Fruits 94 DAFB were used for determ

Fruits 94 DAFB were used for determining in-vitro response
to different CO2 concentrations, and fruits 114 DAFB were for
different low PPFD, respectively, because the mandarin fruits
show active photosynthesis during these stages as reported previously
[5]. Photosynthesis and respiration rates were measured
by oxygen electrode apparatus (Rank Brothers, Cambridge, U.K.)
supplemented with halogen lamps (Sumita Optical Glass, Saitama,
Japan) as reported earlier [5]. Briefly, 10 rind discs (3 mm diameter)
were prepared from equator zone of three fruits with the albedo
tissue removed, soaked in 0.05 M phosphate buffer (pH 7.0) for
30 s, and placed in an electrode tank with 3 ml of fresh phosphate
buffer at 25 ◦C. The CO2 concentration, 50–1000 ppm, was adjusted
by adding different amount of NaHCO3 solution into the tank and
PPFD of 135 mol m−2 s−1 was supplied. The pH in the tank was
7.0. Meanwhile, PPFD, from 2.7 to 270 mol m−2 s−1, was regulated
by placing the lamp at various distances from the electrode tank
containing 440 ppm CO2. The O2 increase (net photosynthesis) in
the buffer was recorded under light conditions for 15 min, then O2
decrease (respiration) was measured for 10 min under dark by covering
the tank with three layers of aluminum foil. Before use, the
buffer had been bubbled with N2 gas for 1 h and stored in a desiccator
containing 2 M NaOH to remove CO2. Leaf photosynthesis
and respiration rates were also measured as a control by using 10
discs (3 mm diameter) from five leaves at the same sampling date.
Experiments were repeated at least 3 times and mean value ± SE
was presented.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

DAFB 94 ผลไม้ใช้สำหรับกำหนดเครื่องตอบสนองความเข้มข้นของ CO2 ที่แตกต่างกัน และผลไม้ 114 DAFB ได้สำหรับต่าง ๆ ต่ำเนื่องจาก PPFD ตามลำดับ ผลไม้โรงแรมแมนดารินแสดงการสังเคราะห์ด้วยแสงที่ใช้งานอยู่ในระหว่างขั้นตอนเหล่านี้ตามรายงานก่อนหน้านี้[5] มีวัดอัตราการสังเคราะห์ด้วยแสงและการหายใจโดยออกซิเจนเครื่องอิเล็กโทรด (พี่น้องอันดับ เคมบริดจ์ สหราชอาณาจักร)เสริม ด้วยโคมไฟฮาโลเจน (Sumita แสงแก้ว ไซตะมะญี่ปุ่น) ก่อนหน้ารายงาน [5] สั้น ๆ 10 แคบแผ่น (เส้นผ่าศูนย์กลาง 3 มิลลิเมตร)ถูกเตรียมจากเขตเส้นศูนย์สูตรของผลไม้สามกับ albedoเอาออกเนื้อเยื่อ การนำไปแช่ใน 0.05 M ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 7.0) สำหรับ30 s และใส่ในถังอิเล็กโทรดกับ 3 ml ของฟอสเฟตสดบัฟเฟอร์ที่ 25 ◦C มีการปรับปรุงความเข้มข้น CO2, 50 – 1000 ppmโดยการเพิ่มจำนวน NaHCO3 โซลูชันต่าง ๆ ในถัง และPPFD s−1 m−2 โมล 135 ที่ให้ ค่า pH ในถังได้7.0 ขณะเดียวกัน PPFD จาก 2.7 การ 270 โมล m−2 s−1 ถูกควบคุมด้วยการวางโคมไฟที่มีระยะห่างต่าง ๆ จากถังอิเล็กโทรดประกอบด้วย 440 ppm CO2 เพิ่ม O2 (สังเคราะห์ด้วยแสงสุทธิ) ในบัฟเฟอร์ที่ถูกบันทึกภายใต้สภาพแสงสำหรับ 15 นาที O2 แล้วลดลง (หายใจ) ถูกวัดใน 10 นาทีภายใต้ความมืด โดยครอบคลุมถังอลูมิเนียมสามชั้นด้วย ก่อนการใช้ การบัฟเฟอร์มีเป็นฟอง ด้วยก๊าซ N2 สำหรับ 1 h และเก็บไว้ใน desiccator เป็นประกอบด้วย 2 M NaOH เอา CO2 การสังเคราะห์ด้วยแสงของใบไม้และยังมีวัดเป็นตัวควบคุมอัตราการหายใจ โดยใช้ 10แผ่น (เส้นผ่าศูนย์กลาง 3 มิลลิเมตร) จากใบที่ห้าในวันสุ่มตัวอย่างเดียวกันทดลองที่ถูกทำซ้ำอย่างน้อย 3 ครั้ง และหมายถึง ค่า± SEได้นำเสนอ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ผลไม้ 94 DAFB
ถูกนำมาใช้ในการพิจารณาการตอบสนองในหลอดทดลองความเข้มข้นของCO2 ที่แตกต่างกันและผลไม้ 114 DAFB
ได้สำหรับที่แตกต่างกันในระดับต่ำPPFD
ตามลำดับเนื่องจากผลไม้ส้มแมนดารินแสดงการสังเคราะห์แสงที่ใช้งานในระหว่างขั้นตอนเหล่านี้เป็นรายงานก่อนหน้านี้
[5] การสังเคราะห์แสงและอัตราการหายใจถูกวัดโดยเครื่องมืออิเลคโทรออกซิเจน (บราเดอร์อันดับเคมบริดจ์สหราชอาณาจักร) เสริมด้วยหลอดฮาโลเจน (Sumita Optical Glass, ไซตามะ, ญี่ปุ่น) ขณะที่รายงานก่อนหน้านี้ [5] สั้น ๆ , 10 แผ่นเปลือก (3 มิลลิเมตร) ที่เตรียมจากเขตเส้นศูนย์สูตรของสามผลไม้ที่มีอัลเบโด้เนื้อเยื่อออกแช่ใน 0.05 M ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 7.0) สำหรับ 30 วินาทีและวางไว้ในถังอิเล็กโทรดที่มี 3 มิลลิลิตรฟอสเฟตสดบัฟเฟอร์ที่ 25 ◦C ความเข้มข้นของ CO2, 50-1000 ppm ถูกปรับโดยการเพิ่มจำนวนเงินที่แตกต่างกันของการแก้ปัญหาNaHCO3 ลงในถังและPPFD 135 เมตร mol-2 s-1 ที่จัด ค่า pH ในถังเป็น7.0 ในขณะเดียวกัน PPFD, 2.7-270 เมตร mol-2 s-1 ถูกควบคุมโดยการวางโคมไฟที่ระยะทางต่างๆจากถังอิเล็กโทรดที่มีCO2 440 ppm การเพิ่มขึ้นของ O2 (สังเคราะห์แสงสุทธิ) ในบัฟเฟอร์ถูกบันทึกไว้ภายใต้สภาพแสงนาน15 นาทีแล้ว O2 ลดลง (หายใจ) วัดเป็นเวลา 10 นาทีภายใต้ความมืดโดยครอบคลุมรถถังที่มีสามชั้นของอลูมิเนียม ก่อนที่จะใช้งานบัฟเฟอร์ได้รับฟองก๊าซ N2 เป็นเวลา 1 ชั่วโมงและเก็บไว้ในเดซิมี2 M NaOH จะลบ CO2 การสังเคราะห์ใบและอัตราการหายใจยังวัดที่ได้รับการควบคุมโดยใช้ 10 แผ่น (3 มิลลิเมตร) จากห้าใบ ณ วันที่สุ่มตัวอย่างเดียวกัน. ทดลองซ้ำแล้วซ้ำอีกอย่างน้อย 3 ครั้งและค่าเฉลี่ย± SE ที่ถูกนำเสนอ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ผลไม้ 94 ว่าใช้เพื่อกำหนดปริมาณ CO2 ใน
คำตอบต่าง ๆและผลไม้ 114 ว่าถูก
ppfd ต่ำแตกต่างกันตามลำดับ เพราะภาษาจีนกลางผลไม้
แสดงงานสังเคราะห์แสง ในระหว่างขั้นตอนเหล่านี้ตามที่รายงานก่อนหน้านี้
[ 5 ] อัตราการสังเคราะห์แสงและการหายใจ โดยเครื่องมือวัด
ขั้วออกซิเจน ( อันดับพี่น้อง , Cambridge , UK )
เสริมด้วยหลอดฮาโลเจน ( sumita แก้วแสง , Saitama ,
ญี่ปุ่น ) ตามที่รายงานก่อนหน้านี้ [ 5 ] สั้น ๆ , 10 แผ่นเปลือก ( 3 มม. เส้นผ่าศูนย์กลาง )
เตรียมจากบริเวณเส้นศูนย์สูตรของ 3 ผลไม้กับผู้ทรยศ
เนื้อเยื่อออก แช่ใน 0.05 M ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.0 )
30 , และวางไว้ในถังมีขั้ว 3 มล. ของฟอสเฟตบัฟเฟอร์
สด 25 ◦ C CO2 ความเข้มข้น 50 , ปรับ
– 1000 ส่วนในล้านส่วนโดยการเพิ่มจำนวนเงินที่แตกต่างกันของโซเดียมไบคาร์บอเนต โซลูชั่น เข้าสู่ถัง
ppfd 135 mol m − 2 s − 1 ก็มา pH ในถัง
7.0 . ขณะเดียวกัน ppfd จาก 2.7 ถึง 270 mol m − 2 s − 1 คือการควบคุม
โดยการวางโคมไฟที่ระยะทางต่าง ๆจากขั้วที่มีถัง
440 ppm CO2 เพิ่ม O2 ( การสังเคราะห์แสงสุทธิ )
บัฟเฟอร์ถูกบันทึกในสภาพแสง 15 นาทีแล้ว O2
ลด ( การหายใจ ) วัดเป็นเวลา 10 นาที ภายใต้ความมืด โดยครอบคลุม
ถัง 3 ชั้นของอลูมิเนียมฟอยล์ ก่อนใช้ บัฟเฟอร์ได้รับกับ N2
ฟองก๊าซเป็นเวลา 1 ชั่วโมง และเก็บไว้ในเดซิกเคเตอร์
2 M NaOH ที่มีการเอา CO2 อัตราการสังเคราะห์แสงและการหายใจ
ใบยังวัดเป็นควบคุมโดยใช้แผ่น ( 10
3 มม. เส้นผ่าศูนย์กลาง ) จากห้าใบที่เหมือนกัน
) วันที่การทดลองซ้ำ อย่างน้อย 3 ครั้ง และมีค่าเฉลี่ย±เซ



ถูกเสนอ