Consequently, the control of the TS

Consequently, the control of the TSS level as well as the optimum value
warrants further investigation.
The changing tendency of TAN concentrations was fairly consistent
over time between the two groups (Fig. 2A). The TAN concentrations
in the biofloc group remained stable from week 1 to the end of the
experiment. During the 8-week experimental period, no water was
discharged fromthe BFT treatment. By adding a carbon source (glucose)
to stimulate the growth of heterotrophic bacteria, TAN can be used and
stored by the formation of biofloc microbes (Asaduzzaman et al., 2008;
Avnimelech, 1999; Ebeling et al., 2006; Emerenciano et al., 2012),which
may explain why the TAN concentration did not exhibit significant
differences between the clean water control group and the zero-water
exchange BFT treatment.
The NO2
−-N concentration in the two groups was less than
0.8 mg L−1
throughout the culture period, except for the highest level
(1.62 mg L−1
), which was observed in the control group in week 7
(Fig. 2B). The NO3
−-N concentration in the control group fluctuated
throughout the culture period (Fig. 2C) and a similar trend was
observed in the BFT treatment. The highest NO3
−-N level in the BFT
treatment was 5.45 mg L−1
, observed in week 3, which then gradually
decreased over time. The NO3
−-N concentrationwas significantly higher
in the control (P b 0.05), and showed a tendency to accumulate in the
first 5 weeks of the culture period to levels of 11.64 mg L−1
. However,
this level decreased and then increased again in week 8. The accumula-
tion of NO2
−-N and NO3
−-N in the first few weeksmay have been caused
by nitrification processes,which are common in BFT systems (Azimand
Little, 2008;Widanarni et al., 2012; Xu et al., 2012a; Zhao et al., 2012).
However, the reduction in NO2
−-N and NO3
−-N from the third week to
the end of the experiment likely occurred due to immobilization by
heterotrophic bacteria, which inhibited the nitrification process. In
addition, denitrification may have occurred during the experiment
(Azim and Little, 2008; Luo et al., 2013).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ดังนั้น ควบคุมระดับ TSS เป็นค่าที่เหมาะสมใบสำคัญแสดงสิทธิต่อการตรวจสอบแนวโน้มการเปลี่ยนแปลงของความเข้มข้น TAN ค่อนข้างสอดคล้องกันช่วงเวลาระหว่าง 2 กลุ่ม (Fig. 2A) ความเข้มข้น TANใน biofloc กลุ่มยังคงมั่นคงที่จากสัปดาห์ที่ 1 จะสิ้นสุดของการทดลอง ในช่วงเวลาทดลอง 8 สัปดาห์ น้ำไม่ได้ออกจากการรักษา BFT โดยการเพิ่มแหล่งคาร์บอน (น้ำตาลกลูโคส)เพื่อกระตุ้นการเติบโตของแบคทีเรีย heterotrophic ตาลใช้ และเก็บ โดยการก่อตัวของจุลินทรีย์ biofloc (Asaduzzaman et al., 2008Avnimelech, 1999 Ebeling et al., 2006 Emerenciano et al., 2012), ที่อาจอธิบายเหตุสมาธิ TAN ไม่ได้แสดง significantความแตกต่างระหว่างกลุ่มควบคุมน้ำสะอาดน้ำศูนย์แลกเปลี่ยนรักษา BFTNO2− N ความเข้มข้นในกลุ่มสองได้น้อยกว่า0.8 mg L−1ตลอดระยะเวลาวัฒนธรรม ยกเว้นระดับสูงสุด(1.62 มก. L−1), ซึ่งถูกสังเกตในกลุ่มควบคุมในสัปดาห์ที่ 7(Fig. 2B) การ NO3ความเข้มข้น− N ใน fluctuated กลุ่มควบคุมทั้งวัฒนธรรม รอบระยะเวลา (Fig. 2C) และแนวโน้มที่คล้ายกันได้สังเกตในการบำบัดรักษา BFT NO3 สูงสุดระดับ− N BFTรักษา 5.45 mg L−1สังเกตใน 3 สัปดาห์ที่แล้วค่อย ๆลดลงช่วงเวลา การ NO3− N concentrationwas significantly สูงในการควบคุม (P b 0.05), และแสดงให้เห็นแนวโน้มที่จะสะสมในใบfirst 5 สัปดาห์ของวัฒนธรรมระดับ 11.64 mg L−1. อย่างไรก็ตามระดับนี้ลดลง และเพิ่มขึ้นอีกครั้งในสัปดาห์ที่ 8 แล้ว Accumula-สเตรชันของ NO2− N และ NO3− N ใน first weeksmay น้อยเกิดโดยกระบวนการ nitrification ซึ่งใช้กันทั่วไปในระบบ BFT (Azimandน้อย 2008 Widanarni et al., 2012 Xu et al., 2012a เส้า et al., 2012)อย่างไรก็ตาม การลดลง NO2− N และ NO3− N จากสัปดาห์สามไปสิ้นสุดการทดลองมีแนวโน้มเกิดตรึงโปโดยheterotrophic แบคทีเรีย ซึ่งห้ามการ nitrification ในนอกจากนี้ denitrification อาจเกิดขึ้นในระหว่างการทดลอง(Azim และน้อย 2008 Luo et al., 2013)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ดังนั้นการควบคุมของ TSS
ระดับเช่นเดียวกับมูลค่าเหมาะสมใบสำคัญแสดงสิทธิตรวจสอบต่อไป.
แนวโน้มการเปลี่ยนแปลงของความเข้มข้น TAN
ค่อนข้างสม่ำเสมอในช่วงเวลาระหว่างสองกลุ่ม(รูป. 2A) ความเข้มข้น TAN
ในกลุ่มไบโอฟลอริด้า oc ยังคงมีเสถียรภาพจากสัปดาห์ที่ 1
ถึงตอนท้ายของการทดลอง ในช่วงระยะเวลาการทดลอง 8
สัปดาห์น้ำไม่ได้ออกจากโรงพยาบาลfromthe รักษา BFT โดยการเพิ่มแหล่งคาร์บอน (กลูโคส)
ในการกระตุ้นการเจริญเติบโตของแบคทีเรีย heterotrophic, TAN
สามารถนำมาใช้และจัดเก็บโดยการก่อตัวของไบโอชั้นจุลินทรีย์oc (Asaduzzaman et al, 2008;.
Avnimelech 1999. Ebeling et al, 2006; Emerenciano et al, . 2012) ซึ่งอาจอธิบายว่าทำไมความเข้มข้น TAN ไม่ได้แสดงลาดเทมีนัยสำคัญแตกต่างระหว่างกลุ่มควบคุมน้ำสะอาดและศูนย์น้ำแลกเปลี่ยนรักษาBFT. NO2 เข้มข้น --N ในทั้งสองกลุ่มได้น้อยกว่า0.8 มก. L-1 ตลอดระยะเวลาการเลี้ยงยกเว้นในระดับสูงสุด(1.62 มก. L-1) ซึ่งพบว่าในกลุ่มควบคุมในสัปดาห์ที่ 7 (รูป. 2B) NO3 เข้มข้น --N ในกลุ่มควบคุมชั้น uctuated ตลอดระยะเวลาการเลี้ยง (รูป. 2C) และแนวโน้มที่คล้ายกันได้รับการปฏิบัติในการรักษาBFT NO3 สูงสุดระดับ--N ใน BFT รักษาเป็น 5.45 mg L-1, ข้อสังเกตในสัปดาห์ที่ 3 ซึ่งแล้วค่อยๆลดลงเมื่อเวลาผ่านไป NO3 --N concentrationwas อย่างมีนัยนัยสำคัญที่สูงขึ้นในการควบคุม(P ข 0.05) และแสดงให้เห็นแนวโน้มที่จะสะสมอยู่ในที่สายแรก5 สัปดาห์ระยะเวลาการเลี้ยงให้อยู่ในระดับของ 11.64 มก. L-1 อย่างไรก็ตามระดับนี้ลดลงและจากนั้นเพิ่มขึ้นอีกครั้งในสัปดาห์ที่ 8 accumula- การของ NO2 --N และ NO3 --N ในสายแรกไม่กี่ weeksmay มีสาเหตุมาจากกระบวนการnitri ไอออนบวก fi, ซึ่งเป็นเรื่องธรรมดาในระบบ BFT (Azimand เล็ก ๆ น้อย ๆ 2008 ; Widanarni et al, 2012;. เสี่ยว, et al, 2012a;... Zhao et al, 2012) อย่างไรก็ตามการลดลงของ NO2 --N และ NO3 --N จากสัปดาห์ที่สามที่จะสิ้นสุดการทดลองมีแนวโน้มที่เกิดขึ้นเนื่องจากที่จะตรึงโดยแบคทีเรีย heterotrophic ซึ่งยับยั้งการสาย nitri กระบวนการไอออนบวก ในนอกจากนี้ไอออนบวกสาย denitri อาจจะเกิดขึ้นในช่วงการทดลอง (Azim และลิตเติ้ล, 2008. Luo et al, 2013)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ดังนั้น การควบคุมระดับ TSS เป็นค่าที่เหมาะสมตาม

เปลี่ยนแนวโน้มต่อไป ความเข้มข้นของตาลก็ค่อนข้างสอดคล้องกัน
ช่วงเวลาระหว่างสองกลุ่ม ( รูปที่ 2A ) ตาลความเข้มข้น
ในไบโอfl OC กลุ่มยังคงทรงตัวจากสัปดาห์ที่ 1 ถึงปลาย
ทดลอง ในช่วงสัปดาห์ที่ 8 สัปดาห์ ไม่มีน้ำ
รับการรักษาจากโรงพยาบาล . โดยเติมแหล่งคาร์บอน ( กลูโคส )
เพื่อกระตุ้นการเจริญเติบโตของแบคทีเรียแบบ ตัน สามารถใช้และ
เก็บไว้จากการก่อตัวของไบโอ fl OC จุลินทรีย์ ( asaduzzaman et al . , 2008 ;
avnimelech , 1999 ; เอเบอลิ่ง et al . , 2006 ; emerenciano et al . , 2012 ) ซึ่ง
อาจอธิบาย ทำไมน้ำตาลไม่ได้แสดง signi จึงไม่สามารถ
ความแตกต่างระหว่างน้ำที่สะอาด กลุ่มควบคุม และตราน้ำ
ศูนย์รับการรักษา .

- N ความเข้มข้นของ NO2 − 2 กลุ่มน้อยกว่า 0.8 มิลลิกรัมต่อลิตร− 1

ตลอดระยะเวลาการเลี้ยง ยกเว้น
ระดับสูงสุด ( 1.62 mg L − 1
) ซึ่งพบในการควบคุม กลุ่มในสัปดาห์ที่ 7
( รูปที่ 2B ) 3
- n −ความเข้มข้นในกลุ่มควบคุมfl uctuated
ตลอดระยะเวลาการเลี้ยง ( ฟิค2 ) และแนวโน้มที่คล้ายกัน
สังเกตในการรับ . สูงสุด 3
n − - ระดับในการรับเป็น 5.45 mg L − 1

สังเกตได้ใน 3 สัปดาห์ ซึ่งก็ค่อย
ลดลงเมื่อเวลาผ่านไป 3 − n
- concentrationwas signi จึงลดลงอย่างมีนัยสําคัญเมื่อสูงกว่า
ในการควบคุม ( P , B ) ) และมีแนวโน้มที่จะสะสมใน
จึงตัดสินใจเดินทางไป 5 สัปดาห์ระยะเวลาวัฒนธรรมระดับ 11.64 mg L − 1

อย่างไรก็ตาม
ระดับนี้ลดลง แล้วเพิ่มขึ้นอีกครั้งในสัปดาห์ที่ 8 The accumula -

- tion ของ NO2 และ−− 3
- N ในจึงตัดสินใจเดินทางไปไม่กี่ weeksmay ได้เกิดขึ้นโดยการถ่ายทอดกระบวนการไนไตร
ซึ่งมีทั่วไปในระบบรับ ( azimand
น้อย , 2008 ; widanarni et al . , 2012 ; Xu et al . , 2012a ; Zhao et al . 2012 ) .
แต่ลด NO2
3
−− - n - N

จาก 3 สัปดาห์สิ้นสุดการทดลองอาจเกิดขึ้นเนื่องจากการตรึงโดย
แบบแบคทีเรีย ซึ่งยับยั้งการถ่ายทอดกระบวนการไนไตร . ใน
นอกจากนี้ การ denitri จึงอาจจะเกิดขึ้นในระหว่างการทดลอง
( อาซิ้มน้อย , 2008 ; หลัว et al . , 2013 )