To understand how acid addition aff

To understand how acid addition affected microbial carbon and nutrient mineralization, we measured potential extracellular enzyme activity (EEA) for the following extracellular enzymes in soil samples: α-glucosidase (AG), acid phosphatases (AP), β-1,4-glucosidase (BG), cellobiohydrolase (CB), leucine aminopeptidase (LAP), β-N-acetylglucosaminidase (NAG), and xylosidase (XS). As described by Saiya-Cork et al. (2002), soil was suspended in sodium acetate (pH 5.0) or sodium bicarbonate (pH 8.0) buffer, and aliquots were dispensed into 96-well microplates with 16 replicate wells per sample per assay. After incubation (20 °C, for up to 4 h depending on the substrate), fluorescence was measured using 365 nm excitation and 450 nm emission filters. Phenol oxidase and peroxidase activities were measured spectrophotometrically (450 nm) using L-3,4-dihydroxyphenylalanine. The data of soil respiration and soil factors (e.g. pH and soil extractable cations) in the present study were derived from Chen et al. (2015)

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

เข้าใจวิธีการเพิ่มกรดผลคาร์บอนจุลินทรีย์และธาตุอาหาร mineralization เราวัดศักยภาพ extracellular เอนไซม์ (พลเมือง) เอนไซม์ extracellular ดังต่อไปนี้ในตัวอย่างดิน: ด้วยกองทัพ-glucosidase (AG), กรด phosphatases (AP), β-1,4-glucosidase (BG), cellobiohydrolase (CB), leucine aminopeptidase (ตัก), β-N-acetylglucosaminidase (NAG), และ xylosidase (XS) ตามที่อธิบายไว้โดย Saiya คอร์ก et al. (2002), ดินถูกระงับในบัฟเฟอร์ (pH 8.0) โซเดียมไบคาร์บอเนตหรือโซเดียม acetate (pH 5.0) และ aliquots มีคำเป็น microplates 96-ดีกับบ่อ replicate 16 ต่อตัวอย่างสำหรับวิเคราะห์ หลังจากบ่ม (20 ° C สำหรับถึง 4 h ขึ้นกับพื้นผิว), fluorescence ถูกวัดโดยใช้ 365 nm ในการกระตุ้นและตัวกรองมลพิษ nm 450 วาง oxidase และ peroxidase กิจกรรมมีวัด spectrophotometrically (450 nm) ใช้ L-3, 4-dihydroxyphenylalanine ข้อมูลดินหายใจและดินปัจจัย (เช่น pH และดิน extractable เป็นของหายาก) ในการศึกษาปัจจุบันได้สืบทอดมาจาก Chen et al. (2015)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

เพื่อให้เข้าใจถึงวิธีการที่ได้รับผลกระทบนอกจากนี้กรดจุลินทรีย์คาร์บอนและแร่ธาตุสารอาหารที่เราวัดการทำงานของเอนไซม์สารที่มีศักยภาพ (EEA) สำหรับเอนไซม์ต่อไปนี้ในตัวอย่างดิน: แอลฟากลูโค (AG) phosphatases กรด (AP), β-1,4-glucosidase (BG) cellobiohydrolase (CB) aminopeptidase leucine (LAP) β-N-acetylglucosaminidase (จู้จี้) และไซโลสิเดส (XS) ตามที่อธิบาย Saiya จุก et al, (2002), ดินถูกระงับในโซเดียมอะซิเตท (pH 5.0) หรือโซเดียมไบคาร์บอเนต (pH 8.0) บัฟเฟอร์และ aliquots ถูกจ่ายออกเป็น 96 หลุม microplates กับ 16 หลุมทำซ้ำต่อตัวอย่างต่อการทดสอบ หลังจากการบ่ม (20 องศาเซลเซียสได้นานถึง 4 ชั่วโมงขึ้นอยู่กับพื้นผิว) เรืองแสงได้รับการวัดโดยใช้การกระตุ้น 365 นาโนเมตรและ 450 นาโนเมตรปล่อยก๊าซเรือนกระจกตัวกรอง ฟีนอลออกซิเดสและกิจกรรม peroxidase วัด spectrophotometrically (450 นาโนเมตร) โดยใช้ L-3,4-dihydroxyphenylalanine ข้อมูลของปัจจัยการหายใจของดินและดิน (pH เช่นไพเพอร์และดินที่สกัด) ในการศึกษาครั้งนี้ได้มาจากเฉินและอัล (2015)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

เพื่อให้เข้าใจวิธีการเพิ่มกรดคาร์บอนจุลินทรีย์และการได้รับสารอาหารที่เราวัดกิจกรรมของเอนไซม์ที่มีศักยภาพ ( EEA ) ต่อไปนี้ยัดเยียดในตัวอย่างดิน : แอลฟากลูโคซิเดส ( AG ) , กรดดิ ( AP ) , บีตา - 1,4-glucosidase ( BG ) , cellobiohydrolase ( CB ) , ลิวซีนอะมิโนเพปทิเดส ( ตัก ) , บีตา - n-acetylglucosaminidase ( บ่น ) และบีตา ( XS )ตามที่อธิบายไว้โดยเซย่าก๊อก et al . ( 2002 ) , ดินถูกระงับในโซเดียมอะซิเตต ( pH 5.0 ) หรือโซเดียมไบคาร์บอเนต ( pH 8.0 ) บัฟเฟอร์ และได้จ่ายเป็น 96 ก็เฉยๆ microplates 16 สร้างบ่อต่อตัวต่อการทดสอบ หลังจากบ่ม ( 20 ° C ถึง 4 ชั่วโมง ขึ้นอยู่กับพื้นผิว ) , การใช้แบบวัด 365 นาโนเมตรและ 450 nm สารมลพิษตัวกรองกิจกรรมของเอนไซม์ฟีนอล และวัดนี้ ( 450 nm ) ใช้ l-3,4-dihydroxyphenylalanine . ข้อมูลอัตราการหายใจในดินและดินปัจจัย ( เช่น pH และปริมาณแคตไอออนในดิน ) ในการศึกษาครั้งนี้ได้จาก Chen et al . ( 2015 )