2.2. Hydrothermal treatmentApproxim

2.2. Hydrothermal treatment
Approximately 50 g of cleaned and unbroken soybeans [Glycine max (L.) Merr.], lipoxygenase-null cultivar BRS 257 (Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária, Londrina/Paraná, Brazil) from the crop year 2013 was used in a 1:1.5 (g:g, soybean:deionised water) ratio for each soaking assay. This soybean:deionised water ratio was used on the basis of a preliminary study and literature data (GóesFavoni, Carrão-Panizzi, & Beléia, 2010; Gulati, Chakrabarti, Singh, Duvuuri, & Banerjee, 2010). Glass bottles containing water to soak the whole soybeans were pre-incubated in a thermostatically controlled water bath (Marconi, MA 159, Piracicaba, Brazil) at the required soaking temperature (25, 40, 55, and 70
C) until reaching thermal equilibrium before the addition of the grains. In addition, the soybeans were also soaked in a 0.1 mol L1 phosphate-citrate buffer solution at pH 6 at a soaking temperature that promoted the highest content of aglycones in the soaked soybean to provide optimal conditions for the b-glucosidase enzyme (Matsuura, Obata, & Fukushima, 1989; Sutil et al., 2008). After soaking for regular time intervals (0, 0.5,1, 2, 3, 4, 5, 6, and 7 h) at each temperature, the flasks were successively withdrawn from the water baths, and then the soaked soybeans and drained solution were immediately cooled in an ice bath until they reached 25
C. The assays were performed in closed systems to avoid water evaporation into the environment. The temperature of the soaking medium was continuously monitored with a high accuracy (0.2
C) mercury-in-glass thermometer (Incoterm, Porto Alegre, Brazil) and was maintained at the required level (1
C) throughout the soaking period. At the end of each assay, the soaked soybeans were superficially dried at 30
C for 10 min in a vacuum oven before being weighed. The mass of the residual solution (water not absorbed by the soybeans and compounds leached) was obtained by calculating the difference between the total mass of the system (the sum of the whole soybeans and the mass of the soaking medium) and the mass of the grains superficially dried. A portion of each sample was reserved for the analysis of soluble proteins (residual solution), hardness (soaked soybeans), and moisture content (soaked soybeans), and the remaining samples were frozen, lyophilised (Christ Alpha 2-4 LD plus, Osterode am Harz, Germany), milled (Ika A11 basic, St. Louis, MO, USA) and stored at 22
C until further analysis.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.2. hydrothermal รักษาApproximately 50 g of cleaned and unbroken soybeans [Glycine max (L.) Merr.], lipoxygenase-null cultivar BRS 257 (Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária, Londrina/Paraná, Brazil) from the crop year 2013 was used in a 1:1.5 (g:g, soybean:deionised water) ratio for each soaking assay. This soybean:deionised water ratio was used on the basis of a preliminary study and literature data (GóesFavoni, Carrão-Panizzi, & Beléia, 2010; Gulati, Chakrabarti, Singh, Duvuuri, & Banerjee, 2010). Glass bottles containing water to soak the whole soybeans were pre-incubated in a thermostatically controlled water bath (Marconi, MA 159, Piracicaba, Brazil) at the required soaking temperature (25, 40, 55, and 70
C) until reaching thermal equilibrium before the addition of the grains. In addition, the soybeans were also soaked in a 0.1 mol L1 phosphate-citrate buffer solution at pH 6 at a soaking temperature that promoted the highest content of aglycones in the soaked soybean to provide optimal conditions for the b-glucosidase enzyme (Matsuura, Obata, & Fukushima, 1989; Sutil et al., 2008). After soaking for regular time intervals (0, 0.5,1, 2, 3, 4, 5, 6, and 7 h) at each temperature, the flasks were successively withdrawn from the water baths, and then the soaked soybeans and drained solution were immediately cooled in an ice bath until they reached 25
C. The assays were performed in closed systems to avoid water evaporation into the environment. The temperature of the soaking medium was continuously monitored with a high accuracy (0.2
C) mercury-in-glass thermometer (Incoterm, Porto Alegre, Brazil) and was maintained at the required level (1
C) throughout the soaking period. At the end of each assay, the soaked soybeans were superficially dried at 30
C for 10 min in a vacuum oven before being weighed. The mass of the residual solution (water not absorbed by the soybeans and compounds leached) was obtained by calculating the difference between the total mass of the system (the sum of the whole soybeans and the mass of the soaking medium) and the mass of the grains superficially dried. A portion of each sample was reserved for the analysis of soluble proteins (residual solution), hardness (soaked soybeans), and moisture content (soaked soybeans), and the remaining samples were frozen, lyophilised (Christ Alpha 2-4 LD plus, Osterode am Harz, Germany), milled (Ika A11 basic, St. Louis, MO, USA) and stored at 22
C until further analysis.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.2 การรักษาน้ำพุร้อน
ประมาณ 50 กรัมถั่วเหลืองทำความสะอาดและติดต่อกัน [Glycine สูงสุด (L. ) Merr.], พันธุ์ lipoxygenase โมฆะ BRS 257 (Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária, Londrina / ปารานา, บราซิล) จากปีการเพาะปลูก 2013 ถูกใช้ใน 1 : 1.5 (g: กรัมถั่วเหลือง: deionised น้ำ) อัตราสำหรับแต่ละการทดสอบแช่ นี้ถั่วเหลือง: deionised อัตราส่วนน้ำถูกนำมาใช้บนพื้นฐานของการศึกษาเบื้องต้นและข้อมูลจากเอกสารอ้างอิง (GóesFavoni, Carrão-Panizzi และBeléia, 2010; Gulati, จักรพรรดิ, ซิงห์ Duvuuri และ Banerjee, 2010) ขวดแก้วที่มีน้ำแช่ถั่วเหลืองทั้งได้รับก่อนการบ่มในอ่างน้ำที่ควบคุม (โคนี, MA 159, Piracicaba, บราซิล) ที่อุณหภูมิแช่ต้องการ (25, 40, 55 และ 70 องศาเซลเซียส) จนกว่าจะถึงสมดุลความร้อน ก่อนที่การเพิ่มขึ้นของธัญพืช นอกจากนี้ถั่วเหลืองแช่ใน 0.1 mol L1 สารละลายบัฟเฟอร์ฟอสเฟตซิเตรตที่ pH 6 ที่อุณหภูมิแช่ที่การส่งเสริมเนื้อหาสูงสุดของ aglycones ในถั่วเหลืองแช่เพื่อให้สภาวะที่เหมาะสมสำหรับการทำงานของเอนไซม์ B-glucosidase (Matsuura, Obata และฟูกูชิม่า, 1989;. Sutil et al, 2008) หลังจากแช่สำหรับช่วงเวลาปกติ (0, 0.5,1, 2, 3, 4, 5, 6, และ 7 ต่อชั่วโมง) ที่อุณหภูมิแต่ละขวดถูกถอนออกอย่างต่อเนื่องจากการแช่น้ำแล้วแช่ถั่วเหลืองและการแก้ปัญหาการระบายน้ำได้ ทำให้เย็นลงทันทีในอ่างน้ำแข็งจนกว่าพวกเขาจะไปถึง 25 องศาเซลเซียส การตรวจได้ดำเนินการในระบบปิดเพื่อหลีกเลี่ยงการระเหยของน้ำออกสู่สิ่งแวดล้อม อุณหภูมิของกลางแช่ได้รับการตรวจสอบอย่างต่อเนื่องกับความแม่นยำสูง (? 0.2? C) สารปรอทในแก้วเครื่องวัดอุณหภูมิ (Incoterm, Porto Alegre, บราซิล) และได้รับการเก็บรักษาไว้ที่ระดับที่กำหนด (1 องศาเซลเซียส) ตลอดระยะเวลาการแช่ . ในตอนท้ายของแต่ละการทดสอบ, ถั่วเหลืองแช่แห้งเผินวันที่ 30 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 10 นาทีในเตาอบสูญญากาศก่อนที่จะถูกชั่งน้ำหนัก มวลของการแก้ปัญหาที่เหลือ (น้ำไม่ดูดซึมโดยถั่วเหลืองและสารชะล้าง) ที่ได้รับโดยการคำนวณความแตกต่างระหว่างมวลรวมของระบบ (ผลรวมของถั่วเหลืองทั้งหมดและมวลของกลางแช่) และมวลของ ธัญพืชแห้งเผินๆ ส่วนหนึ่งของแต่ละตัวอย่างถูกสงวนไว้สำหรับการวิเคราะห์ของโปรตีนที่ละลายน้ำได้ (สารละลายที่เหลือ) ความแข็ง (ถั่วเหลืองแช่) และความชื้น (ถั่วเหลืองแช่) และตัวอย่างที่เหลือถูกแช่แข็ง lyophilised (คริสอัลฟา 2-4 LD บวก Osterode am Harz, เยอรมนี), แป้ง (Ika A11 พื้นฐานเซนต์หลุยส์, MO, USA) และเก็บไว้ที่ 22 องศาเซลเซียสจนการวิเคราะห์ต่อไป

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.2 . ด้วยการรักษา
ประมาณ 50 กรัมของการทําความสะอาดและไม่เสียหายถั่วเหลือง [ Glycine max ( L . ) Merr . ) พันธุ์ภาคใน Brs 257 ( บริษัท brasileira เดอัน agropecu . kgm RIA , Londrina / รัฐอามาปา บราซิล ) จากพืชปี 2013 ถูกใช้ใน 1 : 1.5 ( G : G , ถั่วเหลือง : deionised น้ำ ) อัตราส่วนสำหรับ แต่ละคนเปียกตามลำดับ ถั่วเหลือง :deionised น้ำอัตราส่วนที่ใช้บนพื้นฐานของการศึกษาข้อมูลเบื้องต้นและวรรณกรรม ( G ó esfavoni คาร์ o-panizzi , ฮัล & Bel é , IA , 2010 ; gulati chakrabarti duvuuri ซิงห์ , , , , & Banerjee , 2010 ) ขวดแก้วที่มีน้ำแช่ถั่วเหลืองทั้งหมดก่อนทำการควบคุมอุณหภูมิน้ำในอ่าง ( มาร์โค มา 159 , ปิราคิคาบ้า บราซิล ) ที่อุณหภูมิที่ต้องการ การแช่ ( 25 , 40 , 55 ,และ 70
C ) จนเข้าสู่สมดุล ร้อนก่อนและธัญพืช นอกจากนี้ในถั่วเหลืองยังแช่ 0.1 โมล L1 ฟอสเฟต ซิเตรตสารละลายบัฟเฟอร์ที่ pH 6 อุณหภูมิในการแช่ที่ส่งเสริมเนื้อหาสูงสุดของ aglycones ในการแช่ถั่วเหลืองเพื่อให้เงื่อนไขที่ดีที่สุดสำหรับ b-glucosidase เอนไซม์ มัตสึอุระ โอบาตะ& , , Fukushima , 1989 ; sutil et al . , 2008 )หลังจากแช่ในช่วงเวลาปกติ ( 0 0.5,1 , 2 , 3 , 4 , 5 , 6 , และ 7 H ) ที่อุณหภูมิแต่ละขวดมีอย่างต่อเนื่องถอนตัวจากน้ำอ่างอาบน้ำแล้วแช่เมล็ดและเนื้อแก้ปัญหาได้ทันทีลงในน้ำแข็ง อาบน้ำ จน ถึง 25
C ) จำนวนในระบบปิดเพื่อหลีกเลี่ยงการระเหยน้ำในสิ่งแวดล้อมอุณหภูมิของการแช่ขนาดกลางถูกตรวจสอบอย่างต่อเนื่องที่มีความแม่นยำสูง (  0.2
C ) ปรอทในเครื่องวัดอุณหภูมิกระจก ( นโคเทอม , Porto Alegre , บราซิล ) ไว้ที่ระดับที่ต้องการ (  1
C ) ตลอดระยะเวลาการแช่ . ในตอนท้ายของแต่ละวิธีแช่ถั่วเหลืองแห้ง , มีใบหน้าที่ 30
C เป็นเวลา 10 นาทีในเตาอบสูญญากาศก่อนที่จะถูกชั่งน้ำหนักมวลของสารละลายที่เหลือ ( น้ำไม่ซึมด้วยถั่วเหลืองและสารชะ ) ได้โดยการคำนวณความแตกต่างระหว่างมวลทั้งหมดของระบบ ( ผลรวมของทั้งเมล็ดและมวลของการแช่ปานกลาง ) และมวลของธัญพืชเผินๆแห้ง ส่วนของแต่ละตัวอย่างถูกสงวนไว้สำหรับการวิเคราะห์โปรตีนที่ละลายน้ำได้ ( สารละลายที่ตกค้าง )ความกระด้าง ( แช่ถั่วเหลือง และความชื้น ( แช่ถั่วเหลือง และตัวอย่างที่เหลือถูกแช่แข็ง lyophilised ( พระคริสต์อัลฟา 2-4 LD บวก Osterode am ฮาร์ทส์ , เยอรมัน ) , ข้าวสาร ( Ika A11 ขั้นพื้นฐาน , St . Louis , MO , USA ) และเก็บไว้ที่ 22
C
จนกว่าการวิเคราะห์ต่อไป