3. Results3.1. Chemical parameters

3. Results
3.1. Chemical parameters during the fermentation process
The vinegar fermentation process in pot 1 was characterized
by the quantification of the fermentation products (Fig. 2). The
glucose concentration did not exceed 1mM throughout the
entire fermentation process. The ethanol concentration increased
just after the initiation of fermentation and reached 1200mM on
day 7, when the fungal mycelium was still observed on the
floating koji. The ethanol concentration decreased thereafter,
and the acetate concentration also started to increase. The acetic
acid production accelerated from day 15 to 20, and the final
concentration on day 90 was approximately 900mM(∼5.3% w/
v). This fermentation profile was also observed in the other pots,
i.e., in pot 2 and pot 3. These observations indicated that the
simultaneous process of saccharification and alcohol fermentation
was followed by the production of acetic acid. Entani and
Masai (1985b) and Koizumi et al. (1989) reported obtaining
similar results in their studies of pot vinegar fermentation in the
1980s. The lactate concentration increased within a few days
after the initiation of fermentation, and the concentration of
lactate was maintained at 100–150mM during the remainder of
the process. The production of lactic acid correlated with the
decrease in pH (b4) at the initial stage of fermentation. The
floating koji gradually sank into the fermentation broth and was
replaced by a thin pellicle approximately 6 weeks after the
initiation of fermentation. The pellicle covered the entire liquid
surface within two weeks and remained there during the
remainder of the fermentation process.

3.2. DGGE profile of fungal community
Fig. 3A1, A2, and A3 shows the DGGE profiles of the fungal
communities in pots 1, 2, and 3, respectively. PCR products
could not be obtained using the samples from days 20–90 from
any of the pots. DNA sequences of two representative bands,
bands a and b, were determined (Table 1), whereas the other
bands indicated by an asterisk were not determined due to the
failure to reproducibly amplify the excised bands. Band a was
derived from Saccharomyces sp. including S. cerevisiae. An
identical DNA sequence related to band b was found among
various species of moulds, e.g., Aspergillus sp. and Eurotium
sp. (Table 1). However, among these species, A. oryzae was the
most probable, because the koji used here is a culture of
A. oryzae. The same succession was observed in the three

Fig. 2. Chemical parameters of the fermentation process in pot 1. Open triangle,
acetate; open circle, lactate; closed circle, glucose; closed triangle, ethanol;
asterisk, pH.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

3. ผลลัพธ์3.1. เคมีพารามิเตอร์ในระหว่างกระบวนการหมักกระบวนการหมักน้ำส้มสายชูในหม้อ 1 มีลักษณะพิเศษโดยนับจำนวนผลิตภัณฑ์หมัก (2 รูป) การน้ำตาลกลูโคสความเข้มข้นไม่เกิน 1 มม.ตลอดการกระบวนการหมักทั้งหมด เอทานอลความเข้มข้นเพิ่มขึ้นเพียงหลังจากการเริ่มต้นของการหมัก และมาถึง 1200 มม.เมื่อวันที่ 7 เมื่อเส้นใยของเชื้อราที่มันยังคงพบว่า ในการน้ำโคจิ เอทานอลความเข้มข้นลดลงหลังจากนั้นและความเข้มข้นของอะซิเตทเริ่มเพิ่มขึ้น อะซิติกเร่งการผลิตกรดจาก 15-20 วัน และสุดท้ายความเข้มข้นในวันที่ 90 ได้ประมาณ 900 มม. (∼5.3% w /v) . นอกจากนี้ยังพบว่า โปรไฟล์นี้หมักในหม้ออื่น ๆเช่น ในหม้อที่ 2 และ 3 ของหม้อ ข้อสังเกตเหล่านี้ระบุว่า การกระบวนการหมักแอลกอฮอล์และ saccharification พร้อมกันตามมา ด้วยการผลิตกรดอะซิติก Entani และมาไซ (1985b) และโคอิซึมิ et al. (1989) รายงานการรับผลที่คล้ายกันในการศึกษาของหม้อน้ำส้มสายชูหมักในการทศวรรษที่ 1980 ความเข้มข้นของน้ำนมที่เพิ่มขึ้นภายในกี่วันหลังจากการเริ่มต้นของการหมัก และความเข้มข้นของนมถูกเก็บรักษาไว้ที่ 100 – 150 มม.การกระบวนการ การผลิตกรดแลคติมีความสัมพันธ์กับการลดในค่า pH (b4) ในระยะแรกของการหมัก การน้ำโคค่อย ๆ จมลงไปในน้ำซุปหมัก และแก้ไขแทนที่ โดยเยี่อบางประมาณ 6 สัปดาห์หลังจากการเริ่มต้นของการหมัก เยี่อการปกคลุมของเหลวทั้งหมดพื้นผิวภายในสองสัปดาห์ และมีในระหว่างการส่วนที่เหลือของกระบวนการหมัก3.2. DGGE ประวัติของชุมชนเชื้อรารูป 3A1, A2, A3 และแสดงส่วนกำหนดค่า DGGE ของเชื้อราชุมชนในกระถาง 1, 2, 3 และตามลำดับ ผลิตภัณฑ์ PCRไม่ได้รับโดยใช้ตัวอย่างจาก 20 – 90 วันใด ๆ ของหม้อ ลำดับดีเอ็นเอของสองวงดนตรีตัวแทนวงการ และ b ถูกกำหนด (ตาราง 1), ในขณะอื่น ๆวงที่ระบุ โดยจันไม่กำหนดเนื่องจากการความล้มเหลวของการขยายวงสรรพสามิตให้ทำซ้ำได้ วงถูกมาจาก Saccharomyces sp.รวมทั้ง S. cerevisiae มีลำดับดีเอ็นเอเหมือนกันเกี่ยวข้องกับวงบีพบในหมู่ชนิดต่าง ๆ ของแม่พิมพ์ เช่น Aspergillus sp.และ Eurotiumsp. (ตาราง 1) อย่างไรก็ตาม ในสายพันธุ์เหล่านี้ A. oryzae เป็นการมากที่สุดน่าเป็น เนื่องจากโคจิที่ใช้ที่นี่เป็นวัฒนธรรมของA. oryzae ในลำดับเดียวกันพบว่า ในสามรูป 2 พารามิเตอร์ทางเคมีกระบวนการหมักในหม้อ 1 เปิดสามเหลี่ยมอะซิเตท เปิดวง แล วงกลมปิด กลูโคส ปิดสามเหลี่ยม เอทานอลเครื่องหมายดอกจัน pH

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

3. ผลการทดลอง
3.1 พารามิเตอร์ทางเคมีระหว่างกระบวนการหมัก
กระบวนการหมักน้ำส้มสายชู 1 ในหม้อก็มีลักษณะ
โดยปริมาณของผลิตภัณฑ์หมัก (รูป. 2)
ความเข้มข้นของกลูโคสไม่เกิน 1 mM ตลอด
กระบวนการหมักทั้งหมด ความเข้มข้นของเอทานอลเพิ่มขึ้น
เพียงหลังจากการเริ่มต้นของการหมักและถึง 1200 ใน
วันที่ 7 เมื่อเส้นใยเชื้อราก็ยังคงตั้งข้อสังเกตเกี่ยวกับ
โคจิลอย ความเข้มข้นของเอทานอลลดลงหลังจากนั้น
และความเข้มข้นของอะซิเตทก็เริ่มที่จะเพิ่มขึ้น อะซิติก
การผลิตกรดเร่งตัวขึ้นจากวันที่ 15 ถึง 20 และสุดท้าย
ความเข้มข้นในวันที่ 90 ประมาณ 900mm (~5.3% w /
V) รายละเอียดการหมักนี้ยังพบว่าในกระถางอื่น ๆ
เช่นในหม้อหม้อที่ 2 และ 3. ข้อสังเกตเหล่านี้ชี้ให้เห็นว่า
กระบวนการพร้อมกันของ saccharification และเครื่องดื่มแอลกอฮอล์การหมัก
ตามมาด้วยการผลิตกรดอะซิติก Entani และ
มาไซมา (1985b) และโคอิซึมิ, et al (1989) รายงานการได้รับ
ผลที่คล้ายกันในการศึกษาของพวกเขาจากการหมักน้ำส้มสายชูหม้อใน
ปี 1980 ความเข้มข้นของน้ำนมเพิ่มขึ้นภายในไม่กี่วัน
หลังจากการเริ่มต้นของการหมักและความเข้มข้นของ
น้ำนมก็ยังคงอยู่ในช่วงที่เหลือ 100-150mM ของ
กระบวนการ การผลิตกรดแลคติกมีความสัมพันธ์กับ
การลดลงของค่า pH (B4) ในระยะเริ่มแรกของการหมัก
Koji ลอยค่อยๆจมลงไปในน้ำหมักและถูก
แทนที่ด้วยฝ้าบาง ๆ ประมาณ 6 สัปดาห์หลังจากที่
เริ่มต้นของการหมัก ฝ้าปกคลุมของเหลวทั้ง
พื้นผิวภายในสองสัปดาห์และยังคงมีในช่วง
ที่เหลือของกระบวนการหมัก.

3.2 รายละเอียด DGGE ชุมชนเชื้อรา
รูป 3A1, A2 และ A3 แสดงโปรไฟล์ DGGE ของเชื้อรา
ชุมชนในกระถางที่ 1, 2 และ 3 ตามลำดับ ผลิตภัณฑ์ PCR
ไม่สามารถรับใช้ตัวอย่างจากวันที่ 20-90 จาก
ใด ๆ ของกระถาง ลำดับดีเอ็นเอของทั้งสองวงดนตรีตัวแทน
วงดนตรีที่ A และ B ได้รับการพิจารณา (ตารางที่ 1) ในขณะที่คนอื่น ๆ
วงดนตรีที่ระบุโดยเครื่องหมายดอกจันไม่ได้กำหนดเนื่องจากการ
ล้มเหลวในการ reproducibly ขยายวงดนตรีที่พอ วงดนตรีได้รับ
มาจาก Saccharomyces SP รวมทั้งเอส cerevisiae
ลำดับดีเอ็นเอเหมือนกันที่เกี่ยวข้องกับวง B ถูกพบใน
สายพันธุ์ต่างๆของแม่พิมพ์เช่นเชื้อรา Aspergillus SP และ Eurotium
SP (ตารางที่ 1). แต่ในสายพันธุ์เหล่านี้ A. oryzae เป็น
น่าจะเป็นที่สุดเพราะ Koji ที่ใช้ที่นี่เป็นวัฒนธรรมของ
A. oryzae สืบทอดเดียวกันพบว่าในสาม

รูป 2. พารามิเตอร์ทางเคมีของกระบวนการหมักในหม้อ 1. เปิดสามเหลี่ยม
อะซิเตท; เปิด Circle, แลคเตท; วงกลมปิดกลูโคส; สามเหลี่ยมปิดเอทานอล;
ดอกจันพีเอช

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

3 . ผลลัพธ์3.1 . เคมีของพารามิเตอร์ในกระบวนการหมักน้ำส้มสายชูกระบวนการหมักในหม้อที่ 1 ลักษณะโดยปริมาณของผลิตภัณฑ์หมัก ( รูปที่ 2 ) ที่ความเข้มข้นของกลูโคสที่ไม่เกิน 1mm ตลอดกระบวนการหมักทั้งหมด การเพิ่มความเข้มข้นของเอทานอลหลังจากการเริ่มต้นของการหมักและถึง 1200mm ใน7 วัน เมื่อเส้นใยเชื้อรายังพบบนโคจิ ลอย เอทานอลความเข้มข้นลดลงหลังจากนั้นและน้ำนมเข้มข้นก็เริ่มเพิ่มขึ้น ที่ติคการผลิตกรดเร่ง จากวันที่ 15 ถึง 20 และสุดท้ายความเข้มข้น 90 วัน ( ประมาณ 5.3 % w / ∼ 900mm5 ) โปรไฟล์นี้หมักพบว่าในหม้ออื่น ๆเช่น ในกระถาง 2 กระถาง 3 ข้อสังเกตเหล่านี้พบว่ากระบวนการ saccharification และเหล้าหมักพร้อมกันตามมาด้วยการผลิตกรดอะซิติก entani และมาไซมารา ( 1985b ) และโคอิซึมิ et al . ( 1989 ) รายงานขอรับผลที่คล้ายกันในการศึกษาของน้ำส้มสายชูหมักในหม้อ1980 . และความเข้มข้นเพิ่มขึ้นภายในไม่กี่วันหลังจากการเริ่มต้นของการหมัก และความเข้มข้นของแลคไว้ที่ 100 – 150 มม. ในช่วงที่เหลือของกระบวนการ การผลิตกรดแลกติก มีความสัมพันธ์กับลด pH ( B4 ) ในขั้นตอนแรกของการหมัก ที่โคจิลอยค่อยๆจมลงไปในน้ำหมักและแทนที่ด้วยเยื่อบาง ๆประมาณ 6 สัปดาห์ หลังจากการเริ่มต้นของการหมัก ส่วนเยื่อปกคลุมทั้งของเหลวพื้นผิวภายใน 2 สัปดาห์ และยังคงอยู่ในระหว่างส่วนที่เหลือของกระบวนการหมัก3.2 . การทดลองที่มีโปรไฟล์ของชุมชนรูปที่ 3a1 A2 และ A3 แสดงการทดลองโปรไฟล์ของเชื้อราชุมชนในกระถางที่ 1 , 2 และ 3 ตามลำดับ ผลิตภัณฑ์ PCRไม่อาจจะได้รับโดยใช้ตัวอย่างจากวันที่ 20 – 90 จากใด ๆของหม้อ ดีเอ็นเอลำดับสองวงแทนกลุ่ม A และ B เป็น ( ตารางที่ 1 ) ส่วนอื่น ๆวงดนตรีที่ระบุโดยเครื่องหมายดอกจันไม่ได้กำหนด เนื่องจากการความล้มเหลวที่จะ reproducibly ขยายตัดวง วง คือได้มาจาก Saccharomyces sp . รวมทั้ง S . cerevisiae . เป็นดีเอ็นเอลำดับเหมือนกันที่เกี่ยวข้องกับวงดนตรี บี เป็นการพบกันระหว่างชนิดต่างๆของแม่พิมพ์เช่น Aspergillus sp . และ eurotiumsp . ( ตารางที่ 1 ) อย่างไรก็ตาม ในหมู่เหล่านี้สปีชีส์ A . oryzae คือน่าจะเป็นเพราะ โคจิที่ใช้ที่นี่เป็นวัฒนธรรมA . oryzae . ความสำเร็จเดียวกันพบว่าในทั้งสามรูปที่ 2 พารามิเตอร์ทางเคมีของกระบวนการหมักในหม้อ 1 เปิดสามเหลี่ยมอะซิเตท เปิดและปิดวงกลมวงกลม ; กลูโคส ; ปิดสามเหลี่ยม , เอทานอลเครื่องหมายดอกจัน , การทดสอบ