The change in peel color was establ

The change in peel color was established by determining a*
and b* coordinates with the hue value (Cheng et al., 2009) using
a Minolta Chroma Meter CR-400 (Minolta Camera Co. Ltd., Osaka,
Japan). Eight individual banana fruits from each treatment were
used for determination of peel color. Each fruit was measured at
three equidistant points from bottom to top on the fruit skin. Color
was recorded using the CIE L*, a* and b* scale. L denotes the lightness
or darkness, a* indicates green to red color, and b* shows blue
to yellow color. Numerical values of L*, a* and b* were converted
into hue value [h0 = tan−1(b*/a*)].
Chlorophyll fluorescence was determined using a portable
chlorophyll fluorometer (FAM 2100, Walz, Germany) in the Fv/Fm
mode (Yang et al., 2011). Eight individual banana fruits from
each treatment were dark-adapted for at least 30 min prior to
measurements. The chlorophyll fluorescence parameters Fo and
Fm were measured. Fo is the minimal or initial fluorescence
when all PSII reaction centers are open, while Fm is the maximal
fluorescence when all PSII reaction centers are closed and
all non-photochemical quenching processes are at a minimum.
The maximal variable fluorescence (Fv = Fm
−
Fo) and PSII quantum
yield (Fv/Fm) were calculated from the Fo and Fm values. The
fluorometer probe was placed firmly on the banana fruit and a
pulse of 10 mmol m−1 s−1 was applied for 0.8 s. Measurements of
fruit chlorophyll fluorescence were taken on each treatment of six
fruits, at three different locations from bottom to top on the fruit
skin.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

การเปลี่ยนแปลงสีของเปลือกก่อตั้งขึ้น โดยกำหนดเป็น *และ b * พิกัด ด้วยค่าเว้ (Cheng et al., 2009) โดยใช้เป็นความ Minolta เครื่องวัด CR-400 (กล้อง Minolta จำกัด โอซาก้าญี่ปุ่น) ผลไม้กล้วยละแปดจากทรีตเมนท์ถูกใช้สำหรับกำหนดสีของเปลือก ผลไม้แต่ละวัดได้สามกั้นจุดจากด้านล่างไปด้านบนบนผิวผลไม้ สีบันทึกการใช้ CIE L * การ * และ b * ขนาด L หมายถึงความสว่างที่ความ มืด หรือ * บ่งชี้สีเขียวกับสีแดง b * สีฟ้าแสดงสีเหลือง ตัวเลขค่า L * การ * และ b * ได้ถูกแปลงเป็นค่าเว้ [h0 = tan−1(b*/a*)]Fluorescence คลอโรฟิลล์ถูกกำหนดโดยใช้เครื่องfluorometer คลอโรฟิลล์ (FAM 2100, Walz เยอรมนี) ใน Fv/Fmโหมด (Yang et al., 2011) ผลไม้กล้วยละแปดจากทรีตเมนท์ถูก dark-adapted สำหรับอย่างน้อย 30 นาทีก่อนวัด พารามิเตอร์ fluorescence คลอโรฟิลล์รวดเร็ว และFm ที่ถูกวัด โฟมี fluorescence น้อย หรือเริ่มต้นเมื่อศูนย์ปฏิกิริยา PSII ทั้งหมด เปิด Fm เป็นสูงสุดfluorescence เมื่อศูนย์ปฏิกิริยา PSII ทั้งหมดถูกปิด และกระบวนการ quenching photochemical ไม่ใช่ทั้งหมดอย่างแท้จริงFluorescence ผันแปรสูงสุด (Fv = Fm−โฟ) และควอนตัม PSIIผลผลิต (Fv/Fm) คำนวณได้จากค่าโฟและ Fm ที่โพรบ fluorometer ถูกไว้อย่างแน่นหนาบนผลไม้กล้วยและใช้สำหรับการประเมิน s ได้ 0.8 ของชีพจร 10 mmol m−1 s−1fluorescence คลอโรฟิลล์ผลไม้ที่ถ่ายในแต่ละทรีทเม้นต์ของหกผลไม้ สามสถานที่ต่าง ๆ กันจากด้านล่างไปด้านบนบนผลไม้ผิวหนัง

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การเปลี่ยนแปลงในสีเปลือกที่ได้รับการจัดตั้งขึ้นโดยการกำหนด *
และ b * ประสานงานกับค่าสี (Cheng et al., 2009) โดยใช้
Minolta Chroma Meter CR-400 (Minolta กล้อง จำกัด
โอซาก้าประเทศญี่ปุ่น)
แปดผลไม้แต่ละกล้วยจากการรักษาแต่ละใช้สำหรับการวัดสีเปลือก
ผลไม้แต่ละวัดที่สามคะแนนเท่ากันจากล่างขึ้นบนบนผิวของผลไม้ สีถูกบันทึกโดย * CIE L, a * ​​และ b * ขนาด
L
หมายถึงความสว่างหรือความมืดเป็น* ระบุสีเขียวสีแดงและ b *
แสดงให้เห็นสีฟ้าสีเหลือง ค่าตัวเลขของ L *, a * ​​และ b *
แปลงเป็นค่าสี[H0 = สีน้ำตาล-1 (b * / a *)].
เรืองแสงคลอโรฟิลได้รับการพิจารณาโดยใช้แบบพกพา
fluorometer คลอโรฟิล (FAM 2100 วอลซ์, เยอรมนี) ใน Fv / Fm
โหมด (Yang et al., 2011) แปดผลไม้แต่ละกล้วยจากการรักษาแต่ละเข้มดัดแปลงเป็นเวลาอย่างน้อย 30 นาทีก่อนที่จะมีการตรวจวัด พารามิเตอร์เรืองแสงและคลอโรฟิลโฟFm วัด Fo เป็นเรืองแสงที่น้อยที่สุดหรือเริ่มต้นเมื่อศูนย์ปฏิกิริยาPSII ทั้งหมดจะเปิดในขณะที่ Fm เป็นสูงสุดเรืองแสงเมื่อศูนย์ปฏิกิริยาPSII ทั้งหมดจะถูกปิดและกระบวนการดับที่ไม่ใช่แสงเป็นอย่างน้อย. เรืองแสงตัวแปรสูงสุด (Fv = Fm - Fo ) และควอนตัม PSII ผลผลิต (Fv / Fm) จะถูกคำนวณจาก Fo และค่า Fm สอบสวน fluorometer ถูกวางไว้อย่างมั่นคงในผลไม้กล้วยและชีพจร10 มิลลิโมลม. 1 s-1 ถูกนำมาใช้สำหรับ 0.8 s วัดเรืองแสงคลอโรฟิลผลไม้ที่ถูกนำเกี่ยวกับการรักษาแต่ละหกผลไม้ที่สามสถานที่ที่แตกต่างกันจากล่างขึ้นบนผลไม้ผิว

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การเปลี่ยนแปลงสีเปลือก ก่อตั้งขึ้นโดยการกำหนด *
b * พิกัดด้วยค่าฮิว ( เฉิง et al . , 2009 ) โดยใช้
Minolta Chroma เครื่องวัด cr-400 ( Minolta กล้องจำกัด โอซาก้า
ญี่ปุ่น ) แปดแต่ละกล้วยผลไม้จากการรักษาแต่ละถูก
นำมาใช้หาเปลือกสี ผลไม้แต่ละวัดที่
3 แต้มเท่ากันจากล่างขึ้นบน บนผิวผลไม้ .
สีได้รับการบันทึกโดยใช้ CIE L * a * b * ขนาด ผมหมายถึงความสว่างหรือความมืด
, * แสดงสีเขียวสีแดงและสีน้ำเงิน
b * แสดงสีเหลือง การคำนวณค่าของ L * a * b * ถูกแปลงเป็นค่าสี [ H0
= tan − 1 ( B * / * ) ] .
คลอโรฟิลล์ฟลูออเรสเซนซ์ ตั้งใจใช้ฟลู โรมิเตอร์คลอโรฟิลล์พกพา
( FAM 2100 วอลช์ , Germany ) ในโหมด FV FM /
( หยาง et al . , 2011 )แปดบุคคล กล้วย ผลไม้จาก
รักษาแต่ละมืดเหมาะสำหรับอย่างน้อย 30 นาทีก่อน
การวัด พารามิเตอร์การคลอโรฟิลล์โฟและ
FM วัด . โฟเป็นน้อยที่สุดหรือ
การเริ่มต้นเมื่อทุกศูนย์ปฏิกิริยา psii เปิดในขณะที่ FM เป็นเรืองสูงสุด
เมื่อทุกศูนย์จะปิด
psii และปฏิกิริยาไม่ใช่ทั้งหมดที่แสงดับกระบวนการอย่างน้อย .
เรืองแสงแปรสูงสุด ( FV = FM

โฟ− ) และผลผลิต psii ควอนตัม
( FV / FM ) คำนวณจากข้อมูลและค่า fm
ฟลู โรมิเตอร์สอบสวนอยู่มั่นในผลกล้วยหอมทองและชีพจรของ 10 mmol m
1 s −− 1 ใช้ 0.8 วินาที การวัดปริมาณผลไม้ถูก
เรืองแสงในแต่ละการรักษาหก
ผลไม้ที่สามสถานที่ที่แตกต่างกันจากด้านล่างขึ้นด้านบนในผลไม้
ผิว