3 - Cleaning Franz CellsPrior to us

3 - Cleaning Franz Cells
Prior to using the cells, clean the stirbars and donor chambers shown in Figure 3 by rinsing them with methanol (MeOH) and deionized water several times. Let them dry. Also fill the receptor chambers with methanol. Keep stirring for one hour. Then use a disposable plastic pipette to suck and release methanol from the receptor several times to clean the receptor chambers as well as the upper surfaces of the receptors and the sampling ports. Replace methanol with deionized water. Stir for another hour and repeat the previous cleaning step. Finally turn off the stirring and replace the used deionized water with fresh water. Keep the receptor chambers filled with water until testing. Repeat the cleaning procedures after use.


4 - In vitro release testing
Before testing, the medium in the receptor, membrane (polymeric or skin), the temperature of the receptor medium, sampling volume and time points of sampling should be determined based on the project.
Prior to starting, the temperature on the water bath/circulator is set to a predetermined value and a stir bar is put into each cell. The specific receiving medium is filled to the level somewhat higher than the receptor surface to avoid creating bubbles when the membrane is mounted. Then a membrane is slowly mounted from the top of the receptor medium, pushing the excessive medium to the side until the membrane touches the joint surface. If there is still some air trapped beneath the membrane, remove the membrane and add more medium to the receptor chamber to make it overflow slightly. Repeat previous mounting step until no air bubbles appear beneath the membrane. Also make sure the membrane completely covers the surface of the medium.
Next the donor chamber is placed on top of the membrane and secured by the clamp. A certain amount, usually 0.3gm or ml of the subject product such as a gel, lotion, or suspension is applied to each membrane. Cover the donor chamber with triple layers of Parafilm®. Cover the sampling arm with double layers of Parafilm® as well.


At each predetermined sampling time, by removing the Parafilm covering the sampling port, a specific amount (such as 200l, 300l) of receptor medium is sucked out from the sampling port by a long needle-shaped pipette (e.g., Fisher band, 9” Pasteur Pipets, Cat. #: 13-678-6B). The same amount of fresh medium is refilled into the cell through the sampling port by a regular pipette and the sampling port is covered by the same Parafilm temporarily removed.
If bubbles are created during the sampling process, carefully lift the cell up out of the Cell Holder. Quickly reverse the cell to turn it upside down so that bubbles would be released out through the sampling port. Be cautious to prevent the testing product leaking out of the donor chamber.


5 - Cleaning
After the testing is completed, turn off the stirring of each cell and water bath. Remove the donor chamber and membrane. Empty the receptor. Fill in the receptor with methanol. Turn on stirring for an hour. Use the methanol in the receptor to clean the joint surface of the receptor and the sampling arm as described in Section 3. Replace methanol with deionized water. Stir for another hour and repeat the previous cleaning step. Finally replace the used deionized water with fresh water. Keep the receptor chambers filled with water until next testing. The donor chamber should be washed by methanol as well, rinse first in tap water and then by deionized water.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

3 - การทำความสะอาดเซลล์ฟรานซ์ก่อนที่จะใช้เซลล์ สะอาดห้อง stirbars และผู้บริจาคที่แสดงในรูปที่ 3 โดยการล้างพวกเขาด้วยเมทานอ) และจุหลายครั้ง ปล่อยให้แห้ง ยัง เติมมเบอร์รับกับเมทานอล ให้กวนหนึ่งชั่วโมง แล้ว ใช้ปิเปตพลาสติกแบบใช้แล้วทิ้งเพื่อดูด และปล่อยเมทานอลจากรับหลายครั้งทำความสะอาดห้องรับตลอดจนพื้นผิวด้านบนของรับและสุ่มตัวอย่างพอร์ เปลี่ยนเมทานอลจุ ทำซ้ำขั้นตอนก่อนหน้าทำความสะอาด แล้วผัดสำหรับชั่วโมงอื่น สุดท้ายปิดที่กวน และเปลี่ยนน้ำจุใช้ ด้วยน้ำสะอาด มเบอร์รับที่เต็มไป ด้วยน้ำจนถึงการทดสอบอยู่เสมอ ทำซ้ำขั้นตอนการทำความสะอาดหลังการใช้ปล่อย 4 - ในหลอดทดลองทดสอบก่อนการทดสอบ ปานกลางในอุณหภูมิของตัวกลางรับ รับ เมมเบรน (โพลีเมอร์ หรือผิว) จุดปริมาณและเวลาของการสุ่มตัวอย่างการสุ่มตัวอย่างควรกำหนดตามโครงการก่อนที่จะเริ่ม อุณหภูมิในห้องอาบน้ำ/หมุนเวียนถูกตั้งค่าเป็นค่าที่กำหนดไว้ล่วงหน้า และบาร์ผัดจะใส่ลงในแต่ละเซลล์ รับสื่อเฉพาะถูกกรอกระดับค่อนข้างสูงกว่าพื้นผิวรับเพื่อหลีกเลี่ยงการสร้างฟองอากาศเมื่อติดตั้งเมมเบรน แล้ว เยื่อค่อย ๆ ติดจากด้านบนของกลางรับ ดันสื่อมากเกินไปด้านข้างจนกว่าเมมเบรนที่สัมผัสพื้นผิวร่วม หากยังคงมีอากาศบางส่วนติดอยู่ใต้เมมเบรน เอาเมมเบรน และเพิ่มสื่อเพิ่มเติมกับหอการค้ารับให้เกินเล็กน้อย ทำซ้ำขั้นตอนการติดตั้งก่อนหน้านี้จนไม่มีฟองอากาศปรากฏใต้เมมเบรน ยัง ให้แน่ใจว่า เมมเบรนที่สมบูรณ์ครอบคลุมพื้นผิวของตัวกลาง ถัดไป หอผู้บริจาคจะอยู่ด้านบนของเมมเบรน และค้ำประกัน โดยตัวหนีบ บางยอด มัก 0.3 กรัม หรือมิลลิลิตรของผลิตภัณฑ์วัตถุเช่นเจล โลชั่น หรือระงับใช้เมมเบรนแต่ละ ปกหอผู้บริจาค มีสามชั้น Parafilm® ครอบคลุมแขนสุ่มตัวอย่างกับชั้นสองของ Parafilm® เป็นอย่างดีในแต่ละครั้งสุ่มตัวอย่าง ที่กำหนด โดยเอา Parafilm ครอบสุ่มพอร์ต จำนวนเฉพาะ (เช่น 200l, 300l) กลางตัวรับถูกดูดออกจากพอร์สุ่มตัวอย่าง โดยการปิเปตรูปเข็มยาว (เช่น Fisher วง 9" ปาสเตอร์เซรุ่ม Cat. #: 13-678-6B) กันกลางสดเติมลงในเซลล์ผ่านพอร์ตสุ่มตัวอย่าง โดยปิเปตปกติ และพอร์ตที่สุ่มตัวอย่างครอบคลุม โดย Parafilm เดียวที่นำออกชั่วคราวถ้าฟองอากาศถูกสร้างในระหว่างกระบวนการสุ่มตัวอย่าง รอบคอบยกเซลล์จากที่ยึดเซลล์ ได้อย่างรวดเร็วกลับเซลล์เพื่อพลิกคว่ำเพื่อให้ฟองจะถูกปล่อยออกผ่านพอร์ตสุ่มตัวอย่าง โปรดใช้ความระมัดระวังเพื่อป้องกันการทดสอบผลิตภัณฑ์รั่วไหลจากห้องผู้บริจาค5 - การทำความสะอาดหลังจากการทดสอบเสร็จสมบูรณ์ ปิดการกวนแต่ละเซลล์และน้ำอาบ เอาหอผู้บริจาคและเมมเบรน ว่างเปล่ารับ กรอกรับกับเมทานอล เปิดกวนสำหรับชั่วโมง ใช้เมทานอลที่ในรับทำความสะอาดพื้นผิวร่วมรับและแขนสุ่มตัวอย่างตามที่อธิบายไว้ในส่วนที่ 3 เปลี่ยนเมทานอลจุ ทำซ้ำขั้นตอนก่อนหน้าทำความสะอาด แล้วผัดสำหรับชั่วโมงอื่น สุดท้าย เปลี่ยนน้ำจุใช้ ด้วยน้ำสะอาด เก็บห้องรับที่เต็มไป ด้วยน้ำจนถึงการทดสอบถัดไป ควรล้างหอผู้บริจาค โดยเมทานอลเช่นกัน ล้างในน้ำประปาก่อน แล้ว ตามจุ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

3 - ทำความสะอาดเซลล์ฟรานซ์
ก่อนที่จะใช้เซลล์ทำความสะอาด stirbars และห้องผู้พิพากษาผู้บริจาคที่แสดงในรูปที่ 3 โดยการล้างพวกเขาด้วยเมทานอล (เมธานอล) และน้ำปราศจากไอออนหลายต่อหลายครั้ง ปล่อยให้พวกเขาแห้ง นอกจากนี้ยังเติมห้องรับกับเมทานอล ให้กวนเป็นเวลาหนึ่งชั่วโมง แล้วใช้หลอดพลาสติกทิ้งที่จะดูดและปล่อยเมทานอลจากรับหลายครั้งเพื่อทำความสะอาดห้องรับเช่นเดียวกับพื้นผิวด้านบนของผู้รับและพอร์ตการสุ่มตัวอย่าง แทนที่เมทานอลด้วยน้ำปราศจากไอออน ผัดอีกชั่วโมงและทำซ้ำขั้นตอนการทำความสะอาดก่อน สุดท้ายปิดกวนและแทนที่น้ำปราศจากไอออนใช้กับน้ำจืด ให้ห้องรับที่เต็มไปด้วยน้ำจนการทดสอบ ทำซ้ำขั้นตอนการทำความสะอาดหลังการใช้งาน. 4 - ในหลอดทดลองทดสอบปล่อยก่อนการทดสอบกลางในการรับที่เมมเบรน (พอลิเมอหรือผิว) อุณหภูมิของตัวกลางรับปริมาณการสุ่มตัวอย่างและเวลาที่จุดของการสุ่มตัวอย่างควรได้รับการพิจารณาขึ้นอยู่กับโครงการ . ก่อนที่จะเริ่มอุณหภูมิในห้องน้ำ / ปั่นมีการตั้งค่าให้เป็นค่าที่กำหนดไว้และบาร์คนจะใส่ลงในแต่ละเซลล์ สื่อที่ได้รับเฉพาะเต็มไปยังระดับที่ค่อนข้างสูงกว่าพื้นผิวรับเพื่อหลีกเลี่ยงการสร้างฟองอากาศเมื่อเมมเบรนที่ติดตั้ง แล้วเมมเบรนจะถูกติดตั้งอย่างช้าๆจากด้านบนของกลางตัวรับผลักดันสื่อมากเกินไปไปด้านข้างจนเมมเบรนสัมผัสพื้นผิวร่วมกัน ถ้ายังมีอากาศบางส่วนติดอยู่ใต้เยื่อเมมเบรนลบและเพิ่มขนาดกลางมากขึ้นไปยังห้องรับที่จะทำให้มันล้นออกไปเล็กน้อย ทำซ้ำขั้นตอนการติดตั้งก่อนหน้านี้จนไม่มีฟองอากาศที่ปรากฏใต้เยื่อหุ้มเซลล์ ยังให้แน่ใจว่าเมมเบรนสมบูรณ์ครอบคลุมพื้นผิวของกลาง. ถัดไปห้องผู้บริจาคที่วางอยู่ด้านบนของเมมเบรนและค้ำประกันโดยยึด จำนวนหนึ่งมักจะ 0.3gm หรือมล. ของผลิตภัณฑ์วัตถุอย่างเช่นเจล, โลชั่นหรือระงับการถูกนำไปใช้ในแต่ละเมมเบรน ครอบคลุมห้องผู้บริจาคที่มีชั้นสามของParafilm® ครอบคลุมแขนสุ่มตัวอย่างที่มีสองชั้นของParafilm®เช่นกัน. ในช่วงเวลาการสุ่มตัวอย่างในแต่ละที่กำหนดไว้โดยการเอา Parafilm ครอบคลุมพอร์ตสุ่มตัวอย่างจำนวนเฉพาะ (เช่น200l, 300l) ของกลางรับจะถูกดูดออกจาก การสุ่มตัวอย่างพอร์ตโดยหลอดเข็มยาวรูป (เช่นฟิชเชอร์วง 9 "ปาสเตอร์ Pipets, แมว #:. 13-678-6B) จำนวนเงินเดียวกันของกลางสดเติมลงในเซลล์ผ่านทางพอร์ตการสุ่มตัวอย่างโดยปิเปตปกติและพอร์ตการสุ่มตัวอย่างถูกปกคลุมด้วย Parafilm เดียวกันชั่วคราวลบออก. หากฟองจะถูกสร้างขึ้นในระหว่างขั้นตอนการสุ่มตัวอย่างอย่างยกมือถือขึ้นมาจากมือถือ เจ้าของ. ได้อย่างรวดเร็ว Reverse Cell เพื่อเปิดคว่ำเพื่อให้ฟองอากาศจะได้รับการปล่อยตัวออกมาผ่านทางพอร์ตการสุ่มตัวอย่าง ระมัดระวังเพื่อป้องกันไม่ให้สินค้าที่มีการทดสอบการรั่วไหลออกจากห้องผู้บริจาค. 5 - การทำความสะอาดหลังจากการทดสอบเสร็จสิ้นปิดกวนของแต่ละห้องอาบน้ำของเซลล์และน้ำ ลบห้องบริจาคและเมมเบรน ล้างตัวรับ กรอกตัวรับกับเมทานอล เปิดกวนเป็นเวลาหนึ่งชั่วโมง ใช้เมทานอลในการรับการทำความสะอาดพื้นผิวร่วมกันของตัวรับและแขนสุ่มตัวอย่างตามที่อธิบายไว้ในมาตรา 3 แทนที่เมทานอลด้วยน้ำปราศจากไอออน ผัดอีกชั่วโมงและทำซ้ำขั้นตอนการทำความสะอาดก่อน สุดท้ายแทนที่น้ำ deionized ใช้กับน้ำจืด ให้ห้องรับที่เต็มไปด้วยน้ำจนการทดสอบต่อไป ห้องบริจาคควรจะล้างด้วยเมทานอลเป็นอย่างดีล้างในน้ำประปาแล้วด้วยน้ำปราศจากไอออน

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

3 - ซักแห้ง ฟรานซ์ เซลล์ก่อนที่จะใช้เซลล์สะอาด stirbars ผู้บริจาคและห้องแสดงในรูปที่ 3 โดยการล้างพวกเขาด้วยเมทานอล ( เมทิลแอลกอฮอล์ ) และคล้ายเนื้อเยื่อประสานน้ำหลายๆ ครั้ง ปล่อยให้พวกเขาแห้ง ยังกรอกรับห้องด้วยเมทานอล ผัดต่อหนึ่งชั่วโมง แล้วใช้ปิเปตพลาสติกทิ้งเพื่อดูดและปล่อยเมทานอลจากตัวรับหลายๆครั้งให้สะอาดรับห้องรวมทั้งพื้นผิวด้านบนของตัวรับและสุ่มพอร์ต แทนที่เมทานอลกับน้ำคล้ายเนื้อเยื่อประสาน . ผัดอีกชั่วโมงและทำซ้ำขั้นตอนการทําความสะอาดก่อน ในที่สุดก็ปิดตื่นเต้นและแทนที่ใช้คล้ายเนื้อเยื่อประสานน้ำกับน้ำบริสุทธิ์ ให้ตัวรับ ห้องเต็มไปด้วยน้ำจนกว่าการทดสอบ ทำซ้ำขั้นตอนการทําความสะอาดหลังใช้4 - ในการทดสอบปล่อยหลอดทดลองก่อนการทดสอบกลางในตัวรับ เมมเบรน ( พอลิเมอร์ หรือผิวหนัง ) , อุณหภูมิของตัวรับกลาง ตัวอย่างปริมาณและเวลาจุดเก็บตัวอย่างควรพิจารณาจากโครงการก่อนที่จะเริ่มต้น อุณหภูมิในน้ำอาบ / ปั่นเป็นชุดตามที่กำหนดคุณค่าและบาร์ผัดใส่ลงไปในแต่ละเซลล์ รับเฉพาะกลางเต็มไประดับค่อนข้างสูงกว่าพื้นผิวตัวรับเพื่อหลีกเลี่ยงการสร้างฟองอากาศเมื่อแผ่นติดตั้ง . แล้วเยื่อค่อยๆติดจากด้านบนของตัวรับกลางผลักดันสื่อมากเกินไปไปด้านข้างจนเยื่อสัมผัสพื้นผิวข้อต่อ ถ้ายังมีอากาศติดใต้แผ่น เอาแผ่น และเพิ่มสื่อเพิ่มเติมเพื่อรับห้องให้มันล้นออกมาเล็กน้อย ย้ำยึดขั้นตอนก่อนหน้าจนไม่มีฟองอากาศที่ปรากฏใต้เยื่อ ยังให้แน่ใจว่าแผ่นสมบูรณ์ครอบคลุมพื้นผิวของตัวกลางถัดไปจากห้องวางอยู่ด้านบนของเยื่อและมีความปลอดภัย โดย clamp จํานวนหนึ่ง มักจะ 0.3gm หรือมิลลิลิตรผลิตภัณฑ์ เรื่อง เช่น เจล โลชั่น หรือระงับการใช้แผ่น . ครอบคลุมผู้บริจาคหอด้วยสามชั้นของพาราฟิล์ม® . ปกและแขนด้วยชั้นคู่ของพาราฟิล์ม®เช่นกันกำหนดเวลาในแต่ละคน โดยเอาพาราฟิล์มครอบคลุม 2 พอร์ท จํานวนเฉพาะ ( เช่น L 200 , 300  L ) ตัวรับกลางจะถูกดูดออกมาจากสุ่มพอร์ต โดยเข็มที่มีรูปร่างยาว ( เช่น ปลาเปตวง 9 " ปาส pipets , แมว # : 13-678-6b ) ปริมาณที่เท่ากันของสื่อสดมีอายุเข้าสู่เซลล์ผ่านตัวอย่างพอร์ตโดยหลอดปกติและตัวอย่างพอร์ตครอบคลุมเดียวกันพาราฟิล์มชั่วคราวออกถ้าฟองอากาศถูกสร้างขึ้นในระหว่างขั้นตอนการสุ่มตัวอย่าง ค่อย ๆยกโทรศัพท์ขึ้นมาจากเซลล์ผู้ถือ รีบย้อนกลับเซลล์ มันหันหัวลงเพื่อให้ฟองจะถูกปล่อยออกมาผ่านการสุ่มพอร์ต ระมัดระวังเพื่อป้องกันไม่ให้การทดสอบผลิตภัณฑ์รั่วไหลออกมาจากผู้บริจาค Chamber5 - ทำความสะอาดหลังจากทดสอบเสร็จ ปิดเร้าใจของแต่ละเซลล์ และน้ำอาบ ลบผู้บริจาคและหอการค้าของเยื่อแผ่น ที่ว่างเปล่ารีเซพเตอร์ กรอกในตัวรับกับเมทานอล เปิดกวนต่ออีก 1 ชั่วโมง ใช้เมธานอลในตัวรับ ทำความสะอาดพื้นผิวข้อต่อของตัวรับและการสุ่มตัวอย่างแขนตามที่อธิบายไว้ในมาตรา 3 แทนที่เมทานอลกับน้ำคล้ายเนื้อเยื่อประสาน . ผัดอีกชั่วโมงและทำซ้ำขั้นตอนการทําความสะอาดก่อน ในที่สุดแทนที่ใช้คล้ายเนื้อเยื่อประสานน้ำกับน้ำบริสุทธิ์ ให้ตัวรับ ห้องเต็มไปด้วยน้ำจนกว่าการทดสอบต่อไป ผู้บริจาคห้องควรล้างด้วยเมทานอลเป็นอย่างดีล้างครั้งแรกในน้ำประปาแล้วคล้ายเนื้อเยื่อประสานน้ำ