- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
2. Materials and methods2.1. LEDs d
2. Materials and methods
2.1. LEDs devices with different light intensities
All of the combined LEDs had the uniform spectra of red and blue, and were designed by College of Agriculture, Nanjing Agricultural University, China. The spectral distribution of the blue (peak at 460 nm) and red (peak at 658 nm) light were measured using a spectroradiometer (OPT-2000, ABDPE CO., Beijing, China). Light treatments for the young tomato plants were 50, 150, 200, 300, 450 and 550 μmol m−2 s−1. In each treatment, photosynthetic photon flux density (PPFD) of the red and blue LEDs were equal (Hogewoning et al., 2010 and Liu et al., 2011) and the LED array was supplied with 50% blue light intensity and 50% red light intensity (B:R = 1:1). PPFD was measured using a quantum sensor (LI-250, LI-COR, USA) and was separately controlled by adjusting both the electric currents and numbers of light bulbs for the LEDs. The parameters of the light in each treatment are shown in Table 1.
Table 1.
Major light parameters of treatments.
Treatment Light intensity (μmol m−2 s−1) Peak wavelength λp (nm) Halfwave width Δλ (nm)
R + B (1:1) 50 658 + 460 ±12 and ±11
R + B (1:1) 150 658 + 460 ±12 and ±11
R + B (1:1) 200 658 + 460 ±12 and ±11
R + B (1:1) 300 658 + 460 ±12 and ±11
R + B (1:1) 450 658 + 460 ±12 and ±11
R + B (1:1) 550 658 + 460 ±12 and ±11
Table options
All of the treatments were placed in a culture room and were arranged in as separate plots with different light intensities. There was ventilation in the controlled environment, so the CO2 level was the same as the CO2 level of atmosphere outside. The relative humidity (RH) was maintained at 70 ± 10%, with a 12 h photoperiod and a temperature of 28 °C during daytime and 18 °C at night.
2.2. Plant materials
Seeds of cherry tomato (Solanum lycopersicum Mill qianxi.) provided by Taiwan Farmers Co., were planted in plastic pots containing a mixture of peat and vermiculite (3:1, v/v). When the second leaves were fully expanded, 120 young tomato plants were randomized into 6 groups and were placed under 6 light treatments for 30 days. All measurements were carried out using the third fully expanded leaf counted from the top of the plant.
2.3. Biomass and growth parameter analysis
A total of 30 young plants for each treatment were randomly selected and destructively sampled for biomass analysis after 30 days of growth. To determine the dry weight, the young plants were dried at 85 °C until a constant mass was reached. The weight of the young plants was then measured using an electronic balance. The plant height was measured from the main stem base to the top of the young plants using a ruler, and the stem diameter was measured at the internode above cotyledons using vernier calipers. The growth and morphology experiment was repeated 6 times with 5 plants in each treatment.
The specific leaf area of each young plant was measured using the equation:
Specific leaf area (SLA)=Leaf areaLeaf dry weight
Turn MathJax on
The health index was determined using the following equation:
Health index=Stem diameterStem height×Dry weight
Turn MathJax on
The Energy efficiency was determined using the following equation:
Energy efficiency=Dry weightPower consumed by LEDs
Turn MathJax on
2.4. Morphological and physiological analyses
2.4.1. Anatomical features of leaf
The anatomical analysis of the mesophyll cells in the leaves of the young plants was performed using the method of Clark (1981). The anatomical structure of the mesophyll cells of the leaves was examined under a light microscope (DP71, OLYMPUS Inc., Japan). We analyzed 10 images per leaf, one leaf per plant and 5 plants per treatment. The experiment was repeated 6 times. Leaf thickness, length of palisade cells and parenchyma cells were calculated from 30 epidermis measurements.
2.4.2. Stomatal traits
Portions of the epidermis were removed from the middle of the leaf with a razor blade, stained with a mixture of 1:1 (v/v) 50% aqueous ethanol and safranin (1% in water), and mounted in 1:1 (v/v) glycerol:water (Jensen, 1962). Slides were analyzed using an Olympus DP71 microscope (Olympus Inc., Japan), and the single stomatal pore area and stomatal pore area per unit were measured using Motic Images Plus 2.0 (Wang et al., 2009). We analyzed 10 images per leaf, one leaf per plant and 5 plants per treatment. The experiment was carried out 6 times.
2.4.3. Net photosynthesis rate (Pn)
Net photosynthesis rate (Pn) was made out using a photosynthesis instrument (LI-6400, LI-COR, USA). PPFD was set to measure at 800 μmol m−2 s−1, and the experimental conditions such as leaf temperature, CO2 concentration and relative humidity (RH) were 23 ± 1 °C, 380 ± 5 μL L−1 and 60–70%, respectively. The Pn experiment was repeated 3 times with 3 plants in each treatment.
2.5. Statistical analyses
Statistical analyses were conducted using Statistical Product and Service Solutions for Windows, version 16.0 (SPSS Inc., Japan). The data were analyzed using analysis of variance (ANOVA), and the differences between the means were tested using Duncan's multiple range test (P < 0.05).
2.1. LEDs devices with different light intensities
All of the combined LEDs had the uniform spectra of red and blue, and were designed by College of Agriculture, Nanjing Agricultural University, China. The spectral distribution of the blue (peak at 460 nm) and red (peak at 658 nm) light were measured using a spectroradiometer (OPT-2000, ABDPE CO., Beijing, China). Light treatments for the young tomato plants were 50, 150, 200, 300, 450 and 550 μmol m−2 s−1. In each treatment, photosynthetic photon flux density (PPFD) of the red and blue LEDs were equal (Hogewoning et al., 2010 and Liu et al., 2011) and the LED array was supplied with 50% blue light intensity and 50% red light intensity (B:R = 1:1). PPFD was measured using a quantum sensor (LI-250, LI-COR, USA) and was separately controlled by adjusting both the electric currents and numbers of light bulbs for the LEDs. The parameters of the light in each treatment are shown in Table 1.
Table 1.
Major light parameters of treatments.
Treatment Light intensity (μmol m−2 s−1) Peak wavelength λp (nm) Halfwave width Δλ (nm)
R + B (1:1) 50 658 + 460 ±12 and ±11
R + B (1:1) 150 658 + 460 ±12 and ±11
R + B (1:1) 200 658 + 460 ±12 and ±11
R + B (1:1) 300 658 + 460 ±12 and ±11
R + B (1:1) 450 658 + 460 ±12 and ±11
R + B (1:1) 550 658 + 460 ±12 and ±11
Table options
All of the treatments were placed in a culture room and were arranged in as separate plots with different light intensities. There was ventilation in the controlled environment, so the CO2 level was the same as the CO2 level of atmosphere outside. The relative humidity (RH) was maintained at 70 ± 10%, with a 12 h photoperiod and a temperature of 28 °C during daytime and 18 °C at night.
2.2. Plant materials
Seeds of cherry tomato (Solanum lycopersicum Mill qianxi.) provided by Taiwan Farmers Co., were planted in plastic pots containing a mixture of peat and vermiculite (3:1, v/v). When the second leaves were fully expanded, 120 young tomato plants were randomized into 6 groups and were placed under 6 light treatments for 30 days. All measurements were carried out using the third fully expanded leaf counted from the top of the plant.
2.3. Biomass and growth parameter analysis
A total of 30 young plants for each treatment were randomly selected and destructively sampled for biomass analysis after 30 days of growth. To determine the dry weight, the young plants were dried at 85 °C until a constant mass was reached. The weight of the young plants was then measured using an electronic balance. The plant height was measured from the main stem base to the top of the young plants using a ruler, and the stem diameter was measured at the internode above cotyledons using vernier calipers. The growth and morphology experiment was repeated 6 times with 5 plants in each treatment.
The specific leaf area of each young plant was measured using the equation:
Specific leaf area (SLA)=Leaf areaLeaf dry weight
Turn MathJax on
The health index was determined using the following equation:
Health index=Stem diameterStem height×Dry weight
Turn MathJax on
The Energy efficiency was determined using the following equation:
Energy efficiency=Dry weightPower consumed by LEDs
Turn MathJax on
2.4. Morphological and physiological analyses
2.4.1. Anatomical features of leaf
The anatomical analysis of the mesophyll cells in the leaves of the young plants was performed using the method of Clark (1981). The anatomical structure of the mesophyll cells of the leaves was examined under a light microscope (DP71, OLYMPUS Inc., Japan). We analyzed 10 images per leaf, one leaf per plant and 5 plants per treatment. The experiment was repeated 6 times. Leaf thickness, length of palisade cells and parenchyma cells were calculated from 30 epidermis measurements.
2.4.2. Stomatal traits
Portions of the epidermis were removed from the middle of the leaf with a razor blade, stained with a mixture of 1:1 (v/v) 50% aqueous ethanol and safranin (1% in water), and mounted in 1:1 (v/v) glycerol:water (Jensen, 1962). Slides were analyzed using an Olympus DP71 microscope (Olympus Inc., Japan), and the single stomatal pore area and stomatal pore area per unit were measured using Motic Images Plus 2.0 (Wang et al., 2009). We analyzed 10 images per leaf, one leaf per plant and 5 plants per treatment. The experiment was carried out 6 times.
2.4.3. Net photosynthesis rate (Pn)
Net photosynthesis rate (Pn) was made out using a photosynthesis instrument (LI-6400, LI-COR, USA). PPFD was set to measure at 800 μmol m−2 s−1, and the experimental conditions such as leaf temperature, CO2 concentration and relative humidity (RH) were 23 ± 1 °C, 380 ± 5 μL L−1 and 60–70%, respectively. The Pn experiment was repeated 3 times with 3 plants in each treatment.
2.5. Statistical analyses
Statistical analyses were conducted using Statistical Product and Service Solutions for Windows, version 16.0 (SPSS Inc., Japan). The data were analyzed using analysis of variance (ANOVA), and the differences between the means were tested using Duncan's multiple range test (P < 0.05).
0/5000
2. วัสดุและวิธีการ2.1. ไฟ Led อุปกรณ์กับการปลดปล่อยก๊าซแสงแตกต่างกันไฟ Led รวมทั้งหมดมีแรมสเป็คตราเป็นรูปแบบของสีแดง และสีน้ำเงิน และถูกออกแบบ โดยวิทยาลัยเกษตร มหาวิทยาลัยเกษตรนานจิง จีน การกระจายสเปกตรัมของสีน้ำเงิน (ช่วงที่ 460 nm) และสีแดง (ช่วงที่ 658 nm) ไฟถูกวัดโดยใช้ spectroradiometer (ร่วม 2000, ABDPE CO. ปักกิ่ง จีน) รักษาพืชมะเขือเทศหนุ่มแสงได้ 50, 150, 200, 300, 450 และ 550 μmol m−2 s−1 ในแต่ละทรีทเม้นต์ โฟตอน photosynthetic ฟลักซ์ (PPFD) ความหนาแน่นของสีแดง และสีน้ำเงิน Led ได้เท่ากับ (Hogewoning et al., 2010 และหลิว et al., 2011) และเรย์ LED ที่ให้ความเข้มแสง 50% สีน้ำเงินและแสงสีแดง 50% ความเข้ม (B:R = 1:1) PPFD ถูกวัดโดยใช้เซนเซอร์ควอนตัม (LI-250, LI ประกอบ สหรัฐอเมริกา) และถูกควบคุมแยกต่างหาก โดยการปรับกระแสไฟฟ้าและจำนวนหลอดไฟสำหรับไฟ Led พารามิเตอร์ของแสงในแต่ละทรีทเม้นต์จะแสดงในตารางที่ 1ตารางที่ 1 พารามิเตอร์แสงหลักของการรักษารักษาความเข้มแสง (μmol m−2 s−1) ช่วงความยาวคลื่น (nm) λp Halfwave กว้างΔλ (nm)R + B 50 658 (1:1) + 460 ±12 และ ±11R + B 150 658 (1:1) + 460 ±12 และ ±11R + B 200 658 (1:1) + 460 ±12 และ ±11R + B 300 658 (1:1) + 460 ±12 และ ±11R + B 450 658 (1:1) + 460 ±12 และ ±11R + B 550 658 (1:1) + 460 ±12 และ ±11ตัวเลือกตารางAll of the treatments were placed in a culture room and were arranged in as separate plots with different light intensities. There was ventilation in the controlled environment, so the CO2 level was the same as the CO2 level of atmosphere outside. The relative humidity (RH) was maintained at 70 ± 10%, with a 12 h photoperiod and a temperature of 28 °C during daytime and 18 °C at night.2.2. Plant materialsSeeds of cherry tomato (Solanum lycopersicum Mill qianxi.) provided by Taiwan Farmers Co., were planted in plastic pots containing a mixture of peat and vermiculite (3:1, v/v). When the second leaves were fully expanded, 120 young tomato plants were randomized into 6 groups and were placed under 6 light treatments for 30 days. All measurements were carried out using the third fully expanded leaf counted from the top of the plant.2.3. Biomass and growth parameter analysisA total of 30 young plants for each treatment were randomly selected and destructively sampled for biomass analysis after 30 days of growth. To determine the dry weight, the young plants were dried at 85 °C until a constant mass was reached. The weight of the young plants was then measured using an electronic balance. The plant height was measured from the main stem base to the top of the young plants using a ruler, and the stem diameter was measured at the internode above cotyledons using vernier calipers. The growth and morphology experiment was repeated 6 times with 5 plants in each treatment.The specific leaf area of each young plant was measured using the equation: Specific leaf area (SLA)=Leaf areaLeaf dry weightTurn MathJax on The health index was determined using the following equation: Health index=Stem diameterStem height×Dry weightTurn MathJax on The Energy efficiency was determined using the following equation: Energy efficiency=Dry weightPower consumed by LEDsTurn MathJax on 2.4. Morphological and physiological analyses2.4.1. Anatomical features of leafThe anatomical analysis of the mesophyll cells in the leaves of the young plants was performed using the method of Clark (1981). The anatomical structure of the mesophyll cells of the leaves was examined under a light microscope (DP71, OLYMPUS Inc., Japan). We analyzed 10 images per leaf, one leaf per plant and 5 plants per treatment. The experiment was repeated 6 times. Leaf thickness, length of palisade cells and parenchyma cells were calculated from 30 epidermis measurements.2.4.2. Stomatal traitsPortions of the epidermis were removed from the middle of the leaf with a razor blade, stained with a mixture of 1:1 (v/v) 50% aqueous ethanol and safranin (1% in water), and mounted in 1:1 (v/v) glycerol:water (Jensen, 1962). Slides were analyzed using an Olympus DP71 microscope (Olympus Inc., Japan), and the single stomatal pore area and stomatal pore area per unit were measured using Motic Images Plus 2.0 (Wang et al., 2009). We analyzed 10 images per leaf, one leaf per plant and 5 plants per treatment. The experiment was carried out 6 times.2.4.3. Net photosynthesis rate (Pn)Net photosynthesis rate (Pn) was made out using a photosynthesis instrument (LI-6400, LI-COR, USA). PPFD was set to measure at 800 μmol m−2 s−1, and the experimental conditions such as leaf temperature, CO2 concentration and relative humidity (RH) were 23 ± 1 °C, 380 ± 5 μL L−1 and 60–70%, respectively. The Pn experiment was repeated 3 times with 3 plants in each treatment.2.5. Statistical analysesStatistical analyses were conducted using Statistical Product and Service Solutions for Windows, version 16.0 (SPSS Inc., Japan). The data were analyzed using analysis of variance (ANOVA), and the differences between the means were tested using Duncan's multiple range test (P < 0.05).
การแปล กรุณารอสักครู่..
2. วัสดุและวิธีการ
2.1 อุปกรณ์ไฟ LED
ที่มีความเข้มของแสงที่แตกต่างกันทั้งหมดของLED รวมมีสเปกตรัมสม่ำเสมอของสีแดงและสีฟ้าและได้รับการออกแบบโดยวิทยาลัยเกษตรมหาวิทยาลัยเกษตรหนานจิงประเทศจีน การกระจายสเปกตรัมสีฟ้า (สูงสุดที่ 460 นาโนเมตร) และสีแดง (สูงสุดที่ 658 นาโนเมตร) ไฟถูกวัดโดยใช้ Spectroradiometer (OPT-2000, ABDPE CO., ปักกิ่ง, จีน) การรักษาแสงสำหรับมะเขือเทศหนุ่มอายุ 50 150, 200, 300, 450 และ 550 ไมโครโมลของ m-2 s-1 ในการรักษาแต่ละสังเคราะห์ความหนาแน่นของของเหลวโฟตอน (PPFD) ของไฟ LED สีแดงและสีน้ำเงินเท่ากับ (Hogewoning et al., 2010 และหลิว et al., 2011) และอาเรย์ไฟ LED มาพร้อมกับ 50% ความเข้มของแสงสีฟ้าและ 50% สีแดง ความเข้มของแสง (B R = 1: 1) PPFD ถูกวัดโดยใช้เซ็นเซอร์ควอนตัม (LI-250, LI-COR สหรัฐอเมริกา) และได้รับการควบคุมแยกต่างหากโดยการปรับทั้งกระแสไฟฟ้าและหมายเลขโทรศัพท์ของหลอดไฟสำหรับไฟ LED พารามิเตอร์ของแสงในการรักษาแต่ละจะแสดงในตารางที่ 1
ตารางที่ 1
พารามิเตอร์แสงที่สำคัญของการรักษา.
การรักษาความเข้มแสง (ไมโครโมลของ m-2 s-1) ความยาวคลื่นยอดλp (นาโนเมตร) ความกว้าง Halfwave Δλ (นาโนเมตร)
R + B (1: 1) 50 658 + 460 ± 12 ± 11
R + B (1: 1) 150 658 + 460 ± 12 ± 11
R + B (1: 1) 200 658 + 460 ± 12 ± 11
R + B (1: 1) 300 658 + 460 ± 12 ± 11
R + B (1: 1) 450 658 + 460 ± 12 ± 11
R + B (1: 1) 550 658 + 460 ± 12 ± 11
ตาราง
ตัวเลือกทั้งหมดของการรักษาที่ถูกวางไว้ในห้องพักวัฒนธรรมและได้รับการจัดให้อยู่ในแปลงที่แยกต่างหากเช่นเดียวกับความเข้มของแสงที่แตกต่างกัน มีการระบายอากาศที่อยู่ในสภาพแวดล้อมที่ควบคุมได้ดังนั้นระดับ CO2 ได้เช่นเดียวกับระดับ CO2 จากบรรยากาศภายนอก ความชื้นสัมพัทธ์ (RH) ถูกเก็บรักษาไว้ที่ 70 ± 10% มีแสง 12 ชั่วโมงและอุณหภูมิ 28 องศาเซลเซียสในช่วงกลางวันและ 18 องศาเซลเซียสในเวลากลางคืน.
2.2 วัสดุพืชเมล็ดมะเขือเทศเชอร์รี่ (. มะเขือ lycopersicum Mill Qianxi) ให้บริการโดยเกษตรกรไต้หวัน จำกัด ถูกนำมาปลูกในกระถางพลาสติกที่มีส่วนผสมของพีทและ vermiculite (3: 1, v / v)
เมื่อใบที่สองได้รับการขยายตัวได้เต็มที่ 120 มะเขือเทศหนุ่มถูกสุ่มออกเป็น 6 กลุ่มและอยู่ภายใต้การรักษาแสง 6 เป็นเวลา 30 วัน วัดทั้งหมดถูกดำเนินการโดยใช้ใบที่สามขยายตัวได้เต็มที่นับจากด้านบนของพืช.
2.3 ชีวมวลและการเจริญเติบโตการวิเคราะห์พารามิเตอร์ทั้งหมด 30 สาวโรงงานสำหรับการรักษาแต่ละสุ่มเลือกตัวอย่างและทำลายสำหรับการวิเคราะห์ชีวมวลหลังจาก 30 วันของการเจริญเติบโต
การตรวจสอบน้ำหนักแห้งพืชเล็กแห้งที่ 85 องศาเซลเซียสจนมวลคงที่ก็มาถึง น้ำหนักของสาวโรงงานที่ได้รับการวัดแล้วใช้มีความสมดุลอิเล็กทรอนิกส์ ความสูงของพืชวัดจากฐานลำต้นหลักไปด้านบนของพืชเล็กโดยใช้ไม้บรรทัดและเส้นผ่าศูนย์กลางลำต้นวัดปล้องที่ดังกล่าวข้างต้นโดยใช้เครื่องวัดเส้นผ่าศูนย์กลางใบเลี้ยง vernier การเจริญเติบโตและการทดสอบลักษณะทางสัณฐานวิทยาซ้ำ 6 ครั้งกับ 5 พืชในการรักษาแต่ละ.
พื้นที่ใบที่เฉพาะเจาะจงของแต่ละโรงงานหนุ่มถูกวัดโดยใช้สมการ:
พื้นที่ใบเฉพาะ (SLA) = ใบ areaLeaf
น้ำหนักแห้งเปิดMathJax ในดัชนีสุขภาพที่ได้รับการพิจารณาโดยใช้สมการต่อไปนี้: ดัชนีสุขภาพ = ความสูงต้นกำเนิด diameterStem ×น้ำหนักแห้งเปิดMathJax ในประสิทธิภาพการใช้พลังงานที่ถูกกำหนดโดยใช้สมการต่อไปนี้: ประสิทธิภาพการใช้พลังงาน = แห้ง weightPower บริโภคโดยไฟ LED เปิด MathJax ใน2.4 ทางสัณฐานวิทยาและการวิเคราะห์ทางสรีรวิทยา2.4.1 คุณสมบัติทางกายวิภาคของใบการวิเคราะห์ทางกายวิภาคของเซลล์ mesophyll ในใบของพืชหนุ่มสาวที่ถูกดำเนินการโดยใช้วิธีการของคลาร์ก (1981) โครงสร้างทางกายวิภาคของเซลล์ mesophyll ของใบได้รับการตรวจสอบภายใต้กล้องจุลทรรศน์แสง (DP71, OLYMPUS อิงค์ญี่ปุ่น) เราวิเคราะห์ 10 ภาพต่อใบหนึ่งใบต่อต้นและ 5 ต้นต่อการรักษา การทดลองซ้ำ 6 ครั้ง ความหนาใบความยาวของรั้วเหล็กเซลล์เนื้อเยื่อและเซลล์จะถูกคำนวณจาก 30 วัดหนังกำพร้า. 2.4.2 ปากใบมีลักษณะบางส่วนของผิวหนังชั้นนอกถูกถอดออกจากตรงกลางของใบที่มีใบมีดโกนที่ย้อมด้วยส่วนผสมของ 1: 1 (v / v) เอทานอล 50% น้ำและ safranin (1% ในน้ำ) และติดตั้งในที่ 1: 1 (v / v) กลีเซอรอล: น้ำ (เซ่น 1962) ภาพนิ่งที่ได้มาวิเคราะห์โดยใช้กล้องจุลทรรศน์โอลิมปั DP71 (โอลิมปัอิงค์ประเทศญี่ปุ่น) และรูขุมขนบริเวณปากใบเดียวและรูขุมขนบริเวณปากใบต่อหน่วยถูกวัดโดยใช้รูปภาพ MOTIC พลัส 2.0 (Wang et al., 2009) เราวิเคราะห์ 10 ภาพต่อใบหนึ่งใบต่อต้นและ 5 ต้นต่อการรักษา การทดลองดำเนินการ 6 ครั้ง. 2.4.3 อัตราการสังเคราะห์แสงสุทธิ (Pn) อัตราการสังเคราะห์แสงสุทธิ (Pn) ที่ถูกสร้างขึ้นโดยใช้เครื่องมือที่ใช้ในการสังเคราะห์แสง (LI-6400, LI-COR สหรัฐอเมริกา) PPFD ถูกกำหนดให้วัดที่ 800 ไมโครโมลของ m-2 s-1 และเงื่อนไขการทดลองเช่นอุณหภูมิใบความเข้มข้นของ CO2 และความชื้นสัมพัทธ์ (RH) 23 ± 1 ° C, 380 ± 5 ไมโครลิตร L-1 และ 60-70 % ตามลำดับ การทดลอง Pn ซ้ำ 3 ครั้ง 3 พืชในการรักษาแต่ละ. 2.5 การวิเคราะห์ทางสถิติการวิเคราะห์ทางสถิติได้ดำเนินการโดยใช้ผลิตภัณฑ์ทางสถิติและการให้บริการโซลูชั่นสำหรับ Windows รุ่น 16.0 (SPSS อิงค์ญี่ปุ่น) วิเคราะห์ข้อมูลโดยใช้การวิเคราะห์ความแปรปรวน (ANOVA) และความแตกต่างระหว่างวิธีการที่ได้มีการทดสอบการใช้การทดสอบหลายช่วงของดันแคน (P <0.05)
2.1 อุปกรณ์ไฟ LED
ที่มีความเข้มของแสงที่แตกต่างกันทั้งหมดของLED รวมมีสเปกตรัมสม่ำเสมอของสีแดงและสีฟ้าและได้รับการออกแบบโดยวิทยาลัยเกษตรมหาวิทยาลัยเกษตรหนานจิงประเทศจีน การกระจายสเปกตรัมสีฟ้า (สูงสุดที่ 460 นาโนเมตร) และสีแดง (สูงสุดที่ 658 นาโนเมตร) ไฟถูกวัดโดยใช้ Spectroradiometer (OPT-2000, ABDPE CO., ปักกิ่ง, จีน) การรักษาแสงสำหรับมะเขือเทศหนุ่มอายุ 50 150, 200, 300, 450 และ 550 ไมโครโมลของ m-2 s-1 ในการรักษาแต่ละสังเคราะห์ความหนาแน่นของของเหลวโฟตอน (PPFD) ของไฟ LED สีแดงและสีน้ำเงินเท่ากับ (Hogewoning et al., 2010 และหลิว et al., 2011) และอาเรย์ไฟ LED มาพร้อมกับ 50% ความเข้มของแสงสีฟ้าและ 50% สีแดง ความเข้มของแสง (B R = 1: 1) PPFD ถูกวัดโดยใช้เซ็นเซอร์ควอนตัม (LI-250, LI-COR สหรัฐอเมริกา) และได้รับการควบคุมแยกต่างหากโดยการปรับทั้งกระแสไฟฟ้าและหมายเลขโทรศัพท์ของหลอดไฟสำหรับไฟ LED พารามิเตอร์ของแสงในการรักษาแต่ละจะแสดงในตารางที่ 1
ตารางที่ 1
พารามิเตอร์แสงที่สำคัญของการรักษา.
การรักษาความเข้มแสง (ไมโครโมลของ m-2 s-1) ความยาวคลื่นยอดλp (นาโนเมตร) ความกว้าง Halfwave Δλ (นาโนเมตร)
R + B (1: 1) 50 658 + 460 ± 12 ± 11
R + B (1: 1) 150 658 + 460 ± 12 ± 11
R + B (1: 1) 200 658 + 460 ± 12 ± 11
R + B (1: 1) 300 658 + 460 ± 12 ± 11
R + B (1: 1) 450 658 + 460 ± 12 ± 11
R + B (1: 1) 550 658 + 460 ± 12 ± 11
ตาราง
ตัวเลือกทั้งหมดของการรักษาที่ถูกวางไว้ในห้องพักวัฒนธรรมและได้รับการจัดให้อยู่ในแปลงที่แยกต่างหากเช่นเดียวกับความเข้มของแสงที่แตกต่างกัน มีการระบายอากาศที่อยู่ในสภาพแวดล้อมที่ควบคุมได้ดังนั้นระดับ CO2 ได้เช่นเดียวกับระดับ CO2 จากบรรยากาศภายนอก ความชื้นสัมพัทธ์ (RH) ถูกเก็บรักษาไว้ที่ 70 ± 10% มีแสง 12 ชั่วโมงและอุณหภูมิ 28 องศาเซลเซียสในช่วงกลางวันและ 18 องศาเซลเซียสในเวลากลางคืน.
2.2 วัสดุพืชเมล็ดมะเขือเทศเชอร์รี่ (. มะเขือ lycopersicum Mill Qianxi) ให้บริการโดยเกษตรกรไต้หวัน จำกัด ถูกนำมาปลูกในกระถางพลาสติกที่มีส่วนผสมของพีทและ vermiculite (3: 1, v / v)
เมื่อใบที่สองได้รับการขยายตัวได้เต็มที่ 120 มะเขือเทศหนุ่มถูกสุ่มออกเป็น 6 กลุ่มและอยู่ภายใต้การรักษาแสง 6 เป็นเวลา 30 วัน วัดทั้งหมดถูกดำเนินการโดยใช้ใบที่สามขยายตัวได้เต็มที่นับจากด้านบนของพืช.
2.3 ชีวมวลและการเจริญเติบโตการวิเคราะห์พารามิเตอร์ทั้งหมด 30 สาวโรงงานสำหรับการรักษาแต่ละสุ่มเลือกตัวอย่างและทำลายสำหรับการวิเคราะห์ชีวมวลหลังจาก 30 วันของการเจริญเติบโต
การตรวจสอบน้ำหนักแห้งพืชเล็กแห้งที่ 85 องศาเซลเซียสจนมวลคงที่ก็มาถึง น้ำหนักของสาวโรงงานที่ได้รับการวัดแล้วใช้มีความสมดุลอิเล็กทรอนิกส์ ความสูงของพืชวัดจากฐานลำต้นหลักไปด้านบนของพืชเล็กโดยใช้ไม้บรรทัดและเส้นผ่าศูนย์กลางลำต้นวัดปล้องที่ดังกล่าวข้างต้นโดยใช้เครื่องวัดเส้นผ่าศูนย์กลางใบเลี้ยง vernier การเจริญเติบโตและการทดสอบลักษณะทางสัณฐานวิทยาซ้ำ 6 ครั้งกับ 5 พืชในการรักษาแต่ละ.
พื้นที่ใบที่เฉพาะเจาะจงของแต่ละโรงงานหนุ่มถูกวัดโดยใช้สมการ:
พื้นที่ใบเฉพาะ (SLA) = ใบ areaLeaf
น้ำหนักแห้งเปิดMathJax ในดัชนีสุขภาพที่ได้รับการพิจารณาโดยใช้สมการต่อไปนี้: ดัชนีสุขภาพ = ความสูงต้นกำเนิด diameterStem ×น้ำหนักแห้งเปิดMathJax ในประสิทธิภาพการใช้พลังงานที่ถูกกำหนดโดยใช้สมการต่อไปนี้: ประสิทธิภาพการใช้พลังงาน = แห้ง weightPower บริโภคโดยไฟ LED เปิด MathJax ใน2.4 ทางสัณฐานวิทยาและการวิเคราะห์ทางสรีรวิทยา2.4.1 คุณสมบัติทางกายวิภาคของใบการวิเคราะห์ทางกายวิภาคของเซลล์ mesophyll ในใบของพืชหนุ่มสาวที่ถูกดำเนินการโดยใช้วิธีการของคลาร์ก (1981) โครงสร้างทางกายวิภาคของเซลล์ mesophyll ของใบได้รับการตรวจสอบภายใต้กล้องจุลทรรศน์แสง (DP71, OLYMPUS อิงค์ญี่ปุ่น) เราวิเคราะห์ 10 ภาพต่อใบหนึ่งใบต่อต้นและ 5 ต้นต่อการรักษา การทดลองซ้ำ 6 ครั้ง ความหนาใบความยาวของรั้วเหล็กเซลล์เนื้อเยื่อและเซลล์จะถูกคำนวณจาก 30 วัดหนังกำพร้า. 2.4.2 ปากใบมีลักษณะบางส่วนของผิวหนังชั้นนอกถูกถอดออกจากตรงกลางของใบที่มีใบมีดโกนที่ย้อมด้วยส่วนผสมของ 1: 1 (v / v) เอทานอล 50% น้ำและ safranin (1% ในน้ำ) และติดตั้งในที่ 1: 1 (v / v) กลีเซอรอล: น้ำ (เซ่น 1962) ภาพนิ่งที่ได้มาวิเคราะห์โดยใช้กล้องจุลทรรศน์โอลิมปั DP71 (โอลิมปัอิงค์ประเทศญี่ปุ่น) และรูขุมขนบริเวณปากใบเดียวและรูขุมขนบริเวณปากใบต่อหน่วยถูกวัดโดยใช้รูปภาพ MOTIC พลัส 2.0 (Wang et al., 2009) เราวิเคราะห์ 10 ภาพต่อใบหนึ่งใบต่อต้นและ 5 ต้นต่อการรักษา การทดลองดำเนินการ 6 ครั้ง. 2.4.3 อัตราการสังเคราะห์แสงสุทธิ (Pn) อัตราการสังเคราะห์แสงสุทธิ (Pn) ที่ถูกสร้างขึ้นโดยใช้เครื่องมือที่ใช้ในการสังเคราะห์แสง (LI-6400, LI-COR สหรัฐอเมริกา) PPFD ถูกกำหนดให้วัดที่ 800 ไมโครโมลของ m-2 s-1 และเงื่อนไขการทดลองเช่นอุณหภูมิใบความเข้มข้นของ CO2 และความชื้นสัมพัทธ์ (RH) 23 ± 1 ° C, 380 ± 5 ไมโครลิตร L-1 และ 60-70 % ตามลำดับ การทดลอง Pn ซ้ำ 3 ครั้ง 3 พืชในการรักษาแต่ละ. 2.5 การวิเคราะห์ทางสถิติการวิเคราะห์ทางสถิติได้ดำเนินการโดยใช้ผลิตภัณฑ์ทางสถิติและการให้บริการโซลูชั่นสำหรับ Windows รุ่น 16.0 (SPSS อิงค์ญี่ปุ่น) วิเคราะห์ข้อมูลโดยใช้การวิเคราะห์ความแปรปรวน (ANOVA) และความแตกต่างระหว่างวิธีการที่ได้มีการทดสอบการใช้การทดสอบหลายช่วงของดันแคน (P <0.05)
การแปล กรุณารอสักครู่..
2 . วัสดุและวิธีการ
2.1 . อุปกรณ์ไฟ LED ที่มีความเข้มแสงแตกต่างกัน
ทั้งหมดของ LEDs รวมมีสเปกตรัมเครื่องแบบสีแดงและสีฟ้าและได้รับการออกแบบโดยวิทยาลัยเกษตร มหาวิทยาลัยเกษตรหนานจิง , จีน การกระจายสเปกตรัมของสีฟ้า ( สูงสุดที่ 460 nm ) และสีแดง ( ยอดที่คุณ nm ) วัดแสงใช้ spectroradiometer ( opt-2000 abdpe , บริษัท , ปักกิ่ง , จีน )การรักษาแสงสำหรับพืชมะเขือเทศยังเป็น 50 , 150 , 200 , 300 , 450 และ 550 m mol −μ 2 s − 1 ในการรักษาแต่ละแสงโฟตอน ความหนาแน่นฟลักซ์ ( ppfd ) ของไฟ LED สีแดงและน้ำเงิน เท่ากับ ( hogewoning et al . , 2010 และ Liu et al . , 2011 ) และแบบ LED ที่ให้มา กับ 50 % สีฟ้าเข้มและความเข้มแสงแดง 50 % ( B : R = 1 : 1 ) ppfd ถูกวัดโดยใช้เซ็นเซอร์ ( li-250 ควอนตัม ,li-cor , USA ) และถูกแยกควบคุมได้โดยการปรับทั้งกระแสไฟฟ้าและจำนวนของหลอดไฟสำหรับไฟ LED ค่าของแสงในการรักษาแต่ละครั้งจะแสดงในตารางที่ 1 .
โต๊ะ 1
ที่สำคัญแสงพารามิเตอร์ของการรักษา .
ความเข้มแสงบำบัด ( μ mol m − 2 s − 1 ) ความยาวคลื่นสูงสุดλ P ( nm ) Δλความกว้าง halfwave ( nm )
R B ( 1 : 1 ) 50 แล้ว 460 ± 12 และ± 11
R B ( 11 ) 150 แล้ว 460 ± 12 และ± 11
R B ( 1 : 1 ) 200 แล้ว 460 ± 12 และ± 11
R B ( 1 : 1 ) 300 แล้ว 460 ± 12 และ± 11
R B ( 1 : 1 ) 450 แล้ว 460 ± 12 และ± 11
R B ( 1 : 1 ) 550 แล้ว 460 ± 12 และ ± 11
ตารางตัวเลือกทั้งหมดของการรักษาที่ถูกวางไว้ในห้อง วัฒนธรรม และจัดเป็นแปลง แยก กับความเข้มของแสงที่แตกต่างกัน มีการระบายอากาศในสภาพแวดล้อมที่ถูกควบคุมดังนั้นระดับ CO2 เป็นเช่นเดียวกับระดับคาร์บอนไดออกไซด์ในบรรยากาศภายนอก ความชื้นสัมพัทธ์ ( RH ) ไว้ที่ 70 ±ร้อยละ 10 กับ 12 ชั่วโมง ต่อช่วงแสงและอุณหภูมิ 28 องศา C ในช่วงกลางวันและกลางคืน 18 ° C .
2.2 . วัสดุ
พืชเมล็ดพืชของมะเขือเทศเชอร์รี่ ( ไม่สามารถจะยอมรับได้ lycopersicum โรงสี qianxi ) โดยเกษตรกรไต้หวันบริษัทที่ปลูกในกระถางพลาสติกที่มีส่วนผสมของพีชและ vermiculite ( 3 : 1 v / v ) เมื่อใบที่สอง พร้อมขยาย 120 ยังมะเขือเทศถูกสุ่มออกเป็น 6 กลุ่ม และอยู่ภายใต้ 6 ชุดไฟสำหรับ 30 วัน วัดทั้งหมดทดลองใช้ 3 ใบพร้อมขยายนับจากด้านบนของพืช .
2.3 มวลชีวภาพและการเจริญเติบโต
การวิเคราะห์พารามิเตอร์รวม 30 หนุ่มพืชสำหรับการรักษาแต่ละวิธีทำลายสุ่มเลือกตัวอย่างเพื่อการวิเคราะห์มวลชีวภาพหลังจาก 30 วันของการเติบโต เพื่อหาน้ำหนักแห้งพืชเล็กแห้งที่อุณหภูมิ 85 องศา C ถึงมวลคงที่ ครบ น้ำหนักของต้นกล้าก็วัดโดยใช้การทรงตัวอิเล็กทรอนิกส์ความสูงวัดจากฐานลำต้นหลักด้านบนของพืชยังใช้ไม้บรรทัด และมีขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางวัดที่ปล้องอยู่เหนือการแสดงออกโดยใช้เวอร์เนียร์คาลิเปอร์ . การเจริญเติบโตและทดลองซ้ำ 6 ครั้ง มีสัณฐานเป็น 5 พืชในการรักษาแต่ละ เฉพาะใบ
พื้นที่ของแต่ละพืชหนุ่มสาววัดโดยใช้สมการ :
2.1 . อุปกรณ์ไฟ LED ที่มีความเข้มแสงแตกต่างกัน
ทั้งหมดของ LEDs รวมมีสเปกตรัมเครื่องแบบสีแดงและสีฟ้าและได้รับการออกแบบโดยวิทยาลัยเกษตร มหาวิทยาลัยเกษตรหนานจิง , จีน การกระจายสเปกตรัมของสีฟ้า ( สูงสุดที่ 460 nm ) และสีแดง ( ยอดที่คุณ nm ) วัดแสงใช้ spectroradiometer ( opt-2000 abdpe , บริษัท , ปักกิ่ง , จีน )การรักษาแสงสำหรับพืชมะเขือเทศยังเป็น 50 , 150 , 200 , 300 , 450 และ 550 m mol −μ 2 s − 1 ในการรักษาแต่ละแสงโฟตอน ความหนาแน่นฟลักซ์ ( ppfd ) ของไฟ LED สีแดงและน้ำเงิน เท่ากับ ( hogewoning et al . , 2010 และ Liu et al . , 2011 ) และแบบ LED ที่ให้มา กับ 50 % สีฟ้าเข้มและความเข้มแสงแดง 50 % ( B : R = 1 : 1 ) ppfd ถูกวัดโดยใช้เซ็นเซอร์ ( li-250 ควอนตัม ,li-cor , USA ) และถูกแยกควบคุมได้โดยการปรับทั้งกระแสไฟฟ้าและจำนวนของหลอดไฟสำหรับไฟ LED ค่าของแสงในการรักษาแต่ละครั้งจะแสดงในตารางที่ 1 .
โต๊ะ 1
ที่สำคัญแสงพารามิเตอร์ของการรักษา .
ความเข้มแสงบำบัด ( μ mol m − 2 s − 1 ) ความยาวคลื่นสูงสุดλ P ( nm ) Δλความกว้าง halfwave ( nm )
R B ( 1 : 1 ) 50 แล้ว 460 ± 12 และ± 11
R B ( 11 ) 150 แล้ว 460 ± 12 และ± 11
R B ( 1 : 1 ) 200 แล้ว 460 ± 12 และ± 11
R B ( 1 : 1 ) 300 แล้ว 460 ± 12 และ± 11
R B ( 1 : 1 ) 450 แล้ว 460 ± 12 และ± 11
R B ( 1 : 1 ) 550 แล้ว 460 ± 12 และ ± 11
ตารางตัวเลือกทั้งหมดของการรักษาที่ถูกวางไว้ในห้อง วัฒนธรรม และจัดเป็นแปลง แยก กับความเข้มของแสงที่แตกต่างกัน มีการระบายอากาศในสภาพแวดล้อมที่ถูกควบคุมดังนั้นระดับ CO2 เป็นเช่นเดียวกับระดับคาร์บอนไดออกไซด์ในบรรยากาศภายนอก ความชื้นสัมพัทธ์ ( RH ) ไว้ที่ 70 ±ร้อยละ 10 กับ 12 ชั่วโมง ต่อช่วงแสงและอุณหภูมิ 28 องศา C ในช่วงกลางวันและกลางคืน 18 ° C .
2.2 . วัสดุ
พืชเมล็ดพืชของมะเขือเทศเชอร์รี่ ( ไม่สามารถจะยอมรับได้ lycopersicum โรงสี qianxi ) โดยเกษตรกรไต้หวันบริษัทที่ปลูกในกระถางพลาสติกที่มีส่วนผสมของพีชและ vermiculite ( 3 : 1 v / v ) เมื่อใบที่สอง พร้อมขยาย 120 ยังมะเขือเทศถูกสุ่มออกเป็น 6 กลุ่ม และอยู่ภายใต้ 6 ชุดไฟสำหรับ 30 วัน วัดทั้งหมดทดลองใช้ 3 ใบพร้อมขยายนับจากด้านบนของพืช .
2.3 มวลชีวภาพและการเจริญเติบโต
การวิเคราะห์พารามิเตอร์รวม 30 หนุ่มพืชสำหรับการรักษาแต่ละวิธีทำลายสุ่มเลือกตัวอย่างเพื่อการวิเคราะห์มวลชีวภาพหลังจาก 30 วันของการเติบโต เพื่อหาน้ำหนักแห้งพืชเล็กแห้งที่อุณหภูมิ 85 องศา C ถึงมวลคงที่ ครบ น้ำหนักของต้นกล้าก็วัดโดยใช้การทรงตัวอิเล็กทรอนิกส์ความสูงวัดจากฐานลำต้นหลักด้านบนของพืชยังใช้ไม้บรรทัด และมีขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางวัดที่ปล้องอยู่เหนือการแสดงออกโดยใช้เวอร์เนียร์คาลิเปอร์ . การเจริญเติบโตและทดลองซ้ำ 6 ครั้ง มีสัณฐานเป็น 5 พืชในการรักษาแต่ละ เฉพาะใบ
พื้นที่ของแต่ละพืชหนุ่มสาววัดโดยใช้สมการ :
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- 2. Materials and methods2.1. LEDs device
- การแข็งค่าของเงินดอลลาร์ อาจส่งผลให้กระแ
- Dia Resibon (Thailand) Co., Ltd.
- Methane and Other GasesAnother greenhous
- ส้มตำ
- Vietnam does not allow taking building o
- increased risk of heart diseasehigh bloo
- เราใส่เสื้อผ้าสีเขียวตลอดวัน
- คุณทำงานอะไร
- I can beat him
- You sleep?
- ครอบครัวของฉันมีกัน 5 คน คือ พ่อแม่ ตัวฉ
- ขนมมงคล
- while matters of importance for private
- By the way
- There are three basic forms of tourism:
- พิพิทธภัณฑ์หุ่นขี้ผึ้งสยาม
- evaluation
- จุดเด่น
- Alex SpirikaitisDirector
- Bear in mind
- i wanna lick ur pussy harder
- This is e-mail she.
- I show you picture with out die
