- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
Localized Fertigation with Stressin
Localized Fertigation with Stressing Solutions and Growth-Quality
Responses in Potted Greenhouse Roses
R.I. Cabreraa
Texas AgriLife Research Center
Texas A&M University System
17360 Coit Road, Dallas, Texas 75252
USA
Keywords: high pH, boron, urea, salinity, partial stress
Abstract
The production of cut roses is a highly intensive cropping system that relies
on very high water and nutrient applications that are forcing the industry to look
into the capture and re-utilization of drainage and the use of alternative, poorquality
irrigation waters. This preliminary study evaluates the effects of waterquality
related stresses (salinity, high pH, high boron, high urea) applied to partial
(localized) sections of the root system in roses. Results to date indicate that
greenhouse rose plants, particularly those grafted on ‘Natal Briar’, remain fairly
sensitive to rootzone salinity and high pH conditions even when afflicting only a
partial section of the root system. Further information is needed on rose plant
performance on other rootstocks, the identification of maximum tolerance
thresholds for rootzone chemical-physical stresses, and the most adequate
management practices needed to deal with them in commercial production
conditions.
INTRODUCTION
The greenhouse production of roses (Rosa L.) for cut flowers is a very intensive
operation that receives large water, fertilizer and chemical inputs, coupled with high
energy and labor requirements and costs. Rose cut flower production is based primarily
on grafted plants growing in soilless substrates that are continuously fertigated with
nutrient solutions (Duys and Schouten, 2001).
About two decades ago rose growers in the Americas switched completely to the
use of the rootstock ‘Natal Briar’, which significantly eased plant propagation and
boosted flower productivities and quality (Duys and Schouten, 2001; Cabrera et al.,
2009). Recent research results (Cabrera et al., 2009; Niu et al., 2008) and rose grower
reports suggest that this rootstock’s performance is significantly and negatively affected
by mild rootzone stresses like salinity and relatively high pH conditions.
Despite the intensive nature of fertigation in rose production and an apparent
homogeneity of and within the growing media used (Duys and Schouten, 2001), the fact
is that the limited substrate volumes and root activity can lead to significant and dynamic
spatial and temporal changes in substrate chemical properties, particularly in zones closer
to the surface of the roots (Silber, 2008). This means that chemical variables monitored in
roses, electrical conductivity (EC), pH and select mineral nutrients (Duys and Schouten,
2001), mostly reflect or provide an average of the growing medium and bulk soil solution
and not necessarily for the zones of more influence (i.e., closer) to the roots. Therefore, it
is likely that significant portions of the root system are experiencing stressful conditions
(both in time and space) but these are not being detected by these monitoring practices.
Scarcity of good quality water and current environmental pressures are forcing the
greenhouse industry to recycle-recirculate drainage effluents, and to consider the use of
alternative, poor quality irrigation waters (Cabrera and Perdomo, 2003; Cabrera et al.,
2009; Niu and Cabrera, 2010; Niu et al., 2008). These conditions substantially increase
the potential for temporal and spatial chemical stresses in global and localized regions of
a r-cabrera@tamu.edu
Proc. II IS on Soilless Culture and Hydroponics
Eds.: F.C. Gómez-Merino et al.
Acta Hort. 947, ISHS 2012
64
the rootzones of potted plants. The objective of this preliminary study was to evaluate the
effect of localized chemical stresses in the roots of roses employing a split-root system.
MATERIALS AND METHODS
Mini-plants of rose ‘Revival’ on ‘Natal Briar’ rootstock were transplanted to
containers filled with 14 L of a peat:pine bark:sand medium (3:1:1 by volume), and
fertigated with a 0.5X strength Hoagland formulation (Table 1; Hoagland and Arnon,
1950) until they reached full (production) size. After six months they were transplanted to
square Dutch rose pots (6.2 L each) that were paired, physically dividing the root system
in two and each half effectively growing on one of the adjacent square pots. The pots
contained the same substrate used to grow the plants initially. They were allowed to
acclimate for six months to this split root system, being fertigated with the same 0.5X
Hoagland solution in both root halves. Thereafter the plants started to be fertigated with
different nutrient solutions on each one of their split root sections. The nutrient solutions
consisted of the control 0.5X Hoagland solution plus another set of nutrient solutions
supplemented with high pH (raised with 6 mM KHCO3 + NaHCO3), high boron, high
ammonium (applied as urea) and high salinity (as 30 mM NaCl) (Table 1). One half of the
root systems in each plant (i.e., one square pot) continued to receive the control 0.5X
Hoagland solution and the other half root section received one of the stressing solutions.
Each root container was individually irrigated with Roberts spitters (one per pot) hooked
to the tanks containing the five nutrient solutions. Enough solution volumes were applied
to all treatments to produce target leaching fractions of ~25%. Leachate trays were placed
underneath selected containers (containing ½ root systems) from all treatments, and
leachates were collected, measured and subsamples retained for chemical analyses.
A total of eight plants (replicates) were randomly assigned to each treatment,
arranged on top of metal lattice tables that allowed for unimpeded drainage, inside a
climate-controlled glasshouse (targets of 28 and 18°C day and night, respectively). The
plants were managed through pruning practices to produce synchronized flushes of
growth and flowering. Data collected included harvested (cut flower) dry biomass and
number of cut flowers per plant, flower stem length and leaf chlorophyll (SPAD) index.
Leaf tissues were ground and subjected to mineral analyses. Preliminary results after three
flowering flushes are reported here.
RESULTS AND DISCUSSION
As in previous studies on nutrient and water management in roses (Cabrera, 2000;
Cabrera and Perdomo, 2003; Cabrera et al., 2009), it takes 1-2 flower flushes after onset
of treatments to begin to see trends or significant differences in flower productivity and
quality. The first flower flush (data not shown), which happened in late spring, produced
the best quality flowers and highest productivities across all treatments. The effect of the
stressing nutrient solutions started to be appreciated by the third flower flush. It should be
noted that the 2nd and 3rd flowering flushes occurred with the onset of the highest daily
greenhouse temperatures (summer season), which required more frequent irrigation
intervals to meet the higher evapotranspiration demands.
Looking at the cumulative data for these first three harvests (Table 2), there were
no differences on cumulative flower yields across treatments, and only plants having onehalf
of their root system supplied with the urea-enriched solution had the highest
cumulative biomass yields. In addition, this treatment also had the highest average stem
dry weights and the highest average chlorophyll index readings. These responses were
attributed to the supplemental N provided by urea, which breaks down readily into
ammonium (NH4
+) ions in soil solution, and whose excess was expected to produce some
potential NH4
+ induced toxicities (Marschner, 1995; Silber, 2008).
Previous research on the nutrition of roses and other greenhouse crops indicates
that the application of ~25% of the total N as NH4
+ produces the highest biomass and
flower yields (Cabrera et al., 1993, 1996; Silber, 2008). In this case, the supplementation
of urea to one-half the root system provided an NH4
+ fraction of 42% while also raising
65
the total N applied, being 98 mg/L higher than in the rest of the treatment solutions. It is
hypothesized that contrary to the expectation of ammonium-toxicity symptoms, the
coupling of higher solar radiation conditions in the summer months maximized
productivity with the supplemental NH4
+ derived from urea breakdown in the substrate.
The literature and practice do suggest, however, that such scenario could be very different
in the winter months, where diminished carbohydrate production (reduced photosynthesis
by lower light levels) could not metabolize excessive NH4
+ concentrations (≥10% of total
N in winter) and lead to toxicity symptoms (Cabrera, 2000; Cabrera et al., 1993, 1996;
Marschner, 1995). We will have to wait for additional flowering cycles to see the longer
term effects of such higher urea-N concentrations and NH4
+ fractions on flower
productivity and quality.
Interestingly, the EC from leachates collected from the half-root sections receiving
the solution supplemented with urea had the highest average values (8.2 dS/m), followed
by the NaCl-supplemented solutions (7.2 dS/m). A previous long-term fertilization study
on roses (Cabrera, 2000) indicated that fertigation solutions exceeding 200 mg/L N
resulted in depressed biomass and flower yields compared to concentrations between 90
and 150 mg/L, observation associated with both a higher osmotic stress due to NO3-N
accumulations in the rootzone, and some nutrient imbalances that were not detected by
conventional nutrient analyses procedures.
It should be noted that although there were no apparent reductions in cumulative
biomass and flower yields in the plants receiving high NaCl in one-half of their roots, the
average length and dry weight of individual flower stems were the lowest for plants in
this treatment (Table 2). In addition, by the third harvest the beginning of classical salt
burn damage to the lower (older) leaves (Cabrera and Perdomo, 2003; Cabrera et al.,
2009; Niu et al., 2008)
Responses in Potted Greenhouse Roses
R.I. Cabreraa
Texas AgriLife Research Center
Texas A&M University System
17360 Coit Road, Dallas, Texas 75252
USA
Keywords: high pH, boron, urea, salinity, partial stress
Abstract
The production of cut roses is a highly intensive cropping system that relies
on very high water and nutrient applications that are forcing the industry to look
into the capture and re-utilization of drainage and the use of alternative, poorquality
irrigation waters. This preliminary study evaluates the effects of waterquality
related stresses (salinity, high pH, high boron, high urea) applied to partial
(localized) sections of the root system in roses. Results to date indicate that
greenhouse rose plants, particularly those grafted on ‘Natal Briar’, remain fairly
sensitive to rootzone salinity and high pH conditions even when afflicting only a
partial section of the root system. Further information is needed on rose plant
performance on other rootstocks, the identification of maximum tolerance
thresholds for rootzone chemical-physical stresses, and the most adequate
management practices needed to deal with them in commercial production
conditions.
INTRODUCTION
The greenhouse production of roses (Rosa L.) for cut flowers is a very intensive
operation that receives large water, fertilizer and chemical inputs, coupled with high
energy and labor requirements and costs. Rose cut flower production is based primarily
on grafted plants growing in soilless substrates that are continuously fertigated with
nutrient solutions (Duys and Schouten, 2001).
About two decades ago rose growers in the Americas switched completely to the
use of the rootstock ‘Natal Briar’, which significantly eased plant propagation and
boosted flower productivities and quality (Duys and Schouten, 2001; Cabrera et al.,
2009). Recent research results (Cabrera et al., 2009; Niu et al., 2008) and rose grower
reports suggest that this rootstock’s performance is significantly and negatively affected
by mild rootzone stresses like salinity and relatively high pH conditions.
Despite the intensive nature of fertigation in rose production and an apparent
homogeneity of and within the growing media used (Duys and Schouten, 2001), the fact
is that the limited substrate volumes and root activity can lead to significant and dynamic
spatial and temporal changes in substrate chemical properties, particularly in zones closer
to the surface of the roots (Silber, 2008). This means that chemical variables monitored in
roses, electrical conductivity (EC), pH and select mineral nutrients (Duys and Schouten,
2001), mostly reflect or provide an average of the growing medium and bulk soil solution
and not necessarily for the zones of more influence (i.e., closer) to the roots. Therefore, it
is likely that significant portions of the root system are experiencing stressful conditions
(both in time and space) but these are not being detected by these monitoring practices.
Scarcity of good quality water and current environmental pressures are forcing the
greenhouse industry to recycle-recirculate drainage effluents, and to consider the use of
alternative, poor quality irrigation waters (Cabrera and Perdomo, 2003; Cabrera et al.,
2009; Niu and Cabrera, 2010; Niu et al., 2008). These conditions substantially increase
the potential for temporal and spatial chemical stresses in global and localized regions of
a r-cabrera@tamu.edu
Proc. II IS on Soilless Culture and Hydroponics
Eds.: F.C. Gómez-Merino et al.
Acta Hort. 947, ISHS 2012
64
the rootzones of potted plants. The objective of this preliminary study was to evaluate the
effect of localized chemical stresses in the roots of roses employing a split-root system.
MATERIALS AND METHODS
Mini-plants of rose ‘Revival’ on ‘Natal Briar’ rootstock were transplanted to
containers filled with 14 L of a peat:pine bark:sand medium (3:1:1 by volume), and
fertigated with a 0.5X strength Hoagland formulation (Table 1; Hoagland and Arnon,
1950) until they reached full (production) size. After six months they were transplanted to
square Dutch rose pots (6.2 L each) that were paired, physically dividing the root system
in two and each half effectively growing on one of the adjacent square pots. The pots
contained the same substrate used to grow the plants initially. They were allowed to
acclimate for six months to this split root system, being fertigated with the same 0.5X
Hoagland solution in both root halves. Thereafter the plants started to be fertigated with
different nutrient solutions on each one of their split root sections. The nutrient solutions
consisted of the control 0.5X Hoagland solution plus another set of nutrient solutions
supplemented with high pH (raised with 6 mM KHCO3 + NaHCO3), high boron, high
ammonium (applied as urea) and high salinity (as 30 mM NaCl) (Table 1). One half of the
root systems in each plant (i.e., one square pot) continued to receive the control 0.5X
Hoagland solution and the other half root section received one of the stressing solutions.
Each root container was individually irrigated with Roberts spitters (one per pot) hooked
to the tanks containing the five nutrient solutions. Enough solution volumes were applied
to all treatments to produce target leaching fractions of ~25%. Leachate trays were placed
underneath selected containers (containing ½ root systems) from all treatments, and
leachates were collected, measured and subsamples retained for chemical analyses.
A total of eight plants (replicates) were randomly assigned to each treatment,
arranged on top of metal lattice tables that allowed for unimpeded drainage, inside a
climate-controlled glasshouse (targets of 28 and 18°C day and night, respectively). The
plants were managed through pruning practices to produce synchronized flushes of
growth and flowering. Data collected included harvested (cut flower) dry biomass and
number of cut flowers per plant, flower stem length and leaf chlorophyll (SPAD) index.
Leaf tissues were ground and subjected to mineral analyses. Preliminary results after three
flowering flushes are reported here.
RESULTS AND DISCUSSION
As in previous studies on nutrient and water management in roses (Cabrera, 2000;
Cabrera and Perdomo, 2003; Cabrera et al., 2009), it takes 1-2 flower flushes after onset
of treatments to begin to see trends or significant differences in flower productivity and
quality. The first flower flush (data not shown), which happened in late spring, produced
the best quality flowers and highest productivities across all treatments. The effect of the
stressing nutrient solutions started to be appreciated by the third flower flush. It should be
noted that the 2nd and 3rd flowering flushes occurred with the onset of the highest daily
greenhouse temperatures (summer season), which required more frequent irrigation
intervals to meet the higher evapotranspiration demands.
Looking at the cumulative data for these first three harvests (Table 2), there were
no differences on cumulative flower yields across treatments, and only plants having onehalf
of their root system supplied with the urea-enriched solution had the highest
cumulative biomass yields. In addition, this treatment also had the highest average stem
dry weights and the highest average chlorophyll index readings. These responses were
attributed to the supplemental N provided by urea, which breaks down readily into
ammonium (NH4
+) ions in soil solution, and whose excess was expected to produce some
potential NH4
+ induced toxicities (Marschner, 1995; Silber, 2008).
Previous research on the nutrition of roses and other greenhouse crops indicates
that the application of ~25% of the total N as NH4
+ produces the highest biomass and
flower yields (Cabrera et al., 1993, 1996; Silber, 2008). In this case, the supplementation
of urea to one-half the root system provided an NH4
+ fraction of 42% while also raising
65
the total N applied, being 98 mg/L higher than in the rest of the treatment solutions. It is
hypothesized that contrary to the expectation of ammonium-toxicity symptoms, the
coupling of higher solar radiation conditions in the summer months maximized
productivity with the supplemental NH4
+ derived from urea breakdown in the substrate.
The literature and practice do suggest, however, that such scenario could be very different
in the winter months, where diminished carbohydrate production (reduced photosynthesis
by lower light levels) could not metabolize excessive NH4
+ concentrations (≥10% of total
N in winter) and lead to toxicity symptoms (Cabrera, 2000; Cabrera et al., 1993, 1996;
Marschner, 1995). We will have to wait for additional flowering cycles to see the longer
term effects of such higher urea-N concentrations and NH4
+ fractions on flower
productivity and quality.
Interestingly, the EC from leachates collected from the half-root sections receiving
the solution supplemented with urea had the highest average values (8.2 dS/m), followed
by the NaCl-supplemented solutions (7.2 dS/m). A previous long-term fertilization study
on roses (Cabrera, 2000) indicated that fertigation solutions exceeding 200 mg/L N
resulted in depressed biomass and flower yields compared to concentrations between 90
and 150 mg/L, observation associated with both a higher osmotic stress due to NO3-N
accumulations in the rootzone, and some nutrient imbalances that were not detected by
conventional nutrient analyses procedures.
It should be noted that although there were no apparent reductions in cumulative
biomass and flower yields in the plants receiving high NaCl in one-half of their roots, the
average length and dry weight of individual flower stems were the lowest for plants in
this treatment (Table 2). In addition, by the third harvest the beginning of classical salt
burn damage to the lower (older) leaves (Cabrera and Perdomo, 2003; Cabrera et al.,
2009; Niu et al., 2008)
0/5000
Fertigation เนื่องจากท้องถิ่น โดยเน้นหนักการแก้ไขปัญหาและการเจริญเติบโตคุณภาพตอบสนองในเรือนกระจกในกระถางกุหลาบR.I. Cabreraaศูนย์วิจัย AgriLife เท็กซัสเท็กซัสและระบบมหาวิทยาลัย M17360 Coit ถนน ดัลลัส เท็กซัส 75252ประเทศสหรัฐอเมริกาคำสำคัญ: pH สูง โบรอน ยูเรีย เค็ม ความเครียดบางส่วนบทคัดย่อการผลิตของดอกกุหลาบเป็นระบบครอบเข้มข้นสูงที่อาศัยน้ำสูงมากและโปรแกรมประยุกต์ธาตุอาหารที่จะบังคับให้อุตสาหกรรมเพื่อค้นหาจับภาพและใช้การระบายน้ำและใช้ทดแทน poorqualityน้ำชลประทาน การศึกษาเบื้องต้นนี้ประเมินผลของ waterqualityที่เกี่ยวข้องกับความเครียด (เค็ม ค่า pH สูง สูงโบรอน urea สูง) กับบางส่วนส่วน (แปล) ของระบบรากในกุหลาบ แสดงผลวันที่เรือนกระจกกุหลาบพืช โดยเฉพาะอย่างยิ่งผู้ที่ grafted บน 'Natal Briar' ยังคงค่อนข้างสำคัญ rootzone เค็มและสภาพ pH สูงแม้ afflicting เท่านั้นส่วนบางส่วนของระบบราก ต้องการข้อมูลเพิ่มเติมในต้นกุหลาบประสิทธิภาพบนอื่น ๆ rootstocks รหัสของการยอมรับสูงสุดขีดจำกัดความเครียดทางกายภาพและทางเคมีของ rootzone และเพียงพอมากที่สุดวิธีการบริหารจัดการที่ต้องจัดการกับพวกเขาในการผลิตเชิงพาณิชย์เงื่อนไขการแนะนำการผลิตเรือนกระจกของดอกกุหลาบ (Rosa L.) สำหรับตัดเป็นแบบเร่งรัดมากการดำเนินงานที่ได้รับน้ำขนาดใหญ่ ปุ๋ย และเคมี อินพุต ควบคู่ไปกับสูงความต้องการพลังงานและแรงงานและต้นทุน ใช้ผลิตกุหลาบตัดดอกเป็นหลักในพืชที่เจริญเติบโตในพื้นผิว soilless ที่มีอย่างต่อเนื่อง fertigated กับ graftedธาตุอาหารการแก้ไขปัญหา (Duys และสโคเทน 2001)ประมาณสองทศวรรษที่ผ่านมาเกษตรกรกุหลาบในทวีปอเมริกาสลับไปอย่างสมบูรณ์แบบใช้ rootstock 'Briar Natal' ซึ่งบรรเทาพืชเผยแพร่อย่างมีนัยสำคัญ และproductivities ดอกไม้ที่เพิ่มขึ้นและคุณภาพ (Duys และสโคเทน 2001 Cabrera et al.,2009) (Cabrera et al., 2009 ผลการวิจัยล่าสุด นิวเอ็ด al., 2008) และกุหลาบ growerรายงานแนะนำว่า rootstock นี้ประสิทธิภาพเป็นอย่างมาก และส่งผลกระทบโดยความเครียด rootzone อ่อนเค็มและสภาพ pH ค่อนข้างสูงแม้ มีลักษณะแบบเร่งรัดของ fertigation เนื่องจากในการผลิตกุหลาบและชัดเจนhomogeneity ของ และภาย ในเติบโตสื่อที่ใช้ (Duys และสโคเทน 2001), ความจริงคือไดรฟ์ข้อมูลพื้นผิวจำกัด และกิจกรรมรากอาจสำคัญ และแบบไดนามิกเปลี่ยนแปลงพื้นผิวทางเคมีคุณสมบัติ โดยเฉพาะอย่างยิ่งในเขตพื้นที่ใกล้พื้นที่ และขมับพื้นผิวของราก (Silber, 2008) หมายความ ว่า สารเคมีตัวแปรตรวจสอบในกุหลาบ ค่าการนำไฟฟ้า (EC), pH และสารอาหารแร่ธาตุเลือก (Duys และสโคเทน2001), ส่วนใหญ่สะท้อน หรือมีค่าเฉลี่ยปานกลางเจริญเติบโตและแก้ปัญหาดินจำนวนมากและไม่จำเป็นสำหรับโซนของอิทธิพล (เช่น ใกล้) ให้ราก ดังนั้น มันมีแนวโน้มว่า ส่วนสำคัญของระบบรากประสบสภาพเครียด(ทั้ง ในเวลาและพื้นที่) แต่เหล่านี้จะไม่ถูกตรวจพบ โดยเหล่านี้ตรวจสอบปฏิบัติการขาดแคลนน้ำคุณภาพดีและปัจจุบันแรงกดดันด้านสิ่งแวดล้อมบังคับการเรือนกระจกอุตสาหกรรมรีไซเคิล-recirculate effluents ระบายน้ำ และพิจารณาการใช้คุณภาพดี สำรองน้ำชลประทาน (Cabrera และ Perdomo, 2003 Cabrera et al.,2009 นิวและ Cabrera, 2010 นิวเอ็ด al., 2008) เพิ่มเงื่อนไขเหล่านี้เป็นขมับ และปริภูมิเคมีความตึงเครียดในภูมิภาคส่วนกลาง และท้องถิ่นr-cabrera@tamu.edu การProc. II เป็นวัฒนธรรม Soilless และไฮโดรโปนิกส์Eds.: สโมสรฟุตบอลสแตนดาร์ด Gómez et alHort. คตา 947, ISHS 201264rootzones ของต้นไม้ วัตถุประสงค์ของการศึกษาเบื้องต้นนี้ถูกประเมินการผลของความเครียดสารเคมีภาษาท้องถิ่นในรากของดอกกุหลาบที่ใช้ระบบแยกรากวัสดุและวิธีการมี transplanted มินิพืชของกุหลาบ 'ฟื้นฟู' บน 'Natal Briar' rootstockภาชนะที่เต็มไป ด้วย 14 L ขนาดกลางเปลือก: ทรายพรุ: ไพน์ (3:1:1 โดยปริมาตร), และfertigated กับ 0.5 X แรง Hoagland กำหนด (ตารางที่ 1 Hoagland และอานนท์ปี 1950) จนพวกเขาถึงขนาดเต็ม (การผลิต) หลังจาก 6 เดือน พวกเขาได้ transplanted ไปดัตช์สแควร์กุหลาบกระถาง (6.2 L ละ) ที่ถูกจับ จริงแบ่งระบบรากสอง และแต่ละ ครึ่งได้อย่างมีประสิทธิภาพเติบโตบนกระถางสี่เหลี่ยมติดกัน หม้อประกอบด้วยพื้นผิวเดียวกันกับที่ใช้ปลูกครั้งแรก พวกเขาได้รับอนุญาตให้acclimate หกเดือนนี้แบ่งระบบราก การ fertigated กับ 0.5 เดียว Xโซลูชั่น Hoagland ทั้งรากสีแดง หลังจากนั้นพืชที่เริ่มจะ fertigated ด้วยโซลูชั่นธาตุอาหารแตกต่างกันในแต่ละหนึ่งของการแยกรากส่วน โซลูชั่นธาตุอาหารประกอบด้วยโซลูชันควบคุม 0.5 X Hoagland และชุดของโซลูชั่นธาตุอาหารอื่นเสริม ด้วย pH สูง (ขึ้นกับ 6 mM KHCO3 + NaHCO3), โบรอนสูง สูง(ใช้เป็น urea) แอมโมเนียและเค็มสูง (เป็น 30 มม. NaCl) (ตารางที่ 1) ครึ่งหนึ่งของการระบบรากในแต่ละโรงงาน (เช่น ตารางหม้อหนึ่ง) ยังคงได้รับการควบคุม 0.5 Xโซลูชั่น Hoagland และรากครึ่งส่วนอื่น ๆ ได้รับหนึ่งในโซลูชั่น stressingรูทคอนเทนเนอร์ของแต่ละแต่ละชลประทานกับโรเบิตส์ spitters (ต่อหนึ่งหม้อ) ติดยาเสพติดการถังที่ประกอบด้วยโซลูชั่นธาตุอาหาร 5 ใช้ปริมาณพอแก้ปัญหาการรักษาทั้งหมดในการผลิตเป้าหมายละลายเศษ ~ 25% มีวางถาด leachateอยู่ด้านล่างเลือกภาชนะ (ที่ประกอบด้วยระบบราก½) จากการรักษาทั้งหมด และleachates ได้รวบรวม วัด และ subsamples เก็บไว้สำหรับการวิเคราะห์ทางเคมีจำนวน 8 โรง (เหมือนกับ) กำหนดให้แบบสุ่มกับทรีตเมนท์จัดบนตารางโครงตาข่ายโลหะประกอบที่อนุญาตให้ระบายน้ำ unimpeded ภายในมีเรือนกระจกสำหรับปลูกต้นไม้ที่ควบคุมสภาพภูมิอากาศ (เป้าหมายของ 18 และ 28 ° C กลางวันและกลางคืน ตามลำดับ) ที่พืชถูกจัดการโดยใช้วิธีตัดการผลิตล้างให้ตรงกันของเจริญเติบโตและดอกไม้ ข้อมูลที่รวบรวมรวมเก็บเกี่ยวผลผลิตตัดดอก) ชีวมวลแห้ง และจำนวนตัดดอกไม้ต่อพืช ดอกไม้ก้านยาวและใบไม้คลอโรฟิลล์ (ค่า) ดัชนีเนื้อเยื่อใบถูกพื้นดิน และอยู่ภายใต้การวิเคราะห์แร่ ผลเบื้องต้น 3ดอกล้างมีรายงานที่นี่ผลและการสนทนาในการศึกษาก่อนหน้าการจัดการธาตุอาหารและน้ำกุหลาบ (Cabrera, 2000Cabrera และ Perdomo, 2003 Cabrera et al., 2009), ใช้เวลา 1-2 ดอกล้างหลังจากเริ่มมีอาการของการรักษาจะเริ่มเห็นแนวโน้มหรือความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญในผลผลิตดอกไม้ และคุณภาพการ ดอกไม้แรกล้าง (ข้อมูลไม่แสดง), ซึ่งเกิดขึ้นในช่วงปลายฤดูใบไม้ผลิ ผลิตดอกไม้คุณภาพดีที่สุดและ productivities สูงสุดในการรักษาทั้งหมด ผลของการย้ำแก้ปัญหาธาตุอาหารเริ่มนิยม โดยดอกไม้สามล้าง ควรมีตั้งข้อสังเกตว่า ล้างดอกที่ 2 และ 3 ที่เกิดขึ้นกับของวันสูงสุดเรือนกระจกอุณหภูมิ (ฤดูร้อน), ซึ่งต้องการชลประทานบ่อยกว่าช่วงการตอบสนองความต้องการ evapotranspiration สูงดูข้อมูลสะสม harvests ครั้งแรกสามเหล่านี้ (ตารางที่ 2), มีไม่มีความแตกต่างในอัตราผลตอบแทนสะสมดอกไม้บำบัด และพืชเท่านั้น onehalfระบบรากของพวกเขาให้มาพร้อมกับโซลูชั่นยูเรียอุดมไปได้ที่สูงที่สุดจากcumulative biomass yields. In addition, this treatment also had the highest average stemdry weights and the highest average chlorophyll index readings. These responses wereattributed to the supplemental N provided by urea, which breaks down readily intoammonium (NH4+) ions in soil solution, and whose excess was expected to produce somepotential NH4+ induced toxicities (Marschner, 1995; Silber, 2008).Previous research on the nutrition of roses and other greenhouse crops indicatesthat the application of ~25% of the total N as NH4+ produces the highest biomass andflower yields (Cabrera et al., 1993, 1996; Silber, 2008). In this case, the supplementationof urea to one-half the root system provided an NH4+ fraction of 42% while also raising65the total N applied, being 98 mg/L higher than in the rest of the treatment solutions. It ishypothesized that contrary to the expectation of ammonium-toxicity symptoms, thecoupling of higher solar radiation conditions in the summer months maximizedproductivity with the supplemental NH4+ derived from urea breakdown in the substrate.The literature and practice do suggest, however, that such scenario could be very differentin the winter months, where diminished carbohydrate production (reduced photosynthesisby lower light levels) could not metabolize excessive NH4+ concentrations (≥10% of totalN in winter) and lead to toxicity symptoms (Cabrera, 2000; Cabrera et al., 1993, 1996;Marschner, 1995). We will have to wait for additional flowering cycles to see the longerterm effects of such higher urea-N concentrations and NH4+ fractions on flowerproductivity and quality.Interestingly, the EC from leachates collected from the half-root sections receivingthe solution supplemented with urea had the highest average values (8.2 dS/m), followedby the NaCl-supplemented solutions (7.2 dS/m). A previous long-term fertilization studyon roses (Cabrera, 2000) indicated that fertigation solutions exceeding 200 mg/L Nresulted in depressed biomass and flower yields compared to concentrations between 90and 150 mg/L, observation associated with both a higher osmotic stress due to NO3-Naccumulations in the rootzone, and some nutrient imbalances that were not detected byconventional nutrient analyses procedures.It should be noted that although there were no apparent reductions in cumulativebiomass and flower yields in the plants receiving high NaCl in one-half of their roots, theaverage length and dry weight of individual flower stems were the lowest for plants inthis treatment (Table 2). In addition, by the third harvest the beginning of classical saltburn damage to the lower (older) leaves (Cabrera and Perdomo, 2003; Cabrera et al.,2009; Niu et al., 2008)
การแปล กรุณารอสักครู่..
น้ำกับถิ่นเน้นหนักโซลูชั่นและการตอบสนองในกระถางกุหลาบคุณภาพ
cabreraa R.I เรือนกระจกเท็กซัสเท็กซัสศูนย์วิจัยระบบ SI
& M มหาวิทยาลัย 17360 คอยต์ถนน ดัลลัส เท็กซัส สหรัฐอเมริกา 75252
คำสำคัญ : pH สูง , โบรอน , ยูเรีย , ความเค็ม , บางส่วนของความเครียด
นามธรรม
การผลิตกุหลาบตัดเป็น ระบบการปลูกพืชที่อาศัย
เข้มข้นสูงในการใช้งานสูงมาก น้ำและสารอาหารที่บังคับให้อุตสาหกรรมเพื่อดู
เข้าไปจับและการระบายน้ำ และการใช้ทดแทน poorquality
น้ำน้ำ การศึกษาเบื้องต้นนี้ประเมินผลของความเครียดที่เกี่ยวข้องกับคุณภาพน้ำ
( ความเค็ม pH สูงสูง , โบรอนสูง , ยูเรีย ) ใช้กับบางส่วน
( ถิ่น ) ในส่วนของระบบรากในดอกกุหลาบผลลัพธ์วันที่ระบุว่า
เรือนกระจกกุหลาบพืช โดยเฉพาะอย่างยิ่งที่กราฟต์บน ' Natal Briar ' ยังคงค่อนข้างไวต่อความเค็มและ
rootzone พีเอชสูง แม้กระทบเพียง
บางส่วนในส่วนของระบบราก ข้อมูลเพิ่มเติมเป็นสิ่งจำเป็นในปลูกกุหลาบ
การแสดงบนต้นตอ อื่น ๆ , การจำแนก
ความอดทนสูงสุดเกณฑ์สำหรับ rootzone ความเครียดทางกายภาพ เคมี และการจัดการการปฏิบัติที่เพียงพอ
ส่วนใหญ่ต้องจัดการกับพวกเขาในเงื่อนไขการผลิต
เรือนกระจกในเชิงพาณิชย์ แนะนำการผลิตกุหลาบ ( Rosa L . ) ตัดดอกเป็นเข้มมาก
การรับน้ำขนาดใหญ่ ปุ๋ย และสารเคมีปัจจัยการผลิต คู่กับสูง
พลังงานและแรงงาน ความต้องการ และค่าใช้จ่ายกุหลาบตัดดอกในการผลิตตามหลัก
โดยพืชที่เติบโตในพื้นผิวที่ต่อเนื่องกับการขนส่ง fertigated
สารละลายธาตุอาหาร ( duys และชออูเติ้น , 2001 ) .
ประมาณสองทศวรรษที่ผ่านมาเกษตรกรผู้ปลูกกุหลาบในทวีปอเมริกาเปลี่ยนสมบูรณ์
ใช้ของต้นตอ ' Natal Briar ' ซึ่งมีการขยายพันธุ์พืชและ
ทุนสำรองระหว่างประเทศเพิ่มผลิตภาพและคุณภาพ ( และดอกไม้ duys ชออูเติ้น , 2001 ; ชอบแล้ว et al . ,
2009 ) ผลการวิจัยล่าสุด ( ชอบแล้ว et al . , 2009 ; Niu et al . , 2008 ) และกุหลาบปลูก
รายงานชี้ให้เห็นว่า การแสดงนี้เป็นอย่างมาก และวิธีรับผลกระทบ
โดยเน้น rootzone อ่อนชอบความเค็ม พีเอช
ค่อนข้างสูงแม้จะมีธรรมชาติของน้ำกุหลาบเข้มข้นในการผลิตและส่วน
ค่าและภายในวัสดุปลูกที่ใช้ ( และ duys ชออูเติ้น , 2001 ) , ความจริง
คือว่ากิจกรรมปริมาณจำกัด ( รากสามารถนำไปสู่การเปลี่ยนแปลงที่สำคัญและแบบไดนามิก
พื้นที่และเวลาในคุณสมบัติของสารเคมีตั้งต้น โดยเฉพาะอย่างยิ่งในเขตใกล้
ไปพื้นผิวของราก ( ซิล , 2008 )
cabreraa R.I เรือนกระจกเท็กซัสเท็กซัสศูนย์วิจัยระบบ SI
& M มหาวิทยาลัย 17360 คอยต์ถนน ดัลลัส เท็กซัส สหรัฐอเมริกา 75252
คำสำคัญ : pH สูง , โบรอน , ยูเรีย , ความเค็ม , บางส่วนของความเครียด
นามธรรม
การผลิตกุหลาบตัดเป็น ระบบการปลูกพืชที่อาศัย
เข้มข้นสูงในการใช้งานสูงมาก น้ำและสารอาหารที่บังคับให้อุตสาหกรรมเพื่อดู
เข้าไปจับและการระบายน้ำ และการใช้ทดแทน poorquality
น้ำน้ำ การศึกษาเบื้องต้นนี้ประเมินผลของความเครียดที่เกี่ยวข้องกับคุณภาพน้ำ
( ความเค็ม pH สูงสูง , โบรอนสูง , ยูเรีย ) ใช้กับบางส่วน
( ถิ่น ) ในส่วนของระบบรากในดอกกุหลาบผลลัพธ์วันที่ระบุว่า
เรือนกระจกกุหลาบพืช โดยเฉพาะอย่างยิ่งที่กราฟต์บน ' Natal Briar ' ยังคงค่อนข้างไวต่อความเค็มและ
rootzone พีเอชสูง แม้กระทบเพียง
บางส่วนในส่วนของระบบราก ข้อมูลเพิ่มเติมเป็นสิ่งจำเป็นในปลูกกุหลาบ
การแสดงบนต้นตอ อื่น ๆ , การจำแนก
ความอดทนสูงสุดเกณฑ์สำหรับ rootzone ความเครียดทางกายภาพ เคมี และการจัดการการปฏิบัติที่เพียงพอ
ส่วนใหญ่ต้องจัดการกับพวกเขาในเงื่อนไขการผลิต
เรือนกระจกในเชิงพาณิชย์ แนะนำการผลิตกุหลาบ ( Rosa L . ) ตัดดอกเป็นเข้มมาก
การรับน้ำขนาดใหญ่ ปุ๋ย และสารเคมีปัจจัยการผลิต คู่กับสูง
พลังงานและแรงงาน ความต้องการ และค่าใช้จ่ายกุหลาบตัดดอกในการผลิตตามหลัก
โดยพืชที่เติบโตในพื้นผิวที่ต่อเนื่องกับการขนส่ง fertigated
สารละลายธาตุอาหาร ( duys และชออูเติ้น , 2001 ) .
ประมาณสองทศวรรษที่ผ่านมาเกษตรกรผู้ปลูกกุหลาบในทวีปอเมริกาเปลี่ยนสมบูรณ์
ใช้ของต้นตอ ' Natal Briar ' ซึ่งมีการขยายพันธุ์พืชและ
ทุนสำรองระหว่างประเทศเพิ่มผลิตภาพและคุณภาพ ( และดอกไม้ duys ชออูเติ้น , 2001 ; ชอบแล้ว et al . ,
2009 ) ผลการวิจัยล่าสุด ( ชอบแล้ว et al . , 2009 ; Niu et al . , 2008 ) และกุหลาบปลูก
รายงานชี้ให้เห็นว่า การแสดงนี้เป็นอย่างมาก และวิธีรับผลกระทบ
โดยเน้น rootzone อ่อนชอบความเค็ม พีเอช
ค่อนข้างสูงแม้จะมีธรรมชาติของน้ำกุหลาบเข้มข้นในการผลิตและส่วน
ค่าและภายในวัสดุปลูกที่ใช้ ( และ duys ชออูเติ้น , 2001 ) , ความจริง
คือว่ากิจกรรมปริมาณจำกัด ( รากสามารถนำไปสู่การเปลี่ยนแปลงที่สำคัญและแบบไดนามิก
พื้นที่และเวลาในคุณสมบัติของสารเคมีตั้งต้น โดยเฉพาะอย่างยิ่งในเขตใกล้
ไปพื้นผิวของราก ( ซิล , 2008 )
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- สีตาของคุณสวยมาก
- Ridiculous things
- ทักมาได้เลย
- เอวของฉันขนาด 28 นิ้ว
- ตลาดน้ำอัมพวา เป็นสถานที่ที่นักท่องเที่ย
- I love dancing
- thriving
- I remember talked to your friend marky a
- ไม่ผ่านการทดสอบทั้งหมด
- I love dancing
- 我很孤独，就像你
- ดังขึ้น
- พยายามเข้า ไม่ยากหรอก
- A formal bid document prepared by MORU f
- Duc brought converted to play sport.
- มันมีกิจกรรมอะไรบ้าง?
- Micro-structural changesRepresentative c
- Temperature change during composting pro
- จากนั้นน้ำจะไหลเข้าท่อน้ำไปยังแท้งน้ำ
- ฉันพูดภาษาอังกฤษได้เล็กน้อย มันทำให้ฉันร
- A formal bid document prepared by MORU f
- Companies are also targeting students di
- ทดสอบโหลด
- การตัดสินใจในการเลือกที่ทำงาน
