Transitions of these phases are gra

Transitions of these phases are gradual and successive, and
are controlled independently of fl oral transition. Moreover,
this maturation process can be extended to fl owers.
Trichomes on successive fl owers also decrease as shoot
maturation proceeds, and the change of trichome distribution
is very similar to that of leaves. The function of SPL10 ,
SPL11 and SPL2 seems to synchronize lateral organ development
with shoot maturation during the reproductive phase.
Taking the function of SBP-box genes broadly, they control
the phase transition of lateral organs, not only in the vegetative
phase, but also throughout development.
FUL and phase transition
FUL expression was reduced in the cauline leaves of
35S:SPL10SRDX plants, while its expression in 35S:mSPL10/11/2
rosette leaves increased. One possibility is that FUL is regulated
by SPL10 , SPL11 and SPL2 . Supporting this, the expression
profi le of FUL is similar to those of SPL10 and SPL11 ,
with a 0.67 correlation value in the ATTED-II database.
Moreover, microarray data demonstrated that the FUL
mRNA level was reduced in miR156b -overexpressing plants,
while expression of AP1 and CAL , homologous genes of FUL ,
was not altered (GEO accession No. GSE2079). These data
suggest that at least one of the SBP-box proteins regulates
FUL expression. In addition, FUL has a GTAC sequence in its
promoter that is recognized by SBP-box proteins, although
the AP1 promoter also contains the sequence ( Cardon et al.
1997 , Lännenpää et al. 2004 , Brikenbihl et al. 2005, Kropat
et al. 2005 , Liang et al. 2008 ). It is still unknown whether
Arabidopsis SPLs regulate AP1 expression in planta. In other
plants, homologous genes of FUL are putative targets of
SBP-box proteins, such as BpSPL1 in silver birch ( Betula
pendula ) and LeSPL-CNR in tomato ( Solanum lycopersicum )
( Lännenpää et al. 2004 , Manning et al. 2006 ). These data
indicate that SPL10, SPL11 and SPL2 might regulate FUL
expression directly. However, ful mutants affect trichome
distribution in the vegetative phase, while SPL10/11/2 did
not. FUL may be regulated by other SBP-box proteins, such
as SPL3, in the vegetative phase. Very recently it has been
shown that SPL3 and SPL9 directly regulate FUL expression
in the vegetative phase ( Wang et al. 2009 , Yamaguchi et al.
2009 ). Nevertheless, it is still possible that SPL10/11/2
control FUL expression directly in the reproductive phase.
SBP-box genes control phase transition; therefore, it is
plausible that FUL plays a role in the process. The wide
cauline leaves and slightly reduced apical dominance of
ful mutants may represent a delayed developmental phase
in the reproductive phase. In addition, it has been reported
that FUL acts with SUPRESSOR OF OVEREXPRESSION
OF CONSTANS 1 (SOC1) to prevent fl oral reversion, aerial
rosette formation and indeterminate growth ( Melzer et al.
2008 ). The infl orescence of ful soc1 double mutants reverted
to a vegetative phase state, which supports the hypothesis
that FUL controls phase transition. ful soc1 showed reduced
apical dominance as observed in 35S:SPL10/11/2SRDX and
35S:miR156/157 plants. It remains to be elucidated whether
the reduced apical dominance phenotype of 35S:miR156/157
and 35S:SPL10/11/2SRDX plants was due to a reduction of
FUL activity and whether SPL10 , SPL11 and SPL2 regulate
shoot development via the FUL pathway.
Finally, SBP-box transcription factors and miR156 are
found in many plant species, including mosses, ferns,
gymnosperms, monocots and dicots ( Zhang et al. 2006 ,
Willmann and Poethig 2007 ). Their evolutionary conservation,
especially SPL10-like proteins, implies an important
function in plant development. Further understanding of
the function of SBP-box genes in Arabidopsis might shed
light on the developmental mechanism of all plants.
Materials and Methods
Plant materials and growth conditions
Arabidopsis ( A. thaliana , Col-0 accession) was used for transient
expression assays and for generating transgenic plants.
SALK_033647, which was previously described ( Mitsuda and
Ohme-Takagi 2008 ), was obtained from the Arabidopsis
Biological Resource Center ( Alonso et al. 2003 ). FLAG_295G12,
FLAG_422H07 and FLAG_245C09 were obtained from the
Institut National de la Recherche Agronomique and were in
the Ws background ( Samson et al. 2002 ). Plants were grown
at 22 ° C under long-day conditions (16 h light and 8 h dark).
RNA analysis
Total RNA was prepared with the RNeasy Plant Mini Kit
(Qiagen, Hilden, Germany) from juvenile leaves (third and
fourth leaf) of 10-day-old plants, adult leaves (seventh to
ninth leaves) of 4-week-old plants, and roots, cauline leaves,
infl orescence stems, fl owers and fruits of 5-week-old plants.
After treatment with DNase I, fi rst-strand cDNA was
synthesized by reverse transcription. PCR was performed
with gene-specifi c primer pairs (Supplementary Table S2).
This generated the full-length coding sequences, except for
TUB8 and PP2AA3 , which were used as internal controls
( Czechowski et al. 2005 ). Quantitative real-time reverse
transcription–PCR (RT–PCR) was performed as described
previously ( Mitsuda et al. 2005 ) with appropriate primers
(Supplementary Table S2).
GUS assay
The 1.9 and 1.8 kb upstream regions from the translation
initiation codon of SPL10 and SPL11 genes, respectively,
were amplifi ed from genomic DNA with the appropriate
primers (Supplementary Table S2), and fused with the GUS
reporter gene to generate ProSPL10:GUS and ProSPL11:GUS .
The GUS assay was performed as described previously
( Mitsuda et al. 2005 ).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ช่วงระยะนี้จะสมดุล และต่อ เนื่อง และมีควบคุมอิสระเปลี่ยนช่องปาก fl นอกจากนี้ขั้นตอนนี้พ่อแม่สามารถขยายให้ fl owersTrichomes บน owers fl ต่อเนื่องยังลดลงเป็นยิงเงินพ่อแม่ และการเปลี่ยนแปลงของ trichome กระจายจะคล้ายกับใบไม้ การทำงานของ SPL10SPL11 และ SPL2 น่าจะ ซิงโครไนส์พัฒนาอวัยวะด้านข้างมีพ่อแม่ยิงระยะสืบพันธุ์การทำงานของยีน SBP กล่องทั่วไป พวกเขาควบคุมเปลี่ยนระยะของอวัยวะด้านข้าง ไม่เฉพาะในผักที่เรื้อรังขั้นตอน ตลอดทั้งพัฒนาแต่ยัง เปลี่ยน FUL และระยะFUL นิพจน์ถูกลดลงในใบไม้ cauline35S:SPL10SRDX พืช ในขณะที่ของนิพจน์ใน 35S:mSPL10 11/2rosette ใบเพิ่มขึ้น หนึ่งโอกาสเป็นที่กำหนด FULโดย SPL10, SPL11 และ SPL2 สนับสนุนนี้ นิพจน์รับเลอของ FUL จะใกล้เคียงกับ SPL10 และ SPL11มีค่า 0.67 ความสัมพันธ์ในฐานข้อมูล ATTED-IIนอกจากนี้ แสดงข้อมูล microarray ที่แบบ FULมีลดระดับของ mRNA ใน miR156b-overexpressing พืชในขณะที่ของ AP1 และ CAL ยีน homologous ของ FULไม่มีการเปลี่ยนแปลง (แก้วทะเบียนหมายเลข GSE2079) ข้อมูลเหล่านี้แนะนำว่า อย่างน้อยหนึ่งของโปรตีนที่ SBP กล่องกำหนดนิพจน์ FUL นอกจากนี้ FUL มีลำดับ GTAC ของโปรโมเตอร์ที่รู้จัก โดย SBP เมื่อโปรตีน แม้ว่าโปรโมเตอร์ AP1 ประกอบด้วยลำดับ (Cardon et alปี 1997, Lännenpää et al. 2004, Brikenbihl et al. 2005, Kropatร้อยเอ็ด al. 2005 เหลียง et al. 2008) จึงยังไม่ทราบว่าArabidopsis SPLs กำหนดนิพจน์ AP1 ลเวียมานอร์ ในที่อื่น ๆพืช ยีน homologous ของ FUL เป็น putative เป้าหมายของSBP กล่องโปรตีน เช่น BpSPL1 ในซิลเวอร์เบิร์ช (Betulapendula) และ LeSPL-โรงแรมซีเอ็นอาร์ในมะเขือ (Solanum lycopersicum)(Lännenpää et al. 2004, al. et เป็น 2006) ข้อมูลเหล่านี้บ่งชี้ว่า SPL10, SPL11 และ SPL2 อาจควบคุม FULนิพจน์ได้โดยตรง อย่างไรก็ตาม ful สายพันธุ์มีผลต่อ trichomeกระจายในระยะผักเรื้อรัง ขณะไม่ SPL10 11/2ไม่ FUL อาจถูกควบคุม โดยโปรตีนอื่น ๆ กล่อง SBP เช่นเป็น SPL3 ในระยะผักเรื้อรัง มากเพิ่ง จะได้รับแสดงว่า SPL3 และ SPL9 โดยตรงควบคุมนิพจน์ FULในระยะที่ผักเรื้อรัง (Wang et al. 2009, Yamaguchi et al2009) . อย่างไรก็ตาม ก็ยังสามารถที่ SPL10/11/2ควบคุม FUL นิพจน์โดยตรงในระยะสืบพันธุ์ SBP กล่องยีนควบคุมระยะเปลี่ยน ดังนั้น จึงเป็นรับมือ FUL ที่มีบทบาทในกระบวนการ กว้างใบ cauline และครอบงำ apical ลดลงเล็กน้อยของสายพันธุ์ ful อาจแสดงขั้นตอนการพัฒนาที่ล่าช้าในระยะสืบพันธุ์ นอกจากนี้ มีการรายงานFUL ที่กระทำกับ SUPRESSOR OVEREXPRESSIONจักรพรรดิคอนสแตนสที่ 1 (SOC1) เพื่อป้องกัน fl reversion ปาก ทางอากาศrosette กำเนิดและเจริญเติบโตไม่ทราบแน่ชัด (Melzer et al2008) การแปลงกลับ orescence infl ของสายพันธุ์คู่ soc1 fulการสภาพผักเรื้อรังระยะ ซึ่งสนับสนุนสมมติฐานที่FUL ที่ควบคุมการเปลี่ยนเฟส พบว่าลดลง soc1 fulapical ครอบงำเป็นใน 35S:SPL10 11/2SRDX และ35S:miR156 / 157 พืช มันยังคงเป็น elucidated หรือไม่phenotype ครอบงำ apical ลดของ 35S:miR156 / 157และ 35S:SPL10 11/2SRDX พืชเกิดจากการลดลงของกิจกรรม FUL และว่า SPL10, SPL11 และ SPL2 กำหนดยิงพัฒนาผ่านทางเดิน FUL สุดท้าย SBP กล่อง transcription ปัจจัยและ miR156 มีพบในหลายพืชชนิด รวมถึง mosses เฟิร์นgymnosperms, monocots และ dicots (Zhang et al. 2006 Willmann ก Poethig 2007) อนุรักษ์การวิวัฒนาการโดยเฉพาะอย่างยิ่ง SPL10 เช่นโปรตีน ความหมายความสำคัญฟังก์ชันในการพัฒนาโรงงาน ความเข้าใจเพิ่มเติมการทำงานของยีนกล่อง SBP ใน Arabidopsis อาจหลั่งน้ำตาแสงในกลไกการพัฒนาของพืชทั้งหมด วัสดุและวิธีการ วัสดุโรงงานและสภาพการเจริญเติบโต ใช้ Arabidopsis (A. thaliana ทะเบียน 0 คอลัมน์) สำหรับแบบฉับพลันassays นิพจน์และ สำหรับการสร้างพืชถั่วเหลืองSALK_033647 ซึ่งได้อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ (Mitsuda และOhme-Takagi 2008), ได้รับจาก Arabidopsis การศูนย์การทรัพยากรชีวภาพ (Alonso et al. 2003) FLAG_295G12FLAG_422H07 และ FLAG_245C09 ได้รับจากการสถาบันแห่งชาติ de la Recherche Agronomique และในพื้นหลัง Ws (แซมสัน et al. 2002) พืชที่ปลูกที่ 22 ° C ภายใต้สภาพวันยาว (ไฟ 16 h และ h 8 เข้ม) วิเคราะห์อาร์เอ็นเอ อาร์เอ็นเอทั้งหมดถูกพร้อมชุดมินิโรงงาน RNeasy(Qiagen, Hilden เยอรมนี) จากใบสลบ (สาม และสี่ ใบ) ใบของพืชอายุ 10 วัน ผู้ใหญ่ (เจ็ดไป9 ใบ) อายุ 4 สัปดาห์พืช และราก cauline ใบไม้infl orescence ลำ fl owers และผลไม้ของพืชอายุ 5 สัปดาห์หลังจากรักษากับ DNase, cDNA สายสแตรนด์ rst ผมสังเคราะห์ โดย transcription ย้อน ทำ PCRกับยีน specifi พื้น c คู่ (เสริมตาราง S2)ซึ่งสร้างขึ้นจัดลำดับรหัส ยกเว้นTUB8 และ PP2AA3 ซึ่งถูกใช้เป็นตัวควบคุมภายใน(Czechowski et al. 2005) กลับเชิงปริมาณแบบเรียลไทม์ทำ transcription – PCR (RT – PCR) ดังที่ก่อนหน้านี้ (Mitsuda et al. 2005) ด้วยไพรเมอร์ที่เหมาะสม(S2 ตารางเสริม) วิเคราะห์ GUS 1.8 และ 1.9 kb ขั้นต้นน้ำขอบเขตจากการแปลเริ่มต้นรหัสพันธุกรรมของยีน SPL10 และ SPL11 ตาม ลำดับมี amplifi ed จาก genomic DNA มีไพรเมอร์ (S2 ตารางเสริม), และพร้อม GUSโปรแกรมรายงานการยีนเพื่อสร้าง ProSPL10:GUS และ ProSPL11:GUSทำการทดสอบ GUS ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้(Mitsuda et al. 2005)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

เปลี่ยนขั้นตอนเหล่านี้จะค่อยเป็นค่อยไปและต่อเนื่องและมีการควบคุมได้อย่างอิสระของการเปลี่ยนแปลงในช่องปากชั้น นอกจากนี้กระบวนการการเจริญเติบโตนี้สามารถขยายไปยังชั้น Owers. trichomes ใน Owers ชั้นต่อเนื่องนอกจากนี้ยังลดลงเมื่อยิงเงินการเจริญเติบโตและการเปลี่ยนแปลงของการกระจายtrichome จะคล้ายกับที่ของใบ ฟังก์ชั่นของ SPL10, SPL11 และ SPL2 ดูเหมือนว่าจะประสานการพัฒนาอวัยวะข้างที่มีการเจริญเติบโตยิงในระหว่างขั้นตอนการเจริญพันธุ์. การทำงานของยีน SBP กล่องกว้างพวกเขาควบคุมการเปลี่ยนเฟสของอวัยวะด้านข้างไม่เพียงแต่ในพืชเฟส แต่ยัง . การพัฒนาตลอด FUL และเฟสการเปลี่ยนแปลงการแสดงออกFUL ลดลงในใบ cauline ของ35S: พืช SPL10SRDX ในขณะที่การแสดงออกใน 35S: mSPL10 / 02/11 ดอกกุหลาบใบเพิ่มขึ้น หนึ่งเป็นไปได้คือการที่ถูกควบคุม FUL โดย SPL10, SPL11 และ SPL2 การสนับสนุนนี้แสดงออกprofi le ของ FUL คล้ายกับบรรดาของ SPL10 และ SPL11, มีค่าความสัมพันธ์ 0.67 ในฐานข้อมูล ATTED-II. นอกจากนี้ยังมีข้อมูลที่แสดงให้เห็นถึง microarray ว่า FUL ระดับ mRNA ลดลงใน miR156b -overexpressing พืชในขณะที่การแสดงออกของ AP1 และ CAL ยีนคล้ายคลึงกันของ FUL, ไม่ได้เปลี่ยนแปลง (GEO ภาคยานุวัติฉบับที่ GSE2079) ข้อมูลเหล่านี้ชี้ให้เห็นว่าอย่างน้อยหนึ่งของโปรตีน SBP กล่องควบคุมการแสดงออกFUL นอกจากนี้ FUL มีลำดับ GTAC ในของผู้ก่อการที่เป็นที่ยอมรับโดยโปรตีนSBP กล่องแม้ว่าโปรโมเตอร์AP1 ยังมีลำดับ (Cardon et al. 1997 Lännenpää et al. 2004 Brikenbihl et al. 2005 Kropat et al, . ปี 2005 เหลียง et al. 2008) มันยังคงเป็นที่รู้จักว่าArabidopsis SPLs ควบคุมการแสดงออก AP1 ในพืช ในอื่น ๆพืชยีนคล้ายคลึงกันของ FUL เป็นเป้าหมายสมมุติของโปรตีนSBP กล่องเช่น BpSPL1 ในเบิร์ชสีเงิน (Betula pendula) และ LeSPL-CNR มะเขือเทศ (Solanum lycopersicum) (Lännenpää et al. 2004 แมนนิ่ง et al. 2006) . ข้อมูลเหล่านี้แสดงให้เห็นว่า SPL10, SPL11 และ SPL2 อาจควบคุม FUL แสดงออกโดยตรง แต่ส่งผลกระทบต่อการกลายพันธุ์ ful trichome กระจายในระยะการเจริญเติบโตในขณะที่ SPL10 / 2/11 ทำไม่ได้ FUL อาจถูกควบคุมโดยโปรตีนชนิดอื่น ๆ กล่อง SBP เช่นเป็นSPL3 ในระยะเจริญเติบโต เมื่อเร็ว ๆ นี้จะได้รับการแสดงให้เห็นว่าSPL3 และ SPL9 โดยตรงควบคุมการแสดงออก FUL ในขั้นตอนพืช (Wang et al. 2009 ยามากูชิ et al. 2009) แต่ก็ยังคงเป็นไปไม่ได้ที่ SPL10 / 02/11 ควบคุมการแสดงออก FUL โดยตรงในระยะสืบพันธุ์. ยีน SBP กล่องควบคุมการเปลี่ยนเฟส; จึงเป็นไปได้ว่า FUL มีบทบาทในกระบวนการ กว้างใบ cauline และลดลงเล็กน้อยยอดการปกครองของการกลายพันธุ์ful อาจจะเป็นขั้นตอนการพัฒนาล่าช้าในขั้นตอนการสืบพันธุ์ นอกจากนี้ยังได้รับรายงานว่ามีการกระทำ FUL SUPRESSOR การแสดงออกของConstans 1 (SOC1) เพื่อป้องกันการพลิกกลับในช่องปากชั้นอากาศก่อดอกกุหลาบและการเจริญเติบโตไม่แน่นอน(Melzer et al. 2008) orescence infl ของการกลายพันธุ์คู่ ful SOC1 หวนกลับไปยังรัฐที่ขั้นตอนพืชซึ่งสนับสนุนสมมติฐานว่าการเปลี่ยนแปลงขั้นตอนการควบคุมFUL SOC1 ful ลดลงแสดงให้เห็นว่ายอดการปกครองเป็นข้อสังเกตใน35S: SPL10 / 11 / 2SRDX และ35S: miR156 / 157 พืช ยังคงที่จะอธิบายว่าฟีโนไทป์ยอดการปกครองที่ลดลงของ 35S: miR156 / 157 และ 35S: SPL10 / 11 / 2SRDX พืชเป็นผลมาจากการลดลงของกิจกรรมFUL และไม่ว่า SPL10, SPL11 และ SPL2 ควบคุม. การพัฒนาถ่ายผ่านทางเดิน FUL สุดท้าย , SBP กล่องถอดความปัจจัยและ miR156 จะพบในพืชหลายชนิดรวมทั้งมอสเฟิร์นพืชเมล็ดเปลือย, พืชใบเลี้ยงเดี่ยวและ dicots (Zhang et al. 2006 Willmann และ Poethig 2007) การอนุรักษ์วิวัฒนาการของพวกเขาโดยเฉพาะอย่างยิ่งโปรตีน SPL10 เหมือนนัยสำคัญฟังก์ชั่นในการพัฒนาโรงงาน ความเข้าใจต่อไปของการทำงานของยีน SBP กล่องใน Arabidopsis อาจหลั่งน้ำตาแสงในกลไกการพัฒนาของพืชทั้งหมด. วัสดุและวิธีการวัสดุอาคารและสภาวะการเจริญเติบโตArabidopsis (ก thaliana เทือกเขา-0 เข้า) ที่ใช้สำหรับการชั่วคราวการตรวจและการแสดงออกสร้างพืชดัดแปรพันธุกรรม. SALK_033647 ซึ่งได้รับการอธิบายไว้ก่อนหน้า (Mitsuda และOhme ทาคากิ-2008) ที่ได้รับจาก Arabidopsis ชีวภาพศูนย์วิทยบริการ (อลอนโซ่ et al. 2003) FLAG_295G12, FLAG_422H07 และ FLAG_245C09 ที่ได้รับจากสถาบันแห่งชาติde la Recherche Agronomique และอยู่ในพื้นหลังWs (แซมซั่น et al. 2002) พืชที่ปลูกวันที่ 22 ° C ภายใต้เงื่อนไขที่นานวัน (16 แสงชั่วโมงและ 8 ชั่วโมงเข้ม). การวิเคราะห์ RNA รวม RNA ถูกจัดทำขึ้นกับพืช RNeasy Mini Kit (Qiagen, ฮิลเดน, เยอรมนี) จากใบเด็กและเยาวชน (ที่สามและใบที่สี่) ของพืช 10 วันเก่าใบผู้ใหญ่ (เจ็ดใบที่เก้า) 4 สัปดาห์อายุพืชและรากใบ cauline, ลำต้น orescence infl, Owers ชั้นและผลไม้ของพืช 5 สัปดาห์เก่า. หลังจากการรักษาด้วย DNase ผมสาย cDNA สาระ-แรกถูกสังเคราะห์โดยถอดรหัสแบบย้อนกลับ PCR ได้ดำเนินการกับคู่ไพรเมอร์คยีนspecifi (เสริมตาราง S2). นี้สร้างลำดับการเข้ารหัสเต็มความยาวยกเว้นTUB8 และ PP2AA3 ซึ่งถูกนำมาใช้เป็นระบบการควบคุมภายใน(Czechowski et al. 2005) ปริมาณเวลาจริงกลับถอดความ-PCR (RT-PCR) ได้ดำเนินการตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้(Mitsuda et al. 2005) ด้วยไพรเมอร์ที่เหมาะสม(เสริมตาราง S2). ทดสอบ GUS 1.9 และ 1.8 กิโลภูมิภาคต้นน้ำจากการแปลเริ่มต้นcodon ของ SPL10 และยีน SPL11 ตามลำดับเป็นเอ็ดamplifi จากดีเอ็นเอที่มีความเหมาะสมไพรเมอร์(เสริมตาราง S2) และผสมกับ GUS ยีนนักข่าวเพื่อสร้าง ProSPL10: GUS และ ProSPL11. GUS การวิเคราะห์กัสได้ดำเนินการตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้(Mitsuda et al. 2005)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การเปลี่ยนขั้นตอนเหล่านี้จะค่อยเป็นค่อยไปและต่อเนื่อง และจะถูกควบคุมโดยอิสระของ FL
เปลี่ยนปาก โดย
กระบวนการบ่มนี้สามารถขยายไปยังฟลอริด้า ทาวเวอร์
ไตรโคมบนทาวเวอร์ยังลดลงต่อเนื่อง ด้วยการยิง

) และการเปลี่ยนรูปร่างจะคล้ายกับที่ของใบ การทำงานของ spl10
,และ spl11 spl2 ดูเหมือนว่าจะประสานการพัฒนาอวัยวะด้านข้างด้วยการยิงในระยะเจริญพันธุ์
ถ่ายการทำงานของยีนดังกล่าว กล่อง กว้าง พวกเขา ควบคุมการเปลี่ยนเฟส
ด้านข้างของอวัยวะที่ไม่เพียง แต่ในขั้นตอนการพัฒนา แต่ยังทั่วผัก
.
ครบระยะเปลี่ยน
ful การแสดงออกลดลงใน cauline
35s : spl10srdx ใบของพืชในขณะที่การแสดงออกใน 35s : mspl10 / 11 / 2
Rosette ใบเพิ่มขึ้น หนึ่งในความเป็นไปได้ที่สวยงามมีระเบียบ
โดย spl10 spl11 spl2 , และ . สนับสนุนนี้ การแสดงออก
Profi เลอ ของครบ เป็นคล้ายกับบรรดาของ spl10 และ spl11
กับ 0.67 , ค่าสหสัมพันธ์ใน atted-ii ฐานข้อมูล .
นอกจากนี้ microarray ข้อมูลแสดงให้เห็นว่าระดับ mRNA ลดลงใน mir156b ครบ
-
overexpressing พืชขณะที่การแสดงออกของยีนและ ap1 แคล โฮโมโลกัสของครบ
ไม่ได้เปลี่ยนแปลง ( Geo , การไม่ gse2079 ) ข้อมูลเหล่านี้
แนะนำว่าอย่างน้อยหนึ่งของโปรตีนดังกล่าว กล่องควบคุม
ful การแสดงออก นอกจากนี้ ful มีจีแทคลำดับใน
โปรโมเตอร์ที่เป็นที่ยอมรับโดย SBP กล่องโปรตีน แม้ว่า
ap1 โปรโมเตอร์ยังมีลำดับ ( คาร์ดอน et al .
1997 ผมและ nnenp ää et al . ปี 2004brikenbihl et al . 2005 kropat
et al . 2005 เหลียง et al . 2008 ) มันยังไม่เป็นที่แน่ชัดว่า
Arabidopsis spls ควบคุม ap1 การแสดงออกใน planta . ในพืชอื่น ๆ
, โฮโมโลกัสของยีนที่มีการแสดงออกดังกล่าว ครบเป้าหมาย
กล่องโปรตีน เช่น bpspl1 ในเบิร์ชสีเงิน ( betula
เพนดูลา ) และ lespl CNR ในมะเขือเทศ ( ไม่สามารถจะยอมรับได้ lycopersicum )
( L และ nnenp ää et al . 2004 , Manning et al . 2006 )
ข้อมูลเหล่านี้ระบุว่า spl10 spl11 spl2 , และอาจควบคุม ful
การแสดงออกโดยตรง อย่างไรก็ตาม การกลายพันธุ์ที่มีผลต่อรูปร่างสวยงาม
ในระยะเจริญเติบโต ในขณะที่ spl10 / 11 / 2 แล้ว
. ครบกล่องดังกล่าวอาจถูกควบคุมโดยโปรตีนอื่นๆ เช่น
เป็น spl3 ในเฟส , ผัก มากเมื่อเร็ว ๆนี้ได้แสดงให้เห็นว่า spl3
spl9 โดยตรงและควบคุมการแสดงออกในขั้นตอนทาง ful
( Wang et al . 2009ยามากุจิ et al .
2009 ) อย่างไรก็ตาม มันเป็นไปได้ยังที่ spl10 / 11 / 2
ควบคุมการแสดงออกโดยตรงในระยะการเจริญพันธุ์ ful .
SBP กล่องยีนควบคุมการเปลี่ยนเฟส จึง
ที่มีครบ มีบทบาทในกระบวนการ กว้าง
cauline ใบและลดลงเล็กน้อยยอดการปกครองของ
ful กลายพันธุ์อาจหมายถึงล่าช้าพัฒนาเฟส
ในระยะเจริญพันธุ์นอกจากนี้ มีรายงานว่า มีท่อเก็บเสียงของการกระทำครบ

overexpression ของ constans 1 ( soc1 ) เพื่อป้องกันการเกิดในช่องปาก , Rosette ทางอากาศ
และการเจริญเติบโตทอดยอด ( เมลเซอร์ et al .
2008 ) การ orescence infl ของครบ soc1 คู่กลายพันธุ์เปลี่ยน
ไปยังสถานะระยะเจริญเติบโต ซึ่งสนับสนุนสมมติฐาน
ที่ครบคุมระยะการเปลี่ยนแปลง ครบ soc1
พบลดลง