It is known that the use of probiotic cultures requires a large fermentation
period to reach low pH values. However, the food industries
always prefer short fermentation periods in order to increase plant output
and reduce microbial contamination. The potential solution to this
problem is the use of mixed cultures or co-cultures (Macedo et al.,
1998). Mixed culture fermentations provide complex growth patterns
that can also considerably affect the organoleptic and functional properties
of the food. No information is available regarding the growth of
probiotic bacteria in mixed cultures and how mixed LAB, and yeasts
with probiotics will behave in PSM.
The development of a fermented PSM containing probiotic microorganisms
in co-culture requires a strain selection showing ability to grow
in the substrate, ability to compete, and/or establish a synergistic growth
between strains. The aimof thisworkwas to study the growth and acidification
of PSM by Lactobacillus rhamnosus (LR 32), Lactobacillus
acidophilus (LACA 4), Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus (LB
340), Pediococcus acidilactici (UFLA BFFCX 27.1), Lactococcus lactis
(CCT 0360), and Saccharomyces cerevisiae (UFLA YFFBM 18.03); to
select strains better adapted and with best characteristics for the
fermented mixed milk; and to describe the development of an inoculum
that rapidly ferments peanut and soy maintaining significant
probiotic yields after refrigerated storage.
เป็นที่รู้จักกันว่า การใช้โปรไบโอติกส์วัฒนธรรมต้องหมักใหญ่ระยะเวลาถึงค่า pH ต่ำ อย่างไรก็ตาม อุตสาหกรรมอาหารต้องรอบระยะเวลาในการหมักสั้นเสมอเพื่อเพิ่มผลผลิตพืชและลดการปนเปื้อนจุลินทรีย์ การแก้ปัญหาที่อาจเกิดขึ้นนี้ปัญหาคือ การใช้วัฒนธรรมแบบผสมหรือวัฒนธรรมร่วม (Macedo et al.,1998) การผสมหมักแหนมให้รูปแบบการเจริญเติบโตความซับซ้อนที่มีผลต่อคุณสมบัติ organoleptic และทำงานยังมากของอาหาร ไม่มีข้อมูลเกี่ยวกับการเจริญเติบโตของแบคทีเรียโปรไบโอติกส์ในวัฒนธรรมรวม และห้องปฏิบัติการผสม และ yeastsด้วย probiotics จะประพฤติใน PSMการพัฒนาของ PSM หมักที่ประกอบด้วยจุลินทรีย์โปรไบโอติกส์ในวัฒนธรรมร่วมต้องเลือกต้องใช้แสดงความสามารถในการเจริญเติบโตในพื้นผิว ความสามารถในการแข่งขัน และ/หรือสร้างการเจริญเติบโตของพลังระหว่างสายพันธุ์ Thisworkwas aimof เพื่อศึกษาการเจริญเติบโตและยูของ PSM โดยแลคโตบาซิลลัส rhamnosus (LR 32), แลคโตบาซิลลัสacidophilus (LACA 4), แลคโตบาซิลลัส delbrueckii ถั่ว bulgaricus (ปอนด์340), Pediococcus acidilactici (UFLA BFFCX 27.1), Lactococcus lactis(CCT 0360), และ Saccharomyces cerevisiae (UFLA YFFBM 18.03); ถึงเลือกสายพันธุ์ดีกว่าดัดแปลง และ มีลักษณะดีที่สุดสำหรับการร้านมผสม การอธิบายการพัฒนาของ inoculumถั่วลิสงและถั่วเหลืองรักษาสำคัญที่ ferments อย่างรวดเร็วโปรไบโอติกส์ทำให้หลังจากการจัดเก็บควบคุมอุณหภูมิ
การแปล กรุณารอสักครู่..

เป็นที่ทราบกันว่าการใช้โปรไบโอติกวัฒนธรรมต้องหมักขนาดใหญ่
ระยะเวลาที่จะไปถึงค่าพีเอชต่ำ อย่างไรก็ตามอุตสาหกรรมอาหาร
มักจะชอบช่วงเวลาหมักสั้นเพื่อเพิ่มผลผลิตพืช
และลดการปนเปื้อนของเชื้อจุลินทรีย์ วิธีการแก้ปัญหาที่อาจเกิดขึ้นนี้
ปัญหาคือการใช้เชื้อผสมหรือร่วมวัฒนธรรม (โด et al.,
1998) หมักวัฒนธรรมผสมให้รูปแบบการเจริญเติบโตที่ซับซ้อน
ที่ยังสามารถส่งผลกระทบต่อมากคุณสมบัติทางประสาทสัมผัสและการทำงาน
ของอาหาร ไม่มีข้อมูลเกี่ยวกับการเจริญเติบโตของ
เชื้อแบคทีเรียโปรไบโอติกในวัฒนธรรมผสมและวิธีการผสม LAB และยีสต์
ที่มีโปรไบโอติกจะทำงานใน PSM.
พัฒนา PSM หมักที่มีจุลินทรีย์โปรไบโอติก
ร่วมวัฒนธรรมต้องเลือกสายพันธุ์ที่แสดงให้เห็นความสามารถในการเติบโต
ใน พื้นผิว, ความสามารถในการแข่งขันและ / หรือสร้างการเจริญเติบโตของการทำงานร่วมกัน
ระหว่างสายพันธุ์ aimof thisworkwas เพื่อศึกษาการเจริญเติบโตและความเป็นกรด
ของ PSM โดย Lactobacillus rhamnosus (LR 32), แลคโตบาซิลลัส
acidophilus (LACA 4), แลคโตบาซิลลัส delbrueckii subsp bulgaricus (LB
340), Pediococcus acidilactici (UFLA BFFCX 27.1), Lactococcus lactis
(CCT 0360) และ Saccharomyces cerevisiae (UFLA YFFBM 18.03); การ
เลือกสายพันธุ์ที่ปรับตัวดีขึ้นและมีลักษณะที่ดีที่สุดสำหรับ
นมผสมหมัก และเพื่ออธิบายการพัฒนาของเชื้อ
ที่รวดเร็วกระบวนการหมักถั่วลิสงและถั่วเหลืองที่สำคัญการรักษา
อัตราผลตอบแทนโปรไบโอติกหลังการเก็บรักษาในตู้เย็น
การแปล กรุณารอสักครู่..
