In general, significant changes in

In general, significant changes in organic acids concentrationsmainly
occurred during the stationary phase (days 2 to 5), as shown in Fig. 3.
Citrate concentration decreased at the start of stationary phase likely
due to its metabolism via the TCA cycle and/or glyoxylate pathway (Figs.
2 and 3A). The channelling of citrate for gluconeogensis via the
glyoxylate pathway coincided with the significant increase in glucose
on day 3.While some studies have demonstrated the use of Y. lipolytica
for the production of citrate (Levinson et al., 2007; Papanikolaou et al.,
2008; Saygün et al., 2014), this phenomenon was not observed in the
present work. In those studies, citrate production by Y. lipolytica was
induced by excess carbon and limited nitrogen in the media, while the
okara substrate in this study contained low amounts of free sugars
(limited carbon) and considerable amounts of free amino acids (excess
nitrogen). The highest citrate concentration (0.375 g/100 g drymatter)was observed
on day 1, which is equivalent to 5.06 g/100 g fat. This amount
was about half of that produced by Y. lipolytica when soybean oil was
the fermentation medium, which yielded 11.5 g/100 g oil after 7 days
(Darvishi et al., 2009). This difference was likely due to the variation
in the strain used and fermentation setup. The solid-state fermentation
setup employed in our study could have restricted the access to carbon
sources by yeast cells,while the submerged-state fermentation setup by
Darvishi et al. (2009) did not encounter this limitation, leading to a
greater amount of citrate produced. In addition, ammonium ion,
which was produced in relatively large amounts in this study
(Table 2), is a negativemodulator of citrate synthase and has been associated
with a high level of activity of aconitase (Il'chenko et al., 2002).
Hence, the okara substrate was unfavourable for citrate production,
and any synthesised citrate was likely to have been converted into
isocitrate and metabolised. Consequently, citrate concentration did not increase but decreased when Y. lipolytica was inoculated on okara.On the other hand, pyruvate and α-ketoglutarate were not detected
during the exponential phase but increased at the onset of stationary
phase (day 2) (Fig. 3B and C). The typical thiamine content in
okara greatly exceeds the growth-limiting amount for Y. lipolytica
(Morgunov et al., 2004; van der Riet et al., 1989). Under thiaminesufficient
conditions, pyruvate and α-ketoglutarate would be degraded
by pyruvate dehydrogenase and α-ketoglutarate dehydrogenase, respectively
(Morgunov et al., 2004; Zhou et al., 2010) (Fig. 2). From day
2 onwards, as the yeast cells entered stationary phase, thiamine could
have become a limiting factor. As a result, pyruvate and α-ketoglutarate

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

การเปลี่ยนแปลงทั่วไป อย่างมีนัยสำคัญในกรดอินทรีย์ concentrationsmainlyเกิดขึ้นในระหว่างการเขียนเฟส (วันที่ 2-5), ดังที่แสดงในรูป 3ซิเตรทความเข้มข้นลดลงเริ่มนิ่งระยะแนวโน้มเนื่องจากการเผาผลาญทาง TCA glyoxylate หรือรอบทางเดิน (มะเดื่อ2 และ 3A) ผ่านช่องว่างซิเตรตเป็นสำหรับ gluconeogensis ผ่านการglyoxylate เดินสอดคล้องกับการเพิ่มกลูโคสใน 3 วันในขณะที่บางการศึกษาได้แสดงให้เห็นการใช้ lipolytica วายสำหรับการผลิตของซิเตรต (Levinson et al. 2007 Papanikolaou et al.,2008 Saygün et al. 2014), ปรากฏการณ์นี้ไม่ได้ปฏิบัติในการปัจจุบันการทำงาน ในการศึกษาเหล่านั้น ซิเตรทผลิต โดย lipolytica วายเป็นเกิดจากส่วนเกินของคาร์บอนและไนโตรเจนจำกัดในสื่อ ในขณะokara พื้นผิวในการศึกษานี้ประกอบด้วยจำนวนต่ำน้ำตาลฟรี(จำกัดคาร์บอน) และจำนวนกรดอะมิโนอิสระ (ส่วนเกินมากไนโตรเจน) พบว่า ความเข้มข้นสูงสุดของซิเตรต (drymatter 0.375 g/100 g)ในวันที่ 1 ซึ่งจะเท่ากับ 5.06 กรัม/100 กรัมไขมัน เงินจำนวนนี้ถูกครึ่งหนึ่งที่ผลิต โดย lipolytica วายเมื่อน้ำมันถั่วเหลืองหมักปานกลาง ซึ่งให้ผล 11.5 กรัม/100 กรัมน้ำมันหลัง 7 วัน(Darvishi et al. 2009) ความแตกต่างนี้ก็จะเกิดจากการเปลี่ยนแปลงในสายพันธุ์ที่ใช้และตั้งค่าหมัก หมักโซลิดสเตทตั้งค่าที่ใช้ในการศึกษาของเราไม่ได้จำกัดการเข้าถึงคาร์บอนแหล่งจากเซลล์ยีสต์ ในขณะที่การตั้งค่าสถานะแช่หมักโดยDarvishi et al. (2009) ไม่พบข้อจำกัดนี้ นำไปสู่การซิเตรทมากกว่าเดิมผลิต นอกจากนี้ แอมโมเนียไอออนซึ่งผลิตในปริมาณค่อนข้างมากในการศึกษานี้เป็น negativemodulator ของซิเตรต synthase (ตาราง 2), และมีการเชื่อมโยงด้วยระดับของกิจกรรมของ aconitase (Il'chenko et al. 2002)ด้วยเหตุนี้ พื้นผิว okara ถูกเข้าสำหรับการผลิตซิเตรทและแนวโน้มที่จะถูกแปลงเป็นซิเต synthesised ใด ๆisocitrate และ metabolised ดังนั้น ซิเตรทความเข้มข้นไม่เพิ่ม แต่ลดลงเมื่อถูก inoculated lipolytica วายใน okara บนมืออื่น ๆ pyruvate และα-ketoglutarate ไม่พบระหว่างขั้นตอนการชี้แจงแต่เพิ่มขึ้นในการโจมตีของเครื่องเขียนเฟส (2 วัน) (รูปที่ 3B และ C) ไทอามีนทั่วไปเนื้อหาในokara มากเกินจำนวนเงินจำกัดการเจริญเติบโตสำหรับ lipolytica วาย(Morgunov et al. 2004; van der Riet et al. 1989) ภายใต้ thiaminesufficientเงื่อนไข pyruvate และα-ketoglutarate ที่จะเสื่อมโทรมโดย pyruvate พร่องและα-ketoglutarate พร่อง ตามลำดับ(Morgunov et al. 2004 โจว et al. 2010) (2 รูป) จากวันที่2 เป็นต้นไป เซลล์ยีสต์ป้อนระยะนิ่ง ไทอามีนอาจได้กลายเป็นปัจจัยจำกัด เป็นผล pyruvate และα-ketoglutarate

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

โดยทั่วไปการเปลี่ยนแปลงที่สำคัญในกรดอินทรีย์ concentrationsmainly
เกิดขึ้นในช่วงระยะ stationary (วันที่ 2-5) ดังแสดงในรูป 3.
ความเข้มข้นลดลงซิเตรตที่เริ่มต้นของเฟสน่าจะ
เกิดจากการเผาผลาญอาหารที่ผ่านวงจร TCA และ / หรือทางเดิน glyoxylate (มะเดื่อ.
2 และ 3A) เจ้าอารมณ์ของซิเตรตสำหรับ gluconeogensis ผ่าน
ทางเดิน glyoxylate ใกล้เคียงกับการเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญในกลูโคส
ในวัน 3.While การศึกษาบางส่วนได้แสดงให้เห็นการใช้งานของวาย lipolytica
สำหรับการผลิตของซิเตรต (ที่เลวินสัน et al, 2007;.. Papanikolaou, et al,
2008. Saygün et al, 2014) ปรากฏการณ์นี้ก็ไม่ได้สังเกตใน
การทำงานในปัจจุบัน ในการศึกษาผู้ผลิตซิเตรตโดยวาย lipolytica ถูก
ชักนำโดยคาร์บอนและไนโตรเจนส่วนเกินที่ จำกัด ในสื่อในขณะที่
พื้นผิวกากถั่วเหลืองในการศึกษานี้มีปริมาณต่ำของน้ำตาลฟรี
(เฉพาะคาร์บอน) และจำนวนมากของกรดอะมิโนอิสระ (ส่วนเกิน
ไนโตรเจน) . ความเข้มข้น citrate สูงสุด (0.375 กรัม / 100 กรัม drymatter) พบว่า
ในวันที่ 1 ซึ่งเทียบเท่ากับ 5.06 กรัม / 100 กรัมไขมัน เงินจำนวนนี้
เป็นประมาณครึ่งหนึ่งของที่ผลิตโดยวาย lipolytica เมื่อน้ำมันถั่วเหลืองเป็น
สื่อกลางในการหมักซึ่งให้ผล 11.5 กรัม / 100 กรัมน้ำมันหลังจาก 7 วัน
(Darvishi et al., 2009) ความแตกต่างนี้ก็น่าจะเกิดจากการเปลี่ยนแปลง
ในสายพันธุ์ที่ใช้ในการติดตั้งและการหมัก การหมักแบบ solid-state
การตั้งค่าที่ใช้ในการศึกษาของเราอาจมีการ จำกัด การเข้าถึงคาร์บอน
แหล่งที่มาจากเซลล์ยีสต์ในขณะที่การตั้งค่าการหมักจมอยู่ใต้น้ำของรัฐโดย
Darvishi et al, (2009) ไม่พบข้อ จำกัด นี้นำไปสู่การ
จำนวนมากของซิเตรตที่ผลิต นอกจากนี้ไอออนแอมโมเนียม
ซึ่งผลิตในปริมาณที่ค่อนข้างมากในการศึกษานี้
(ตารางที่ 2) เป็น negativemodulator ของเทสซิเตรตและได้รับการเชื่อมโยง
ที่มีระดับสูงของกิจกรรมของ aconitase (Il'chenko et al., 2002)
ดังนั้นสารตั้งต้นกากถั่วเหลืองเป็นที่ไม่เอื้ออำนวยสำหรับการผลิตรต
และซิเตรทสังเคราะห์ใด ๆ ที่มีแนวโน้มที่จะได้รับการแปลงเป็น
isocitrate และ metabolised ดังนั้นความเข้มข้นของซิเตรตไม่ได้เพิ่มขึ้น แต่ลดลงเมื่อวาย lipolytica ได้รับเชื้อใน okara.On อื่น ๆ มือไพรูและα-ketoglutarate ไม่พบ
ในช่วงการชี้แจง แต่เพิ่มขึ้นในการโจมตีของนิ่ง
เฟส (วันที่ 2) (รูป 3B และ C) เนื้อหาวิตามินบีทั่วไปใน
กากถั่วเหลืองมากเกินกว่าจำนวนเงินที่เจริญเติบโต จำกัด สำหรับวาย lipolytica
(Morgunov et al, 2004;.. แวนเดอร์ Riet, et al, 1989) ภายใต้ thiaminesufficient
เงื่อนไขไพรูและα-ketoglutarate จะถูกย่อยสลาย
โดย dehydrogenase ไพรูและα-ketoglutarate dehydrogenase ตามลำดับ
(Morgunov et al, 2004;.. โจว, et al, 2010). (รูปที่ 2) ตั้งแต่วัน
ที่ 2 เป็นต้นไปเป็นเซลล์ยีสต์ที่ป้อนเฟส, วิตามินบีจะ
ได้กลายเป็นปัจจัย จำกัด เป็นผลให้ไพรูและα-ketoglutarate

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

โดยทั่วไปการเปลี่ยนแปลงใน concentrationsmainly กรดอินทรีย์เกิดขึ้นในช่วง stationary phase ( วันที่ 5 ) ดังแสดงในรูปที่ 3ซิเตรตความเข้มข้นลดลงที่จุดเริ่มต้นของเฟสอยู่กับที่โอกาสเนื่องจากการเผาผลาญของมันผ่านทางวงจร TCA และ / หรือทฤษฎีบทเวียนบังเกิดทางเดิน ( Figs2 และ 3 ) ที่พยายามติดต่อกับซิเตรทสำหรับ gluconeogensis ผ่านทางทฤษฎีบทเวียนบังเกิดเพื่อสอดคล้องกับการเปลี่ยนแปลงในกลูโคสใน 3 วัน ในขณะที่บางการศึกษาแสดงให้เห็นว่าการใช้ lipolytica Yสำหรับการผลิตของซิเตรท ( เลวินสัน et al . , 2007 ; papanikolaou et al . ,2008 ; sayg ü n et al . , 2010 ) , ปรากฏการณ์นี้ไม่พบในปัจจุบันทำงาน ในการศึกษาที่ผลิตโดย Y lipolytica คือซิเตรตที่เกิดจากส่วนเกินคาร์บอนและไนโตรเจน จำกัด ในสื่อ ในขณะที่ใช้ในการศึกษานี้ประกอบด้วยราก ปริมาณน้ำตาลฟรี( ( คาร์บอน ) และจํานวนมากของกรดอะมิโนฟรี ( ส่วนเกินไนโตรเจน ) ความเข้มข้นสูงสุด ( citrate ) กรัม / 100 กรัม drymatter ) พบว่าใน 1 วัน ซึ่งเท่ากับ 5.06 กรัม / 100 กรัมของไขมัน จํานวนนี้ประมาณครึ่งหนึ่งของที่ผลิตโดย Y lipolytica เมื่อน้ำมันถั่วเหลือง คือการหมักขนาดกลาง ซึ่งให้ผล 11.5 กรัม / 100 กรัม น้ำมัน หลังจาก 7 วัน( darvishi et al . , 2009 ) ความแตกต่างนี้อาจเนื่องจากการเปลี่ยนแปลงในการใช้และการติดตั้งหมัก การหมักของแข็ง - รัฐการตั้งค่าที่ใช้ในการศึกษาของเรา อาจจะ จำกัด การเข้าถึง คาร์บอนแหล่งที่มาจากเซลล์ยีสต์ ในขณะที่น้ำหมักติดตั้งโดยรัฐdarvishi et al . ( 2009 ) ไม่พบข้อจำกัดนี้จะนําไปสู่จํานวนของสารเคมีที่ผลิต นอกจากนี้ แอมโมเนียมไอออนซึ่งถูกผลิตในปริมาณที่ค่อนข้างมากในการศึกษา( ตารางที่ 2 ) เป็น negativemodulator citrate synthase และได้รับการเชื่อมโยงของกับระดับสูงของกิจกรรมของโคนิเตส ( il"chenko et al . , 2002 )ดังนั้น เมื่อมีกากซึ่งการผลิตซิเตรตและสังเคราะห์เตรทมีแนวโน้มที่จะถูกแปลงเป็นไอโซซิเตรด และ metabolised . จากนั้น ซิเตรต สมาธิไม่ได้เพิ่มขึ้น แต่จะลดลงเมื่อวาย lipolytica เป็นเชื้อที่ราก บนมืออื่น ๆ , ไพรูเวท และแอลฟา ketoglutarate ไม่พบในช่วงระยะ exponential แต่เพิ่มขึ้นในการโจมตีของเครื่องเขียนเฟส ( วันที่ 2 ) ( รูปที่ 3B และ C ) โดยทั่วไปปริมาณไทอามีนกากมากเกินกว่าปริมาณที่ จำกัด การ lipolytica Y( morgunov et al . , 2004 ; ฟาน เดอร์ riet et al . , 1989 ) ภายใต้ thiaminesufficientเงื่อนไข , ไพรูเวทและแอลฟา ketoglutarate จะเสื่อมโดยเอนไซม์ pyruvate dehydrogenase และ ketoglutarate แอลฟา ตามลำดับ( morgunov et al . , 2004 ; โจว et al . , 2010 ) ( รูปที่ 2 ) จากวัน2 เป็นต้นไปเป็นเซลล์ยีสต์เข้าสู่ระยะ stationary ไทอามีนสามารถเป็นปัจจัยจำกัด . ผล ketoglutarate ไพรูเวทและแอลฟา