Materials and methods Sample collec

Materials and methods

Sample collection

Dried samples of maize residues (maize straw) and were collected from the Teaching and Research Farm, University of Ibadan, Ibadan, Nigeria. The materials were milled and oven-treated at 650C until a constant weight was obtained for any dry matter determination.

The fungus

The sporophores of Pleurotus pulmonarius and Pleurotus sajor caju growing in the wild were collected from Ibadan University botanical garden. These were tissue cultured to obtain fungal mycelia (Jonathan and Fasidi 2001).The pure culture obtained was maintained on plate of potato dextrose agar (PDA).

Degradation of maize straw by Pleurotus pulmonarius and Pleurotus sajor caju

Preparation of substrate

The jam bottles used for this study were thoroughly washed, dried for 10 min. at 100oC. 25.00g of the dried milled substrate were weighed into each jam bottle and 70ml distilled water were added. The bottle was immediately covered with aluminium foil and sterilized in the autoclave at 121oC for 15 min. Each treatment was triplicates.

Inoculation

Each bottle was inoculated at the centre of the substrate with 2, 10.00mm mycelia disc and covered immediately. They were kept in the dark cupboard in the laboratory at 300C and 100% RH. After 40days of inoculation, the experimental bottles were harvested by autoclaving again to terminate the mycelia growth. Samples of the biodegraded samples were oven dried to constant weight for chemical analysis and in vitro digestibility.

In vitro gas production

Rumen fluid was obtained from three West African Dwarf female goat through suction tube before the morning feed. The animals were fed with 40% concentrate feed (40% corn, 10% wheat offal, 10% palm kernel cake, 20% groundnut cake, 5% soybean meal, 10% brewers grain, 1% common salt, 3.75% oyster shell and 0.25% fishmeal) and 60% Guinea grass. Incubation was carried out according to (Menke and Steingass 1998) in 120ml calibrated syringes in three batches at 390C. To 200mg sample in the syringe was added 30ml inoculum contained cheese cloth strained rumen liquor and buffer (9.8g NaHCO3 + 2.77g Na2HPO4 + 0.57g KCL + 0.47g NaCL + 0.12g MgSO4. 7H20 + 0.16g CaCI2 . 2H20 in a ratio (1:4 v/v) under continuous flushing with CO2. The gas production was measured at 3, 6, 9, 12, 15, 18, 21 and 24h. After 24 hours of incubation, 4ml of NaOH (10M) was introduced to estimate the amount of methane produced (Fievez et al 2005). The average volume of gas produced from the blanks was deducted from the volume of gas produced per sample. The volume of gas production characteristics were estimated using the equation Y = a + b (1 – ect) described by Ǿrskov and McDonald 1979, where Y = volume of gas produced at time‘t’, a = intercept (gas produced from the soluble fraction), b = gas production from the insoluble fraction, (a+b) = final gas produced, c = gas production rate constant for the insoluble fraction (b), t = incubation time. The post incubation parameters such as metabolizable energy (ME, MJ/Kg DM), organic matter digestibility (OMD %) and short chain fatty acids (SCFA) were estimated at 24h post gas collection according to Menke and Steingas (1988).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

วัสดุและวิธีการ เก็บตัวอย่าง ตัวอย่างของข้าวโพดแห้งตก (ข้าวโพดฟาง) และถูกรวบรวมไว้จากการสอนและวิจัยฟาร์ม มหาวิทยาลัย Ibadan, Ibadan ไนจีเรีย วัสดุมีปลาย และเตาอบรักษาที่ 650C จนน้ำหนักคงไม่ได้กำหนดเรื่องแห้งใด ๆ เชื้อรา Sporophores เห็ดนางฟ้าภูฏานและเห็ดนาง sajor caju เติบโตในป่าถูกเก็บรวบรวมจากมหาวิทยาลัย Ibadan สวน เป็นเนื้อเยื่อที่อ่างรับ mycelia เชื้อรา (Jonathan และ Fasidi 2001) วัฒนธรรมบริสุทธิ์ที่ได้รับที่อยู่ในจานของมันฝรั่งขึ้น agar (PDA) ของฟางข้าวโพดเห็ดนางฟ้าภูฏานและเห็ดนาง sajor caju การเตรียมพื้นผิว ขวดแยมที่ใช้สำหรับการศึกษานี้ได้ทำล้าง แห้งสำหรับ 10 นาทีที่ 100oC 25.00g ของพื้นผิวสารแห้งมีน้ำหนักในแต่ละขวดแยม และเพิ่ม 70 ml กลั่นน้ำ ขวดถูกปกคลุม ด้วยอลูมิเนียมฟอยล์ทันที และ sterilized ในด้วยที่ 121oC สำหรับ 15 นาที การรักษาแต่ละ triplicates ได้ Inoculation ขวดละ inoculated ศูนย์กลางของพื้นผิวด้วยแผ่นดิสก์ mycelia 10.00 มม. 2 และครอบคลุมทันที พวกเขาถูกเก็บไว้ในตู้มืดในห้องปฏิบัติการที่ 300C และ 100% RH หลังจาก 40days inoculation ขวดทดลองถูกเก็บเกี่ยว โดย autoclaving อีกครั้งเพื่อหยุดการเจริญเติบโต mycelia ตัวอย่างตัวอย่าง biodegraded เตาอบแห้งน้ำหนักคงที่การวิเคราะห์ทางเคมีใน digestibility ได้ การผลิตก๊าซในหลอด ต่อน้ำมันที่ได้จากแพะหญิงแคระแอฟริกาตะวันตกสามผ่านท่อดูดก่อนอาหารเช้า สัตว์ถูกเลี้ยง ด้วยอาหารข้น 40% (ข้าวโพด 40%, offal ข้าวสาลี 10%, 10% ปาล์มเคอร์เนลเค้ก เค้กถั่วลิสง 20% กากถั่วเหลือง 5%, brewers 10% เมล็ด เกลือทั่วไป 1%, 3.75% หอยเชลล์ และ 0.25% fishmeal) และหญ้ากินี 60% คณะทันตแพทยศาสตร์ได้ดำเนินการตาม (Menke และ Steingass ปี 1998) 120 มล.ปรับเทียบเข็มฉีดยาในชุดสามที่ราว 390 ตัวอย่าง 200 มิลลิกรัมในเข็มถูกเพิ่ม 30ml inoculum ประกอบด้วยชีผ้าย้ำต่อเหล้าและบัฟเฟอร์ (9.8 g NaHCO3 + 2.77 กรัม Na2HPO4 + 0.57 กรัม KCL + 0.47 g NaCL + 0.12 กรัม MgSO4 7 H 20 + 0.16 g CaCI2. 2 H 20 อัตราส่วน (1:4 v/v) ภายใต้การลบรายการบัญชีอย่างต่อเนื่องกับ CO2 การผลิตก๊าซเป็นวัดที่ 3, 6, 9, 12, 15, 18, 21 และ 24 h หลังจาก 24 ชั่วโมงของคณะทันตแพทยศาสตร์ 4 มิลลิลิตรของ NaOH (10 เมตร) ถูกนำไปประเมินจำนวนผลิตมีเทน (Fievez et al 2005) ปริมาตรเฉลี่ยของก๊าซที่ผลิตจากช่องว่างที่ถูกหักออกจากปริมาตรของก๊าซที่ผลิตต่อตัวอย่าง ปริมาตรของก๊าซผลิตลักษณะถูกประเมินโดยใช้สมการ Y =เป็น + b (1 – ect) โดย Ǿrskov และแมคโดนัลด์ 1979 ที่ Y =ปริมาตรของก๊าซที่ผลิตได้ที่ time't', จุดตัดแกน = (เตาแก๊สที่ผลิตจากเศษละลาย) b =แก๊สจากเศษส่วนไม่ละลายน้ำ, (+ b) =แก๊สสุดท้ายที่ผลิต c =ค่าคงอัตราการผลิตก๊าซสำหรับเศษส่วนที่ไม่ละลายน้ำ (b) , t =เวลาที่ฟักตัว พารามิเตอร์การบ่มลงเช่นพลังงาน metabolizable (ME, MJ/Kg DM), อินทรีย์ digestibility (รนด์%) และโซ่สั้น ๆ กรดไขมัน (SCFA) ได้ประมาณที่ 24 h ลงชุดแก๊สตาม Menke และ Steingas (1988)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

วัสดุและวิธีการเก็บตัวอย่างตัวอย่างแห้งตกค้างข้าวโพด(ฟางข้าวโพด) และถูกเก็บรวบรวมจากการเรียนการสอนและการวิจัยฟาร์ม, มหาวิทยาลัยอีบาดันอีบาดันประเทศไนจีเรีย วัสดุที่ถูกขัดสีและเตาอบได้รับการรักษาที่ 650C จนน้ำหนักคงที่ที่ได้รับการกำหนดเรื่องใด ๆ แห้ง. เชื้อราsporophores ของ pulmonarius Pleurotus และ Pleurotus sajor caju การเจริญเติบโตในป่าที่ถูกเก็บรวบรวมจากสวนพฤกษศาสตร์มหาวิทยาลัยอีบาดัน เหล่านี้ถูกเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อเพื่อให้ได้เส้นใยเชื้อรา (โจนาธานและ Fasidi 2001) ได้โดยเริ่มต้นเชื้อบริสุทธิ์ได้ถูกเก็บรักษาไว้ในจานของวุ้นเดกซ์โทรสมันฝรั่ง (PDA). การย่อยสลายฟางข้าวโพดโดย Pleurotus pulmonarius และ Pleurotus sajor caju การเตรียมการของพื้นผิวขวดแยมที่ใช้สำหรับการศึกษาครั้งนี้ได้รับการล้างให้สะอาดแห้งเป็นเวลา 10 นาที ที่ 100oC 25.00g ของพื้นผิวสีแห้งชั่งลงในขวดแยมแต่ละคนและ 70ml น้ำกลั่นที่ถูกเพิ่ม ขวดถูกปกคลุมทันทีด้วยอลูมิเนียมและฆ่าเชื้อในหม้อนึ่งความดันที่ 121oC เป็นเวลา 15 นาที การรักษาแต่ละ triplicates. ฉีดวัคซีนขวดแต่ละคนได้รับเชื้อที่ศูนย์ของพื้นผิวที่มี 2 10.00mm แผ่นเส้นใยและคุ้มครองทันที พวกเขาจะถูกเก็บไว้ในตู้มืดในห้องปฏิบัติการที่ 300C และ 100% RH หลังจาก 40days ของการฉีดวัคซีน, ขวดทดลองเก็บเกี่ยวโดยนึ่งฆ่าเชื้ออีกครั้งเพื่อยุติการเจริญเติบโตของเส้นใย ตัวอย่างของตัวอย่างการย่อยสลายเตาอบแห้งให้น้ำหนักคงที่สำหรับการวิเคราะห์ทางเคมีและการย่อยได้ในหลอดทดลอง. ในหลอดทดลองผลิตก๊าซของเหลวกระเพาะรูเมนที่ได้รับจากสามตะวันตกแพะหญิงแอฟริกันคนแคระผ่านท่อดูดก่อนอาหารเช้า สัตว์ที่ถูกเลี้ยงด้วยอาหาร 40% อาหารข้น (ข้าวโพด 40% เครื่องในข้าวสาลี 10%, 10% กากเมล็ดในปาล์มเค้กถั่วลิสง 20%, 5% กากถั่วเหลือง 10% เมล็ดเบียร์, 1% เกลือที่พบบ่อย, เปลือกหอยนางรม 3.75% และ 0.25% ปลาป่น) และ 60% หญ้ากินนี บ่มเพาะได้ดำเนินการตาม (Menke และ Steingass 1998) ในเข็มฉีดยาในการสอบเทียบ 120ml สามสำหรับกระบวนการที่ 390C ตัวอย่าง 200mg ในเข็มฉีดยาถูกเพิ่มเชื้อ 30ml ผ้าชีสมีเครียดสุรากระเพาะรูเมนและบัฟเฟอร์ (9.8g NaHCO3 + + Na2HPO4 2.77g 0.57g 0.47g KCL + NaCl + 0.12g MgSO4. 7H20 + 0.16g CaCI2. 2H20 ในอัตราส่วน ( 1:.. 4 v / v) ภายใต้การล้างต่อเนื่องกับ CO2 การผลิตก๊าซที่ได้รับการวัดที่ 3, 6, 9, 12, 15, 18, ​​21 และ 24 ชั่วโมงหลังจาก 24 ชั่วโมงของการบ่ม 4ml ของ NaOH (10M) ได้รับการแนะนำให้รู้จักกับ ประมาณการปริมาณของก๊าซมีเทนที่ผลิต (Fievez et al, 2005). ปริมาณเฉลี่ยของก๊าซที่ผลิตจากช่องว่างที่ถูกหักจากปริมาณของก๊าซที่ผลิตต่อตัวอย่าง. ปริมาณของลักษณะการผลิตก๊าซได้ประมาณโดยใช้สมการ Y = A + B ( 1 - ect) อธิบายโดยǾrskovและโดนัลด์ปี 1979 ที่ Y = ปริมาณของก๊าซที่ผลิต time't 'a = ตัด (ก๊าซผลิตจากส่วนที่ละลายน้ำได้), B = การผลิตก๊าซจากส่วนที่ไม่ละลายน้ำ (A + B) = ก๊าซสุดท้ายผลิต c = อัตราการผลิตก๊าซคงที่สำหรับส่วนที่ไม่ละลายน้ำ (ข), t = เวลาฟักตัว. พารามิเตอร์บ่มโพสต์เช่นพลังงานที่ (ME, MJ / Kg DM) การย่อยสารอินทรีย์ (OMD%) และสั้น กรดไขมันห่วงโซ่ (SCFA) อยู่ที่ประมาณคอลเลกชันก๊าซโพสต์ 24 ชั่วโมงตาม Menke และ Steingas (1988)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

วัสดุและวิธีการ



ตัวอย่างการเก็บตัวอย่างแห้งของข้าวโพด ( ข้าวโพด เศษฟาง ) และ ศึกษาจากการสอนและวิจัยไร่ มหาวิทยาลัย Ibadan Ibadan , ไนจีเรีย วัสดุสาร และเตาอบ ถือว่า 650c จนน้ำหนักคงที่ ได้กำหนดเรื่องใด ๆแห้ง เชื้อรา



การ sporophores ของเห็ดนางฟ้าภูฏาน และเติบโตในป่าเขตร้อนนางรมคาจู มิได้รวบรวมจากสวนพฤกษศาสตร์ Ibadan มหาวิทยาลัย เหล่านี้ได้ถูกเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อเพื่อให้ได้เส้นใยเชื้อรา ( โจนาธาน และ fasidi 2001 ) บริสุทธิ์วัฒนธรรมได้รับรักษาบนจานอาหารเลี้ยงเชื้อ potato dextrose agar ( PDA )

การสลายตัวของข้าวโพดฟางเห็ดนางฟ้าภูฏานนางรมในเขตร้อนและคาจู มิ

การเตรียมพื้นผิว

แยมขวดที่ใช้ในการศึกษา คือ ล้างให้สะอาด แห้ง สำหรับ 10 นาทีที่ 100oc . 25.00g ของพื้นผิวมีน้ำหนักแห้งบดลงในแต่ละขวดแยม 70ml น้ำกลั่นและมีการเพิ่ม ขวดทันทีปกคลุมด้วยอลูมิเนียมฟอยล์และฆ่าเชื้อในหม้อนึ่งความดันที่ 121oc เป็นเวลา 15 นาที การรักษาแต่ละครั้งมี 3 ซ้ำ

(

แต่ละขวดเป็นเชื้อที่ศูนย์ของพื้นผิวกับ 2 , 10.00mm แต่ละดิสก์และปิดทันที พวกเขาถูกเก็บไว้ในตู้มืดในห้องปฏิบัติการที่ 300 C และ 100 เปอร์เซ็นต์ หลังจาก 40days ของเชื้อในขวดทดลองปลูก โดยอัตราส่วนโฟกัสอีกครั้งเพื่อยกเลิการเจริญเติบโตตัวอย่างของ biodegraded จำนวนเตาอบแห้งน้ำหนักคงที่สำหรับการวิเคราะห์ทางเคมีและการย่อยได้ในหลอดทดลอง .



อาหารในหลอดทดลองผลิตก๊าซของเหลวที่ได้จากสามแอฟริกาตะวันตกคนแคระหญิงแพะผ่านท่อดูดก่อนอาหารเช้า สัตว์ที่ถูกเลี้ยงด้วยอาหารข้น ( 40% 40% ข้าวโพดข้าวสาลีเครื่องในสัตว์ , 10% , 10% เมล็ดปาล์มเค้ก , กากถั่วเหลือง 5% และ 20%10% ที่มีเมล็ด 1 % เกลือทั่วไป เปลือกหอยและปลาป่น ) 0.25% จาก 3.75% และ 60% หญ้ากินนี ระยะเวลาดำเนินการตาม ( menke และ steingass 1998 ) ในผิวปรับเข็มสามชุดที่ 390c . 200 ตัวอย่างในหลอดฉีดยาเพิ่มปริมาณ 30ml มีผ้าชีสลงกระเพาะเหล้าและบัฟเฟอร์ ( 9.8g 2.77g na2hpo4 0.57g โพแทสเซียมเกลือโซเดี่ยม 0.47g 0.12g MgSO4 ใ .