In this work we addressed the main limiting step of DHproduction in eg การแปล - In this work we addressed the main limiting step of DHproduction in eg ไทย วิธีการพูด

In this work we addressed the main

In this work we addressed the main limiting step of DH
production in eggplant through microspore culture: the
regeneration of entire DH plants from microspore-derived
calli. After testing several media previously proposed in the
literature to regenerate eggplant plantlets from explants of
different origins, the results presented hereby clearly point
to the use of M1 (Miyoshi 1996) to obtain the highest rate
of shoot-producing organogenic calli. However, this
medium alone is not sufficient to promote shoot growth.
According to our results, we propose the repeated subculture
(approximately on a monthly basis) of the microsporederived
calli in M1, and then the repeated subculture of the
excised shoots in basal MS medium (M11) to promote the
development of new normal-appearing organs and the
rooting of shoots, and therefore the formation of entire
plantlets. As shown in Table 1, this procedure allowed us
to obtain 7.6 plants every 100 cultivated calli, which represents
a remarkable improvement (*49) compared with
the 2 % obtained in the only previous reference of entire
plant regeneration from eggplant microspore-derived calli
(Miyoshi 1996). We also showed that media supplemented
with GA3, and in particular M13, produced more elongated
shoots, ready for rooting, than any other media. However,
the inability of this medium to promote root growth, and
the increased time and expenses associated to the use of an
additional step with M13, make us to discourage its use.
Finally, we obtained a high frequency of DH individuals
(69.3 %), which is also higher than those previously reported
for eggplant DHs coming from both anther and
microspore culture. To increase this frequency, the genome
of the 5.7 % haploids might be duplicated with colchicine
or oryzalin (Dhooghe et al. 2011). However, *70 % of
DHs seems a percentage good enough for most breeding
programs, and makes us propose to discard the addition of
a step for genome doubling of the haploid individuals,
which can just be disposed of.
0/5000
จาก: -
เป็น: -
ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]
คัดลอก!
ในงานนี้ เราอยู่ในขั้นตอนข้อจำกัดหลักของ DHผลิตในมะเขือยาวผ่าน microspore วัฒนธรรม: การฟื้นฟูทั้ง DH พืชจาก microspore มาcalli หลังจากทดสอบหลายสื่อเคยนำเสนอในการเอกสารประกอบการสร้าง plantlets มะเขือจาก explants ของต้นกำเนิดแตกต่างกัน ผลการนำเสนอชัดเจนขอชี้การใช้ M1 (มิโยชิ 1996) ได้รับอัตราสูงสุดของผลิตยิง calli organogenic อย่างไรก็ตาม นี้สื่อเพียงอย่างเดียวไม่เพียงพอที่จะส่งเสริมการเจริญเติบโตในการยิงตามผลของเรา เราเสนอวัฒนธรรมซ้ำ(ประมาณในเดือน) ของ microsporederivedcalli ใน M1 และวัฒนธรรมซ้ำของการexcised ยอดในโรค MS (M11) เพื่อส่งเสริมการพัฒนาอวัยวะปกติปรากฏใหม่และrooting ของถ่ายภาพ และการก่อตัวของทั้งหมดplantlets ดังแสดงในตารางที่ 1 ขั้นตอนนี้ให้เรารับ 100 ทุกพืช 7.6 cultivated calli ซึ่งแสดงถึงการปรับปรุงที่โดดเด่น (* 49) เปรียบเทียบกับ2% ที่ได้รับในการอ้างอิงทั้งหมดก่อนหน้านี้เท่านั้นจาก calli มา microspore มะเขือ(มิโยชิ 1996) นอกจากนี้เรายังพบสื่อที่เสริมGA3 และ ในเฉพาะ M13 ผลิตมากอีลองเกตถ่ายภาพ พร้อมสำหรับ rooting กว่าสื่ออื่น ๆ อย่างไรก็ตามไม่สื่อนี้เพื่อส่งเสริมการเจริญเติบโตของราก และเพิ่มเวลาและค่าใช้จ่ายที่เกี่ยวข้องกับการใช้การขั้นตอนเพิ่มเติมกับ M13 ทำให้เราสามารถกีดกันการใช้สุดท้าย เรารับความถี่สูงของบุคคล DH(69.3%), ซึ่งก็สูงกว่าที่รายงานก่อนหน้านี้สำหรับมะเขือ DHs มาจาก anther ทั้งสอง และmicrospore วัฒนธรรม เมื่อต้องการเพิ่มความถี่นี้ ในจีโนม% 5.7 haploids อาจถูกทำซ้ำกับโคลชิซีนหรือ oryzalin (Dhooghe et al. 2011) อย่างไรก็ตาม, * 70% ของDHs เปอร์เซ็นต์ที่ดูเหมือนว่าดีพอสำหรับผสมพันธุ์มากที่สุดโปรแกรม และทำให้เราเสนอการยกเลิกการเพิ่มขั้นตอนสำหรับจีโนมจะบุคคล haploidซึ่งสามารถเพียงสามารถตัดจำหน่าย
การแปล กรุณารอสักครู่..
ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]
คัดลอก!
ในงานนี้เราแก้ไขขั้นตอนการ จำกัด หลักของ DH
การผลิตในมะเขือผ่านทางวัฒนธรรม microspore
คือการงอกของพืชDH ทั้งจาก microspore
ที่ได้มาจากแคลลัส การทดสอบหลังจากที่หลายสื่อที่นำเสนอก่อนหน้านี้ในวรรณคดีงอกต้นมะเขือจากชิ้นส่วนของต้นกำเนิดที่แตกต่างกันผลที่นำเสนอขอชัดเจนชี้ไปที่การใช้งานของM1 (มิโยชิ 1996) ที่จะได้รับอัตราที่สูงที่สุดของการถ่ายผลิตorganogenic แคลลัส แต่นี้กลางเพียงอย่างเดียวไม่เพียงพอที่จะส่งเสริมการเจริญเติบโตยิง. ตามผลของเราที่เรานำเสนอวัฒนธรรมซ้ำ(โดยประมาณเป็นรายเดือน) ของ microsporederived แคลลัสใน M1 แล้วศักดาซ้ำของหน่อพอในสื่อพื้นฐานMS (M11) เพื่อส่งเสริมการพัฒนาของอวัยวะปกติที่ปรากฏใหม่และรากของหน่อและดังนั้นจึงก่อตัวของทั้งต้น ดังแสดงในตารางที่ 1 ขั้นตอนนี้ให้เราที่จะได้รับ7.6 พืชทุก ๆ 100 ที่ปลูกแคลลัสซึ่งหมายถึงการปรับปรุงที่โดดเด่น(* 49) เมื่อเทียบกับ2% ที่ได้รับในการอ้างอิงที่ก่อนหน้านี้เพียงหนึ่งเดียวของทั้งการฟื้นฟูพืชจากมะเขือแคลลัสmicrospore มา( มิโยชิ 1996) นอกจากนี้เรายังแสดงให้เห็นว่าอาหารที่เสริมด้วย GA3 และโดยเฉพาะ M13 ผลิตยาวมากขึ้นหน่อพร้อมสำหรับการขจัดกว่าสื่ออื่นๆ แต่ไร้ความสามารถของสื่อนี้เพื่อส่งเสริมการเจริญเติบโตของรากและเวลาที่เพิ่มขึ้นและค่าใช้จ่ายที่เกี่ยวข้องกับการใช้ที่ขั้นตอนเพิ่มเติมกับM13 ให้เราที่จะกีดกันการใช้งาน. สุดท้ายเราได้รับความถี่สูงของบุคคลเอช(69.3%) ซึ่งยังสูงกว่าที่รายงานก่อนหน้านี้สำหรับDHs มะเขือยาวมาจากอับละอองเกสรและวัฒนธรรมmicrospore เพื่อเพิ่มความถี่นี้จีโนมของ haploids 5.7% อาจจะซ้ำกับโคลชิซินหรือoryzalin (Dhooghe et al. 2011) อย่างไรก็ตาม * 70% ของDHs ดูเหมือนว่าร้อยละที่ดีพอสำหรับการเพาะพันธุ์มากที่สุดโปรแกรมและทำให้เราเสนอให้ยกเลิกการเพิ่มขึ้นของขั้นตอนสำหรับการเพิ่มขึ้นของจีโนมของบุคคลเดี่ยวเป็นซึ่งก็สามารถถูกกำจัด































การแปล กรุณารอสักครู่..
ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]
คัดลอก!
ในงานนี้เราส่งหลักการขั้นตอนการผลิต DH
ในมะเขือผ่านวัฒนธรรม : การงอกของละอองเกสรพืช
DH ทั้งจากการเพาะเลี้ยงแคลลัสได้มา
. หลังจากการทดสอบหลายสื่อเคยเสนอใน
วรรณกรรมสร้างจากเนื้อเยื่อของต้นมะเขือ
ที่มาต่างกัน ผลลัพธ์ที่แสดงจุด
ขอชัดๆการใช้ M1 ( มิโยชิ 1996 ) เพื่อให้ได้คะแนนสูงสุดของยอดการผลิต organogenic
เปอร์เซ็นต์ . อย่างไรก็ตาม , นี้
สื่อเพียงอย่างเดียวนั้นไม่เพียงพอที่จะส่งเสริมการเจริญเติบโตยิง
ตามผลลัพธ์ของเรา เราขอย้ำ 2
( ประมาณบนพื้นฐานรายเดือน ) ของ microsporederived
แคลลัสใน M1 แล้วซ้ำวัฒนธรรมย่อยของ
ตัดยอดในอาหาร MS ( m11 ) เพื่อส่งเสริม
การพัฒนาใหม่ปรากฏเป็นปกติและอวัยวะ
รากของยอด และดังนั้น การก่อตัวของต้นทั้งหมด

ดังแสดงในตารางที่ 1 ขั้นตอนนี้ให้เรา
ขอรับทุกๆ 100 เปอร์เซ็นต์ 7.6 พืชปลูก ซึ่งถือเป็นโครงการที่โดดเด่น (

* 49 ) เมื่อเทียบกับร้อยละ 2 ได้ในเพียงก่อนหน้าการอ้างอิงของพืชทั้งจากมะเขือละอองเกสรงอก

ได้แคลลัส( มิโยชิ 1996 ) นอกจากนี้เรายังพบว่า สื่อเสริม
กับ GA3 และโดยเฉพาะอย่างยิ่ง M13 ผลิตอีกยาว
ยิงพร้อมราก มากกว่าสื่ออื่นๆ อย่างไรก็ตาม ,
ไม่สามารถของสื่อนี้เพื่อส่งเสริมการเจริญเติบโตของรากและ
เพิ่มเวลาและค่าใช้จ่ายที่เกี่ยวข้องกับการใช้ของ
ขั้นตอนเพิ่มเติมกับ M13 ให้เราที่จะกีดกันการใช้ .
ในที่สุดเราได้รับความถี่สูงของ DH บุคคล
( 69.3 % ) ซึ่งยังสูงกว่ารายงานก่อนหน้านี้
สำหรับมะเขือ DHS มาทั้งจากอับละอองเกสรและ
วัฒนธรรม . เพิ่มความถี่นี้ จีโนม
ของ 5.7% haploids อาจจะซ้ำด้วยโคลชิซิน
หรือริซาลิน ( ดู et al . 2011 ) อย่างไรก็ตาม , * 70%
DHS ดูเหมือนว่ายังดีพอสำหรับที่สุด
โปรแกรมการปรับปรุงพันธุ์และทำให้เราได้เสนอให้ยกเลิก นอกจากนี้ขั้นตอนในการเพิ่ม

เดี่ยวของบุคคล , ซึ่งจะต้องถูกกำจัด
การแปล กรุณารอสักครู่..
 
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.

Copyright ©2024 I Love Translation. All reserved.

E-mail: