In Easter
lily (Lilium longiflorum Thunb.), the weight of anthers decreases
rapidly within 1 d after anthesis. It has been suggested that the
anther may be the triggering organ for the onset oftepal senescence
(Lee and Roh, 2011).
Re-distribution of assimilates in various floral organs has been
studied using radioactive carbohydrates. In a translocation study
using 14C sucrose in roses at different stages of development,
Ho and Nichols (1977) concluded that corollas were a stronger
sink in the presence of leaves and that the incorporation of 14C
derived from sucrose and the strength of the sink diminished as
the flowers aged. However, no detailed investigation of changes
in carbohydrates in various floral organs and the role of any particular
organ in controlling the senescence in corollas, or their
possible role in senescence, has been made. Most of the radioactivity
derived from exogenous 14C sucrose has been observed
in intact miniature rose (Rosa hybrida) flowers, but no investigation
was made of which floral parts showed high or low
radioactivity (relative specific activity) (Monteiro et al., 2002).
The complexity of floral organs in roses and carnations as compared
to that in lilies might make such a determination very
difficult.
The abscission of young fruit and flowers has focused on
assimilate supply to the developing organs, or a combination of
competition and dominance of source-sink strength (Marcelis et al.,
2004). The glucose level in the pedicel may be a factor in the control
of abscission in young apple fruit, occurring when the glucose content
in the pedicel drops below a critical level (Berüter and Droz,
1991). Reduced carbon assimilation and/or translocation of carbohydrates
to the fruit were hypothesized to be a signal leading to
fruit abscission (Weinbaum and Muraoka, 1978). Abscission will
not occur when fruit have sufficient amounts of sugar (Berüter and
Droz, 1991).
The senescence of cut flowers has often been investigated
using a stem with many flowers at different developmental stages.
Analysis was sometimes made with complex floral organs, with
multiple layers of petals such as carnation. In this flower, the
organ can be separated from the receptacle and each other so
that senescence/abortion triggering organs might possibly be identified.
Spikes of sweet pea (Lathryus odoratus L.) (Ichimura and
Suto, 1999) and flowers of Eustoma grandiflorum Salisb. (Ichimura
and Goto, 2000) have also been used to investigate vase life, soluble
carbohydrates and ethylene production. Eustoma flowers at
two developmental stages, before and after anthesis, for example,
were used to study carbon derived from labeled sucrose (ShimizuYumoto
et al., 2010). However, these studies used the entire intact
flower and flower bud abscission in Eustoma is not commonly
observed (Roh, unpublished data). Consequently it was not possible
to determine which organ or organs trigger flower senescence
by evaluating respiration, ethylene production, and carbohydrate
changes.
There are no studies on which flower organs may trigger
tepal/petal senescence and or flower bud abscission in Lilium.
Therefore, it would be ideal to work with a single flower where
various floral organs can be easily identified such as in Lilium
flowers (Fig. 1), and we considered this a good model to
investigate the possible involvement of anthers in flower bud
abscission. We selected L. × elegans hybrid lily flower buds as
a model, hypothesizing that anthers are the triggering organ
inducing or sending a signal for flower bud abscission. The
assumption was that tepal senescence of cut flowers or abscission
of the flower bud could involve similar mechanisms, such as
changes in respiration and ethylene (C2H4) production and carbohydrates
in tepals of the Asiatic hybrid lily (José et al., 2001),
although ethylene production may not be the primary cause of bud
abscission.
ในเทศกาลอีสเตอร์ลิลลี่ (Lilium longiflorum Thunb.) น้ำหนักลดเหมือนอย่างรวดเร็วภายใน d 1 หลัง anthesis การแนะนำที่anther อาจเรียกอวัยวะสำหรับ senescence oftepal เริ่มมีอาการ(ลีก Roh, 2011)กระจายการ assimilates ในอวัยวะต่าง ๆ ดอกไม้ได้ศึกษาการใช้คาร์โบไฮเดรตกัมมันตรังสี ในการศึกษาการสับเปลี่ยนใช้ซูโครส 14C ในกุหลาบในระยะต่าง ๆ ของการพัฒนาโฮ และนิโคล (1977) สรุปว่า corollas มีความแข็งแกร่งจมในต่อหน้าของใบไม้และประสานของ 14 Cมาจากซูโครสและความแข็งแรงของอ่างที่ลดลงเป็นดอกไม้อายุ อย่างไรก็ตาม ไม่ตรวจสอบรายละเอียดของการเปลี่ยนแปลงในคาร์โบไฮเดรตในอวัยวะต่าง ๆ ดอกไม้และบทบาทของเฉพาะใด ๆอวัยวะในการควบคุม senescence ใน corollas หรือทำบทบาทได้ใน senescence ส่วนใหญ่ของ radioactivity ที่มาจาก C 14 บ่อย ได้พบซูโครสในดอกไม้เหมือนเดิมเล็กกุหลาบ (Rosa hybrida) แต่ไม่ตรวจสอบทำของซึ่งดอกไม้ส่วนแสดงสูง หรือต่ำradioactivity (ญาติเฉพาะกิจกรรม) (Monteiro et al., 2002)ความซับซ้อนของอวัยวะดอกไม้ดอกกุหลาบและดอกเป็นเปรียบเทียบในดอกบัวที่อาจทำให้การกำหนดมากยากการหลุดร่วงของดอกไม้และผลไม้เด็กได้เน้นอย่างอุปทานไปอวัยวะพัฒนา รวมแข่งขันและครอบงำของแหล่งเก็บความแข็งแรง (Marcelis et al.,2004) . ระดับน้ำตาลกลูโคสใน pedicel อาจเป็นปัจจัยในการควบคุมของหลุดร่วงสาวแอปเปิ้ลผลไม้ เกิดขึ้นเมื่อเนื้อหากลูโคสในหยด pedicel ต่ำระดับ (Berüter และ Droz1991) การลดคาร์บอนผสมกลมกลืนหรือการสับเปลี่ยนของคาร์โบไฮเดรตการผลไม้ถูกตั้งสมมติฐานว่าเป็น สัญญาณที่นำไปสู่หลุดร่วงผลไม้ (Weinbaum และ Muraoka, 1978) จะหลุดร่วงเกิดเมื่อผลไม้มีจำนวนน้ำตาลที่เพียงพอ (Berüter และDroz, 1991)มักจะถูกสอบสวน senescence ตัดดอกไม้ใช้เป็นก้านดอกไม้หลายในขั้นตอนการพัฒนาที่แตกต่างกันบางครั้งถูกทำกับอวัยวะดอกไม้ซับซ้อน วิเคราะห์ด้วยเช่นคาร์เนชั่นกลีบหลายชั้น ในดอกไม้นี้ การอวัยวะสามารถแยกออกจากรองรับกันได้อาจอาจระบุว่า senescence/ทำ แท้งเรียกอวัยวะSpikes ของหวานถั่ว (Lathryus odoratus L.) (Ichimura และSuto, 1999) และดอกไม้ของ Eustoma grandiflorum Salisb (Ichimuraและ ไป 2000) นอกจากนี้ยังใช้การตรวจสอบอายุการปักแจกัน ละลายคาร์โบไฮเดรตและการผลิตเอทิลีน Eustoma ดอกไม้ที่สองขั้นพัฒนา ก่อน และ หลัง anthesis เช่นใช้ในการศึกษาคาร์บอนมาจากป้ายซูโครส (ShimizuYumotoร้อยเอ็ด al., 2010) อย่างไรก็ตาม การศึกษานี้ใช้ทั้งหมดเหมือนเดิมหลุดร่วง Eustoma ดอกไม้และดอกไม้ดอกตูมไม่บ่อยสังเกต (Roh ยกเลิกประกาศข้อมูล) จึง ไม่สามารถกำหนด อวัยวะหรืออวัยวะใดก่อ senescence ดอกไม้โดยประเมินการหายใจ การผลิตเอทิลีน และคาร์โบไฮเดรตการเปลี่ยนแปลงมีการศึกษาไม่อาจเรียกอวัยวะดอกไม้tepal/กลีบดอกไม้ senescence และหรือดอกตูมดอกหลุดร่วง Liliumดังนั้น มันจะเหมาะสมกับใช้ดอกเดียวที่อวัยวะต่าง ๆ ดอกไม้สามารถได้อย่างง่ายดายระบุเช่นใน Liliumดอกไม้ (Fig. 1), และเราพิจารณานี้แบบที่ดีเพื่อตรวจสอบการมีส่วนร่วมเหมือนดอกไม้แตกหน่อได้หลุดร่วง เราเลือก L. × elegans ผสมลิลลี่ดอกไม้อาหารเป็นแบบ hypothesizing เหมือนใช้เรียกอวัยวะinducing หรือส่งสัญญาณสำหรับการหลุดร่วงของดอกตูมดอก ที่อัสสัมชัญว่า senescence tepal ตัดดอกไม้หรือหลุดร่วงของฟลาวเวอร์บัดอาจเกี่ยวข้องกับกลไกคล้ายกัน เช่นเปลี่ยนแปลงในการหายใจ และการผลิตเอทิลีน (C2H4) และคาร์โบไฮเดรตใน tepals ลิลลี่ไฮบริบก (José et al., 2001),แม้ว่าการผลิตเอทิลีนอาจเป็นสาเหตุหลักของดอกตูมหลุดร่วง
การแปล กรุณารอสักครู่..

ในวันอีสเตอร์ลิลลี่ (Lilium longiflorum Thunb.) น้ำหนักของอับเรณูจะลดลงอย่างรวดเร็วภายใน1 วันหลังดอกบาน มันได้รับการแนะนำว่าดอกไม้อาจจะเป็นอวัยวะที่เรียกสำหรับการโจมตี oftepal ชราภาพ (ลีและต้า 2011). Re-กระจายของ assimilates ในอวัยวะดอกไม้ต่างๆได้รับการศึกษาโดยใช้คาร์โบไฮเดรตสารกัมมันตรังสี ในการศึกษาการโยกย้ายใช้น้ำตาลซูโครส 14C ในดอกกุหลาบในแต่ละขั้นตอนของการพัฒนาโฮและนิโคลส์(1977) ได้ข้อสรุปว่ากลีบเป็นแข็งแกร่งอ่างล้างมือในการปรากฏตัวของใบและที่รวมตัวกันของ14C มาจากน้ำตาลซูโครสและความแข็งแรงของอ่างล้างจานลดลงเป็นดอกไม้อายุ อย่างไรก็ตามยังไม่มีการตรวจสอบรายละเอียดของการเปลี่ยนแปลงในคาร์โบไฮเดรตในอวัยวะดอกไม้ต่างๆและบทบาทของใด ๆ อวัยวะในการควบคุมการเสื่อมสภาพในกลีบหรือของพวกเขามีบทบาทเป็นไปได้ในการเสื่อมสภาพได้รับการทำ ส่วนใหญ่ของกัมมันตภาพรังสีที่ได้มาจากภายนอกซูโครส 14C ได้รับการปฏิบัติในขนาดเล็กเหมือนเดิมเพิ่มขึ้น(Rosa hybrida) ดอกไม้ แต่การสอบสวนไม่ได้ทำซึ่งส่วนดอกไม้แสดงให้เห็นว่าสูงหรือต่ำกัมมันตภาพรังสี(กิจกรรมเฉพาะญาติ) (มอนเต et al., 2002) ความซับซ้อนของอวัยวะดอกไม้กุหลาบและดอกคาร์เนชั่นเป็นเมื่อเทียบกับว่าในดอกบัวอาจจะทำให้เกิดการมากยาก. การตัดแขนขาของผลไม้อ่อนและดอกได้มุ่งเน้นในการจัดหาดูดซึมไปยังอวัยวะพัฒนาหรือการรวมกันของการแข่งขันและการปกครองของแหล่งที่มาความแข็งแรงจม (Marcelis et al., 2004) ระดับน้ำตาลกลูโคสในก้านดอกอาจจะเป็นปัจจัยในการควบคุมของการตัดแขนขาในผลไม้แอปเปิ้ลหนุ่มสาวที่เกิดขึ้นเมื่อเนื้อหากลูโคสในก้านดอกลดลงต่ำกว่าระดับวิกฤต(Berüterและ Droz, 1991) การดูดซึมคาร์บอนไดออกไซด์ที่ลดลงและ / หรือการโยกย้ายของคาร์โบไฮเดรตที่จะเป็นผลไม้ที่ได้รับการตั้งสมมติฐานที่จะเป็นสัญญาณที่นำไปสู่การตัดแขนขาผลไม้(Weinbaum และ Muraoka, 1978) การตัดแขนขาจะได้เกิดขึ้นเมื่อผลไม้มีปริมาณที่เพียงพอของน้ำตาล (Berüterและ Droz, 1991). การเสื่อมสภาพของไม้ตัดดอกมักจะได้รับการตรวจสอบโดยใช้ก้านด้วยดอกไม้จำนวนมากในระยะการพัฒนาที่แตกต่างกัน. วิเคราะห์ได้ถูกทำให้บางครั้งมีอวัยวะดอกไม้ที่ซับซ้อนมีหลายชั้นของกลีบดอกคาร์เนชั่นเช่น ในดอกไม้นี้อวัยวะที่สามารถแยกออกจากตัวรับและแต่ละอื่น ๆ เพื่อที่เสื่อมสภาพ/ การทำแท้งเรียกอวัยวะอาจระบุได้. แหลมของถั่วหวาน (Lathryus odoratus ลิตร) (Ichimura และSuto, 1999) และดอกของ Eustoma grandiflorum Salisb . (Ichimura และไป, 2000) ได้ถูกนำมาใช้ในการตรวจสอบอายุการปักแจกันละลายคาร์โบไฮเดรตและผลิตเอทิลี ดอกไม้ Eustoma ที่สองขั้นตอนการพัฒนาก่อนและหลังดอกบานยกตัวอย่างเช่นถูกนำมาใช้เพื่อการศึกษาคาร์บอนที่ได้จากน้ำตาลซูโครสที่มีข้อความ(ShimizuYumoto et al., 2010) อย่างไรก็ตามการศึกษาเหล่านี้มาใช้เหมือนเดิมทั้งดอกไม้และการตัดแขนขาตาดอกใน Eustoma ทั่วไปไม่ได้สังเกต(ต้าข้อมูลที่ไม่ถูกเผยแพร่) เพราะฉะนั้นมันก็เป็นไปไม่ได้ที่จะกำหนดอวัยวะหรืออวัยวะที่เรียกชราภาพดอกไม้โดยการประเมินการหายใจการผลิตเอทิลีนและคาร์โบไฮเดรตเปลี่ยนแปลง. มีการศึกษาไม่มีที่อวัยวะดอกไม้อาจก่อให้เกิดเป็นTepal / กลีบชราภาพและหรือดอกไม้ตัดแขนขาตาใน Lilium. ดังนั้นจึง จะเหมาะที่จะทำงานกับดอกเดียวที่อวัยวะดอกไม้ต่างๆสามารถระบุได้อย่างง่ายดายเช่นLilium ดอกไม้ (รูปที่ 1). และเราคิดว่าเรื่องนี้เป็นแบบอย่างที่ดีในการตรวจสอบการมีส่วนร่วมเป็นไปได้ของอับเรณูในตาดอกไม้ตัดแขนขา เราเลือกแอ× elegans ไฮบริดตาดอกลิลลี่เป็นรูปแบบสมมติฐานที่อับเรณูเป็นอวัยวะที่เรียกชักนำหรือส่งสัญญาณสำหรับการตัดแขนขาตาดอกไม้ สมมติฐานคือการที่ชราภาพ Tepal ของดอกไม้ตัดหรือตัดแขนขาของตาดอกจะเกี่ยวข้องกับกลไกที่คล้ายกันเช่นการเปลี่ยนแปลงในการหายใจและเอทิลีน(C2H4) การผลิตและคาร์โบไฮเดรตในtepals ของลิลลี่ไฮบริดเอเซีย (José et al., 2001) แม้ว่า ผลิตเอทิลีไม่อาจจะเป็นสาเหตุหลักของตาตัดแขนขา
การแปล กรุณารอสักครู่..

ในเทศกาลอีสเตอร์
ลิลลี่ ( กระบี่ longiflorum Thunb . ) น้ำหนักลดลงอย่างรวดเร็วภายในอับเรณู
1 D หลังจากดอกบาน . จะได้รับการชี้ให้เห็นว่า
( อาจจะเรียกอวัยวะสำหรับการโจมตี oftepal ชราภาพ
( ลี และโร , 2011 ) .
Re กระจายในอวัยวะต่าง ๆมีดอกไม้ assimilates
โดยใช้สารกัมมันตรังสีคาร์โบไฮเดรต ในการโยกย้ายการศึกษา
การใช้ 14c ซูโครสในกุหลาบในขั้นตอนที่แตกต่างกันของการพัฒนา
โฮ และ นิโคลส์ ( 1977 ) สรุปว่า Corollas มีจมแข็งแกร่ง
ในการแสดงตนของใบและการ 14c
ได้มาจากซูโครสและความแข็งแรงของอ่างลดลงเป็น
ดอกไม้ อายุ อย่างไรก็ตาม ยังไม่มีรายละเอียดการเปลี่ยนคาร์โบไฮเดรตในอวัยวะต่าง ๆดอกไม้
และบทบาทของใด ๆอวัยวะในการควบคุมการเสื่อมสภาพใน Corollas หรือ
เป็นไปได้บทบาทในการได้ทำ ที่สุดของกัมมันตภาพรังสี
ที่มาจากภายนอก 14c น้ำตาลซูโครสพบว่าต้นกุหลาบ ( Rosa ในเหมือนเดิม
hybrida ) ดอกไม้ แต่ไม่มีการสอบสวน
เป็นส่วนดอกไม้มีค่าสูงหรือต่ำ
กัมมันตภาพรังสี ( กิจกรรมเฉพาะญาติ ) ( มอนเตโร่ et al . , 2002 ) .
ความซับซ้อนของดอกไม้ กุหลาบ คาร์เนชั่น อวัยวะในเทียบ
ที่ลิลลี่อาจทำให้ความมุ่งมั่นมาก
ยาก การตัดออกของผลอ่อนและดอกได้มุ่งเน้นในการจัดหาเพื่อพัฒนา
assimilate อวัยวะ หรือการรวมกันของ
การแข่งขันและการปกครองของแหล่งจมแรง ( marcelis et al . ,
2004 ) ระดับกลูโคสในก้านดอกไม้อาจเป็นปัจจัยในการควบคุม
ของการตัดออกในผลไม้แอปเปิ้ลหนุ่มสาว ที่เกิดขึ้นเมื่อกลูโคสเนื้อหา
ในก้านดอกไม้ต่ำกว่าระดับวิกฤติ ( ber üตรี และ droz
, 1991 ) การลดคาร์บอนและ / หรือการเคลื่อนย้ายของคาร์โบไฮเดรต
ผลเป็นสมมติฐานที่จะเป็นสัญญาณนำไปสู่
การตัดออกผลไม้ ( ไวน์เบาม์ และ มุราโอกะ , 1978 ) การตัดออกจะ
ไม่เกิดขึ้นเมื่อผลไม้มีปริมาณที่เพียงพอของ น้ำตาล ( ber üตรี และ droz
,1991 ) .
การตัดดอกไม้มักจะถูกสอบสวน
ใช้ก้านมีดอกไม้มากมายในขั้นตอนการพัฒนาที่แตกต่างกัน และทำให้อวัยวะ
ดอกไม้ที่มีความซับซ้อน เช่น คาร์เนชั่น กลีบดอกหลายชั้น ในดอกไม้นี้
อวัยวะสามารถแยกจากภาชนะและแต่ละอื่น ๆ ดังนั้นการกระตุ้นอวัยวะที่การทำแท้ง
/
อาจระบุแหลมของถั่วลันเตาหวาน ( lathryus odoratus L . ) ( ichimura และ
suto , 1999 ) และดอกไม้ eustoma Grandiflorum salisb . ( ichimura
และข้ามไป , 2000 ) ยังถูกใช้เพื่อศึกษาชีวิตแจกัน คาร์โบไฮเดรตละลาย
การผลิตเอทิลีน eustoma ดอกไม้ที่
2 ตามขั้นตอน ก่อนและหลังดอกบาน เช่น
นำมาใช้ศึกษาถ่านกัมมันต์จากป้ายซูโครส ( shimizuyumoto
et al . ,
การแปล กรุณารอสักครู่..
