To measure meat quality traits, LM

To measure meat quality traits, LM samples were obtained from 5 carcasses of each replicate, thawed in vacuum-package bags for 24 h at 4°C, removed from packages, blotted dry, and weighed. Thawing losses were calculated by dividing the difference in weight between the fresh and thawed samples by the initial fresh weight. Additionally, objective measures of pork color were determined on thawed chops after a 20-min bloom period. Samples were analyzed with a calibrated CM 2002 colorimeter (Minolta Camera, Osaka, Japan) by using illuminant D65, 10° Standard Observer, and
the Commission International de l’Eclairage (1976) color scale. The colorimeter was previously calibrated with a pure white color according to the manufacturer’s recommendations, and the average of 3 random readings was used to measure lightness (L*), redness (a*), and yellowness (b*). Additionally, the chroma [c* = (a*2 + b*2)¹⁄₂] values were calculated. Myoglobin content was measured in 2 minced slices of meat from each chop with a Beckman DU-640 spectrophotometer (Beckman Instruments, Fullerton, CA) by the method of Hornsey (1956), as modified by Boccard
et al. (1981). Briefly, a 5-g sample of minced LM was placed into an extraction vessel with 20 mL of acetone and 1 mL of water and stirred for 30 s with a glass rod. Afterward, 0.5 mL of 12-M HCl was added, and the suspension was kept in a sealed vessel overnight in the dark. The sample was then filtered and absorbance of the filtrate was measured at 510 nm.
Each slice was evaluated twice and the values obtained were averaged. The concentration of myoglobin (mg
g−
1 of fresh muscle weight) was obtained by multiplying the absorbance reading by the factor 8.816 obtained by calibration (Boccard et al., 1981). The muscular fat (MF), CP, and moisture content of the loins were determined by using a near-infrared transmittance meat analyzer (Infratec 1265, Tecator, Ho¨gana¨ s, Sweden). The samples were not trimmed free
of intermuscular fat and connective tissue. Therefore, the measurement of MF included both the intermuscular and intramuscular fat. The monochromator contained a 50-W tungsten lamp and a diffraction grating that created monochromatic light. The measured spectra were separated in the range from 800 to 1,100 nm. The chops were minced and distributed in the cup ring equipped with a plastic bottom plate, with a 100-mm diameter and 15-mm depth.Drip loss was determined by using 15-mm-thick LM slices from each thawed chop. After weighing, the slices were placed over a metallic net in a hermetic plastic cage at 4°C for 24 h without application of any external force. Afterwards, the samples were reweighed, and the difference between the weights of the slice before and after conservation in the cooler were divided by the initial weight to determine drip loss. Cooking loss was determined by the method described
by Honikel (1998). Briefly, a LM slice was taken from each chop, weighed (80 ± 5 g), placed in a plastic
bag, and cooked to an internal temperature of 70°C in a 75°C water bath (Precisterm, J.P. Selecta S.A., Barcelona, Spain). Internal temperature was monitored during cooking with a handheld temperature probe (Hanna Instruments, Woonsocket, RI). Cooked samples were allowed to cool at 15°C for 30 min, blotted dry, and weighed. The difference between pre- and postcooking weights was divided by the precooked weight to calculate cooking loss percentage. Samples were then
cut parallel to the long axis of the muscle fibers into rectangular cross-section slices, 10 × 10 × 30 mm in length (Guerrero et al., 1999). Slices (8/chop) were sheared perpendicular to the fiber orientation with the
V-shaped blade of a Warner-Bratzler shear force device attached to a texture meter (TA-XT2, Stable Micro Systems,
Surrey, UK) equipped with a 5-kg load cell and with a crosshead speed of 6 mm
s−1.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

วัดลักษณะเนื้อคุณภาพ LM ตัวอย่างได้จากซาก 5 ของแต่ละซ้ำ thawed ในแพคเกจสูญญากาศถุงแห้ง 24 h ที่ 4° C เอาออกจากแพคเกจ blotted และชั่งน้ำหนัก ขาดทุน thawing ถูกคำนวณ โดยการหารความแตกต่างของน้ำหนักระหว่างตัวอย่างสด และ thawed ตามน้ำหนักสดต้น นอกจากนี้ วัดหมูสีวัตถุประสงค์ถูกกำหนดบนสับ thawed เมื่อบลูม 20 นาที ตัวอย่างที่วิเคราะห์ ด้วยเครื่อง CM 2002 ที่ calibrated (กล้อง Minolta โอซาก้า ญี่ปุ่น) โดยใช้หลอดไฟ D65, 10° นักการมาตรฐาน และคณะกรรมการนานาชาติเดอ l'Eclairage (1976) สีมาตราส่วน เครื่องถูกปรับเทียบก่อนหน้านี้ มีสีขาวบริสุทธิ์ตามคำแนะนำของผู้ผลิต และค่าเฉลี่ยของ 3 สุ่มอ่านใช้ในการวัดความสว่าง (L *), แดง (เป็น *), และ yellowness (b *) นอกจากนี้ ความ [c * = (* 2 + b * 2) ¹⁄₂] ค่าที่คำนวณ ไมโยโกลบินเนื้อหาถูกวัดใน 2 ชิ้นสับเนื้อจากแต่ละสับกับเครื่องทดสอบกรดด่าง Beckman DU-640 (Beckman เครื่อง ฟู CA) ตามวิธีของ Hornsey (1956), แก้ไขตาม Boccardและ al. (1981) สั้น ๆ อยู่ในเรือสกัดด้วยอะซิโตน และ mL 1 น้ำ 20 mL และกวนสำหรับ 30 ตัวอย่าง LM สับ 5-g s กับรอดแก้ว หลัง เพิ่ม 0.5 mL ของ HCl 12 M และระบบกันสะเทือนถูกเก็บในเรือค้างคืนในมืดปิดผนึก ตัวอย่างที่ถูกกรองแล้ว และถูกวัด absorbance ของสารกรอง 510 nmแต่ละชิ้นถูกประเมินสองครั้ง และ averaged ค่าที่รับได้ ความเข้มข้นของไมโยโกลบิน (g− มิลลิกรัม1 ของน้ำหนักกล้ามเนื้อสด) ได้รับคูณ absorbance ที่อ่าน โดยตัว 8.816 ที่ได้รับ โดยเทียบ (Boccard et al., 1981) กล้ามเนื้อไขมัน (MF), CP และชื้นของ loins การถูกกำหนด โดยใช้การวิเคราะห์เนื้อ transmittance ใกล้อินฟราเรด (Infratec 1265, Tecator, Ho¨gana¨ s สวีเดน) ตัวอย่างถูกตัดฟรีintermuscular ไขมันและเนื้อเยื่อเกี่ยวพัน ดังนั้น วัด MF รวมทั้ง intermuscular และบาดทะยักจากไขมัน Monochromator อยู่โคมไฟทังสเตน 50 W และ grating การเลี้ยวเบนที่สร้างแสงสีเดียว แรมสเป็คตราวัดถูกแยกในช่วงจาก 800 1100 nm ชิ้นถูกสับ และกระจายในแหวนถ้วยพร้อมจานล่างพลาสติก เส้นผ่าศูนย์กลาง 100 มม.และ 15 มม.ลึก หยดขาดทุนถูกกำหนดโดยชิ้น LM หนา 15 มม.จากแต่ละสับ thawed หลังจากชั่ง ชิ้นถูกวางผ่านสุทธิโลหะในกรงพลาสติกแบบ hermetic ที่ 4° C ใน 24 ชมโดยใช้แรงภายนอก หลัง ตัวอย่างที่ reweighed และความแตกต่างระหว่างน้ำหนักของสไลด์ก่อน และ หลังการอนุรักษ์ในเย็นที่ได้หาร ด้วยน้ำหนักเริ่มต้นกำหนดหยดร่วง อาหารขาดทุนถูกกำหนด โดยวิธีการอธิบายไว้โดย Honikel (1998) สั้น ๆ ชิ้น LM ได้มาจากแต่ละสับ ชั่งน้ำหนัก (80 ± 5 กรัม) อยู่ในพลาสติกกระเป๋า และต้มอุณหภูมิ 70° C ในอ่างน้ำ 75° C (Precisterm โฟร์เซ้นฟู้ด Selecta S.A. บาร์เซโลนา สเปน) ภายใน อุณหภูมิภายในได้ตรวจสอบในระหว่างการทำอาหารกับโพรบมือถืออุณหภูมิ (Hanna เครื่อง Woonsocket, RI) ตัวอย่างสุกก็สามารถเย็นที่ 15° C ใน 30 นาที blotted แห้ง และน้ำหนัก ความแตกต่างระหว่างน้ำหนักก่อน และ postcooking ถูกหาร ด้วยน้ำหนัก precooked คำนวณเปอร์เซ็นต์การแพ้อาหาร ตัวอย่างดีแล้วตัดขนานกับแกนยาวของเส้นใยกล้ามเนื้อเป็นชิ้นสี่เหลี่ยมระหว่างส่วน 10 × 10 × 30 mm ความยาว (โรร้อยเอ็ด al., 1999) ชิ้น (สับ 8) ถูกตัดเส้นตั้งฉากกับแนวเส้นใยด้วยการใบมีดรูปตัว V แรงอุปกรณ์เฉือนวอร์เนอร์ Bratzler กับเครื่องวัดเนื้อสัมผัส (TA XT2 เสถียรภาพระบบไมโครเซอร์เรย์ อังกฤษ) พร้อม กับ 5 กิโลกรัมโหลดเซลล์ และความเร็ว crosshead ของ s−1 6 mm

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การวัดลักษณะเนื้อสัตว์ที่มีคุณภาพตัวอย่าง LM ที่ได้รับจาก 5 ซากของแต่ละซ้ำละลายในถุงสูญญากาศแพคเกจเป็นเวลา 24 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียสลบออกจากแพคเกจเปื้อนแห้งและชั่งน้ำหนัก ความสูญเสียที่ละลายจะถูกคำนวณโดยการหารความแตกต่างในน้ำหนักระหว่างตัวอย่างสดและละลายโดยน้ำหนักสดเริ่มต้น นอกจากนี้มาตรการวัตถุประสงค์ของสีเนื้อหมูได้รับการพิจารณาในการสับละลายหลังจากระยะเวลาบาน 20 นาที ตัวอย่างการวิเคราะห์ด้วย CM 2002 colorimeter สอบเทียบ (กล้อง Minolta โอซาก้าประเทศญี่ปุ่น) โดยใช้ D65 สว่าง 10 °มาตรฐานสังเกตการณ์และ
คณะกรรมาธิการระหว่างประเทศ de l'Eclairage (1976) ขนาดสี colorimeter ได้รับการสอบเทียบก่อนหน้านี้ที่มีสีขาวบริสุทธิ์ตามคำแนะนำของผู้ผลิตและเฉลี่ย 3 อ่านแบบสุ่มที่ถูกใช้ในการวัดความสว่าง (L *), สีแดง (*) และสีเหลือง (b *) นอกจากนี้ความเข้มของสี [C = * (* 2 + b * 2) ¹/₂] ค่านี้จะถูกคำนวณ เนื้อหา myoglobin วัดใน 2 ชิ้นสับเนื้อสับจากกันกับเบคค์ spectrophotometer DU-640 (Beckman เครื่องดนตรี, Fullerton, CA) โดยวิธีการ Hornsey (1956) ในขณะที่การแก้ไขโดย Boccard
et al, (1981) สั้น ๆ , ตัวอย่าง 5 กรัม LM สับถูกวางลงในภาชนะที่มีการสกัด 20 มลของอะซีโตนและ 1 มิลลิลิตรของน้ำและกวนเป็นเวลา 30 วินาทีด้วยไม้แก้ว หลังจากนั้น 0.5 มิลลิลิตร 12-M HCl ถูกบันทึกและระงับถูกเก็บไว้ในภาชนะที่ปิดสนิทในชั่วข้ามคืนในที่มืด ตัวอย่างถูกกรองแล้วและการดูดกลืนแสงของกรองวัดที่ 510 นาโนเมตร.
แต่ละชิ้นได้รับการประเมินครั้งที่สองและค่านิยมที่ได้มาเฉลี่ย ความเข้มข้นของ myoglobin (mg? G-
1 ของน้ำหนักกล้ามเนื้อสด) ที่ได้รับจากการคูณการอ่านการดูดกลืนแสงโดยปัจจัย 8.816 ที่ได้รับจากการสอบเทียบ (Boccard et al., 1981) ไขมันกล้ามเนื้อ (MF) ซีพีและปริมาณความชื้นของเอวได้รับการพิจารณาโดยใช้การส่งผ่านอินฟราเรดใกล้วิเคราะห์เนื้อ (Infratec 1265, Tecator, Ho¨gana¨วินาที, สวีเดน) กลุ่มตัวอย่างที่ไม่ได้ถูกตัดฟรี
ของไขมัน intermuscular และเนื้อเยื่อเกี่ยวพัน ดังนั้นการวัด MF รวมทั้ง intermuscular ไขมันและกล้ามเนื้อ monochromator มีหลอดไฟทังสเตน 50-W ตะแกรงเลนส์ที่สร้างแสงสีเดียว สเปกตรัมที่วัดได้ถูกแยกออกในช่วงตั้งแต่ 800 ถึง 1,100 นาโนเมตร ถูกสับสับและจัดจำหน่ายในแหวนถ้วยพร้อมกับแผ่นด้านล่างพลาสติกที่มีขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 100 มมและการสูญเสีย 15 มม depth.Drip ถูกกำหนดโดยใช้ 15 มมหนาชิ้น LM จากแต่ละสับละลาย หลังจากชั่งน้ำหนักชิ้นถูกวางไว้ในช่วงสุทธิโลหะในกรงพลาสติกสุญญากาศที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมงโดยไม่ต้องประยุกต์ใช้แรงภายนอกใด ๆ หลังจากนั้นกลุ่มตัวอย่างที่ถูก reweighed และความแตกต่างระหว่างน้ำหนักของชิ้นก่อนและหลังการอนุรักษ์ในเย็นถูกหารด้วยน้ำหนักเริ่มต้นที่จะตรวจสอบการสูญเสียน้ำหยด การสูญเสียการทำอาหารถูกกำหนดโดยวิธีการที่อธิบาย
โดย Honikel (1998) สั้น ๆ , LM ชิ้นถูกนำมาจากแต่ละสับชั่งน้ำหนัก (80 ± 5 กรัม) วางไว้ในพลาสติก
ถุงและปรุงให้อุณหภูมิภายในของ 70 ° C ใน 75 ° C อ่างน้ำ (Precisterm เจพี Selecta SA, บาร์เซโลนา สเปน) อุณหภูมิภายในได้รับการตรวจสอบในระหว่างการปรุงอาหารด้วยหัววัดอุณหภูมิแบบพกพา (ฮันนาเครื่องดนตรี, Woonsocket, RI) ตัวอย่างปรุงได้รับอนุญาตให้เย็นที่ 15 ° C เป็นเวลา 30 นาที, เปื้อนแห้งและชั่งน้ำหนัก ความแตกต่างระหว่างก่อนและน้ำหนัก postcooking โดยแบ่งเป็น precooked น้ำหนักในการคำนวณเปอร์เซ็นต์การสูญเสียการปรุงอาหาร ตัวอย่างแล้ว
ตัดขนานกับแกนยาวของเส้นใยกล้ามเนื้อเป็นชิ้นตัดเป็นรูปสี่เหลี่ยมผืนผ้า 10 × 10 × 30 มิลลิเมตรความยาว (เกร์เรโร et al., 1999) ชิ้น (8 / สับ) ได้รับการตัดตั้งฉากกับการวางแนวทางเส้นใยที่มี
ใบมีดรูปตัววีของวอร์เนอร์ Bratzler อุปกรณ์แรงเฉือนที่แนบมากับเนื้อเมตร (TA-XT2 ระบบ Micro เสถียร,
Surrey, UK) พร้อมกับ 5 โหลดเซลล์กก. และมีความเร็วรอสเฮด 6 มม? s-1

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

วัดลักษณะคุณภาพเนื้อ อย่าง อิม ได้จาก 5 โรงงานของแต่ละจําลองละลายในถุงบรรจุภัณฑ์สูญญากาศเป็นเวลา 24 ชั่วโมงที่ 4 ° C , เอาออกจากแพคเกจ เปื้อนแห้งและชั่งน้ำหนัก ละลายสูญเสียถูกคำนวณโดยการหารความแตกต่างในน้ำหนักระหว่างตัวอย่างสด และละลายโดยน้ำหนักสด เริ่มต้น นอกจากนี้มาตรการวัตถุประสงค์ของสีหมูเป็นในละลายสับหลัง 20 นาที ออกดอกช่วง วิเคราะห์เทียบกับ CM 2002 colorimeter ( Minolta กล้อง โอซาก้า ญี่ปุ่น ) โดยการใช้ระบบแสงสว่าง D65 , 10 องศาสังเกตการณ์และมาตรฐาน
คณะกรรมาธิการระหว่างประเทศ เดอ l'eclairage ( 1976 ) ขนาดสีในระบบดิจิตอลเทียบกับก่อนหน้านี้สีขาวบริสุทธิ์สี ตามคำแนะนำของผู้ผลิต และเฉลี่ย 3 อ่านสุ่มถูกใช้เพื่อวัดค่าความสว่าง ( L * ) , สีแดง ( a * ) และค่าสีเหลือง ( b * ) นอกจากนี้ , Chroma [ C * = ( * 2 ) * 2 ) ¹⁄₂ ] ค่าได้myoglobin เนื้อหาวัดใน 2 สับชิ้นเนื้อจากแต่ละสับกับเบคแมน du-640 Spectrophotometer ( Beckman เครื่องมือ ฟุลเลอร์ , แคลิฟอร์เนีย ) โดยวิธีของ Hornsey ( 1956 ) , แก้ไขโดย boccard
et al . ( 1981 ) สั้น , ตัวอย่าง 5-g สับ LM อยู่ในเรือ 20 มิลลิลิตรการสกัดอะซิโตนและ 1 มิลลิลิตรของน้ำและคนเป็นเวลา 30 วินาทีด้วยแท่งแก้ว ภายหลัง , 05 มล. 12-m HCl ถูกเพิ่ม และช่วงล่างที่ถูกเก็บไว้ในภาชนะปิดผนึก ค้างคืนในที่มืด ตัวอย่างแล้วกรองและค่าของการเป็นวัดที่ 510 nm .
แต่ละชิ้นถูกประเมินสองครั้งและได้ถูกเฉลี่ย ความเข้มข้นของไมโอโกลบิน ( มก.
G −
1 น้ำหนักกล้ามเนื้อสด ) ได้โดยการคูณค่าอ่านโดยปัจจัย 8ดูได้จากการสอบเทียบ ( boccard et al . , 1981 ) กล้ามเนื้อไขมัน ( MF ) , CP และความชื้นจากบั้นเอวถูกกำหนดโดยใช้แสงอินฟราเรดใกล้เนื้อวิเคราะห์ ( infratec พี่ tecator โฮตั้งประเทศกานา , ตั้ง , สวีเดน ) ตัวอย่างที่ไม่ตัดฟรี
ของ intermuscular ไขมันและเนื้อเยื่อเกี่ยวพัน ดังนั้น การวัด MF รวมทั้งไขมันและ intermuscular 2 .ที่โมโนโครเมเตอร์มี 50-w หลอดไฟทังสเตน และการเลี้ยวเบนตะแกรงที่สร้าง monochromatic light วัดแสงแยกกันในช่วง 800 ถึง 1 , 100 นาโนเมตร ที่สับเป็นสับและแจกจ่ายในถ้วยแหวนพร้อมกับจานล่างพลาสติก กับ 100 มม. เส้นผ่าศูนย์กลาง 15 มม. ความลึกและ . การสูญเสีย ถูกกำหนดโดยการใช้หนา 15 mm โดยแต่ละชิ้นจากที่ละลายแล้วสับหลังจากชั่งน้ำหนักชิ้นถูกวางไว้กว่าตาข่ายโลหะในกรงพลาสติกลึกลับที่ 4 ° C เป็นเวลา 24 ชั่วโมง โดยไม่มีการบังคับใด ๆภายนอก หลังจากนั้น จำนวน reweighed และความแตกต่างระหว่างน้ำหนักของชิ้นก่อนและหลังรักษา ในเย็น แบ่งโดยน้ำหนักเพื่อตรวจสอบการสูญเสีย . การสูญเสียอาหารถูกหาโดยวิธีอธิบาย
โดย honikel ( 1998 ) สั้น , LM ชิ้นถ่ายจากแต่ละสับหนัก ( 80 ± 5 กรัม อยู่ในถุงพลาสติก
และปรุงสุกที่อุณหภูมิ 70 องศา C ภายใน 75 องศา C น้ำในอ่าง ( precisterm เจพีซีเล็คต้า , SA , บาร์เซโลนา , สเปน ) อุณหภูมิภายในถูกตรวจสอบในระหว่างการปรุงอาหารกับหัววัดอุณหภูมิแบบมือถือ ( Hanna Instruments , Woonsocket , รี )ตัวอย่างอาหารได้รับอนุญาตให้เย็น 15 องศา C นาน 30 นาทีเปื้อนแห้งและชั่งน้ำหนัก ความแตกต่างระหว่างก่อนและ postcooking น้ำหนักหารด้วยน้ำหนักที่ผ่านการคำนวณ การปรุงอาหารร้อยละการสูญเสีย จำนวนแล้ว
ตัดขนานกับแกนยาวของเส้นใยกล้ามเนื้อเป็นชิ้นสี่เหลี่ยมขนาด 10 × 10 × 30 มม. ( Guerrero et al . , 1999 )ชิ้น ( 8 / สับ ) ถูกตัดตั้งฉากกับใยปฐมนิเทศกับ
วีกใบมีดของวอร์เนอร์ bratzler แรงเฉือนอุปกรณ์แนบกับพื้นผิวเมตร ( ta-xt2 มั่นคงไมโครระบบ
Surrey , UK ) พร้อมกับ 5-kg โหลดเซลล์และมีความเร็ว 6 มม.
มะ s − 1