับโดยวิธี HPLCแยกสมบูรณ์ของ NS ถูกที่ได้รับใน CarboPac PA 20 คอลัมน์ (รูปที่ 2) .เช่นในกรณีของเงื่อนไขของการย่อยสลายอย่างมีนัยสำคัญอิทธิพลงานเลี้ยงจำนวนและรายละเอียดของน้ำตาลเป็นกลางในการวิเคราะห์ตัวอย่าง(ตารางที่ 2)หุ้นสูงสุดของ NS ทั้งใน pectins และแอปเปิ้ลกากวัดหลังจากการย่อยสลายเป็นกรดดำเนินการในภาวะที่ไม่รุนแรง(2.5 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 100 องศาเซลเซียส)ค่าที่ได้มีจำนวน 30.17% สำหรับ Pcel29.67% สำหรับ Px และ 32.89% สำหรับกากแอปเปิ้ลในทางตรงกันข้ามเมื่อย่อยสลายได้ดำเนินการในสภาวะที่เหมาะสมสำหรับ PGalA depolymerisation (120 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 2.5 ชั่วโมง) ลดลงอย่างมากของระดับ NS โดยเกือบ 50% เป็นที่สังเกตนี้เป็นที่น่าสนใจโดยเฉพาะอย่างยิ่งเป็นเงื่อนไขหลังได้รับการแนะนำโดยนักวิจัยจำนวนมากและเป็นที่นิยมใช้สำหรับการย่อยสลายเพคติน (Arnous & Meyer, 2008 Fissore et al, 2009 Methacanon, et al, 2014) ระดับของความเป็นกลางองศาเซลเซียสเป็นอย่างมีนัยสำคัญชั่วโมงของการย่อยสลายที่ 120 น้ำตาลได้รับหลังจาก 2.5ต่ำกว่าที่วัดหลังจากรวม (สารเคมีและเอนไซม์) การย่อยสลายผลที่ได้รับในการศึกษาของเราอย่างชัดเจนTFA 2 เมตรแสดงให้เห็นว่าแม้การรักษาระยะสั้นของเพคตินมี120 องศาเซลเซียสทำให้เกิด depolymerisation และยังย่อยสลายอย่างรุนแรงปล่อยออกมา monosaccharides นั้น ๆอะไรคือสิ่งที่เป็นไปตามวรรณกรรมข้อมูล (Lim, et al, 2012; Yapo, 2009) และผลของเราการศึกษาทั้งพันธบัตร glycosidic และ moieties น้ำตาลแตกต่างกันในความอ่อนแอของพวกเขาต่อกรดเข้มข้นและอุณหภูมิสูงดังนั้นอัตราการสูญเสียองค์ประกอบที่แตกต่างกันอาจแตกต่างกันไปในระหว่างการย่อยสลายเพคตินผลมาจากการที่มีข้อผิดพลาดในการตรวจวัดที่ตามมาของโปรไฟล์น้ำตาลนี้มีความสำคัญโดยเฉพาะอย่างยิ่งสำหรับpectins ที่อุดมไปด้วยน้ำตาลเป็นกลางแรมโนสเป็นส่วนประกอบของrhamnogalacturonan ฉันและ II rhamnogalacturonan โครงสร้างในฐานะที่แสดงในตารางที่ 2 แรมมากความไวต่ออุณหภูมิสูงและการรักษาความเข้มข้นของกรดวัด HPLCของแรมหลังจาก 2.5 ไฮโดรไลซิสของ pectins 120 องศาเซลเซียสนี้โดยกว่าแสดงให้เห็นเบาแข็งแกร่งของเนื้อหาเฮกโซส65%เงื่อนไขเดียวกันได้รับการพิสูจน์แล้วว่ามีแม้กระทั่งทำลายมากขึ้นสำหรับแมนโนสPectins ส่วนใหญ่อาจจะไม่ได้มีการสรุปในโครงสร้างของพวกเขา (Caffall & Mohnen 2009; Voragen et al, 2009) อย่างไรก็ตามโมโนแซ็กคาไรด์นี้อาจจะอยู่ในหลายเพคตินการเตรียมการเป็นส่วนหนึ่งของ mannans และ galactomannans ตกตะกอนร่วมกับ pectins (Methacanon และคณะ 2014, รอบริกบี MacDougall และมอร์ริส 2010)นอกจากนี้ในกรณีของเพคตินที่สกัดเอนไซม์แหล่งที่มาของแมนโนสนอกจากนี้ยังอาจจะมีการเตรียมการใช้เอนไซม์ส่วนใหญ่ของสารเอนไซม์เป็นไกลโคโปรตีนซึ่งอาจจะมีสรุปของพวกเขาในครึ่งน้ำตาล (เบ็คแฮม et al., 2010)ร้อยละ mannose วัดในการศึกษาของเราหลังจาก 2 ชั่วโมงการย่อยสลายที่ 100 องศาเซลเซียสเป็นจำนวนเงิน 0.5 สำหรับกากแอปเปิ้ล 2.8 สำหรับ Pcel และเท่าที่ 4.1 สำหรับ Pxการย่อยสลายดำเนินการที่ 120 องศาเซลเซียสส่งผลให้ความรุนแรงสูญเสีย 91-100% ของนี้น้ำตาล dependently ของระยะเวลากระบวนการซึ่งสอดคล้องกับเนื้อหาสรุปที่ต่ำมาก (0.08-0.15%) รายงานโดย Arnous และเมเยอร์ (2008) หลังจาก 2 ชั่วโมงการย่อยสลายของเปลือกแอปเปิ้ลมี 2 เมตร TFA120 องศาเซลเซียสส่วนแบ่งของ monosaccharides อื่นๆ ในการเตรียมเพคตินมีน้อยแต่ก็ยังขึ้นอยู่กับสถิติการย่อยใช้เงื่อนไขทั้งนี้ขึ้นอยู่กับความทนทานของกระบวนการที่เกิดขึ้นในปริมาณที่แตกต่างกันราบิโนสเป็นครั้งที่สองและของ fucose กาแลคกลูโคสและไซโลส - 1.8 เท่า (ตารางที่ 2)ซึ่งเป็นไปตามที่มีGarna และคณะที่รายงานว่าราบิโนสเป็นคงที่มากขึ้น (2004)กว่าน้ำตาลเพคตินอื่นๆ ในเงื่อนไขของกรดเข้มข้นตามหลักองศาเซลเซียสเมื่อเทียบกับรวมเข้าสู่การพิจารณาประสิทธิภาพของ 2 เมตร TFA 120จองจำก็เห็นได้ชัดว่าการประยุกต์ใช้ multicatalytic เตรียมเอนไซม์ที่เปิดใช้งานความมุ่งมั่นที่แม่นยำยิ่งขึ้นของ NS อย่างไรก็ตามปริมาณของน้ำตาลที่เป็นกลางวัดหลังจากที่หลังการรักษาลดลงอย่างมีนัยสำคัญกว่าคนที่ได้รับหลังจาก 2.5 ชั่วโมงจองจำด้วย 2 เมตร TFA 100 องศาเซลเซียส (ตารางที่ 2)การค้นพบเหล่านี้เป็นตรงกันข้ามกับข้อสรุปของ Garna และคณะ(2004, 2006) ที่กล่าวอ้างว่าการย่อยเป็นกรด-เอนไซม์รวมที่ดีที่สุดคือวิธีการของการกำหนดองค์ประกอบเพคตินผลที่ได้คือขอขึ้นอยู่กับชนิดของเพคตินซึ่งเป็นเพคตินในเชิงพาณิชย์ในการศึกษาของ Garna et al. และตัวอย่างสกัดเอนไซม์ในการศึกษาของเรานอกจากนี้นักวิจัยกล่าวข้างต้นเมื่อเทียบกับการรักษาในขณะที่ TFA การย่อยรวมกันถึง 0.2 และ 1 เมตรการศึกษาของเราแสดงให้เห็นว่าผลลัพธ์ที่ดีที่สุดที่ได้รับมี 2 เมตร TFA การย่อยสลายเป็นกรดที่ 100 องศาเซลเซียส (สภาวะที่เหมาะสมสำหรับ NS ปล่อย) ผลเสมอในเบาขององค์ประกอบเพคตินซึ่งส่วนใหญ่อาจเกิดจากการที่ไม่สมบูรณ์ PGalA จองจำผลรวมของน้ำตาลที่เป็นกลางและกรดกาแลคที่ได้รับโดยวิธี HPLC ก็ขึ้นอยู่กับ 68.9% ใน Pcel และ Px และ 58.9% ในแอปเปิ้ลกาก (ตารางที่ 3)Panouilléและคณะนอกจากนี้ยังมีรายงานเพียง (2006)69% (49.9% และ 19.1 ช่วง% NS) ของน้ำตาลในเพคตินเอนไซม์สกัดจากสีน้ำเงินหลังจาก 2 ชั่วโมงการย่อยสลายที่ 100 C ที่มี 1 M กำมะถันผลที่คล้ายกันนอกจากนี้ยังมีการแสดงโดย Zykwinska et al.ย่อยมี (2008) สำหรับการติดฉลากสีเขียว pectins สำหรับกำมะถัน M 22 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 100 องศาเซลเซียส (66-69% สำหรับ pectins สีน้ำเงินและ 63.1% สำหรับน้ำตาลหัวผักกาดเพคติน)ผลการวิจัยของเราแสดงให้เห็นว่าการเพิ่มขึ้นของเพคตินองศาเซลเซียสส่งผลให้ผลรวมที่สูงขึ้นของไฮโดรไลซิอุณหภูมิสูงถึง 120NS และงานเลี้ยงชั่วโมงของการย่อยสลายเช่นค่าที่วัดหลังจากนั้น 2เป็นจำนวนเงิน 75.8%, 77.9% และ 60.3% สำหรับ Pcel, Px และกากแอปเปิ้ลตามลำดับ (ตารางที่ 3)ผลเหล่านี้ต่ำกว่าที่คาดไว้ซึ่งอาจจะเป็นผลมาจากการย่อยสลายบางส่วนเนื่องจากสภาพการย่อยสลายอย่างมาก NS นั้น ๆ (ตารางที่ 2)เช่นเดียวกับคำอธิบายที่อาจจะได้รับผลบวกสำหรับการประเมินของ NS และและ hemicellulase ในเพคตินที่สกัดจากบัตเตอร์กับงานเลี้ยงเซลลูเลส - ( Fissore et al, 2009) 56 และ 81% ตามลำดับและเปลือกแอปเปิ้ล - 55.7% สำหรับโกลเดนอร่อย (Arnous & เมเยอร์ 2008) ดังแสดงในรูป3 การประยุกต์ใช้รวมเป็นกรด -ย่อยโปรตีน (72 ชั่วโมงกับ 0.2 M TFA 80 C ตามด้วย 24 ชั่วโมงกับการเตรียม Energex L 50 C ?) ส่งผลให้ต่อการลดลงของการสูญเสียองค์ประกอบเพคตินปัญหาที่สำคัญที่สุดคือเวลาของการย่อยสลาย (รวม 96 ชั่วโมง) และทางเลือกที่เหมาะสมของเอนไซม์ยกตัวอย่างเช่นในการศึกษาของเรา การเตรียม Viscozyme,แนะนำก่อนหน้านี้โดย Garna และคณะ(2004, 2006) ไม่เหมาะสมทั้งสำหรับ pectins สกัดเอนไซม์หรือแอปเปิ้ลกาก
การแปล กรุณารอสักครู่..
เป็นกลาง
HPLC แยกสมบูรณ์ของ NS ถูก
ที่ได้รับใน CarboPac PA 20 คอลัมน์ (รูปที่ 2). เช่นในกรณีของ
Gala
2) หุ้นสูงสุดของ NS ทั้งใน pectins
ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 100 องศาเซลเซียส) ค่าที่ได้มีจำนวน 30.17% สำหรับ Pcel,
29.67% สำหรับ Px และ 32.89%
PGalA
depolymerisation (120 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 2.5 ชั่วโมง) ลดลงอย่างมากของระดับ NS,
โดยเกือบ 50%
(Arnous & Meyer, 2008;
Fissore et al, 2009 ;. Methacanon, et al,
2.5 ชั่วโมงของการย่อยสลายที่ 120
(สารเคมีและ
เอนไซม์)
2 M TFA ที่
120 องศาเซลเซียสทำให้เกิด depolymerisation และยังย่อยสลายอย่างรุนแรง
ของ monosaccharides
(Lim, et al, 2012 ;. Yapo, 2009) และผลของเรา
การศึกษาทั้งพันธบัตร glycosidic และ moieties
ฉันและครั้งที่สอง rhamnogalacturonan โครงสร้างในฐานะที่
แสดงในตารางที่ 2 HPLC
ของแรมหลังจาก 2.5 ไฮโดรไลซิสของ pectins ที่ 120
hexose
(Caffall & Mohnen 2009 ;. Voragen และคณะ,
galactomannans mannans และ,
ตกตะกอนร่วมกับ pectins (Methacanon และคณะ, 2014 ;.
รอบริกบี MacDougall และมอร์ริส,
(เบ็คแฮม et al., 2010) ร้อยละ mannose วัด
ในการศึกษาของเราหลังจาก 2 ชั่วโมงการย่อยสลายที่ 100 องศาเซลเซียสเป็นจำนวนเงิน 0.5
สำหรับกากแอปเปิ้ล, 2.8 สำหรับ Pcel และเท่าที่ 4.1 สำหรับ Px การ ย่อยสลาย
ดำเนินการที่ 120 91-100% ของนี้
น้ำตาล dependently
(0.08-0.15%) รายงานโดย Arnous และ
เมเยอร์ (2008) หลังจาก 2 2 M TFA ที่
120 องศาเซลเซียสส่วนแบ่งของ monosaccharides อื่น ๆ ในการเตรียมเพคติน
มีน้อย
fucose, กาแลคกลูโคส
และไซโลส - 1.8 เท่า (ตารางที่ 2) ซึ่งเป็นไปตามที่มี
Garna และคณะ(2004)
ๆ
2 M TFA ที่ 120
กว่าคนที่ได้รับหลังจาก 2.5 ชั่วโมง
จองจำด้วย 2 M TFA ที่ 100 องศาเซลเซียส (ตารางที่ Garna และคณะ(2004, 2006)
Garna et al.,
0.2 และ 1 M TFA
2 M
TFA.
การย่อยสลายเป็นกรดที่ 100 องศาเซลเซียส (สภาวะที่เหมาะสมสำหรับ NS
ปล่อย) ผลเสมอใน
HPLC ก็ขึ้นอยู่กับ 68.9% ใน Pcel และ Px และ 58.9% ใน
แอปเปิ้ลกาก (ตารางที่ 3) Panouilléและคณะ(2006) นอกจากนี้ยังมีรายงานเพียง
69% (49.9% และ 19.1% Gala NS)
2 ชั่วโมงการย่อยสลายที่ 100 องศาเซลเซียสที่มี 1
Zykwinska et al.
(2008) สำหรับการติดฉลากสีเขียว pectins ย่อยมี 2 M H2SO4 สำหรับ
2 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 100 องศาเซลเซียส (66-69% สำหรับ pectins สีน้ำเงินและ 63.1%
120
และ NS หลังจากนั้น 2
75.8%, 77.9% และ 60.3% สำหรับ Pcel, Px และกากแอปเปิ้ล
ตามลำดับ (ตารางที่
NS เนื่องจากสภาพการย่อยสลายอย่างมาก (ตารางที่
NS และ
Gala ในเพคตินที่สกัดจากบัตเตอร์กับ hemicellulase และ
เซลลูเลส - (. Fissore et al, 2009) 56 และ 81% ตามลำดับและ
เปลือกแอปเปิ้ล - 55.7% สำหรับโกลเด้นอร่อย (Arnous & เมเยอร์,
2008) ดังแสดงในรูปที่ 3, การประยุกต์ใช้รวมเป็นกรด -
? ย่อยโปรตีน (72 ชั่วโมงกับ 0.2 M TFA ที่ 80 C ตามด้วย
24 ชั่วโมงกับการเตรียม Energex L ที่ 50 C)
(รวม 96 ชั่วโมง)
การเตรียม Viscozyme,
แนะนำก่อนหน้านี้โดย Garna และคณะ(2004, 2006) ไม่เหมาะสม
ทั้งสำหรับ pectins สกัดเอนไซม์หรือแอปเปิ้ล
กาก
การแปล กรุณารอสักครู่..
3.2 . การย่อยสลายโซ่น้ำตาลเป็นกลางใน enzymatically เพกทินสกัด
เป็นกลางน้ำตาลออกในระหว่างการย่อยสลายแอปเปิ้ล เพคติน และกาก
ได้ 2 . การแยกสมบูรณ์ของ NS คือ
ได้รับใน carbopac PA 20 คอลัมน์ ( รูปที่ 2 ) เช่นในกรณีของ
งาน เงื่อนไขของการมีอิทธิพลต่อ
จํานวนและโปรไฟล์ของน้ำตาลที่เป็นกลางในการวิเคราะห์ตัวอย่าง
( ตารางที่ 2 )สูงสุดร่วมกันของ NS ทั้งเพกทินและ
กากแอปเปิ้ลถูกวัดหลังจากการย่อยดำเนินการในภาวะกรดอ่อน
( 2.5 H ที่ 100 C ) ค่าที่ได้จาก 30.17 %
% pcel 29.67 , PX 32.89 % สำหรับแอปเปิ้ลและกาก . ในทางตรงกันข้าม เมื่อ
การย่อยสลายในการปฏิบัติสภาวะที่ pgala
depolymerisation ( 120 C 2 H ) รุนแรงลดระดับ NS
โดยเกือบ 50% มีสังเกต นี้เป็นที่น่าสนใจโดยเฉพาะอย่างยิ่งเป็น
เงื่อนไขหลังแนะนำโดยนักวิจัยหลายคนและ
ปกติใช้เพคตินเอนไซม์ ( arnous & Meyer , 2008 ;
fissore et al . , 2009 ; methacanon et al . , 2010 ) ระดับของน้ำตาลที่เป็นกลาง
หลังจากได้รับ 2.5 H การย่อยที่ 120 C อย่างมีนัยสำคัญ
ต่ำกว่าวัดหลังจากรวม ( เคมีและ
เอนไซม์ ) เอนไซม์ . ผลลัพธ์ที่ได้ในการศึกษาของเราอย่างชัดเจน
แสดงว่าแม้แต่สั้นรักษาเพคตินกับระดับที่ 2 M
120 C สาเหตุของ depolymerisation และรุนแรงของการย่อยสลาย
ปล่อยโมโนแซ็กคาไรด์ . มีอะไรเพิ่มเติม ตามข้อมูลวรรณกรรม
( ลิม et al . , 2012 ; yapo , 2009 ) และผลการศึกษาของเรา
,ทั้งพันธะไกลโคซิดิก และโมเลกุลน้ำตาลแตกต่างกันใน
ไวของความเข้มข้นของกรดและอุณหภูมิสูง ดังนั้น อัตราการสูญเสีย
องค์ประกอบที่แตกต่างกันอาจแตกต่างกันระหว่างเพกทินโดยใช้
ผลพวงที่ตามมาหาข้อผิดพลาดใน
โปรไฟล์น้ำตาล นี้เป็นสิ่งสำคัญโดยเฉพาะสำหรับ
เพกตินที่อุดมไปด้วยน้ำตาลกลาง rhamnose เป็นส่วนประกอบของ
rhamnogalacturonan ผมและโครงสร้าง 2 rhamnogalacturonan . โดย
นำเสนอตาราง 2 rhamnose มากไวต่ออุณหภูมิสูงและอุณหภูมิ ความเข้มข้นของกรดวิทยา การวัดความเข้มข้นของ rhamnose 2.5 H
หลังจากการย่อยสลายของเพกทินที่ 120 C
มีการการประเมินค่าต่ำไปที่แข็งแกร่งของเฮกโซสเนื้อหากว่า
65 % เงื่อนไขเดิมแล้ว จะอันตรายมากกว่า
สำหรับองค์ประกอบ .เพคตินส่วนใหญ่อาจไม่ประกอบด้วยองค์ประกอบในโครงสร้างของพวกเขา ( caffall
& mohnen , 2009 ; voragen et al . , 2009 ) .
แต่สื่อนี้อาจจะอยู่ในการเตรียมเพคติน
มากมายเป็นส่วนประกอบของแมนแนน และ galactomannans
, ตกตะกอนร่วมกับเพกทิน ( methacanon et al . , 2014 ;
รอบ ริกบี้เมิกดูเกิล , &มอร์ริส , 2010 ) นอกจากนี้ ในกรณีของเพคตินที่สกัด enzymatically
,แหล่งที่มาขององค์ประกอบอาจใช้เอนไซม์
เป็นการเตรียมการ ที่สุดของเอนไซม์เป็นโปรตีน Extracellular
ซึ่งอาจประกอบด้วยองค์ประกอบในกึ่งหนึ่งน้ำตาลของพวกเขา
( เบคแฮม et al . , 2010 ) องค์ประกอบร้อยละวัด
ในการศึกษาของเราหลังจากการย่อยที่ 100 C 2 H ร้อยละ 0.5
แอปเปิ้ลกาก 2.8 สำหรับ pcel และเท่าที่ความต้องการ PX . การย่อยสลาย
) ที่ 120 C ส่งผลรุนแรง
เป็นกลางน้ำตาลออกในระหว่างการย่อยสลายแอปเปิ้ล เพคติน และกาก
ได้ 2 . การแยกสมบูรณ์ของ NS คือ
ได้รับใน carbopac PA 20 คอลัมน์ ( รูปที่ 2 ) เช่นในกรณีของ
งาน เงื่อนไขของการมีอิทธิพลต่อ
จํานวนและโปรไฟล์ของน้ำตาลที่เป็นกลางในการวิเคราะห์ตัวอย่าง
( ตารางที่ 2 )สูงสุดร่วมกันของ NS ทั้งเพกทินและ
กากแอปเปิ้ลถูกวัดหลังจากการย่อยดำเนินการในภาวะกรดอ่อน
( 2.5 H ที่ 100 C ) ค่าที่ได้จาก 30.17 %
% pcel 29.67 , PX 32.89 % สำหรับแอปเปิ้ลและกาก . ในทางตรงกันข้าม เมื่อ
การย่อยสลายในการปฏิบัติสภาวะที่ pgala
depolymerisation ( 120 C 2 H ) รุนแรงลดระดับ NS
โดยเกือบ 50% มีสังเกต นี้เป็นที่น่าสนใจโดยเฉพาะอย่างยิ่งเป็น
เงื่อนไขหลังแนะนำโดยนักวิจัยหลายคนและ
ปกติใช้เพคตินเอนไซม์ ( arnous & Meyer , 2008 ;
fissore et al . , 2009 ; methacanon et al . , 2010 ) ระดับของน้ำตาลที่เป็นกลาง
หลังจากได้รับ 2.5 H การย่อยที่ 120 C อย่างมีนัยสำคัญ
ต่ำกว่าวัดหลังจากรวม ( เคมีและ
เอนไซม์ ) เอนไซม์ . ผลลัพธ์ที่ได้ในการศึกษาของเราอย่างชัดเจน
แสดงว่าแม้แต่สั้นรักษาเพคตินกับระดับที่ 2 M
120 C สาเหตุของ depolymerisation และรุนแรงของการย่อยสลาย
ปล่อยโมโนแซ็กคาไรด์ . มีอะไรเพิ่มเติม ตามข้อมูลวรรณกรรม
( ลิม et al . , 2012 ; yapo , 2009 ) และผลการศึกษาของเรา
,ทั้งพันธะไกลโคซิดิก และโมเลกุลน้ำตาลแตกต่างกันใน
ไวของความเข้มข้นของกรดและอุณหภูมิสูง ดังนั้น อัตราการสูญเสีย
องค์ประกอบที่แตกต่างกันอาจแตกต่างกันระหว่างเพกทินโดยใช้
ผลพวงที่ตามมาหาข้อผิดพลาดใน
โปรไฟล์น้ำตาล นี้เป็นสิ่งสำคัญโดยเฉพาะสำหรับ
เพกตินที่อุดมไปด้วยน้ำตาลกลาง rhamnose เป็นส่วนประกอบของ
rhamnogalacturonan ผมและโครงสร้าง 2 rhamnogalacturonan . โดย
นำเสนอตาราง 2 rhamnose มากไวต่ออุณหภูมิสูงและอุณหภูมิ ความเข้มข้นของกรดวิทยา การวัดความเข้มข้นของ rhamnose 2.5 H
หลังจากการย่อยสลายของเพกทินที่ 120 C
มีการการประเมินค่าต่ำไปที่แข็งแกร่งของเฮกโซสเนื้อหากว่า
65 % เงื่อนไขเดิมแล้ว จะอันตรายมากกว่า
สำหรับองค์ประกอบ .เพคตินส่วนใหญ่อาจไม่ประกอบด้วยองค์ประกอบในโครงสร้างของพวกเขา ( caffall
& mohnen , 2009 ; voragen et al . , 2009 ) .
แต่สื่อนี้อาจจะอยู่ในการเตรียมเพคติน
มากมายเป็นส่วนประกอบของแมนแนน และ galactomannans
, ตกตะกอนร่วมกับเพกทิน ( methacanon et al . , 2014 ;
รอบ ริกบี้เมิกดูเกิล , &มอร์ริส , 2010 ) นอกจากนี้ ในกรณีของเพคตินที่สกัด enzymatically
,แหล่งที่มาขององค์ประกอบอาจใช้เอนไซม์
เป็นการเตรียมการ ที่สุดของเอนไซม์เป็นโปรตีน Extracellular
ซึ่งอาจประกอบด้วยองค์ประกอบในกึ่งหนึ่งน้ำตาลของพวกเขา
( เบคแฮม et al . , 2010 ) องค์ประกอบร้อยละวัด
ในการศึกษาของเราหลังจากการย่อยที่ 100 C 2 H ร้อยละ 0.5
แอปเปิ้ลกาก 2.8 สำหรับ pcel และเท่าที่ความต้องการ PX . การย่อยสลาย
) ที่ 120 C ส่งผลรุนแรง
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- I'm Still Working
- ผู้คนสามารถเยี่ยมชมที่ทำงานของทหารได้เเค
- wiraswasta
- ฉันเป็นเพื่อนกับวัน
- if was based on 1880 respondents from 80
- boy friend
- A connecting flight
- it does so by writing a tape symbol with
- ราคาไม่เกิน 2,000 บาท
- It's plugged in
- declaration
- ถ้าคุณรอไม่ไหวฉันถึงบอกว่าคุณสามารถพูดคุ
- ฉันก็แค่คนเลวคนหนึ่ง
- We will see together someday
- Thus, we would expect multinationals to
- These easy-to-find food much, regardless
- language the man
- ข้อขัดแย้ง เธอมักจะพูดออกมาในอีกแง่มุมนึ
- 3. คำพยางค์เดียวและสองพยางค์ที่ลงท้ายด้ว
- They say digital devices like smart phon
- การถอนคำสั่งนี้จะไม่กระทบกระเทือนถึงความ
- 3.2. Hydrolysis of neutral sugar chains
- มันมีจุดพลิกผันของเรื่อง
- Quantity.
