- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
2. Materials and methods2.1. DNA sa
2. Materials and methods
2.1. DNA samples
GenomicDNAsamples were obtained from 801 individuals
belonging to nine native goat breeds: Inner Mongolia White
Cashmere (IMWC, 452), Xinong saneng dairy (Sa, 74) and
Guanzhong dairy (GZ, 62), Laoshan dairy (LS, 80), Leizhou
(LZ, 34), Guizhou Black (GB, 21) and Guizhou White (GW,
31), Banjiao (BJ, 25), Matou (MT, 22), reared in the province
of Inner Mongolia, Shaanxi, Shandong, Guangdong, Guizhou,
Sichuan, and Hubei (China), respectively. The 11,026 records
of production traits (milk yield, litter size, weight traits, hair
length, hair thickness and hair yields) in 216 dairy goats (Sa,GZ
and LS) and 452 Inner Mongolia White Cashmere goats were
collected for statistical analysis. DNA samples were extracted
from leucocytes according to Mullenbach et al. (1989).
2.2. PCR conditions
Based upon the sheep and bovine POU1F1 gene sequences,
the following primers (P1, P2 and P3) were designed to
amplify the goat POU1F1 gene. P1 (F: 5-AGGATACACC-
9CAGACAAATG-3 and R: 5-TACTGATTGTTGTTCTCCGT-
3) was used to amplify 1000 bp PCR product for exon 4,
intron 4 and exon 5; P2 (F: 5-CCTCTGTCCATGGGATTTTC-
3 and R: 5-CCATCATCTCCCTTCTT-3)was used to amplify
355 bp PCR product for intron 5; P3 (F: 5-CCATCATCTCCCTTCTT-
3 and 5-AATGTACAATGTCCTTCTGAG-3) was
used to amplify 450 bp PCR product for exon 6 and its flanking
region. The 25 L volume contained: 50 ng genomic DNA,
0.5Mof each primer, 1×Buffer [including 1.5mMMgCl2],
200M dNTPs and 0.625 units of Taq DNA polymerase
(MBI). The cycling protocol was 4 min at 95 ◦C, 35 cycles
of 94 ◦C for 45 s, X ◦C annealing for 45 s, 72 ◦C for 1 min, with
a final extension at 72 ◦C for 10 min (X ◦C were 63, 63 and
54.5 ◦C for P1, P2 and P3 primers, respectively).
2.3. Single stranded conformation polymorphism (SSCP)
and DNA sequencing
Aliquots of 5 L PCR products were mixed with 5 L
denaturing solution (95% formamide, 25mM EDTA, 0.025%
xylene–cyanole and 0.025% bromophenol blue), heated for
10 min at 98 ◦C and chilled on ice (Sun et al., 2002). Denatured
DNA was subjected to PAGE (80mm×73mm×0.75 mm) in
1×TBE buffer and constant voltage (200 V) for 2.5–3.0 h. The
2.1. DNA samples
GenomicDNAsamples were obtained from 801 individuals
belonging to nine native goat breeds: Inner Mongolia White
Cashmere (IMWC, 452), Xinong saneng dairy (Sa, 74) and
Guanzhong dairy (GZ, 62), Laoshan dairy (LS, 80), Leizhou
(LZ, 34), Guizhou Black (GB, 21) and Guizhou White (GW,
31), Banjiao (BJ, 25), Matou (MT, 22), reared in the province
of Inner Mongolia, Shaanxi, Shandong, Guangdong, Guizhou,
Sichuan, and Hubei (China), respectively. The 11,026 records
of production traits (milk yield, litter size, weight traits, hair
length, hair thickness and hair yields) in 216 dairy goats (Sa,GZ
and LS) and 452 Inner Mongolia White Cashmere goats were
collected for statistical analysis. DNA samples were extracted
from leucocytes according to Mullenbach et al. (1989).
2.2. PCR conditions
Based upon the sheep and bovine POU1F1 gene sequences,
the following primers (P1, P2 and P3) were designed to
amplify the goat POU1F1 gene. P1 (F: 5-AGGATACACC-
9CAGACAAATG-3 and R: 5-TACTGATTGTTGTTCTCCGT-
3) was used to amplify 1000 bp PCR product for exon 4,
intron 4 and exon 5; P2 (F: 5-CCTCTGTCCATGGGATTTTC-
3 and R: 5-CCATCATCTCCCTTCTT-3)was used to amplify
355 bp PCR product for intron 5; P3 (F: 5-CCATCATCTCCCTTCTT-
3 and 5-AATGTACAATGTCCTTCTGAG-3) was
used to amplify 450 bp PCR product for exon 6 and its flanking
region. The 25 L volume contained: 50 ng genomic DNA,
0.5Mof each primer, 1×Buffer [including 1.5mMMgCl2],
200M dNTPs and 0.625 units of Taq DNA polymerase
(MBI). The cycling protocol was 4 min at 95 ◦C, 35 cycles
of 94 ◦C for 45 s, X ◦C annealing for 45 s, 72 ◦C for 1 min, with
a final extension at 72 ◦C for 10 min (X ◦C were 63, 63 and
54.5 ◦C for P1, P2 and P3 primers, respectively).
2.3. Single stranded conformation polymorphism (SSCP)
and DNA sequencing
Aliquots of 5 L PCR products were mixed with 5 L
denaturing solution (95% formamide, 25mM EDTA, 0.025%
xylene–cyanole and 0.025% bromophenol blue), heated for
10 min at 98 ◦C and chilled on ice (Sun et al., 2002). Denatured
DNA was subjected to PAGE (80mm×73mm×0.75 mm) in
1×TBE buffer and constant voltage (200 V) for 2.5–3.0 h. The
0/5000
2. Materials and methods2.1. DNA samplesGenomicDNAsamples were obtained from 801 individualsbelonging to nine native goat breeds: Inner Mongolia WhiteCashmere (IMWC, 452), Xinong saneng dairy (Sa, 74) andGuanzhong dairy (GZ, 62), Laoshan dairy (LS, 80), Leizhou(LZ, 34), Guizhou Black (GB, 21) and Guizhou White (GW,31), Banjiao (BJ, 25), Matou (MT, 22), reared in the provinceof Inner Mongolia, Shaanxi, Shandong, Guangdong, Guizhou,Sichuan, and Hubei (China), respectively. The 11,026 recordsof production traits (milk yield, litter size, weight traits, hairlength, hair thickness and hair yields) in 216 dairy goats (Sa,GZand LS) and 452 Inner Mongolia White Cashmere goats werecollected for statistical analysis. DNA samples were extractedfrom leucocytes according to Mullenbach et al. (1989).2.2. PCR conditionsBased upon the sheep and bovine POU1F1 gene sequences,the following primers (P1, P2 and P3) were designed toamplify the goat POU1F1 gene. P1 (F: 5-AGGATACACC-9CAGACAAATG-3 and R: 5-TACTGATTGTTGTTCTCCGT-3) was used to amplify 1000 bp PCR product for exon 4,intron 4 and exon 5; P2 (F: 5-CCTCTGTCCATGGGATTTTC-3 and R: 5-CCATCATCTCCCTTCTT-3)was used to amplify355 bp PCR product for intron 5; P3 (F: 5-CCATCATCTCCCTTCTT-3 and 5-AATGTACAATGTCCTTCTGAG-3) wasused to amplify 450 bp PCR product for exon 6 and its flankingregion. The 25 L volume contained: 50 ng genomic DNA,0.5Mof each primer, 1×Buffer [including 1.5mMMgCl2],200M dNTPs and 0.625 units of Taq DNA polymerase(MBI). The cycling protocol was 4 min at 95 ◦C, 35 cyclesof 94 ◦C for 45 s, X ◦C annealing for 45 s, 72 ◦C for 1 min, witha final extension at 72 ◦C for 10 min (X ◦C were 63, 63 and54.5 ◦C for P1, P2 and P3 primers, respectively).2.3. Single stranded conformation polymorphism (SSCP)and DNA sequencingAliquots of 5 L PCR products were mixed with 5 Ldenaturing solution (95% formamide, 25mM EDTA, 0.025%xylene–cyanole and 0.025% bromophenol blue), heated for10 min at 98 ◦C and chilled on ice (Sun et al., 2002). DenaturedDNA was subjected to PAGE (80mm×73mm×0.75 mm) in1×TBE buffer and constant voltage (200 V) for 2.5–3.0 h. The
การแปล กรุณารอสักครู่..
2. Materials and methods
2.1. DNA samples
GenomicDNAsamples were obtained from 801 individuals
belonging to nine native goat breeds: Inner Mongolia White
Cashmere (IMWC, 452), Xinong saneng dairy (Sa, 74) and
Guanzhong dairy (GZ, 62), Laoshan dairy (LS, 80), Leizhou
(LZ, 34), Guizhou Black (GB, 21) and Guizhou White (GW,
31), Banjiao (BJ, 25), Matou (MT, 22), reared in the province
of Inner Mongolia, Shaanxi, Shandong, Guangdong, Guizhou,
Sichuan, and Hubei (China), respectively. The 11,026 records
of production traits (milk yield, litter size, weight traits, hair
length, hair thickness and hair yields) in 216 dairy goats (Sa,GZ
and LS) and 452 Inner Mongolia White Cashmere goats were
collected for statistical analysis. DNA samples were extracted
from leucocytes according to Mullenbach et al. (1989).
2.2. PCR conditions
Based upon the sheep and bovine POU1F1 gene sequences,
the following primers (P1, P2 and P3) were designed to
amplify the goat POU1F1 gene. P1 (F: 5-AGGATACACC-
9CAGACAAATG-3 and R: 5-TACTGATTGTTGTTCTCCGT-
3) was used to amplify 1000 bp PCR product for exon 4,
intron 4 and exon 5; P2 (F: 5-CCTCTGTCCATGGGATTTTC-
3 and R: 5-CCATCATCTCCCTTCTT-3)was used to amplify
355 bp PCR product for intron 5; P3 (F: 5-CCATCATCTCCCTTCTT-
3 and 5-AATGTACAATGTCCTTCTGAG-3) was
used to amplify 450 bp PCR product for exon 6 and its flanking
region. The 25 L volume contained: 50 ng genomic DNA,
0.5Mof each primer, 1×Buffer [including 1.5mMMgCl2],
200M dNTPs and 0.625 units of Taq DNA polymerase
(MBI). The cycling protocol was 4 min at 95 ◦C, 35 cycles
of 94 ◦C for 45 s, X ◦C annealing for 45 s, 72 ◦C for 1 min, with
a final extension at 72 ◦C for 10 min (X ◦C were 63, 63 and
54.5 ◦C for P1, P2 and P3 primers, respectively).
2.3. Single stranded conformation polymorphism (SSCP)
and DNA sequencing
Aliquots of 5 L PCR products were mixed with 5 L
denaturing solution (95% formamide, 25mM EDTA, 0.025%
xylene–cyanole and 0.025% bromophenol blue), heated for
10 min at 98 ◦C and chilled on ice (Sun et al., 2002). Denatured
DNA was subjected to PAGE (80mm×73mm×0.75 mm) in
1×TBE buffer and constant voltage (200 V) for 2.5–3.0 h. The
2.1. DNA samples
GenomicDNAsamples were obtained from 801 individuals
belonging to nine native goat breeds: Inner Mongolia White
Cashmere (IMWC, 452), Xinong saneng dairy (Sa, 74) and
Guanzhong dairy (GZ, 62), Laoshan dairy (LS, 80), Leizhou
(LZ, 34), Guizhou Black (GB, 21) and Guizhou White (GW,
31), Banjiao (BJ, 25), Matou (MT, 22), reared in the province
of Inner Mongolia, Shaanxi, Shandong, Guangdong, Guizhou,
Sichuan, and Hubei (China), respectively. The 11,026 records
of production traits (milk yield, litter size, weight traits, hair
length, hair thickness and hair yields) in 216 dairy goats (Sa,GZ
and LS) and 452 Inner Mongolia White Cashmere goats were
collected for statistical analysis. DNA samples were extracted
from leucocytes according to Mullenbach et al. (1989).
2.2. PCR conditions
Based upon the sheep and bovine POU1F1 gene sequences,
the following primers (P1, P2 and P3) were designed to
amplify the goat POU1F1 gene. P1 (F: 5-AGGATACACC-
9CAGACAAATG-3 and R: 5-TACTGATTGTTGTTCTCCGT-
3) was used to amplify 1000 bp PCR product for exon 4,
intron 4 and exon 5; P2 (F: 5-CCTCTGTCCATGGGATTTTC-
3 and R: 5-CCATCATCTCCCTTCTT-3)was used to amplify
355 bp PCR product for intron 5; P3 (F: 5-CCATCATCTCCCTTCTT-
3 and 5-AATGTACAATGTCCTTCTGAG-3) was
used to amplify 450 bp PCR product for exon 6 and its flanking
region. The 25 L volume contained: 50 ng genomic DNA,
0.5Mof each primer, 1×Buffer [including 1.5mMMgCl2],
200M dNTPs and 0.625 units of Taq DNA polymerase
(MBI). The cycling protocol was 4 min at 95 ◦C, 35 cycles
of 94 ◦C for 45 s, X ◦C annealing for 45 s, 72 ◦C for 1 min, with
a final extension at 72 ◦C for 10 min (X ◦C were 63, 63 and
54.5 ◦C for P1, P2 and P3 primers, respectively).
2.3. Single stranded conformation polymorphism (SSCP)
and DNA sequencing
Aliquots of 5 L PCR products were mixed with 5 L
denaturing solution (95% formamide, 25mM EDTA, 0.025%
xylene–cyanole and 0.025% bromophenol blue), heated for
10 min at 98 ◦C and chilled on ice (Sun et al., 2002). Denatured
DNA was subjected to PAGE (80mm×73mm×0.75 mm) in
1×TBE buffer and constant voltage (200 V) for 2.5–3.0 h. The
การแปล กรุณารอสักครู่..
2 . วัสดุและวิธีการ
2.1 . ตัวอย่างดีเอ็นเอที่ได้จาก genomicdnasamples
801 บุคคลของเก้าสายพันธุ์แพะพื้นเมือง : มองโกเลียผ้าขนสัตว์ชนิดหนึ่งสีขาว
( imwc 452 ) xinong เสนงนม ( SA , 74 ) และ
guanzhong นม ( GZ , 62 ) ; นม ( LS , 80 ) , ไลโจว
( Lz 34 ) , กุ้ยโจวสีดำ ( GB , 21 ) และกุ้ยโจว ขาว ( GW ,
31 ) banjiao ( BJ , 25 ) , มาโต้ ( MT , 22 ) ที่เลี้ยงในจังหวัด
ของภายในมองโกเลีย มณฑลส่านซี , Shandong , กวางตุ้ง , เสฉวนและกุ้ยโจว
, มณฑลหูเป่ย์ ( จีน ) , ตามลำดับ การ 11026 ประวัติ
ลักษณะการผลิต ( ผลผลิตน้ำนม แคร่ ขนาด น้ำหนัก ลักษณะผมยาวผมหนาและผม
, ผลผลิต ) ในนมแพะ ( SA , 216 และ GZ
LS ) และก็สีขาวด้านในเป็นผ้าขนสัตว์ชนิดหนึ่งมองโกเลียแพะ
รวบรวมเพื่อการวิเคราะห์ทางสถิติ ตัวอย่างดีเอ็นเอที่สกัด
จาก leucocytes ตาม mullenbach et al . ( 1989 ) .
2.2 . เงื่อนไข PCR
ตามแกะและวัว pou1f1 ยีนดับ
ไพรเมอร์ต่อไปนี้ ( P1 , P2 และ P3
) ถูกออกแบบมาเพื่อขยายแพะ pou1f1 ยีน P1 f : 5 - aggatacacc -
9cagacaaatg-3 และ R : 5 - tactgattgttgttctccgt -
3 ) ถูกใช้เพื่อขยาย 1 , 000 BP PCR สำหรับผลิตภัณฑ์ exon 4
4 exon 5 iNtRON และ ; P2 f : 5 - -
cctctgtccatgggattttc3 และ R : 5 - ccatcatctcccttctt-3 ) ถูกใช้เพื่อขยาย
355 BP ผลิตภัณฑ์ PCR iNtRON 5 ; P3 f : 5 - ccatcatctcccttctt -
3 และ 5 - aatgtacaatgtccttctgag-3 ) คือ
ใช้ขยาย 450 คู่เบสดีเอ็นเอผลิตภัณฑ์สำหรับ exon 6 และ flanking
) 25 L ปริมาณบรรจุ : 50 ของ genomic DNA 0.5 , 1
แต่ละ ไพรเมอร์ 1 ×บัฟเฟอร์ [ รวมทั้ง 1.5mmmgcl2 ] ,
200 เมตรและ dntps 0.625 หน่วยแท็ค DNA polymerase
( 2 )จักรยานโพรโทคอลคือ 4 นาทีที่ 95 ◦ C 35 รอบ
94 ◦ C 45 S , X ◦ C อบประมาณ 45 , 72 ◦องศาเซลเซียสนาน 1 นาที กับ
นามสกุลสุดท้ายที่ 72 ◦ C เป็นเวลา 10 นาที ( X ◦ C จำนวน 63 , 63 และ 54.5 ◦ C P1
, P2 และ P3 ชนิดตามลำดับ )
2.3 เดี่ยวติด conformation polymorphism ( ยีนและดีเอ็นเอเฉยๆ )
5 l )
ผลิตภัณฑ์การผสม 5 L
ี่โซลูชั่น ( 95% Formamide ,25mm EDTA , 0.025 %
ไซลีน– cyanole โบรโมฟีน 0.025% และสีฟ้า ) , ให้ความร้อน
10 นาทีที่ 98 ◦ C และเย็นบนน้ำแข็ง ( Sun et al . , 2002 ) ใช้
ดีเอ็นเอภายใต้หน้า ( 80mm × 73mm × 0.75 มิลลิเมตร )
1 ×ทีบีบัฟเฟอร์ และแรงดันคงที่ ( 200 V ) 2.5 และ 3.0 ชั่วโมง
2.1 . ตัวอย่างดีเอ็นเอที่ได้จาก genomicdnasamples
801 บุคคลของเก้าสายพันธุ์แพะพื้นเมือง : มองโกเลียผ้าขนสัตว์ชนิดหนึ่งสีขาว
( imwc 452 ) xinong เสนงนม ( SA , 74 ) และ
guanzhong นม ( GZ , 62 ) ; นม ( LS , 80 ) , ไลโจว
( Lz 34 ) , กุ้ยโจวสีดำ ( GB , 21 ) และกุ้ยโจว ขาว ( GW ,
31 ) banjiao ( BJ , 25 ) , มาโต้ ( MT , 22 ) ที่เลี้ยงในจังหวัด
ของภายในมองโกเลีย มณฑลส่านซี , Shandong , กวางตุ้ง , เสฉวนและกุ้ยโจว
, มณฑลหูเป่ย์ ( จีน ) , ตามลำดับ การ 11026 ประวัติ
ลักษณะการผลิต ( ผลผลิตน้ำนม แคร่ ขนาด น้ำหนัก ลักษณะผมยาวผมหนาและผม
, ผลผลิต ) ในนมแพะ ( SA , 216 และ GZ
LS ) และก็สีขาวด้านในเป็นผ้าขนสัตว์ชนิดหนึ่งมองโกเลียแพะ
รวบรวมเพื่อการวิเคราะห์ทางสถิติ ตัวอย่างดีเอ็นเอที่สกัด
จาก leucocytes ตาม mullenbach et al . ( 1989 ) .
2.2 . เงื่อนไข PCR
ตามแกะและวัว pou1f1 ยีนดับ
ไพรเมอร์ต่อไปนี้ ( P1 , P2 และ P3
) ถูกออกแบบมาเพื่อขยายแพะ pou1f1 ยีน P1 f : 5 - aggatacacc -
9cagacaaatg-3 และ R : 5 - tactgattgttgttctccgt -
3 ) ถูกใช้เพื่อขยาย 1 , 000 BP PCR สำหรับผลิตภัณฑ์ exon 4
4 exon 5 iNtRON และ ; P2 f : 5 - -
cctctgtccatgggattttc3 และ R : 5 - ccatcatctcccttctt-3 ) ถูกใช้เพื่อขยาย
355 BP ผลิตภัณฑ์ PCR iNtRON 5 ; P3 f : 5 - ccatcatctcccttctt -
3 และ 5 - aatgtacaatgtccttctgag-3 ) คือ
ใช้ขยาย 450 คู่เบสดีเอ็นเอผลิตภัณฑ์สำหรับ exon 6 และ flanking
) 25 L ปริมาณบรรจุ : 50 ของ genomic DNA 0.5 , 1
แต่ละ ไพรเมอร์ 1 ×บัฟเฟอร์ [ รวมทั้ง 1.5mmmgcl2 ] ,
200 เมตรและ dntps 0.625 หน่วยแท็ค DNA polymerase
( 2 )จักรยานโพรโทคอลคือ 4 นาทีที่ 95 ◦ C 35 รอบ
94 ◦ C 45 S , X ◦ C อบประมาณ 45 , 72 ◦องศาเซลเซียสนาน 1 นาที กับ
นามสกุลสุดท้ายที่ 72 ◦ C เป็นเวลา 10 นาที ( X ◦ C จำนวน 63 , 63 และ 54.5 ◦ C P1
, P2 และ P3 ชนิดตามลำดับ )
2.3 เดี่ยวติด conformation polymorphism ( ยีนและดีเอ็นเอเฉยๆ )
5 l )
ผลิตภัณฑ์การผสม 5 L
ี่โซลูชั่น ( 95% Formamide ,25mm EDTA , 0.025 %
ไซลีน– cyanole โบรโมฟีน 0.025% และสีฟ้า ) , ให้ความร้อน
10 นาทีที่ 98 ◦ C และเย็นบนน้ำแข็ง ( Sun et al . , 2002 ) ใช้
ดีเอ็นเอภายใต้หน้า ( 80mm × 73mm × 0.75 มิลลิเมตร )
1 ×ทีบีบัฟเฟอร์ และแรงดันคงที่ ( 200 V ) 2.5 และ 3.0 ชั่วโมง
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- มีอาการเหล่านี้บ่อย
- Embrace it.
- Please make the report! About three cate
- Not be sad I know you love so much,bei h
- แกลบ
- Specifically, the pension funds and insu
- Because I like the pronunciation of Engl
- invite me any girl group
- Future vehicles may further advance auto
- พักผ่อนให้เพียงพอ
- โดยคำนึงถึง
- จบการประชุม
- How old are you
- ที่ ศาลเจ้าพ่อวังทะลุ
- Now, we will show you the example of Pro
- ที่ตั้ง พื้นที่ และจำนวนประชากร
- ระบบสังคมมีความสัมพันธ์เกี่ยวข้องและพึ่ง
- people can steal your staff
- ก็โอเคนะ แต่เราต้องเตรียมอะไรไปบ้าง
- พัง
- ค่าใช้จ่ายที่เกิดขึ้นจริง
- ทำให้หายเครียดได้มากเลย
- f 30 minutes of PNF breathing exercises
- he Gray Tree is one of the first paintin
