2.5.2. In vitro digestion and absor

2.5.2. In vitro digestion and absorption
In vitro digestion and absorption were performed according to
Gawlik-Dziki et al.(2009). The bread samples (1 g) were homogenized
in a stomacher laboratory blender for 1 min to simulate
mastication with the presence of 15 mL of simulated salivary fluid
(prepared by dissolving 2.38 g Na2HPO4, 0.19 g KH2PO4, and 8 g
NaCl, 100 mg of mucin in 1 L of distilled water. The solution was
adjusted to pH ¼ 6.75 and a-amylase (E.C. 3.2.1.1.) was added to
obtain 200 U per mL of enzyme activity. For the gastric digestion
300 U/mL of pepsin (from porcine stomach mucosa, pepsin A, EC
3.4.23.1) in 0.03 mol/L NaCl, pH ¼ 1.2 was prepared. Further,
simulated intestinal juice was prepared by dissolving 0.05 g of
pancreatin (activity equivalent 4  USP) and 0.3 g of bile extract in
35 mL 0.1 mol/L NaHCO3), and subsequently, the samples were
shaken for 10 min at 37
C. The samples were adjusted to pH ¼ 1.2
using 5 mol/L HCl, and subsequently, 15 mL of simulated gastric
fluid was added. The samples were shaken for 120 min at 37
C.
After digestion with the gastric fluid, the samples were adjusted to
pH ¼ 6 with 0.1 mol/L of NaHCO3 and then 15 mL of a mixture of
bile extract and pancreatin was added. The extracts were adjusted
to pH ¼ 7 with 1 mol/L NaOH and finally 5 mL of 120 mmol/L NaCl
and 5 mL of mmol/LKCl were added to each sample. The prepared
samples were submitted for in vitro digestion for 60 min, at 37
C in
the darkness. After that samples were centrifuged and supernatants
(extracts after simulated digestion, GE) were used for further
analysis.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.5.2 การเพาะในย่อยอาหารและการดูดซึมในการย่อยอาหารและดูดซึมได้ดำเนินการตามGawlik Dziki et al.(2009) ตัวอย่างขนมปัง (1 g) ถูก homogenized เป็นกลุ่มในเบลนเดอร์ห้องปฏิบัติการแผงประดับหน้าอกใน 1 นาทีเพื่อจำลองmastication มีของ 15 มล.ของเหลวจำลอง salivary(เตรียม โดยยุบ 2.38 g Na2HPO4, 0.19 g KH2PO4 และ 8 กรัมNaCl, 100 มก. mucin ในน้ำกลั่น 1 ลิตร โซลูชั่นปรับ pH ¼ 6.75 และมี amylase (E.C. 3.2.1.1 การ) ถูกเพิ่มเข้าไปรับ 200 บาท U / mL ของเอนไซม์ การย่อยอาหารในกระเพาะอาหารU 300 mL ของเพพซิน (จากช่วงท้อง mucosa เพพซิน A, EC3.4.23.1) ใน 0.03 โมล/L NaCl, pH ¼ 1.2 เตรียมการ เพิ่มเติมน้ำเลียนแบบลำไส้ถูกเตรียม โดยยุบ 0.05 g ของpancreatin (กิจกรรม 4 เทียบเท่า USP) และ 0.3 g ของน้ำดีแยกใน35 mL 0.1 โมล/L NaHCO3), และในเวลาต่อมา ตัวอย่างยนต์สำหรับ 10 นาทีที่ 37C. ตัวอย่างถูกปรับ pH ¼ 1.2ใช้โมล 5 L HCl และในเวลาต่อมา 15 mL จำลองในกระเพาะอาหารมีเพิ่มน้ำมัน ตัวอย่างถูกเขย่าใน 120 นาทีที่ 37คหลังจากย่อยอาหารกับน้ำในกระเพาะอาหาร ตัวอย่างถูกปรับปรุงค่า pH ¼ 6 กับโมล 0.1 L ของ NaHCO3 แล้ว 15 mL ผสมระหว่างมีเพิ่มน้ำดีสารสกัดและ pancreatin สารสกัดได้ปรับปรุงpH ¼ 7 กับ 1 โมล/L NaOH และสุดท้าย 5 mL ของ 120 mmol/L NaClและเพิ่มอย่างละ 5 mL ของ mmol/LKCl เตรียมไว้ตัวอย่างส่งมาสำหรับการย่อยอาหารการเพาะเลี้ยงสำหรับ 60 นาที ที่ 37C ในความมืด หลังจากที่ ตัวอย่างได้ centrifuged และ supernatants(บางส่วนหลังจากย่อยอาหารจำลอง GE) ใช้สำหรับเพิ่มเติมวิเคราะห์

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.5.2
ในการย่อยอาหารและการดูดซึมหลอดทดลองในหลอดทดลองการย่อยอาหารและการดูดซึมได้ดำเนินการตาม
Gawlik-Dziki et al. (2009) กลุ่มตัวอย่างขนมปัง (1 กรัม)
ได้รับการปั่นในStomacher ปั่นห้องปฏิบัติการเป็นเวลา 1
นาทีเพื่อจำลองเคี้ยวกับการปรากฏตัวของ15 มิลลิลิตรของของเหลวลายจำลอง
(จัดทำโดยการละลาย 2.38 กรัม Na2HPO4 0.19 กรัม KH2PO4 และ 8
กรัมโซเดียมคลอไรด์100 มิลลิกรัม mucin ใน 1 ลิตรของน้ำกลั่น.
วิธีการแก้ปัญหาที่ได้รับการปรับให้ค่าpH ¼ 6.75 และอะไมเลส (EC 3.2.1.1.)
ได้ถูกเพิ่มเข้าไปให้ได้200 U ต่อมิลลิลิตรของเอนไซม์. สำหรับการย่อยอาหารในกระเพาะอาหาร
300 U / มิลลิลิตรน้ำย่อย ( จากเยื่อบุกระเพาะหมู, น้ำย่อย A, EC
3.4.23.1) ใน 0.03 โมล / ลิตรโซเดียมคลอไรด์มีค่า pH 1.2 ¼ถูกจัดทำขึ้น.
นอกจากนี้น้ำผลไม้จำลองลำไส้ถูกจัดทำขึ้นโดยการละลาย0.05 กรัม
Pancreatin (กิจกรรมเทียบเท่า 4 USP) และ 0.3 กรัม สารสกัดจากน้ำดีใน
35 มิลลิลิตร 0.1 โมล / ลิตร NaHCO3)
และต่อมากลุ่มตัวอย่างถูกเขย่าเป็นเวลา10 นาทีที่ 37
องศาเซลเซียส กลุ่มตัวอย่างที่มีการปรับค่าพีเอช 1.2
¼ใช้5 โมล / ลิตร HCl และต่อมา 15
มิลลิลิตรในกระเพาะอาหารจำลองของเหลวถูกเพิ่มเข้ามา กลุ่มตัวอย่างถูกเขย่าเป็นเวลา 120 นาทีที่ 37 องศาเซลเซียสหลังจากการย่อยอาหารที่มีของเหลวในกระเพาะอาหารที่มีการปรับตัวอย่างจะมีค่าpH ¼ 6 0.1 โมล / ลิตร NaHCO3 แล้ว 15 มิลลิลิตรส่วนผสมของสารสกัดจากน้ำดีและPancreatin ถูกเพิ่มเข้ามา สารสกัดมีการปรับค่าพีเอช 7 ¼ 1 mol / L NaOH และสุดท้าย 5 มิลลิลิตร 120 มิลลิโมล / ลิตรโซเดียมคลอไรด์และ5 มิลลิลิตรมิลลิโมล / LKCl ถูกเพิ่มเข้าไปในแต่ละตัวอย่าง เตรียมตัวอย่างที่ถูกส่งมาในหลอดทดลองสำหรับการย่อยอาหารเป็นเวลา 60 นาทีที่ 37 ซีในความมืด หลังจากที่กลุ่มตัวอย่างที่ได้รับการหมุนเหวี่ยงและ supernatants (สารสกัดจากหลังจากการย่อยอาหารจำลอง GE) ถูกนำมาใช้ต่อการวิเคราะห์

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

งานวาง . ในหลอดทดลองการย่อยและการดูดซึมในลำไส้ การดูดซึมสาร

มีการปฏิบัติตาม gawlik dziki et al . ( 2009 ) อาหารตัวอย่าง ( 1 กรัม ) เป็นโฮโม
ในแผงประดับหน้าอกปฏิบัติการปั่น 1 นาทีเพื่อจำลอง
เคี้ยวกับการปรากฏตัวของ 15 มิลลิลิตร ) น้ำลายของเหลว
( เตรียมโดยละลาย 2.38 g na2hpo4 , 0.19 กรัม kh2po4 ขนาด 8 G ,
,100 มิลลิกรัมของเยื่อเมือกใน 1 ลิตรของน้ำ . สารละลาย
ค่า pH และ¼ 6.75 a-amylase ( อีซี 3.2.1.1 ) เพิ่ม

ขอรับ 200 U ต่อมิลลิลิตรของกิจกรรมของเอนไซม์ สำหรับกระเพาะอาหารการย่อยอาหาร
300 U / ml เอนไซม์เปปซิน ( จากกระเพาะอาหาร mucosa ของสุกร เพพซิน , EC
3.4.23.1 ) 0.03 mol / l โซเดียมคลอไรด์พีเอช¼ 1.2 ที่เตรียมไว้ ต่อไป ,
) น้ำย่อยในลำไส้ถูกเตรียมโดยละลาย 0.05 กรัม
( กิจกรรมที่ 4  Pancreatin เทียบเท่า USP ) และ 0.3 กรัมสกัดในน้ำดี
35 ml 0.1 mol / L โซเดียมไบคาร์บอเนต ) และต่อมาจำนวน
เขย่าสำหรับ 10 นาทีที่ 37
C . จำนวนค่า pH ¼ 1.2
ใช้ HCl 5 โมล / ลิตร และต่อมา 15 มิลลิลิตร ) ในกระเพาะอาหาร
ของเหลวเพิ่ม จำนวน 120 นาทีที่ 37 เขย่า
C
หลังจากการย่อยด้วยของเหลวในกระเพาะอาหารจำนวนปรับ

,¼ 0.1 โมลพีเอช 6 ลิตรโซเดียมไบคาร์บอเนตและ 15 ml ส่วนผสมของ
สกัดน้ำดี และ Pancreatin ถูกเพิ่มเข้ามา สารสกัดทำการปรับ pH ¼
7 กับ 1 โมล / ลิตร NaOH และสุดท้าย 5 ml 120 mmol / L NaCl
และ 5 มิลลิลิตร mmol / lkcl ถูกเพิ่มเข้าไปในแต่ละตัวอย่าง เตรียม
จำนวนและในการย่อยอาหารร่างกาย 60 นาทีที่ 37
C
ความมืด หลังจากนั้น จำนวนและระดับ supernatants
( สารสกัดจากการย่อยอาหาร , GE ) ใช้สำหรับการวิเคราะห์ต่อไป