different nutritional needs and gro

different nutritional needs and growth conditions of the different
species. Several authors reported that the maximum yield
of chitin and chitosan was reached at the late exponential growth
phase. Under our experimental conditions the steady state was
generally reached after about 3 weeks and the extraction of
chitinous fractions was then performed.
The main components of mycelium are water, proteins and
a NaOH-insoluble fraction which mainly contains chitin and
acidic polysaccharides in addition to a low quantity of chitosan.
The total amount of chitin isolated from fungal mycelia ranged
between 8.5 and 19.6% of dry weight with the best yield being
obtained from A. auricula-judae and P. ostreatus (Table 1). Only
a low yield of chitosan (about 1.0±0.12% of dry weight) was
obtained and no significant differences were evident among the
different species. The chitosan yields from the species under
study were lower than those obtained from some species of filamentous
fungi, i.e. Absidia spp., Actimucor spp., Rhizopus spp.
[23] but, nevertheless, comparable with that obtained in the case
of L. edodes by Crestini et al. [3].
The properties of chitin, as well as chitosan, depend on the
degree of acetylation, which is one of the most important factors
characterising these compounds. Therefore it is critical to determine
the degree of acetylation (DA) as accurately as possible.
Many methods have been proposed including elemental analysis,
enzymatic degradation and titration of free amino groups,
IR, UV and NMR spectroscopy [24–28]. IR spectroscopy has
been proposed as a convenient way for rapidly comparing the
properties of chitins deriving from different sources, including
the degree of acetylation. Since the degree of acetylation is linearly
dependent on the ratio of the absorbance of the band at
1655 cm−1 (amide bond) and the absorbance at 3450 cm−1 of
the hydroxyl group as an internal standard, meaningful results
can only be obtained if a proper calibration line is used. Many
other calibration relationships have been proposed, but they are
still under discussion [29]. This explains the different values
of DA reported in the case of chitin deriving from the same
source. To avoid possible drawbacks due to the interpretation of
FT-IR spectra, the method of Neugebauer et al. [16] was used.
This method measures the DA on the basis of the reaction of
picric acid with amino groups of chitin and chitosan. The results
obtained in this way were highly reproducible (Table 1), with
DA values of fungal chitin samples greater than 90%.
Infrared spectra of chitin from fungi are similar to chitin spectra
reported in literature [2,25]. All IR spectra are characterised
by absorption bands at 1655 and 1555 cm−1 (Fig. 1). A comparison
among fungal chitin samples and a commercial chitin
from shrimps (Sigma) has also been performed. The IR spectra
are quite similar but, according to literature [2,29], IR spectrum
from commercial chitin shows two evident bands at 3265 and
3100 cm−1 (NH amide bond stretching) that are not present in
fungal chitin spectra.
To evaluate the purity of fungal chitin samples, the amount
of glucosamine was determined after the acid hydrolysis of
chitin that transforms N-acetylglucosamine into glucosamine
(Table 1). The glucosamine percentage obtained for fungal chitin
samples ranged between 30 and 65% of chitin. The yield is not
very high but similar to data obtained by other authors [2,30].

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

different nutritional needs and growth conditions of the differentspecies. Several authors reported that the maximum yieldof chitin and chitosan was reached at the late exponential growthphase. Under our experimental conditions the steady state wasgenerally reached after about 3 weeks and the extraction ofchitinous fractions was then performed.The main components of mycelium are water, proteins anda NaOH-insoluble fraction which mainly contains chitin andacidic polysaccharides in addition to a low quantity of chitosan.The total amount of chitin isolated from fungal mycelia rangedbetween 8.5 and 19.6% of dry weight with the best yield beingobtained from A. auricula-judae and P. ostreatus (Table 1). Onlya low yield of chitosan (about 1.0±0.12% of dry weight) wasobtained and no significant differences were evident among thedifferent species. The chitosan yields from the species understudy were lower than those obtained from some species of filamentousfungi, i.e. Absidia spp., Actimucor spp., Rhizopus spp.[23] but, nevertheless, comparable with that obtained in the caseof L. edodes by Crestini et al. [3].The properties of chitin, as well as chitosan, depend on thedegree of acetylation, which is one of the most important factorscharacterising these compounds. Therefore it is critical to determinethe degree of acetylation (DA) as accurately as possible.Many methods have been proposed including elemental analysis,เอนไซม์ในระบบย่อยสลายและการไทเทรตของกลุ่มอะมิโนอิสระIR, UV และ NMR ก [24-28] ก IR ได้การเสนอการเปรียบเทียบอย่างรวดเร็วเป็นวิธีสะดวกในการคุณสมบัติของบริษัทฯ จากแหล่งต่าง ๆ รวมถึง chitinsปริญญา acetylation เนื่องจากระดับของ acetylation เป็นเชิงเส้นขึ้นอยู่กับอัตราส่วนของ absorbance ของวงที่1655 cm−1 (amide bond) และ absorbance ที่ cm−1 3450 ของกลุ่มไฮดรอกซิลเป็นผลมาตรฐาน ความหมายการภายในเฉพาะได้ถ้าใช้เส้นเทียบที่เหมาะสม หลายความสัมพันธ์อื่น ๆ เทียบได้รับการเสนอชื่อ แต่พวกเขายังอยู่ภายใต้การสนทนา [29] นี้อธิบายค่าต่าง ๆของ DA รายงานกรณีบริษัทฯ กับไคทินแหล่งที่มา เพื่อหลีกเลี่ยงข้อเสียที่ได้จากการตีความใช้ FT IR แรมสเป็คตรา วิธีของ Neugebauer et al. [16]วิธีนี้วัดดาตามปฏิกิริยาของกรด picric กับกลุ่มอะมิโนของไคทินและไคโตซาน ผลลัพธ์ได้วิธีนี้ถูกจำลองสูง (ตารางที่ 1), ด้วยค่า DA ตัวอย่างเชื้อราไคทินมากกว่า 90%แรมสเป็คตราอินฟราเรดของไคทินจากเชื้อราจะคล้ายกับไคทินแรมสเป็คตรารายงานในวรรณคดี [2,25] แรมสเป็คตรา IR ทั้งหมดจะดำเนินโดยวงดูดซึมที่ 1655 และ 1555 cm−1 (Fig. 1) การเปรียบเทียบตัวอย่างเชื้อราไคทินและไคทินค้าจากกุ้ง (ซิกมา) ยังดำเนินการ แรมสเป็คตรา IRare quite similar but, according to literature [2,29], IR spectrumfrom commercial chitin shows two evident bands at 3265 and3100 cm−1 (NH amide bond stretching) that are not present infungal chitin spectra.To evaluate the purity of fungal chitin samples, the amountof glucosamine was determined after the acid hydrolysis ofchitin that transforms N-acetylglucosamine into glucosamine(Table 1). The glucosamine percentage obtained for fungal chitinsamples ranged between 30 and 65% of chitin. The yield is notvery high but similar to data obtained by other authors [2,30].

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ความต้องการทางโภชนาการที่แตกต่างกันและเงื่อนไขที่แตกต่างกันการเจริญเติบโตของ
สายพันธุ์ นักเขียนหลายคนรายงานว่าผลผลิตสูงสุด
ของไคตินไคโตซานและก็มาถึงที่ปลายการเจริญเติบโตชี้แจง
ขั้นตอน ภายใต้เงื่อนไขการทดลองของเราได้รับความมั่นคงของรัฐ
ถึงโดยทั่วไปหลังจากนั้นประมาณ 3 สัปดาห์และการสกัดของ
เศษส่วน chitinous ได้ดำเนินการแล้ว.
ส่วนประกอบหลักของเส้นใยมีน้ำโปรตีนและ
ส่วนที่ไม่ละลาย NaOH ซึ่งส่วนใหญ่มีไคตินและ
polysaccharides เป็นกรดนอกเหนือไปจาก ปริมาณต่ำของไคโตซาน.
จำนวนเงินทั้งหมดของไคตินที่แยกได้จากเส้นใยของเชื้อราอยู่ในช่วง
ระหว่าง 8.5 และ 19.6% ของน้ำหนักแห้งด้วยอัตราผลตอบแทนที่ดีที่สุดที่จะถูก
ได้รับจาก A. AURICULA-judae และ P. ostreatus (ตารางที่ 1) เฉพาะ
ผลผลิตต่ำของไคโตซาน (ประมาณ 1.0 ± 0.12% ของน้ำหนักแห้ง) ได้รับการ
ได้รับและไม่แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญเป็นที่เห็นได้ชัดในหมู่
สายพันธุ์ที่แตกต่างกัน อัตราผลตอบแทนจากไคโตซานจากสายพันธุ์ที่อยู่ภายใต้
การศึกษาต่ำกว่าที่ได้จากบางชนิดของเส้นใย
เชื้อราเช่น Absidia spp. spp Actimucor. spp Rhizopus.
[23] แต่ยังคงเปรียบได้กับที่ได้รับในกรณี
ของแอล Edodes โดย Crestini และคณะ [3].
คุณสมบัติของไคตินเช่นเดียวกับไคโตซาน, ขึ้นอยู่กับ
ระดับของ acetylation ซึ่งเป็นหนึ่งในปัจจัยที่สำคัญที่สุด
พัฒนาการสารเหล่านี้ ดังนั้นจึงเป็นสิ่งสำคัญในการกำหนด
ระดับของ acetylation (DA) อย่างถูกต้องที่สุด.
วิธีการหลายคนได้รับการเสนอชื่อรวมถึงการวิเคราะห์ธาตุ
เอนไซม์ย่อยสลายและการไตเตรทในกลุ่มอะมิโนอิสระ,
IR, รังสียูวีและสเปคโทร NMR [24-28] สเปกโทรสโกได้
รับการเสนอเป็นวิธีที่สะดวกรวดเร็วสำหรับการเปรียบเทียบ
คุณสมบัติของ CHITINS มาจากแหล่งที่มาที่แตกต่างกันรวมทั้ง
ระดับของ acetylation ตั้งแต่ระดับของ acetylation เป็นเส้นตรง
ขึ้นอยู่กับอัตราส่วนของการดูดกลืนแสงของวงดนตรีที่
1655 เซนติเมตร-1 (เอไมด์พันธบัตร) และดูดกลืนแสงที่ 3450 เซนติเมตร-1 ของ
กลุ่มไฮดรอกซิเป็นมาตรฐานภายในผลมีความหมาย
สามารถรับได้ถ้า สายการสอบเทียบที่เหมาะสมจะใช้ หลาย
ความสัมพันธ์กับการสอบเทียบอื่น ๆ ที่ได้รับการเสนอ แต่พวกเขาจะ
ยังอยู่ภายใต้การอภิปราย [29] นี้จะอธิบายถึงค่าที่แตกต่าง
ของ DA รายงานในกรณีของไคตินที่ได้มาจากที่เดียวกัน
แหล่งที่มา เพื่อหลีกเลี่ยงข้อบกพร่องที่เป็นไปได้เนื่องจากการแปลความหมายของ
สเปกตรัม FT-IR วิธีการ Neugebauer และคณะ [16] ถูกนำมาใช้.
วิธีมีขนาด DA บนพื้นฐานของการเกิดปฏิกิริยาของ
กรด picric กับกลุ่มอะมิโนของไคตินไคโตซานและ ผล
ที่ได้รับในครั้งนี้มีวิธีการทำซ้ำสูง (ตารางที่ 1) โดยมี
ค่า DA ตัวอย่างเชื้อราไคตินมากกว่า 90%.
สเปกตรัมอินฟราเรดของไคตินจากเชื้อรามีความคล้ายคลึงกับสเปกตรัมไคติน
รายงานในวรรณคดี [2,25] IR สเปกตรัมทั้งหมดมีลักษณะ
โดยแถบการดูดกลืนที่ 1,655 และ 1,555 เซนติเมตร-1 (รูปที่ 1). เปรียบเทียบ
ในกลุ่มตัวอย่างเชื้อราไคตินและไคตินในเชิงพาณิชย์
จากกุ้ง (ซิกม่า) ได้รับการดำเนินการ IR สเปกตรัม
ค่อนข้างจะคล้ายกัน แต่ตามวรรณคดี [2.29] IR สเปกตรัม
จากไคตินในเชิงพาณิชย์แสดงให้เห็นถึงสองวงที่เห็นได้ชัดที่ 3265 และ
3100 เซนติเมตร-1 (พันธบัตร amide NH ยืด) ที่ไม่ได้อยู่ใน
สเปกตรัมเชื้อราไคติน.
เพื่อประเมิน ความบริสุทธิ์ของตัวอย่างเชื้อราไคตินปริมาณ
ของกลูโคซาถูกกำหนดหลังจากการย่อยกรดของ
ไคตินที่แปลง N-acetylglucosamine เป็นกลูโคซา
(ตารางที่ 1) ร้อยละกลูโคซาได้รับสำหรับไคตินเชื้อรา
ตัวอย่างอยู่ในช่วงระหว่าง 30 และ 65% ของไคติน อัตราผลตอบแทนที่ไม่
สูงมาก แต่คล้ายกับข้อมูลที่ได้จากผู้เขียนอื่น ๆ [2,30]

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ความต้องการทางโภชนาการที่แตกต่างกันและเงื่อนไขการเจริญเติบโตของสายพันธุ์ที่แตกต่างกัน

ผู้เขียนหลายรายงานว่าให้ผลผลิตสูงสุด
ของไคตินและไคโตซาน อยู่ที่ปลายระยะการเจริญเติบโต
แบบเอกซ์โพเนนเชียล ภายใต้เงื่อนไขการทดลองของเรา steady state คือ
โดยทั่วไปถึงหลังประมาณ 3 สัปดาห์และการสกัด
เศษส่วน chitinous จากนั้นดำเนินการ .
ส่วนประกอบหลักของเส้นใย ได้แก่ น้ำโปรตีน : NaOH ละลายและเศษส่วนซึ่งส่วนใหญ่ประกอบด้วยไคติน และกรดพอลิแซ็กคาไรด์
นอกจากปริมาณต่ำของไคโตซาน
ยอดรวมของไคตินที่แยกได้จากเชื้อราเส้นใยมีค่า
ระหว่าง 8.5 และ 19.6 % ของน้ำหนักแห้งกับที่ดีที่สุดที่ได้จากผลผลิตถูก
. auricula judae . ostreatus ( ตารางที่ 1 ) เท่านั้น
ผลผลิตต่ําของไคโตซาน ( ประมาณ 1.0 ± 0.12 % ของน้ำหนักแห้ง ) คือ
จะได้ ไม่ แตกต่างกันชัดเจนระหว่าง
ชนิด ไคโตซานที่ผลผลิตจากสายพันธุ์ภายใต้
การศึกษาต่ำกว่าที่ได้จากบางชนิดของเส้นใย
เชื้อรา เช่น absidia spp . actimucor spp . , Rhizopus spp .
[ 23 ] แต่อย่างไรก็ตาม เทียบเคียงกับที่ได้รับในกรณี
L . เห็ดหอม โดย crestini et al . [ 3 ] .
คุณสมบัติของไคติน ,เป็นไคโตซาน ขึ้นอยู่กับ
ระดับของการกัน ซึ่งเป็นหนึ่งในปัจจัยที่สำคัญที่สุด
characterising สารประกอบเหล่านี้ ดังนั้นมันสำคัญมากที่จะตรวจสอบ
ระดับทิเลชัน ( ดา ) เป็นอย่างถูกต้องที่สุด
หลายวิธีที่ได้รับการเสนอรวมทั้งการวิเคราะห์ธาตุ
การสลายตัวเอนไซม์และการไทเทรตของกลุ่มอะมิโนอิสระ
IR , UV และ NMR spectroscopy 28 – [ 24 ]IR spectroscopy ได้
ได้รับการเสนอเป็นวิธีที่สะดวกสำหรับการเปรียบเทียบคุณสมบัติของ chitins อย่างรวดเร็ว
( ได้มาจากแหล่งต่าง ๆรวมทั้ง
ระดับการกัน . เนื่องจากระดับของการกันเป็นเส้นตรง
ขึ้นอยู่กับอัตราส่วนของค่าการดูดกลืนแสงของวง
1655 cm − 1 ( แกน ) และค่าการดูดกลืนแสงที่ 3450 cm − 1 หมู่เป็นมาตรฐาน

ความหมายผลลัพธ์ภายในเท่านั้นที่สามารถได้รับการสอบเทียบที่เหมาะสม ถ้าเป็นสายที่ใช้ ความสัมพันธ์อื่น ๆที่ได้รับการสอบเทียบมากมาย

เสนอ แต่พวกเขาจะยังอยู่ภายใต้การอภิปราย [ 29 ] นี้จะอธิบายถึงค่าแตกต่างกัน
ดารายงานในกรณีของไคติน ( ได้มาจากแหล่งเดียวกัน

เพื่อเลี่ยงข้อด้อยเนื่องจากการตีความ
- สเปกตรัมของวิธีการ neugebauer et al . [ 16 ]
ถูกใช้วิธีนี้วัดดา บนพื้นฐานของการเกิดปฏิกิริยาของ
กรดพิคริกกับอะมิโนของไคติน และ ไคโตซาน ผลลัพธ์ที่ได้ในลักษณะนี้เป็นอย่างสูง
) ( ตารางที่ 1 ) โดยค่าไค
ดาตัวอย่างเชื้อรามากกว่า 90 % .
อินฟราเรดสเปกตรัมของไคตินไคตินจากเชื้อราจะคล้ายกับสเปกตรัม
รายงานในวรรณคดี [ 2,25 ] IR spectra ทั้งหมดมีลักษณะ
โดยการดูดซึมและวงดนตรีที่ 1655 1555 cm − 1 ( รูปที่ 1 ) การเปรียบเทียบระหว่างไคตินและตัวอย่างเชื้อรา

> พาณิชย์จากกุ้ง ( Sigma ) ยังได้รับการ IR spectra
จะค่อนข้างคล้ายกัน แต่ ตามวรรณคดี [ 2,29 ] ,
สเปกตรัม IR จากไคตินเชิงประจักษ์และวงดนตรีที่แสดงสอง 3265
3100 cm − 1 ( NH แกนยืด ) ที่ไม่ได้อยู่ในที่มีแสง

ไค .เพื่อความบริสุทธิ์ของตัวอย่างที่มีปริมาณไคติน ,
ของกลูตั้งใจหลังจากกรดของไคตินที่แปลงเป็นกลู n-acetylglucosamine

( ตารางที่ 1 ) ที่ได้รับอย่างไคตินกลูค่า
3 อยู่ระหว่าง 30 และ 65 % ของไคติน ผลตอบแทนจะไม่สูงมาก แต่คล้ายกับ
ข้อมูลอื่น ๆ ผู้เขียน [ 2 , 30 ]