Phloem unloading after anthesis is

Phloem unloading after anthesis is symplastic
In open flowers (late stage 13), we demonstrated that
symplastic unloading is switched on again. Strongest
fluorescence was visible in an area which was defined as
phloem unloading area in an earlier publication (Stadler et
al. 2005a). A weaker signal was visible in all cells of the
integuments all around the embryo sac (Fig. 2c, d). The
switch-on of symplastic unloading was independent of
fertilization. We can conclude that increasing sink strength
due to energy demand of developing embryos is not the
reason for the observed massive influx of phloem-mobile
fluorescent tracers into developing seeds. What is the
anatomical basis for the switch-on of symplastic phloem
unloading? Are there new plasmodesmata formed into
existing sieve elements or are new sieve elements formed?
232 D. Werner et al.
The formation of new sieve elements in line with the
induction of symplastic unloading had also been described
in the roots of Arabidopsis after nematode infection (Hoth
et al. 2005). However, between stage 12 and stage 13, the
ovules are only 10–15 h, and a comparison of pSUC2-
tmGFP9 ovules of both stages indicated that no new SE/CC
complexes had formed (Fig. 2a, h). In root tips, the sieve
elements which mediate symplastic unloading are protophloem
sieve elements (Stadler et al. 2005b). Protophloem
sieve elements in dicotyledons are not accompanied by
companion cells. The cells which were highly labeled by
MP17-GFP in fertilized ovules rather resembled metaphloem
sieve elements in that they did not contain nuclei
and were located right next to small cells which contain big
nuclei as is typical for SE/CC complexes.
Our data suggest that the onset of symplastic unloading
is mediated by a new formation of plasmodesmata or also a
structural change of existing plasmodesmata in sieve
elements rather than a new formation of sieve elements.
However, it is not clear how sieve elements which do not
contain nuclei can form plasmodesmata or even change the
structure of existing plasmodesmata. The weak fluorescence
of the companion cell in the stage 13 ovule shown in
Fig. 2h (arrow) could be interpreted as a sign for ongoing
maturation. Maturation of the adjacent sieve element might
be accompanied by the widening of the plasmodesmata of
the last sieve element and development of plasmodesmata
to surrounding cells. It would be interesting to study the
presence or absence of callose in stage 12 and stage 13
ovules by staining with aniline blue. In addition, the
presence and structure of plasmodesmata at the postphloem
pathway should be studied by TEM analyses
during various developmental stages in ovules.
Our data altogether showed that the phloem unloading
mode in ovules of A. thaliana is a highly regulated
process. It is likely tightly connected with changes in the
architecture of plasmodesmata. Components which are
involved in the formation of new plasmodesmata or
factors which regulate the opening of existing plasmodesmata,
for example, by regulation of callose-degrading
enzymes, are not known so far. It is a challenge for the
future to identify genes which are involved in these
processes

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ถ่าย phloem หลังดอกบานเป็น symplastic
ในดอกไม้บาน (ขั้นตอนปลาย 13)
เราแสดงให้เห็นว่าถ่ายsymplastic จะเปลี่ยนอีกครั้ง ที่แข็งแกร่งเรืองแสงมองเห็นในพื้นที่ซึ่งได้รับการกำหนดให้เป็นใยเปลือกไม้ในพื้นที่ถ่ายสิ่งพิมพ์ก่อนหน้านี้(Stadler et al. 2005A) สัญญาณปรับตัวลดลงเป็นมองเห็นได้ในทุกเซลล์ของinteguments ทั่วถุงตัวอ่อน (รูป. 2 c, d) สวิทช์ในการถ่าย symplastic เป็นอิสระจากการปฏิสนธิ เราสามารถสรุปได้ว่าการเพิ่มความแข็งแรงอ่างเนื่องจากความต้องการใช้พลังงานของตัวอ่อนที่พัฒนาไม่ได้เป็นเหตุผลสำหรับการสังเกตการไหลเข้าใหญ่ของใยเปลือกไม้มือถือสืบหาเรืองแสงในการพัฒนาเมล็ดพันธุ์ อะไรคือพื้นฐานทางกายวิภาคสำหรับสวิทช์บนของ symplastic phloem ถ่าย? จะมี plasmodesmata ใหม่เกิดขึ้นเป็นองค์ประกอบที่มีอยู่หรือตะแกรงเป็นองค์ประกอบตะแกรงใหม่ที่เกิดขึ้น? 232 D. Werner et al. การก่อตัวขององค์ประกอบตะแกรงใหม่ให้สอดคล้องกับการเหนี่ยวนำของถ่าย symplastic ยังได้รับการอธิบายไว้ในรากของArabidopsis หลังจากการติดเชื้อไส้เดือนฝอย ( Hoth et al. 2005) อย่างไรก็ตามระหว่างขั้นตอนขั้นตอนที่ 12 และ 13 ovules มีเพียง 10-15 ชั่วโมงและเปรียบเทียบ pSUC2- tmGFP9 ovules ของขั้นตอนทั้งชี้ให้เห็นว่าไม่มีใหม่ SE / CC คอมเพล็กซ์เกิดขึ้นได้ (รูป. 2a, เอช) เคล็ดลับในรากตะแกรงองค์ประกอบที่เป็นสื่อกลางในการขนถ่าย symplastic มี protophloem องค์ประกอบตะแกรง (Stadler et al. 2005b) Protophloem องค์ประกอบตะแกรงใน dicotyledons ไม่ได้มาพร้อมกับเซลล์สหาย เซลล์ที่ถูกระบุอย่างสูงจากMP17-GFP ในปฏิสนธิ ovules ค่อนข้างคล้าย metaphloem องค์ประกอบตะแกรงในการที่พวกเขาไม่ได้มีนิวเคลียสและตั้งอยู่ติดกับเซลล์ขนาดเล็กที่มีขนาดใหญ่นิวเคลียสเป็นเป็นเรื่องปกติสำหรับคอมเพล็กซ์SE / CC. ข้อมูลของเราแสดงให้เห็นว่า การโจมตีของถ่าย symplastic เป็นผู้ไกล่เกลี่ยโดยการก่อตัวใหม่ของ plasmodesmata หรือยังมีการเปลี่ยนแปลงโครงสร้างของplasmodesmata ที่มีอยู่ในตะแกรงองค์ประกอบมากกว่าการก่อตัวใหม่ขององค์ประกอบตะแกรง. แต่ก็ไม่ชัดเจนว่าองค์ประกอบตะแกรงซึ่งไม่ได้มีนิวเคลียสสามารถสร้าง plasmodesmata หรือแม้กระทั่งการเปลี่ยนโครงสร้างของplasmodesmata ที่มีอยู่ เรืองแสงที่อ่อนแอของเซลล์สหายในขั้นตอนที่ 13 ไข่ที่แสดงในรูป 2h (ลูกศร) อาจจะตีความว่าเป็นสัญญาณอย่างต่อเนื่องสำหรับการเจริญเติบโต การเจริญเติบโตขององค์ประกอบตะแกรงที่อยู่ติดกันอาจจะมาพร้อมกับการขยับขยาย plasmodesmata ขององค์ประกอบตะแกรงที่ผ่านมาและการพัฒนาของplasmodesmata ไปยังเซลล์โดยรอบ มันจะน่าสนใจที่จะศึกษาการมีหรือไม่มี callose ในขั้นตอนที่ 12 และขั้นตอนที่ 13 ovules โดยการย้อมสีด้วยสีฟ้าสวรรค์ นอกจากนี้ยังมีการแสดงตนและโครงสร้างของ plasmodesmata ที่ postphloem ทางเดินควรมีการศึกษาโดยการวิเคราะห์ TEM ในระหว่างขั้นตอนการพัฒนาต่าง ๆ ใน ovules. ข้อมูลของเราทั้งหมดแสดงให้เห็นว่าถ่าย phloem โหมด ovules ของ thaliana A. คือการควบคุมอย่างมากกระบวนการ มันเป็นเรื่องที่น่าจะเชื่อมต่ออย่างแน่นหนากับการเปลี่ยนแปลงในสถาปัตยกรรมของ plasmodesmata ชิ้นส่วนที่ได้รับการมีส่วนร่วมในการก่อตัวของ plasmodesmata ใหม่หรือปัจจัยที่ควบคุมการเปิดplasmodesmata ที่มีอยู่ตัวอย่างเช่นโดยการควบคุมการcallose ย่อยสลายเอนไซม์จะไม่เป็นที่รู้จักเพื่อให้ห่างไกล มันเป็นความท้าทายสำหรับการในอนาคตที่จะระบุยีนที่มีส่วนร่วมในเหล่านี้กระบวนการ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

โฟลเ ขนหลังดอกบาน เป็น symplastic
ดอกไม้เปิด ( 13 ขั้นตอนสาย ) เราพบว่า
symplastic ขนถูกเปิดอีกครั้ง ที่แข็งแกร่งที่สุด
เรืองแสงถูกมองเห็นได้ในพื้นที่ซึ่งถูกกำหนดไว้ในขณะที่
ถึงไหนถึงกันขนพื้นที่สิ่งพิมพ์ก่อนหน้านี้ ( Stadler et
อัล 2005a ) สัญญาณที่แข็งแกร่งถูกมองเห็นได้ในเซลล์ทั้งหมดของ
นเทกิวเมนต์รอบความเจนจัด ( รูปที่ 2 C , D )