2. Materials and methods2.1. Fruit

2. Materials and methods
2.1. Fruit materials
Guava fruit, cv. ‘Pearl’ were harvested at 80% maturity (green
stage) from an orchard in south subtropical crops research institute,
Guangdong Province, China. Fruit were selected for uniformity of
size and color, and blemished and diseased fruit were discarded.

2.2. Preparation of chitosan solutions
Preparation of chitosan solutions was according to the method
of Jiang and Li (2001). Chitosan (MW: 50–190 kDa, degree of
deacetylation
≥75%) was purchased from Sigma-Aldrich Corp (St.
Louis, MO, USA). To prepare 500 mL of 0, 0.5, 1.0 and 2.0% (w/v) chitosan
solution, accurate weight of 0, 2.5, 5.0 and 10.0 g of chitosan
was dispersed in 50 mL of galacial acetic acid, respectively, before
400 mL of ddH2O was added to dissolve further the chitosan. Then,
the solution was added with 1 mL Tween 80 to improve the wettability.
The pH of the solution was adjusted to pH 6.0 with 1 M NaOH
and the solution made up to 500 mL.

2.3. Treatment
Guavas were randomly distributed into four groups of 100 fruit
per group. Fruit of group 1, group 2, group 3 and group 4 were
dipped into solutions of 0 (control), 0.5, 1.0 and 2.0% chitosan for
1 min, respectively. Fruit were allowed to dry for 30 min at room
temperature and placed into unsealed plastic bags (0.04 mm thick)
and each bag contained 5 individual fruit with 20 bags per group,
and then stored in four incubators (Sanyo MIR 553 Model, Gunma,
Japan) held at 11 ◦C (with 90–95% RH) for progressive assessments.
As storage at 11 ◦C showed the best quality of guava fruit pulp (data
unpublished), the temperature was chosen to be used in this study.
All assessments were conducted with three replicates.

2.4. Measurement of fruit firmness, weight loss, chlorophyll and
MDA contents
Firmness of pulp was measured using a handheld penetrometer
(FT-327; UC Fruit Firmness Tester, Milano, Italy), equipped with
an 8-mm plunger tip, at the equator of fruit where a section of
rind (4×4 cm and≈1 cm deep) had been removed and results were
expressed in (kg cm−2). Three readings were taken for each guava.
Weight loss was calculated by the following formula:
(A−B)/A *100, where A is the fruit weight just before storage and
B is the fruit weight after special storage period.
Chlorophyll content was determined by the method of Sheen
(1973). Peel tissue (0.5 g) was homogenized with 85% acetone, and
absorbance of the extract in a final volume of 5 mL was recorded at
644 and 663 nm by using a spectrophotometer (UV755B, Shanghai,
China).MDA content was measured according to Liu et al. (2006). Fruit
pulp (2.0 g) was homogenized in 6 mL of 10% trichloroacetic acid
and then centrifuged for 15 min at 10,000×g. The supernatant
phase was collected and 2 mL was mixed with 6 mL of 0.6% thiobarbituric
acid. The mixture was heated to 100 ◦C for 20 min, quickly
cooled and centrifuged at 10,000 × g for 10 min. The supernatant
was collected and used to measure absorbance at 450, 532 and
600 nm. The MDA concentration was calculated according to the
formula: 6.45×(A532 −A600)−0.56×A450. Each assessment was
repeated three times.

2.5. Measurements of SSC, TA and vitamin C content in pulp
The soluble solids content (SSC) in pulp was measured using a
hand refractometer (10481 S/N, USA).
Titratable acidity (TA) in pulp was assayed based on the method
of Bassetto et al. (2005). Briefly, 10 g of puree was diluted with
90 mL of water, titrated with 0.1 N NaOH to pH 8.1 and expressed
as a percentage of citric acid.
For vitamin C analysis, pulp tissue (2 g) was well homogenized
with 20 mL of 6% metaphosphoric acid in 2 M acetic acid and centrifuged
for 10 min at 13,000×g and 4 ◦C. The vitamin C content


4. Conclusions
In conclusion, the experiment conducted here indicated that
the application of chitosan coating, especially 2.0% (w/v) chitosan
solution combined with a low temperature (11 ◦C) inhibited
fruit ripening and maintained the quality of the fruit. Chitosan
treatment also increased the activities of antioxidant
enzymes while decreased production of O2
•− and MDA content.
The results suggested that chitosan showed positive effects
in maintaining membrane integrity and thus in delaying ripening
process in guava fruit mainly through decrease oxidative
stress.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2. วัสดุและวิธีการ
2.1 ผลไม้วัสดุ
ผลไม้ฝรั่ง พันธุ์ 'เพิร์ล' ถูกเก็บเกี่ยว ณวันครบกำหนด 80% (สีเขียว
ระยะ) จากสวนในสถาบันวิจัยพืชแบบใต้,
Guangdong Province, China เลือกผลไม้สำหรับความรื่นรมย์
ขนาด และสี และผลไม้สด และเส้นถูกละทิ้ง

2.2 การเตรียมไคโตซานโซลูชั่น
การเตรียมไคโตซานโซลูชั่นถูกตามวิธี
เจียงและ Li (2001) ไคโตซาน (MW: 50 – 190 kDa ปริญญา
deacetylation
≥75%) ถูกซื้อจากซิก Aldrich Corp (เซนต์
Louis, MO สหรัฐอเมริกา) เตรียม 500 mL ของ 0, 0.5, 1.0 และ 2.0% (w/v) ไคโตซาน
โซลูชัน น้ำหนักถูกต้อง 0, 2.5, 5.0 และ 10.0 g ของไคโตซาน
ที่กระจายใน 50 มิลลิลิตรของกรดน้ำส้ม galacial ตามลำดับ ก่อน
มล. 400 ของ ddH2O มีเพิ่มการละลายไคโตซานเพิ่มเติม แล้ว,
โซลูชันเพิ่ม ด้วย 1 mL Tween 80 เพื่อปรับปรุงความสามารถเปียกได้
pH ของโซลูชันที่ปรับค่า pH 6.0 มี 1 M NaOH
และการแก้ไขที่ทำถึง 500 mL.

2.3 รักษา
Guavas ถูกสุ่มกระจายเป็น 4 กลุ่มผลไม้ 100
สำหรับแต่ละกลุ่ม ผลไม้ของกลุ่ม 1 กลุ่ม 2 กลุ่ม 3 และกลุ่ม 4 ได้
สอดเข้าไปในโซลูชั่น (ควบคุม) 0, 0.5, 1.0 และ 2.0% ไคโตซานสำหรับ
1 นาที ตามลำดับ ผลไม้ได้รับอนุญาตให้แห้งสำหรับห้อง 30 นาที
อุณหภูมิ และอยู่ในถุงพลาสติก unsealed (0.04 มิลลิเมตรหนา)
และแต่ละถุงประกอบด้วยผลไม้แต่ละ 5 กับ 20 ถุงต่อกลุ่ม,
และผลิตและสี่นั้น (รุ่น Sanyo มีร์ 553 กุนมะ,
ญี่ปุ่น) ณ ◦C 11 (กับ 90-95% RH) สำหรับประเมินผลก้าวหน้า
ตามเก็บที่ 11 ◦C แสดงให้เห็นว่าคุณภาพของเยื่อผลไม้ฝรั่ง (ข้อมูล
ยกเลิกประกาศ), อุณหภูมิที่เลือกที่จะใช้ในการศึกษานี้
ได้ดำเนินการประเมินทั้งหมด มีสามเหมือนกับ

2.4 วัดผลไม้ไอซ์ ลดน้ำหนัก คลอโรฟิลล์ และ
เนื้อหา MDA
ไอซ์ของเยื่อถูกวัดโดยใช้ penetrometer มือถือ
(FT-327 UC ผลไม้ไอซ์ Tester มิลาโน อิตาลี), พร้อมกับ
จมูก 8 มม.มีคำแนะนำ ที่เส้นศูนย์สูตรของผลไม้ซึ่งส่วนของ
แคบ (4 × 4 ซม and≈1 ซมลึก) ได้ถูกเอาออก และก็
แสดง (cm−2 กิโลกรัม) พิจารณาที่ถ่ายสำหรับฝรั่งแต่ละ
คำนวณน้ำหนักตามสูตรต่อไปนี้:
/A (A−B) * 100 ซึ่งเป็นน้ำหนักผลไม้ก่อนเก็บ และ
B คือ น้ำหนักผลไม้หลังจากรอบระยะเวลาการจัดเก็บพิเศษ
คลอโรฟิลล์เนื้อหาที่ถูกกำหนด โดยวิธีการ Sheen
(1973) เนื้อเยื่อเปลือก (0.5 กรัม) ถูก homogenized เป็นกลุ่มกับ 85% อะซิโตน และ
absorbance ของสารสกัดในปริมาตรสุดท้ายของ 5 mL เป็นบันทึกที่
644 และ 663 nm โดยเครื่องทดสอบกรดด่าง (UV755B เซี่ยงไฮ้,
จีน)เนื้อหา MDA ถูกวัดตามหลิว et al. (2006) ผลไม้
เยื่อ (2.0 g) ถูก homogenized เป็นกลุ่มใน 6 mL ของกรด trichloroacetic 10%
และ centrifuged สำหรับ 15 นาทีที่ 10, 000 ซื้อ g Supernatant
ระยะรวบรวม และ 2 mL ถูกผสมกับ mL 6 ของ thiobarbituric 0.6%
กรด ส่วนผสมที่อุณหภูมิ 100 ◦C สำหรับ 20 นาที ได้อย่างรวดเร็ว
ระบายความร้อนด้วย และ centrifuged ที่ 10000 × g สำหรับ 10 นาที Supernatant
ถูกรวบรวม และใช้ในการวัด absorbance ที่ 450, 532 และ
600 nm ความเข้มข้นของ MDA ถูกคำนวณตามการ
สูตร: 6A450 × −0.56 × 45 (A532 −A600) ถูกประเมินแต่ละ
ซ้ำ 3 ครั้ง

2.5 ประเมินเนื้อหา SSC, TA และวิตามิน C ในเยื่อ
เนื้อหาของแข็งละลายน้ำ (SSC) ในเยื่อถูกวัดโดยใช้การ
มือ refractometer (10481 S/N สหรัฐอเมริกา) .
ว่า Titratable (TA) ในเยื่อถูก assayed ตามวิธี
ของ Bassetto et al. (2005) สั้น ๆ 10 กรัมของ puree ถูกผสมกับ
90 mL น้ำ titrated กับ 01 N NaOH กับ pH 8.1 และแสดง
เป็นเปอร์เซ็นต์ของกรดซิตริก
สำหรับการวิเคราะห์วิตามินซี เนื้อเยื่อเยื่อ (2 กรัม) ถูกดี homogenized เป็นกลุ่ม
กับ 20 มิลลิลิตรของกรด metaphosphoric 6% กรดอะซิติก 2 เมตร และ centrifuged
ใน 10 นาทีที่ 13, 000 ซื้อ g และ 4 ◦C เนื้อหาวิตามิน C


4 บทสรุป
เบียดเบียน ทดลองดำเนินการที่นี่ระบุที่
ใช้เคลือบไคโตซาน โดยเฉพาะอย่างยิ่ง 20% (w/v) ไคโตซาน
โซลูชั่นร่วมกับอุณหภูมิต่ำ (11 ◦C) ห้าม
ripening ผลไม้ และรักษาคุณภาพของผลไม้ ไคโตซาน
รักษายังเพิ่มกิจกรรมของสารต้านอนุมูลอิสระ
เอนไซม์ขณะผลิตที่ลดลงของ O2
•− MDA เนื้อหาได้
ผลแนะนำไคโตซานที่พบผลบวก
ในการรักษาความสมบูรณ์ของเยื่อ และจึงล่าช้า ripening
กระบวนการในฝรั่งผลไม้ส่วนใหญ่ลด oxidative
ความเครียด

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2 . วัสดุและวิธีการ
2.1 . ผลไม้วัสดุ
ฝรั่งผลไม้ , พันธุ์ ' ไข่มุก ' อายุวุฒิภาวะ 80% ( เวทีสีเขียว
) จากสวนผลไม้ใต้เขตร้อนพืชสถาบันวิจัย
มณฑลกวางตุ้ง , จีน ผลไม้เลือกความสม่ำเสมอของ
ขนาดและสีและมลทิน และผลไม้ที่ถูกละทิ้ง .

. . การเตรียมไคโซลูชั่น
การเตรียมไคโซลูชั่นได้ตามวิธีการ
เจียงและ Li ( 2001 ) ไคโตซาน ( 3 : 50 – 190 กิโล องศาตลอด

≥ 75% ) ซื้อมาจากซิกม่า Aldrich CORP ( St .
หลุยส์ โม สหรัฐอเมริกา ) เตรียม 500 มล. 0 , 0.5 , 1.0 และ 2.0 เปอร์เซ็นต์ ( w / v ) ไคโตซาน
โซลูชั่นน้ำหนักที่ถูกต้องของ 0 , 2.5 , 5.0 และ 10.0 กรัมของไคโตซาน
ถูกกระจายออกไปใน galacial 50 มิลลิลิตร ตามลำดับ ก่อนที่
กรดอะซิติก400 มิลลิลิตร เติม ddh2o ละลายต่อไคโตซาน งั้น
โซลูชั่นเพิ่มด้วย 1 ml Tween 80 เพื่อพัฒนาสาร .
pH ของสารละลายที่ปรับ pH ด้วย 1 M NaOH
และโซลูชั่นที่สร้างขึ้น 500 มล.

2.3 ฝรั่งรักษา
สุ่มกระจายออกเป็น 4 กลุ่ม กลุ่มละ 100 ผลไม้
. ผลของกลุ่มที่ 1 กลุ่มที่ 2 กลุ่มที่ 3 และกลุ่มที่ 4 คือ ,
จุ่มลงในสารละลายของ 0 ( control ) , 0.5 , 1.0 และ 2.0 เปอร์เซ็นต์ ไคโตซานสำหรับ
1 นาที ตามลำดับ ผลไม้ที่ได้รับอนุญาตให้แห้งประมาณ 30 นาที ที่อุณหภูมิห้อง และ ใส่ในถุงพลาสติกได้

( หนา 0.04 mm ) และแต่ละถุงบรรจุ 5 ผลไม้แต่ละ 20 ถุงต่อกลุ่ม
แล้วเก็บไว้ใน 4 ตู้ ( ซันโย Mir กับนางแบบกัน
, ญี่ปุ่น ) จัดขึ้นที่ 11 ◦ C ( 90 ) 95% RH ) เพื่อประเมินความก้าวหน้า
เป็นกระเป๋าที่ 11 ◦ C มีคุณภาพที่ดีที่สุดของเยื่อไม้ฝรั่ง ( ข้อมูล
พิมพ์ ) , อุณหภูมิที่เลือกใช้ในการศึกษานี้ มีวัตถุประสงค์เพื่อประเมิน
ทั้งหมด 3 ซ้ำ

2.4 . การวัดความแน่นเนื้อ ผลไม้ลดน้ําหนัก , คลอโรฟิลล์และ

( เนื้อหาเนื้อเยื่อถูกวัดโดยใช้วัสดุพกพา ( ft-327
; UC ผลไม้แน่น Tester , มิลาน , อิตาลี ) , การติดตั้ง
การ 8-mm ลูกสูบปลายที่เส้นศูนย์สูตรของผลไม้ซึ่งเป็นส่วนของเปลือก (
4 × 4 ซม. และ 1 ซม. ลึก≈ ) ได้ถูกลบออกและผลลัพธ์ถูก
แสดงออกใน ( kg cm − 2 ) สามอ่านถ่ายแต่ละฝรั่ง
การสูญเสียน้ำหนักที่คำนวณได้จากสูตรต่อไปนี้ :
( − B ) * 100 ที่เป็นไม้น้ำหนักก่อนการจัดเก็บและ
B คือ น้ำหนักผลหลังจากระยะเวลาการจัดเก็บพิเศษ .
คลอโรฟิลล์ถูกกำหนดโดยวิธีการของ Sheen
( 1973 ) เนื้อเยื่อเปลือก ( 0.5 g ) บดกับ 85% Acetone และ
ดูดกลืนสารสกัดในปริมาณขั้นสุดท้าย 5 ml เท่ากับ
และ 421 nm โดยใช้ Spectrophotometer (
จีน uv755b เซี่ยงไฮ้ ) วัด ( เนื้อหาตาม Liu et al . ( 2006 ) เยื่อไม้
( 2.0 g ) บดใน 6 มิลลิลิตรของกรดไตรคลอโรอะซิติก
10 เปอร์เซ็นต์แล้วระดับ 15 นาทีที่ 10 ×กรัม ระยะสูง
รวบรวม 2 มิลลิลิตรผสมกับ 6 ml 0.6% เท่ากับ
กรด ส่วนผสมก็ร้อนถึง 100 ◦ C เป็นเวลา 20 นาที เร็ว
เย็นไฟฟ้าที่ 10 ×กรัมเป็นเวลา 10 นาที และน่าน
ถูกเก็บรวบรวมและใช้วัดค่าการดูดกลืนแสงที่ 450 และ
600 นาโนเมตร ความเข้มข้นน้ำตาลถูกคำนวณตามสูตร :
645 × ( a532 − ( −× a450 a600 ) . แต่ละด้านซ้ำสามครั้ง


2.5 การวัดของ SSC , TA และวิตามินซีในเนื้อ
ปริมาณของแข็งที่ละลายน้ำได้ ( SSC ) เยื่อกระดาษ คือการวัดโดยใช้
มือรีแฟรกโตมิเตอร์ ( 10481 s / n , USA ) .
ปริมาณกรด ( TA ) ในเนื้อซีรั่มตามวิธี
ของ bassetto et al . ( 2005 ) สั้น ๆ , 10 กรัม มะขามป้อม เจือจางด้วย
90 มล. ของน้ำตลอดเวลาด้วย 01 N NaOH pH 8.1 และแสดงเป็นร้อยละของกรดซิตริก
.
สำหรับวิตามินซี การวิเคราะห์เนื้อเยื่อเยื่อ ( 2 กรัม ) เป็นโฮโม
20 ml 6 % เมตทาฟอสฟอริกแอซิด 2 M กรดอะซิติกและไฟฟ้า
10 นาทีที่ 13 , 000 × g และ 4 ◦ C วิตามินซี


4 . สรุป
สรุปการทดลองใช้ที่นี่พบว่า
ใช้เคลือบไคโตซาน โดยเฉพาะ 2 .0 % ( w / v ) ไคโตซาน
โซลูชั่นรวมกับอุณหภูมิต่ำ ( 11 ◦ C ) ยับยั้ง
ผลไม้สุก และรักษาคุณภาพของผลไม้ ไคโตซาน
รักษายังเพิ่มกิจกรรมของเอนไซม์สารต้านอนุมูลอิสระ
ขณะที่การผลิตลดลงของ O2

•−ตับและเนื้อหา พบว่า ไคโตซาน พบผลในเชิงบวกในการรักษาความสมบูรณ์และดังนั้นแผ่น

ในการชะลอการสุกกระบวนการในผลไม้ฝรั่งส่วนใหญ่ผ่านลดความเครียดออกซิเดชัน